JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מאמר זה מציג שיטה המשלבת דבקות של מח עצם שלם ומיון ציטומטריה זרימה לבידוד, טיפוח, מיון וזיהוי תאי גזע מזנכימליים של מח עצם מלסת חולדה.

Abstract

כאן אנו מציגים שיטה יעילה לבידוד ו culturing תאי גזע mesenchymal מח עצם mandibular (mBMSCs) במבחנה כדי להשיג במהירות תאים באיכות גבוהה רבים לדרישות ניסיוניות. mBMSCs יכול להיות בשימוש נרחב ביישומים טיפוליים כתאים הנדסת רקמות במקרה של מחלות craniofacial והתחדשות cranio-maxillofacial בעתיד בשל יכולת התחדשות עצמית מעולה ופוטנציאל בידול רב שושלת. לכן, חשוב להשיג mBMSCs במספרים גדולים.

במחקר זה, מח עצם היה סמוקה מן הלסת התחתונה mBMSCs העיקרי היו מבודדים באמצעות טיפוח מח עצם שלם דבק. יתר על כן, CD29+CD90+CD45- mBMSCs טוהרו באמצעות מיון תאים פלואורסצנטיים. הדור השני של mBMSCs מטוהרים שימשו למחקר נוסף והפגינו פוטנציאל להבדיל לתוך osteoblasts, adipocytes, וכונדרוציטים. ניצול מודל זה במבחנה, ניתן להשיג מספר גבוה של mBMSCs שגשוג, אשר עשוי להקל על חקר המאפיינים הביולוגיים, התגובה הבאה microenvironment, ויישומים אחרים של mBMSCs.

Introduction

תאי גזע mesenchymal מח עצם (BMSCs) הם תאי גזע שאינם hematopoietic נגזר מח עצם המניפסט יכולת התפשטות חזקה ובידול רבשושלתפוטנציאל 1,2,3,4. ואכן, BMSCs נחשבו כמועמד אידיאלי להנדסת רקמת עצם והתחדשות מאז שהתגלו. במשך שנים, סמל האיליאק או עצמות ארוכות כגון השוקה ועצם הירך היו המקור הנפוץ ביותר של BMSCs להתחדשות craniofacial. עם זאת, בקרי BMSC של Orofacial, כגון BMSCs מנדיבולריים (mBMSCs), מציגים כמה הבדלים מ- BMSCs של עצם ארוכה, כגון מקור עוברי שונה ותבנית פיתוח. הלסת התחתונה נובעת מתאי ציצה עצביים של שכבת הנבט הנוירוקטודרם ועוברת תולדות תוך-ממברניות, בעוד שלדים ציריים ונספחיים הם מהמסודרם ועוברים אוססיפיקציה אנדוכונדרית. יתר על כן, תצפיות קליניות ומחקרים ניסיוניים בבעלי חיים הראו באופן עקבי כי ישנם הבדלים תפקודיים בין פסגת orofacial ו iliac BMSCs5,6,7,8. דיווחים הראו כי BMSCs נגזר עצם craniofacial כגון עצם הלסת התחתונה, עצם maxillary, ועצם מכתשית הציג התפשטות מעולה, תוחלת חיים, ויכולת בידול מאלה של עצמות ציריות ונספח9. mBMSCs, אם כן, נחשבים המשאבים המועדפים עבור יישומים טיפוליים עתידיים של מחלות craniofacial כגון כרוביזם, גידול בלסת, אוסטאופורוזיס של עצם הלסת, ומפגם רקמת חניכיים10,11,12. כדי להבין את פוטנציאל הטיפול בניסויים פרה-קוליניים, חיוני לקבוע שיטה לבידוד מהיר ולבידוד mBMSCs במבחנה.

