JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

הצלה של שפעת וירוסים מ-DNA פלסמיד היא טכניקה ניסויית בסיסי וחיוני המאפשר לחוקרים שפעת לייצר וירוסים רקומביננטי ללמוד היבטים מרובים הביולוגיה של נגיף השפעת, וכן לשמש וקטורים או חיסונים פוטנציאליים.

Abstract

מאמצים על ידי מספר קבוצות מחקר שפעת כבר מרכזי פיתוח ושיפור של שפעת A גנטיקה הפוכה וירוס. הוקמה במקור בשנת 1999

Protocol

1. הצלה וירוס שפעת transfection

נגיף שפעת שייך למשפחת Orthomyxoviridae שלילי של גדילי RNA וירוסים אפוף. שפעת A בגנום הנגיף מורכב משמונה גנים שונים של RNA קוטביות שלילית המקודדים, לפחות, 11 חלבונים נגיפיים (איור 1) 4. אנו נתמקד, בדוח זה, על חילוץ של אחד המתח מעבדה הנפוצים ביותר, שפעת A/PR/8/34, 5 באמצעות פלסמידים ambisense (pDZ) המכיל את 8 שפעת A/PR/8/34 קטעים ויראליים ( איור 2).

להצלת נגיפי שפעת רקומביננטי מ-DNA פלסמיד, אנו ממליצים על 3 transfections עצמאית לכל וירוס כל רקומביננטי. אם אחד או יותר הצלה וירוס רקומביננטי הוא ניסה, היקף הצעדים הבאים accordantly למספר וירוסים להינצל. Transfection הבאים פרוטוקול זיהום הוא הוקם עבור 6-היטב צלחות. ייצוג סכמטי של הפרוטוקול מתוארת באיור 3.