במחקר זה, המטרה הייתה להשיג mBMSCs מטוהרים על ידי דבקות מח עצם שלם ומיון cytometry זרימה. המורפולוגיה האנטומית של הלסת התחתונה של החולדה, שנצפתה בבירור באמצעות טומוגרפיה ממוחשבת מיקרו (Micro-CT) ומקטעים היסטולוגיים, הראתה כי עצם הלסת התחתונה הייתה בין החלל הטחון החותך לבין עצם מכתשית. מח העצם מעצם trabecular היה סמוק כדי להשיג תאי מח עצם, אבל התאים מתורבתים בדרך זו לא היו mBMSCs טהורים היו עשויים להיות מורכבים סוגים רבים של תאים עם עוצמות לא בטוחות ושושלת מגוונת כגון תאים מעצם, שומן ותאי אנדותל13,14. השלב הבא של טיהור התאים היה חשוב במיוחד. זרימה cytometry מסנן תאים על ידי זיהוי שילוב של חלבונים משטח התא אומץ נרחב בהעשרה של תאי גזע mesenchymal. הומוגניות התא הוא היתרון העיקרי של cytometry זרימה, אבל התהליך אינו קובע את הכדאיות של התא יכול לגרום לתפוקת תא מוגבלת. במחקר זה, P0 mBMSCs שהתקבלו הדבקות מח עצם שלם מוינו לפי cytometry זרימה כדי להשיג mBMSCs עם טוהר גבוה ויכולת התפשטות חזקה.

מחקר זה מציג פרוטוקול לשחזור ואמין לבידוד, תרבות, ובידול של BMSCs גברי עכברוש באמצעות שילוב של דבקות מח עצם שלם מיון cytometry זרימה. זוהי שיטה אמינה ונוחה לחוקרים בתחומים קשורים לשימוש.

Protocol

כל ההליכים הניסיוניים בבעלי חיים במאמר זה אושרו על ידי הוועדה לטיפול בבעלי חיים של בית החולים העממי התשיעי של שנגחאי, בית הספר לרפואה של אוניברסיטת ג'יאו טונג בשנגחאי.

1. הכנה

  1. השתמש בשני עכברושים זכרים בני 5 שבועות ספראג דולי לניסוי.
  2. לעקר את כל המכשירים, כולל מחזיקי מחט, פינצטה ומספריים בטמפרטורה גבוהה או שקוע 75% אתנול במשך 10 דקות.
    הערה: טבילה אתנול לא צריך להיות ארוך מדי כדי למנוע נזק לתאים.
  3. הכינו מראש את מדיית התרבות, שהרכבה ניתן בטבלה 1. יש להשלים כל מדיום כמתואר להלן.
    1. הכנת מדיום תרבות α-MEM (עם 10% FBS): יש להשלים לפחות אלפא בינוני חיוני (α-MEM) עם 10% סרום בקר עוברי ו-1% פניצילין וסטרפטומיצין.
    2. הכנת מדיום בידול אוסטאוגני: תוספת בידול אוסטאוגני בינוני בסיסי עם 10% סרום שור עוברי, 1% גלוטמין, 1% פניצילין-סטרפטומיצין, 0.20% חומצה אסקורבית, 1% β-גליצרוזפט ו-0.01% דקסמתזון.
    3. הכנת מדיום אינדוקציה אוסטאוגני: יש לערבב 70% α-MEM בינוני (עם 10% FBS) ובינוני בידול אוסטאוגני של 30%.
    4. הכנת מדיום בידול אדיפוגני A: תוספת בינונית בזלית דיפופוגנית עם 10% סרום שור עוברי, 1% גלוטמין, 1% פניצילין-סטרפטומיצין, 0.20% אינסולין, 0.10% IBMX, 0.10% רוזיגליטזון ו-0.01% Dexamethasone.
    5. הכנת מדיום בידול אדיפוגני B: תוספת מדיום בזל בידול אדיפוגני עם 10% סרום שור עוברי, 1% גלוטמין, 1% פניצילין-סטרפטומיצין ו-0.20% אינסולין.
    6. הכנת מדיום בידול כונדרוגני: תוספת ביונדרוגנית בידול בסיסי בינוני עם 0.01% Dexamethasone, 0.30% חומצה אסקורבית, 1% שלה, 0.10% נתרן פירובט, 0.10% פרולין ו 1% TGF-β3.
      הערה: יש להשתמש במדיום הבידול האוסטיאוגני תוך חודש לאחר קביעת התצורה. התקופה האפקטיבית של מדיום הבידול כונדרוגני מוגדר הוא 12 שעות.

2. בידוד וטיפוח של mBMSCs עכברוש

הערה: כל הניתוחים הניסיוניים צריכים להתבצע על קרח ככל האפשר כדי לשמור על הכדאיות של התא.

  1. קצירת לסתות עכברוש
    1. המתת חסד לשני עכברושים זכרים בני 5 שבועות ספראג דולי על ידי חנק CO2. ודאו שנשימת החיה נעצרת לפני שתמשיך בניסוי.
    2. לשטוף את החולדות האלה בכומתה המכילה 75% אתנול במשך 3 דקות.
    3. מניחים את החולדה בתוך מכסה המנוע אדים נקי לקצור mandibles.
      הערה: לעקר את מכסה המנוע אדים על ידי קרינת אור אולטרה סגול במשך 30 דקות לפני השימוש.
    4. מניחים את החולדה בתנוחה על-חושית. להסית את העורות ואת שרירי buccinator מן אנגולוס דו צדדית oris לאזור האחורי של הלסת התחתונה, שהיא העצם היחידה מטלטלין עם חותך נמוך יותר.
      הערה: מומלץ לבצע חתך של 2 ס"מ בכל צד של אנגולוס אוריס כדי לקבל שדה פעולה ברור.
    5. פתח את הפה של החולדה על ידי דחיפת החותכות maxillary ו mandibular לכיוון ההפוך עם שני האגודלים כדי לחשוף את השיניים הלסת התחתונה, אשר מחוברים הלסת התחתונה.
    6. נתק לחלוטין את שרירי הבוקאל ואת הגידים המחוברים לקוראקואידים ואת הגבול הנחות של הלסת התחתונה.
      הערה: ניידות מוגברת של הלסת התחתונה נצפתה במהלך שלב זה בגלל חוסר מתח שרירים.
    7. לחץ על השיניים האחוריות הלסת התחתונה ולסובב אחורה ולמטה עד condyles משני הצדדים נחשפים בבירור.
      הערה: שלב זה מבוצע כדי לפתוח באופן מלאכותי את הפה של החולדה במידה המרבית האפשרית כדי לפרוק את הקונדיל. הלסת התחתונה מחוברת לגולגולת דרך קונדילים דו-צדדיים, כך שחשיפת הקונדילים מובילה לניתוק בין הגולגולת ללסת התחתונה.
    8. הפרד את הגוף הלסת התחתונה מהגולגולת.
    9. נקה את הרקמה הרכה החסידה על משטח העצם באמצעות גזה רטובה.
    10. מניחים את העצם בצלחת זכוכית סטרילית 10 ס"מ מלא α בינונית חיונית (α-MEM) או מלוחים חיץ פוספט (PBS) על הקרח כדי לשמור על הכדאיות.
  2. בידוד וטיפוח של mBMSCs
    1. חותכים את העצם הקדמונית לאורך הקצה mesial של הטוחנת הראשונה מהגוף הלסת התחתונה. הסר את ראמוס הנדיבולרי כולל coracoid ו condyle לאורך הקצה הדיסטלי של הטוחנת השלישית כדי לחשוף את חלל מח העצם.
    2. ממלאים צלחת זכוכית סטרילית 10 ס"מ עם 10 מ"ל של α-MEM (עם 10% FBS).
    3. השתמש במזרק של 1 מ"ל כדי לשאוף את מדיום התרבות α-MEM. עם מחט המזרק מוכנס לתוך חלל מח העצם, שוב ושוב לשטוף את מח העצם לתוך המנה. לשטוף את חלל העצם לפחות 3 פעמים משני הצדדים mesial ו distal של העצם, בהתאמה, עד העצם הפך לבן.
      הערה: זהו הצעד הקריטי ביותר, כמו חלל מח העצם של הלסת התחתונה חולדה אינו ברור כמו עצם ארוכה ואת הנקודה הנכונה כדי להכניס את המחט צריך להיקבע באופן אמפירי. כל הדגימות הניסיוניות לעיל צריך להיות מאוחסן על קרח כדי לשמור על הכדאיות של התא ולכן זמן הפעולה חייב להיות לא יותר מ 2 שעות.