  1. OptiMEM-Lipofectamine 2000 (LPF2000) תערובת: הכן 250 μl של התקשורת OptiMEM ו 6-8 μl של transfection LPF2000 לכל. דגירה למשך 5-10 דקות בטמפרטורת החדר (RT). בינתיים, מכינים את תערובת transfection פלסמיד.
  2. תערובת transfection פלסמיד: הכן את קוקטייל transfection פלסמיד ב 50 μl של התקשורת OptiMEM. בדרך כלל אנו משתמשים 1 מיקרוגרם של ה-DNA כל שפעת פלסמיד לכל ההצלה. הוסף 1 μl של פלסמידים pDZ (ב 1 מיקרוגרם / μl) PB2, PB1, הרשות הפלסטינית, HA, NP, NA, M, ו - NS אל צינור המכיל 50 μl של התקשורת OptiMEM.
  3. OptiMEM-LPF2000-DNA פלסמיד תערובת: הוסף 250 μl 1.1 משלב את התערובת לתוך פלסמיד דנ"א transfection שפעת (שלב 1.2). דגירה זה התערובת במשך 20-30 דקות בכל RT. בינתיים, להכין את המתלים של תאים 293T ו MDCK עבור transfection.
  4. הכנה של תרבות שיתוף 293T/MDCK: לפני שמתחילים, להביא את 1X PBS, DMEM 10% FBS 1% PS התקשורת, EDTA-טריפסין תערובת עד 37 ° C. צפיפות התאים צריך להיות בנקודת המפגש 80-90% ביום transfection. בדרך כלל, צלחת אחת ומחוברות 100 מ"מ של 293T אחד צלחת ומחוברות 100 מ"מ של תאים MDCK יכול לשמש מציל 10-12. אנחנו הולכים להשתמש 250 μl של תאים לכל טוב. שתי שורות תאים יהיה resuspended בסך של 3 מ"ל של DMEM 10% FBS PS 1%.
    • בזהירות resuspend כל שורה תא 10 מ"ל של DMEM 10% FBS PS 1% צינור צנטריפוגה 15 מ"ל. תצטרך שפופרת אחת עבור תאים 293T ואחד צינור עבור תאים MDCK.
    • Resuspend התאים 293T ב 3 מ"ל של DMEM 10% FBS PS 1% וכאשר resuspended, לספק את מ"ל 3 לתאי MDCK כדי resuspend תאים אלה. זה ייתן לך את התערובת של תאים 293T ו MDCK לשמש תרבות שותף שלך.
    • הוסף 250 μl של תאים 293T/MDCK היטב לכל (10-12 יוני, גם בארות).
  5. לאחר דגירה RT 20-30 דקות (שלב 1.3), להוסיף 1 מ"ל של DMEM 10% FBS PS 1% לתערובת OptiMEM-DNA-LPF2000 שפעת פלסמיד.
  6. מוסיפים 1.3 מ"ל (שלב 1.5) לתוך בארות עם 250 μl של תאים 293T/MDCK (שלב 1.4).
  7. נער בעדינות את 6-היטב צלחת ולתת דגירה transfection הלילה (ON) בחממה ב 37 ° C ו 5% CO 2.
  8. למחרת, כ 16-24 שעות שלאחר transfection, לשנות את התקשורת ואת transfection דגירה התאים transfected ב BA DMEM 0.3% 1% PS המכיל 1 מיקרוגרם / מ"ל ​​של TPCK-טריפסין למשך 48 שעות.
  9. לאחר 48 שעות של שינוי התקשורת, העברת supernatant מתאי transfected לתוך צינור microcentrifuge.
  10. צנטריפוגה התרבות רקמות supernatant ב microcentrifuge למשך 1-2 דקות, 13,000 סל"ד.
  11. להדביק תאים MDCK טרי 6 צלחות היטב (מצופה יום לפני) או 10 יום בן ביצי תרנגולת embryonated עם 200 μl של centrifuged תרבות supernatants רקמה שלב 1.10. דגירה התאים ו / או ביצים על 37 מעלות צלזיוס במשך 2-3 ימים.
    1. זיהום של 10 יום בן ביצי תרנגולת embryonated: כל הנהלים להדביק ביצים עוף embryonated מבוצעים בתנאים סטריליים.
      1. נר 10 יום בת ביצים באמצעות תיבת אור ליקטה את הביצים כדי לראות את הממשק בין שק האוויר חלל allantoic. הפוך את סימן העיפרון על גבול ממשק.
      2. עם מחט מזרק 5 מ"ל לעשות חור קליפת הביצה.
      3. עם מזרק 1 מ"ל, להדביק כל ביצה עם 200 μl של תרבות supernatants רקמה שלב 1.10.
      4. מכסים את החור עם קליפת שעווה מותכת באמצעות מקלון צמר גפן.
      5. לדגור על הביצים נגוע ב 37οC במשך 2-3 ימים.
    2. זיהום של תאים MDCK טרי: יום לפני המעבר בתרבית רקמה supernatant מן 293T/MDCK שיתוף תרבויות קדםלקלף 6-היטב מנות צלחת עם תאים MDCK להגיע מפגש 80-90% למחרת. בדרך כלל, רקמה ומחוברות 100 מ"מ צלחת תרבות ניתן לפצל 6-8 בארות. לשטוף את התאים, פעמיים, עם PBS 1X, trypsinize ולהכין את 6 גם הצלחות. נערו בעדינות ביד צלחות כדי שיהיה הפצה במדים של התאים. התרבות התאים, ON, ב 37 ° C חממה, 5% CO 2. לפני הזיהום, לבדוק את התאים מתחת למיקרוסקופ כדי לאשר monolayer, ואז, להמשיך עם הזיהום:
      • שטפו תאים, פעמיים, עם 1 מ"ל של PBS 1X.
      • להדביק עם 200 μl של supernatants תרבות centrifuged רקמה במשך שעה 1 ב RT. אל תתנו תאים יבש. הסלע 6-היטב צלחת כל 10 דקות.
      • אחרי שעה 1 הקליטה ויראלי, להסיר את המדיה זיהום מתאי MDCK ומוסיפים 2 מ"ל של BA DMEM 0.3% 1% PS המכיל 1 מיקרוגרם / מ"ל ​​של TPCK-טריפסין.
      • ב 48-72 שעות לאחר המעבר, בהתאם ליעילות transfection ואת עומס נגיף, השפעה cytopathic (CPE) יהיו שנצפה התאים הנגועים MDCK. CPE מציע הצלה מוצלח. עם זאת, assay HA (סעיף 2) עדיין צריך להתבצע כדי לאשר את קיומו של הנגיף ב supernatants בתרבית רקמה.
  12. נוזל קציר allantoic מן הביצים עוף נגוע embryonated: כל הנהלים לקצור את נוזל allantoic מן הביצים נגוע מבוצעים בתנאים סטריליים. כ 8-12 מ"ל של נוזל allantoic ניתן לקצור מביצה 10 יום בן נגוע אחד. לפני קצירת נוזל allantoic, לדגור על הביצים העוף למשך 2 שעות (או) בשעה 4 ° C כדי להרוג את העובר עוף להקריש את הדם.
    • שוטפים את קליפות ביצים עם אתנול 70% להקים בתנאים סטריליים.
    • פתח את הביצה, בזהירות, על חלל האוויר על ידי הקשה בעזרת כף. הסר את קליפת הביצה השבורה בעזרת מלקחיים.
    • עם מחט 1 מ"ל, להסיר את הקרום allantoic בלי לשבור חלמון של ביצה.
    • לייצב את העובר עוף עם מרית כפי שאתה מדריך פיפטה 10 מ"ל לנוזל allantoic. איסוף כמו נוזל allantoic האפשר לתוך צינור צנטריפוגה 15 מ"ל על קרח בדלי קרח בלי לשבור או איסוף כל חלמון של ביצה. השתמש צינור צנטריפוגה 15 מ"ל כל ביצה.
    • צנטריפוגה במשך 5 דקות ב 4 ° C ו להעביר את נוזל allantoic (מבלי לקחת pelleted כדוריות דם אדומות) כדי טרי 15 מבחנות צנטריפוגה מ"ל.
    • חנות צינורות המכיל את נוזל allantoic centrifuged ב 4 מעלות צלזיוס עד שהם נבדקים נוכחות הוירוס הציל עם assay hemagglutination (HA).