    4. להעביר את המדיה המכילה את התאים סמוקים לתוך צינור צנטריפוגה 15 מ"ל וצנטריפוגה ב 800 x g ב 4 מעלות צלזיוס במשך 5 דקות. השלך את הסופרנט.
    5. התחדשו בתאים עם 3 מ"ל של α-MEM (עם 10% FBS). צלחת התאים בצלחת תרבות חדשה 10 ס"מ דגירה ב 37 °C (69 °F) ב 5% CO2 אינקובטור.
    6. בדוק את השינויים המורפולוגיים ואת הצמיחה של תאים אלה ביום השלישי של התרבות. הסר את מדיום התרבות עם תאים לא מתים ושברי רקמות. הוסיפו בעדינות 10 מ"ל של α-MEM טרי (עם 10% FBS).
    7. לאחר 7 ימים של תרבות, P0 mBMSCs הגיע 70% כדי 80% מפגש.
  3. מיון תאי זרימה
    הערה: מחשבי P0 mBMSCs זוהו פנוטיפיים ומטוהרים בעיקר באמצעות מיון תאי זרימה.
    1. לשאוף ולהשליך את מדיום התרבות ולאחר מכן לשטוף את המנה עם PBS. השלך את PBS.
    2. הוסף 1 מ"ל של 0.25% טריפסין עם 0.02% EDTA בצלחת. לעכל את התאים ב 37 °C במשך 5 דקות, ולאחר מכן להוסיף 2 מ"ל של α-MEM (עם 10% FBS) כדי לעצור את התגובה.
    3. להעביר את התאים השעיה לתוך צינור צנטריפוגה 15 מ"ל וצנטריפוגה ב 800 x g במשך 5 דקות.
    4. Resuspend התאים ב 120 μL של PBS (עם 10% FBS) לאחר צנטריפוגה.
    5. חסום את המתלי התאים האלה עם μL אחד של נוגדן נגד CD16/CD32 ב 4 מעלות צלזיוס במשך 15 דקות.
    6. העבר 100 μL של השעיית התא לצינור מיקרוצנטריפוגה חדש, הכתים את התאים עם נוגדן Phycoerythrin (PE) מצומד נגד CD45, נוגדן פלואורסצנטין-isothiocyanate (FITC)-מצומד נגד CD90 ו Allophycocyanin (APC)-נוגדן נגד CD29 ב 4 °C (70 °F) עבור 1 שעות בחושך13,15. ריכוז הנוגדנים המשמשים בניסוי זה מוצג בטבלה 2. השתמש 20 μL האחרים של השעיית התא כמו שליטה שלילית מוכתמת.
    7. לאחר מכן צנטריפוגה הצינורות ב 800 x g במשך 5 דקות, להשליך את ההשעיה, ו resuspend התאים ב 0.5 מ"ל של PBS (עם 10% FBS).
    8. הוסף 10 μL של 0.01 מ"ג / מ"ל DAPI במשך 10 דקות לפני הניתוח.
    9. השתמש במסנני 40 ננומטר הממוקמים על צינורות צנטריפוגה כדי לסנן את התאים.
    10. נתח את התאים בסדרן התאים המופעל על-ידי פלואורסצנטיות. הגדר את הלוחות באופן הבא. ראשית, הסר תאים מתים מספירת תאים כוללת על-ידי גיטינג DAPI- תאים ולאחר מכן שער CD29+CD90+CD45- בתאים שנבחרו כ- mBMSCs ייעודיים.
    11. לאסוף את CD29ממוין +CD90+CD45- תאים לתוך צינור צנטריפוגה 15 מ"ל עם 3 מ"ל של α-MEM (עם 10% FBS) מוכן מראש.
    12. צנטריפוגה הצינורות ב 800 x g במשך 5 דקות. הסר את מאגר האוסף והוסף 1 מ"ל של α-MEM טרי (עם 10% FBS) כדי לשימוש חוזר בתאים. ואז צלחת אותם בצלחת תרבות 6 ס"מ.

3. יכולת היווצרות מושבה

הערה: שלב זה בוצע כדי לבדוק את יכולת החלוקה של mBMSCs. 15 (15)

  1. בחר mBMSCs של מעבר שני (P2) עבור ניסוי זה. כאשר מפגש התא הגיע 80% עד 90%, reseed התאים במעבר צבע טורי בצלחת 6 גם כדי להעריך את יכולת התפשטות השיבוט שלהם.
    הערה: מומלץ להגדיר את השיפוע מ 1 x 102 כדי 1 x 103 תאים לכל באר, אבל הדילול הסופי של קווי תאים שונים ממוצא אנושי או מן החי נקבעו באופן אמפירי.
  2. תרבית התאים α-MEM (עם 10% FBS) במשך כשבועיים עד מספר לא מבוטל של יחידות להרכיב המושבה ניתן לראות תחת מיקרוסקופ אור. רענן את מדיום התרבות כל 3 ימים.
  3. לשאוף ולהשליך את מדיום התרבות, לשטוף את הבארות עם PBS פעמיים במשך 5 דקות בכל פעם. לאחר מכן להוסיף 4% פתרון paraformaldehyde לכל באר ולתקן לפחות 10 דקות.
  4. הסר את paraformaldehyde ולשטוף את הבארות פעמיים עם PBS.
  5. הכתים את התאים בתמיסת כתמים סגולה קריסטלית ודגר אותם ב 37 מעלות צלזיוס במשך כ 10 דקות.
    הערה: זמן הכתם מותאם כראוי עד להשגת הגוון הרצוי.
  6. הסר את פתרון הכתמים ולשטוף את הדגימות עם מים מזוקקים כדי לעצור את התגובה.
  7. תמונה תחת סטריאומיקרוסקופ וספירת מושבות תאים מפוזרות שכללו לפחות 50 תאים.