2. HA assay כדי לאשר את החילוץ של נגיפי שפעת רקומביננטי

Assay hemagglutination (HA) משמש באופן שגרתי כדי לזהות נוכחות של וירוס שניצלו MDCK תרבות supernatants רקמות ו / או נוזל allantoic ביצים שנקטפו. לחלופין, מבחני immunofluorescence (IFA) ניתן לבצע גם. לאחר assay מזהה נוכחות של וירוס הצילו, הווירוס אמור להיות רובד מטוהרים את ההרכב הגנטי של הנגיף יאושר על ידי RT-PCR וסדר.

נוכחות של הנגיף בתרבות supernatants MDCK רקמות ו / או בנוזל allantoic מן הביצים נגוע ניתן לקבוע macroscopically באמצעות HA של עוף (או מקור אחר) כדוריות הדם האדומות (RBC). נוכחות של הנגיף גורם hemagglutination של RBC תוך היעדר וירוס מאפשר היווצרות של כדורית אדומה בתחתית הבאר (איור 4). במקרה של נגיף השפעת, הוא האמין כי כ -10 3 -10 4 יחידות פלאק ויוצרים (PFU) נדרשים לתת איתות חיובי assay HA, ולכן IFA יכול להתבצע במקביל assay HA לאשר תוצאה שלילית נכון. IFA עם נוגדנים נגד שפעת העיקרית היא יותר רגישה assay HA כי פחות מ 103-104 וירוסים יכולים להתגלות עם טכניקה זו. זה אפשרי מאשר supernatants או נוזלים allantoic כי הם HA-שלילי הן חיוביות על ידי IFA. במקרה זה, הנגיף צריך להיות מוגבר על ידי passaging, שוב, בתאים MDCK או ביצים. נוזל Allantoic ו / או בתרבית רקמה supernatants מן הקטע השני אמור להיות חיובי מובהק assay HA.

מבחני HA מתבצעות V-96-התחתונה גם הצלחות. שלילית (למשל, PBS 1X) וחיובי (בתרבית רקמה supernatants ו / או נוזל allantoic מזיהום נגיף השפעת) דגימות לשלוט תמיד צריך להיות כלול assay כל HA כדי לאמת אותו.

  • לוותר על 50 μl של PBS 1X לבאר כל לתחתית-V-96 גם צלחת.
  • הוסף 50 μl שלהתרבות MDCK רקמות supernatants ו / או נוזל allantoic מן הביצים נגוע גם הראשון, לעשות פי 2 דילולים סדרתי עבור בארות הבאה. בטל μl תוספת 50 מבאר האחרון.
  • הוסף 50 μl של 0.5% -1.0% כדוריות דם אדומות עוף (שהוכנו PBS 1X) היטב כל אחד.
  • דגירה V-96-התחתונה גם צלחת 30-45 דקות (עד נקודה אדומה גלוי בתחתית מדגם שלילי לשלוט PBS) על קרח. קרא interpretate התוצאות כמפורט באיור 4.

3. המעבר של supernatants בתרבית רקמה

תוצאה שלילית assay HA עשוי להיות תוצאה של יעילות transfection נמוך עם רמות נמוכות של הנגיף הנוכחי להיות התרבות supernatants רקמות ו / או נוזל allantoic. המעבר של דגימות אלה ביצים MDCK ו / או embryonated טרי יאפשר הגברה של הנגיף (כמצוין איור 3) זיהומים מבוצעות כפי שתואר לעיל בסעיף 1.11.2.