4. בידול רב-לשוני של MBMSCs

הערה: מחשבי ה- MBMSCs של P2 שימשו לניסויים הבאים, אלא אם כן תואר אחרת.

  1. אינדוקציה אוסטאוגנית של mBMSCs
    1. לעכל את mBMSCs כמתואר לעיל. תאי זרע בצפיפות של 2.5 x 105/cm2 בצלחת 12 היטב בתוספת 1 מ"ל α-MEM (עם 10% FBS).
    2. כאשר המפגש התא הגיע 60-70%, לשנות את המדיום לתוך 30% אוסטאוגנית אינדוקציה מדיה. תרבית את התאים עם α-MEM (עם 10% FBS) כפקד שלילי ולשנות את המדיום כל 2 ימים.
      הערה: לאחר מספר רב של גושי סידן מופיעים במהלך osteogenesis, מומלץ לשנות את דפוס ההחלפה הבינונית להחלפה בינונית של חצי נפח כל יומיים, כדי למנוע osteoblasts לצוף.
    3. לאחר culturing במשך שבעה ימים, להעריך את הסתיידות של תאים אלה על ידי מכתים phosphatase אלקליין16,17.
    4. הסר את מדיום התרבות ולתקן את התאים עם 4% paraformaldehyde במשך 10 דקות. לשטוף את התאים באמצעות 1 מ"ל של PBS לבאר במשך 3 דקות פעמיים.
    5. לאחר מכן הכתימו את התאים בתמיסת כתמי פוספטאז אלקליין ודגרו ב-37 מעלות צלזיוס למשך 10-30 דקות.
      הערה: הדגירה יכולה להתבצע לילה בטמפרטורת החדר כדי לקבל את הצבע הנדרש.
    6. לשטוף את הבארות עם מים מזוקקים כדי לעצור את התגובה. צלם תחת מיקרוסקופ אור. גרגירים פיגמנטיים אדומים מייצגים פעילות פוספטאז אלקליין (ALP).
    7. לאחר culturing התאים הנותרים במשך 7 ימים נוספים, לבצע כתמים אדומים alizarin כדי להעריך את יכולת מינרליזציה של התאים.
    8. הכתים את התאים עם 0.5% פתרון כתמים אדומים alizarin לאחר קיבוע התא במשך 10 דקות16,18. לעצור את התגובה הכרומוגנית עם מים מזוקקים לאחר 3-5 דקות.
      הערה: ניתן להאריך את זמן התגובה בהתאם לצבע שפותח.
    9. לבסוף, מניחים את צלחת התרבות מתחת למיקרוסקופ האור כדי לבחון את ההשפעה של כתמים אוסטאוגניים; גושים אדומים מצביעים על משקעי סידן של תאים אלה.
  2. אינדוקציה אדיפוגנית של mBMSCs
    1. זרעי P2 mBMSCs בצלחת 12 באר כמתואר לעיל.
    2. לאחר בבאר להיות 90% confluent, תרבות התאים עם מדיום בידול adipogenic A. השתמש בתאים בתרבית מדיום תרבות α-MEM (עם 10% FBS) כשליטה שלילית.
    3. לאחר 2 ימים של אינדוקציה, לשאוף את המדיום A מהבאר ולהוסיף 1 מ"ל של דיפרנציאציה אדיפוגנית בינוני B בכל באר.
    4. לאחר יום אחד, להסיר בינוני B ולהתחיל את המחזור שוב עם בינוני A הוסיף בחזרה לתוך הבאר. תרבית את התאים לסירוגין באמצעות בינוני A ו- B.
    5. החל את מדיום הבידול A ו- B לסירוגין במשך שלושה מחזורים ולזהות את adipogenesis של תאים אלה על ידי שמן אדום O מכתים16,18.
      הערה: הרבה טיפות שומנים עגולים וגדולים ניתן לראות על ידי culturing תאים אלה עם מדיום בידול B במשך 2 עד 3 ימים נוספים.
    6. הסר את המדיום ולתקן את התאים עם 4% paraformaldehyde במשך 10 דקות. לשטוף את התאים עם PBS.
    7. הכתים את התאים בתמיסת כתמי O אדומה בשמן ודגר ב-37 מעלות צלזיוס למשך כ-3 דקות.
    8. הסר את פתרון הכתמים ולשטוף את הבארות עם מים מזוקקים.
    9. שימו לב לאדיפוגנזה תחת מיקרוסקופ אור.
  3. אינדוקציה של כונדרוגנסיס של mBMSCs
    1. זרעי P2 mBMSCs בצינור צנטריפוגה 15 מ"ל בצפיפות של 5 x 105/ ס"מ2.
    2. צנטריפוגה הצינורות ב 300 x g במשך 5 דקות. השלך את הסופרנט.
    3. Resuspend התאים עם 0.5 מ"ל של מדיום בידול כונדרוגני. צנטריפוגה התאים ב 300 x g במשך 5 דקות.
    4. שחרר את המכסה של צינור הצנטריפוגה ודגר אותו ב 37 °C (69 °F) באינקובטור CO2 5%. לחדש את המדיום כל יומיים.
      הערה: תאים מתחילים גלולות לאחר 24 שעות. מומלץ לא להזיז את צינור הצנטריפוגה במשך 48 שעות. היזהר לא לשאוף את גלולת התא בעת שינוי המדיום.
    5. לאחר 21 ימים של אינדוקציה, לתקן את כדורי התא עם 4% paraformaldehyde, ואחריו התייבשות, הטמעת פרפין וקטעים.
    6. לאחר deparaffinization והידרציה, כתם את המגלשות בתמיסה כחולה אלסית לפחות 15 דקות18,19,20,21, ואז לשטוף עם מים מזוקקים כדי לעצור את התגובה. לכוד את התצלומים תחת מיקרוסקופ אור.
    7. עבור כתמים אימונופלואורסצנטיים מסוג קולגן II, בצע את השלבים הבאים.
      1. דגירה שקופיות עם 5 מיקרוגרם / מ"ל proteinase K במשך 15 דקות ב 37 מעלות צלזיוס לאחר שלב deparaffinization והידרציה.
      2. דגירה השקופיות במאגר חסימה במשך 1 שעה ב 37 °C (69 °F).
      3. החל 1 μL של נוגדן קולגן מסוג II ב 200 μL של חיץ חסימה על שקופיות דגירה לילה ב 4 מעלות צלזיוס.
      4. למחרת, לשטוף את השקופיות עם PBS פעמיים דגירה עם נוגדנים משניים ב 37 מעלות צלזיוס במשך 1 שעות.
      5. דגירה את הפרוסות עם 40,6-diamidino-2-פנילינדול (DAPI) במשך 10 דקות.
    8. צלם כל שקופית תחת מיקרוסקופיה פלואורסצנטית.

5. PCR בזמן אמת

  1. לחלץ RNA סה"כ מ mBMSCs באמצעות guanidium isothiocyanate מבוסס מסחרית זמין ריאגנט.
  2. בצע שעתוק הפוך של RNA לדנ"א משלים באמצעות ערכה מסחרית זמינה. תנאי התגובה של שעתוק הפוך היו כדלקמן: 65 °C (65 °F) במשך 5 דקות, 37 °C (67 °F) במשך 15 דקות, 85 °C (65 °F) עבור 15 s.
  3. בצע PCR בזמן אמת כדי לזהות אוסטאוגנזה וגנים ספציפיים adipogenesis באמצעות פריימרים המפורטים בטבלה 3. הליך הגברה PCR היה כדלקמן: 95 °C (70 °F) במשך 5 דקות.

תוצאות

באמצעות פרוטוקול זה, חלק גדול מהתאים דבקו בצלחת ביום השלישי לאחר התרבות הראשונית. בדרך כלל, לאחר 3-4 ימים נוספים של תרבות, מפגש התאים הגיע ל-70 עד 80%(איור 1B). עם מיון תאים פלואורסצנטי, DAPI-CD29+CD90+CD45- mBMSCsטוהרו 18,22, אשר היוו כ 81.1% ...

Discussion

פרוטוקול זה מתאר שיטה לבודד BMSCs מן הלסת התחתונה חולדה במבחנה על ידי שילוב של דבקות מח עצם שלם מיון תאים פלואורסצנטי, המהווה דרך פשוטה ואמינה להשיג mBMSCs התפשטות עם יכולת בידול חזקה. שיטה זו יכולה לטהר מראש mBMSCs על ידי מיון תא זרימה, אבל אם יש דרישות גבוהות יותר עבור הומוגניות התא, שיטות טיהור מד...

Disclosures

כל המחברים מציינים שאין להם ניגודי אינטרסים.

Acknowledgements

אנו מודים על הסיוע של המעבדה עבור מרכז סטומטולוגיה דיגיטלית ומחקר עבור אנומליות Craniofacial של בית החולים העממי התשיעי של שנגחאי. עבודתו של כתב יד זה נתמכת על ידי מענקים מהקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (NSFC) [81570950,81870740,81800949], פסגת שנגחאי & מישור דיסציפלינות, קרן SHIPM-mu ממכון שנגחאי לרפואה מדויקת, בית החולים העממי התשיעי של שנגחאי, בית הספר לרפואה של אוניברסיטת שנגחאי ג'יאו טונג [JC201809], פרויקט התמריצים של צוות חדשנות ברמה גבוהה עבור בית הספר לרפואה של אוניברסיטת ג'יאו טונג בשנגחאי. ואל.ג'יי הוא חוקר של כישרונות רפואיים מצטיינים לנוער, שנגחאי "כוכבים עולים של כישרון רפואי" תוכנית פיתוח נוער ופרויקט "חן שינג" מאוניברסיטת שנגחאי Jiaotong.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% Trypsin-EDTA(1X)Gibco25200072
10cm culture dishCorning
acutenaculum
Adipogenic differentiation mediumCyagen biosciences inc.MUBMX-90031
Alcian BlueBeyotime Biotechnology
Alizarin redSigma-AldrichA5533
Alkaline Phosphatase Color Development KitBeyotime BiotechnologyC3206
alpha-Minimum essential mediumGE Healthcare HyClone Cell CultureSH30265.01B
Anti -CollagenII Rabbit pAbAbcamab34712
Antibodies against CD16/CD32
Antifade Mounting Medium with DAPIBeyotime BiotechnologyP0131
APC anti-mouse/rat CD29 Antibodybiolegend inc102215
Biosafety cabinetEscoAC2-4S8-CN
CD45 Monoclonal Antibody (OX1), PE, eBioscienceInvitrogen12-0461-82
CD90.1 (Thy-1.1) Monoclonal Antibody (HIS51), FITC, eBioscienceInvitrogen11-0900-85
CentrifugecenceL500
Chondrogenesis differentiation mediumcyagen biosciences inc.
Confocal laser scanning microscopeZeissLSM880
Countess II FL Automated Cell CounterInvitrogenAMQAF1000
Crystal Violet Staining SolutionBeyotime BiotechnologyC0121
Fetal Bovine SerumGE Healthcare HyClone Cell CultureSH30084.03
Goat Anti-Rabbit IgG H&L (Alexa Fluor 488)abcamab150077
IncubatorEscoCCL-170B-8
Inverted microscopeolympusCKX53
Magzol reagent(Trizol reagent)Magen
micropipettorEppendorf
Oil Red O
Osteogenic differentiation mediumcyagen biosciences inc.MUBMX-90021
Penicillin-StreptomycinGibco15070063
Phosphate-buffered saline(1X)Gibco20012027
PrimeScript RT Master KitTakaRa Bio IncRR036A
Proteinase KSigma-AldrichP6556
QuickBlock Blocking BufferBeyotime BiotechnologyP0260
scissor
SYBR1 PremixTakaRa Bio Inc
Toluidine BlueBeyotime Biotechnology
Trypan Blue Solution, 0.4%Gibco15250061