4. נציג תוצאות

חילוץ מוצלח נגיף השפעת יאושר על ידי נוכחות של assay חיובי HA (איור 4). בנוסף, קיומו של CPE בתאים נגועים עם supernatants בתרבית רקמה או עם הנוזל allantoic מן הביצים תציע הצלה ויראלי חיובית.

figure-protocol-10887
באיור 1. מבנה שפעת וירוס: נגיף שפעת מוקף bilayer שומנים המכילה שני גליקופרוטאינים נגיפיים (HA, NA) ו, גם, את החלבון ערוץ יון, M2. HA הוא החלבון מצורף ויראלי, אחראי מחייב sialic חומצה המכילים קולטני. NA הוא האחראי לפרסום ויראלי מתאי המארח. מתחת bilayer שומנים בדם, היא שכבה חלבון מורכב החלבון מטריצה ​​המעטפה הפנימית משטח 1, M1, אשר ממלא תפקיד virion הרכבה ניצני לבין חלבון ייצוא גרעיני (הנא"פ), הנדרשים ליצוא הגרעין של ribonucleocapsids ויראלי. הליבה של הנגיף מורכב ממכלול ribonucleoprotein (RNP), המורכבת 8 גנים חד גדילי שלילי רנ"א נגיפי encapsidated ידי nucleoprotein ויראלי, NP. הקשורים במתחם RNP הם נגיפי RNA-פולימראז תלוי רנ"א יחידות משנה הרשות הפלסטינית, PB1 ו PB2. הלא מבניים חלבונים ns1 PB1 ו-F2, המקודדים על ידי המגזרים RNA ו - NS PB1, בהתאמה, אינם חלק מהמבנה virion.

figure-protocol-11818
איור 2. הצלה שפעת פלסמידים וירוס: נגיף שפעת שמונה גנים משובטים לתוך pDZ ambisense פלסמיד מצוינים. pDZ פלסמיד 6, נגזר הביטוי חלבון פלסמיד pCAGGs 7, הוא וקטור פלסמיד כיוונית עם פולימראז RNA אנושי אני היזם רצף שליחות קטלנית עכבר המקודד רנ"א גנומי תחושה שלילית; בכיוון ההפוך פולימראז אני להתאחד, פולימראז II קלטת שעתוק (β-אקטין עוף היזם פולה) המקודד את חלבונים נגיפיים מן הגן ויראלי אותו. cDNAs של כל פלח ויראלי מופקים על ידי RT-PCR עם פריימרים קדימה הפוכה המכיל את endonuclease הגבלה SAPI האתר האזורים noncoding של כל פלח (קופסאות שחורות בסוף הגנים נגיפי). מוצר ה-PCR משובטים לתוך pDZ מעוכל עם SAP-I.

figure-protocol-12592
איור 3. שמונה פלסמיד מבוססי מערכת הצלה שפעת: pDZ פלסמידים המכילים את הגנים של נגיפי שפעת 8 הם שיתוף transfected, ההשעיה, ב-293T MDCK תאים שיתוף תרבויות (יום 1). עשרים וארבע שעות שלאחר transfection, מדיה ללא FBS אבל המכיל TPCK / טריפסין מוחלף (יום 2). ארבעים ושמונה שעות לאחר שינוי התקשורת, התרבות supernatant רקמות שנקטפו ומשומשים להדביק MDCK או 10 יום בן ביצי תרנגולת embryonated (יום 4). 48-72 שעות לאחר הגברה, תרביות רקמה של תאים נגועים supernatants MDCK או נוזל allantoic מן הביצים נקצרים ו assayed עבור נוכחות של הנגיף על ידי HA (יום 6). אם לא זוהה הנגיף, supernatants אותו ו / או נוזלים allantoic ניתן מחדש passaged לתאי MDCK טריים ו / או ביצים embryonated.

figure-protocol-13410
איור 4. Hemagglutinin assay (HA): hemagglutination של RBC על ידי חלקיק וירוס גלוי macroscopically והוא הבסיס לזהות חלקיקים נגיפיים בתרבות supernatants רקמות ו / או נוזלים allantoic. למרות assay HA אינה מפלה בין חלקיקים נגיפיים, כי הם זיהומיות חלקיקים מפורקים שאינו מסוגל עוד להדביק תאים, assay הוא אינדיקטור טוב של נוכחות של הנגיף בדגימות. א) היעדרות (למעלה) של נוכחות (התחתון) של הנגיף בדגימות ביולוגיות נקבע על ידי נוכחות של RBC בתחתית הצלחת או היעדרם, respectively. ב) תוצאה נציג assay HA ללא רמות לגילוי של וירוס (למעלה) או נוכחות (התחתון) של הנגיף מוצג.