References

  1. Jin, C., et al. Stem cell education for medical students at Tongji University: Primary cell culture and directional differentiation of rat bone marrow mesenchymal stem cells. Biochemistry and Molecular Biology Education. 46 (2), 151-154 (2018).
  2. Chu, D. T., et al. An Update on the Progress of Isolation, Culture, Storage, and Clinical Application of Human Bone Marrow Mesenchymal Stem/Stromal Cells. International Journal of Molecular Sciences. 21 (3), 708 (2020).
  3. Jin, Z., Chen, J., Shu, B., Xiao, Y., Tang, D. Bone mesenchymal stem cell therapy for ovariectomized osteoporotic rats: a systematic review and meta-analysis. BMC Musculoskeleton Disorder. 20 (1), 556 (2019).
  4. Jiang, Y., et al. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow. Nature. 418 (6893), 41-49 (2002).
  5. Musina, R. A., Bekchanova, E. S., Belyavskii, A. V., Sukhikh, G. T. Differentiation potential of mesenchymal stem cells of different origin. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 141 (1), 147-151 (2006).
  6. Lloyd, B., et al. Similarities and differences between porcine mandibular and limb bone marrow mesenchymal stem cells. Archives in Oral Biology. 77, 1-11 (2017).
  7. Zhang, W., et al. Comparison of the use of adipose tissue-derived and bone marrow-derived stem cells for rapid bone regeneration. Journal of Dental Research. 92 (12), 1136-1141 (2013).
  8. Stefanik, D., et al. Disparate osteogenic response of mandible and iliac crest bone marrow stromal cells to pamidronate. Oral Disorders. 14 (5), 465-471 (2008).
  9. Aghaloo, T. L., et al. Osteogenic potential of mandibular vs. long-bone marrow stromal cells. Journal of Dental Research. 89 (11), 1293-1298 (2010).
  10. Kaigler, D., et al. Stem cell therapy for craniofacial bone regeneration: a randomized, controlled feasibility trial. Cell Transplantation. 22 (5), 767-777 (2013).
  11. Li, C., Wang, F., Zhang, R., Qiao, P., Liu, H. Comparison of proliferation and osteogenic differentiation potential of rat mandibular and femoral bone marrow mesenchymal stem cells in vitro. Stem Cells Development. 2020, 1941629 (2020).
  12. Matsubara, T., et al. Alveolar bone marrow as a cell source for regenerative medicine: differences between alveolar and iliac bone marrow stromal cells. Journal of Bone and Mineral Research. 20 (3), 399-409 (2005).
  13. Chan, C. K. F., et al. Identification of the Human Skeletal Stem Cell. Cell. 175 (1), 43-56 (2018).
  14. Bianco, P., Riminucci, M., Gronthos, S., Robey, P. G. Bone marrow stromal stem cells: nature, biology, and potential applications. Stem Cells. 19 (3), 180-192 (2001).
  15. Franken, N. A., Rodermond, H. M., Stap, J., Haveman, J., van Bree, C. Clonogenic assay of cells in vitro. Nature Protocol. 1 (5), 2315-2319 (2006).
  16. Xu, H., et al. Icariin prevents oestrogen deficiency-induced alveolar bone loss through promoting osteogenesis via STAT3. Cell Proliferation. 53 (2), 12743 (2020).
  17. Zhang, P., Wu, Y., Jiang, Z., Jiang, L., Fang, B. Osteogenic response of mesenchymal stem cells to continuous mechanical strain is dependent on ERK1/2-Runx2 signaling. Internation Journal of Molecular Medicine. 29 (6), 1083-1089 (2012).
  18. Zhu, H., et al. A protocol for isolation and culture of mesenchymal stem cells from mouse compact bone. Nature Protocol. 5 (3), 550-560 (2010).
  19. Lach, M. S., et al. Chondrogenic Differentiation of Pluripotent Stem Cells under Controllable Serum-Free Conditions. International Journal of Molecular Sciences. 20 (11), 2711 (2019).
  20. Huang, X., Zhong, L., Hendriks, J., Post, J. N., Karperien, M. The Effects of the WNT-Signaling Modulators BIO and PKF118-310 on the Chondrogenic Differentiation of Human Mesenchymal Stem Cells. International Journal of Molecular Sciences. 19 (2), 561 (2018).
  21. Gale, A. L., Linardi, R. L., McClung, G., Mammone, R. M., Ortved, K. F. Comparison of the Chondrogenic Differentiation Potential of Equine Synovial Membrane-Derived and Bone Marrow-Derived Mesenchymal Stem Cells. Frontiers in Veterinary Sciences. 6, 178 (2019).
  22. Li, X., Zhang, Y., Qi, G. Evaluation of isolation methods and culture conditions for rat bone marrow mesenchymal stem cells. Cytotechnology. 65 (3), 323-334 (2013).
  23. Kagami, H., Agata, H., Tojo, A. Bone marrow stromal cells (bone marrow-derived multipotent mesenchymal stromal cells) for bone tissue engineering: basic science to clinical translation. International Journal of