Discussion

ההצלה של נגיפי שפעת רקומביננטי מ-DNA פלסמיד הוא תהליך פשוט וברור פעם פרוטוקול מבוצע באופן שגרתי במעבדה, אבל בהתחלה, דברים רבים יכולים להשתבש. זה הכרחי להיות הכנה טובה פלסמיד כדי ליצור את הנגיף. תחזוקה נכונה של שורות תאים (293T ו MDCK) הוא חיוני להצלת ויראלי מוצלח. באופן מסור?...

Disclosures

הר סיני הספר לרפואה של בעל זכויות הקניין הרוחני בתחום של נגיפי שפעת רקומביננטי, AG ו-S הוא ממציא בקניין רוחני זה.

Acknowledgements

המחברים רוצה להודות לחברי בעבר ובהווה של אדולפו גרסיה-סאסטרה ופיטר Palese מעבדות לפיתוח טכניקות שפעת הפוך גנטיקה פלסמידים. מחקר AG-S מעבדות ממומנת בחלקה על ידי נכה, מרכז NIAID במימון מצוינות למחקר שפעת ומעקב (HHSN266200700010C) וכן על ידי מענקים NIAD R01AI046954, U01AI070469 ו P01AI058113. מחקר LM-S מעבדה ממומנת חלקית על ידי מענק NIAID RO1AI077719.

Materials

שורות תאים

293T (מספר קטלוג CRL-11268) ו MDCK (מספר קטלוג CCL-34) שורות תאים נשמרות 37 ° C חממה עם 5 CO 2% DMEM 10% FBS, PS 1%. תאים הם צורה זמין סוג התרבות האמריקאית אוסף (ATCC, 10801 אוניברסיטת שדרות, Manassas, VA. 20110-2209 ארה"ב).

עוף וביצים Embryonated

Embryonated 10 יום בן ביצי תרנגולת ניתן לקבל צ'ארלס ריבר מעבדות, העופות ספציפי פתוגן אגרת התשלום (SPAFAS) העופות מוצרים ושירותים. פרנקלין מלאי, 106 כביש 32, צפון פרנקלין, CT 06254 ארה"ב. ביצים מודגרת ב 37 ° C הקודמת ואחרי זיהום ויראלי. לפני ואחרי זיהום ויראלי, בדק את הביצים כדי לקבוע את הכדאיות של העוברים. חשוב מאוד לחפש ביצים מת לפני ואחרי זיהום ויראלי. לפני זיהום ביצה מת ניתן הבחין בקלות על ידי בהעדר כלי הדם, כמו גם העדר ניידות העובר. כאשר בדק את, עוברים לגור לזוז. לאחר זיהום ויראלי ביצה מת (כנראה קשור זיהום בנגיף שפעת) יהיה הבחין בקלות על ידי הופעתו של ביצה רע כפי שהוא נראה על ידי נפח קטן של נוזל דם allantoic. אינפקטד, ביצים מושלכות בשקיות autoclavable כפול autoclaved הבאים נהלים סטנדרטיים.

עוף אדום דם תאים (RBC)

עוף RBC ניתן לרכוש חוות Truslow, 201 כביש בעמק, Chestertown, MD 21620. חנות ב 4 ° C. עבור מבחני HA, לשטוף 5 מ"ל של RBC עוף עם 45 מ"ל של PBS 1X בצינור צנטריפוגה 50 מ"ל. צנטריפוגה במשך 5 דקות ב 1000 rpms, RT. מחק בזהירות את supernatant ולהשתמש דילול 1:1000 של RBC pelleted ב PBS 1X (הריכוז הסופי של RBC 0.5-1.0%).

תרבות רקמות ונוזלים supernatants allantoic

שניהם, תרבות supernatants רקמות ונוזלים allantoic ניתן לאחסן 4 ° C למשך תקופה קצרה של זמן. לאחר אישור הצלה וירוס, וירוסים supernatants תא או נוזל allantoic מאוחסנים ב -80 ° C.

פלסמידים

כל פלסמידים מוכנים באמצעות המלצות maxi פלסמיד ערכת הבא של היצרן. פלסמידים כל aliquot בריכוזים של 1 מיקרוגרם / מ"ל ב DDH 2 O ו המאוחסן ב -20 ° C. עבור אחסון לטווח קצר, פלסמיד ניתן לשמור על 4 ° C. הריכוז של ה-DNA פלסמיד מטוהרים נקבעת על ידי לספקטרופוטומטריה ב 260 ננומטר, עם טוהר להיות מוערך באמצעות יחס 260:280 ננומטר. תכשירים עם 260:280 יחס 1.8-2.0 ננומטר נחשבים הופקע למטרות הצלה וירוס. בנוסף, ריכוז טוהר פלסמיד ויש אישר agarose עם ג'ל כרומטוגרפיה. Ambisense pDZ פלסמידים (6) המכיל שמונה שפעת A/PR/8/34 גנים ויראליים (7) הן באיור 2.

וירוסים

הפרוטוקול המתואר להצלת שפעת A/PR/8/34 יכול להתבצע תחת biosafety רמה (מנהלת הליגה) 2 תנאים. חומר מזוהם, כולל תרבות supernatants רקמות ביצים embryonated, יש לעקר לפני סילוק. ההצלה של וירוס השפעת אחרים עשויים לדרוש תנאים מנהלת הליגה גבוהה יותר, ולכן, תנאים מיוחדים / מדידות הביטחון יהיה צורך אחר.

תרבות רקמות התקשורת ופתרונות

DMEM 10% FBS PS 1%: 445 מ"ל מדיום שונה Dulbecco של הנשר (DMEM), 50 מ"ל של סרום שור עוברית (FBS), ו - 5 מ"ל של 100x פניצילין / סטרפטומיצין (PS). חנות ב 4 ° C. מדיה זה ישמש כדי לשמור על התאים 293T ו MDCK וכן transfections. DMEM BA 0.3% 1% נ.ב.: 495.7 מ"ל של DMEM, 4.3 מ"ל של 35% שור אלבומין (BA). חנות ב 4 ° C. רק לפני השימוש, מוסיפים טריפסין TPCK שטופלו לריכוז סופי של 1 מיקרוגרם / מ"ל. זיהומיות התקשורת.

פוספט 10X שנאגרו מלוחים (PBS): 80 גרם של NaCl, 2 גרם של KCl, 11.5 גרם של Na 2 HPO 4 0.7 H 2 O, 2 גרם של KH 2 PO 4. הוסף DDH 2 O עד 1 ליטר. התאם ל-pH 7.3. לעקר ידי החיטוי. אחסן בטמפרטורת החדר.

1X PBS: 10X PBS לדלל 1:10 עם DDH 2 O. לעקר ידי החיטוי ולאחסן בטמפרטורת החדר.

References

  1. Neumann, G., Watanabe, T., Ito, H., Watanabe, S., Goto, H., Gao, P., Hughes, M., Perez, D. R., Donis, R., Hoffmann, E., Hobom, G., Kawaoka, Y. Generation of influenza A viruses entirely from cloned cDNAs. Proc Natl Acad Sci U S A. 96, 9345-9350 (1999).
  2. Fodor, E., Devenish, L., Engelhardt, O. G., Palese, P., Brownlee, G. G., Garcia-Sastre, A. Rescue of influenza A virus from recombinant DNA. J Virol. 73, 9679-9682 (1999).
  3. Martinez-Sobrido, L., Garcia-Sastre, A. Recombinant influenza virus vectors. Future Virology. 2, 401-416 (2007).
  4. Palese, P., Shaw, M. L., Knipe, D. M., Howley, P. H. Orthomyxoviridae. The viruses and their replication. Fields Virology. , 1647-1689 (2006).
  5. Schickli, J. H., Flandorfer, A., Nakaya, T., Martinez-Sobrido, L., Garcia-Sastre, A., Palese, P. Plasmid-only rescue of influenza A virus vaccine candidates. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 356, 1965-1973 (2001).
  6. Quinlivan, M., Zamarin, D., Garcia-Sastre, A., Cullinane, A., Chambers, T., Palese, P. Attenuation of equine influenza viruses through truncations of the NS1 protein. J Virol. 79, 8431-8439 (2005).
  7. Niwa, H., Yamamura, K., Miyazaki, J. Efficient selection for high-expression transfectants with a novel eukaryotic vector. Gene. 108, 193-199 (1991).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

42transfectionassay HA

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved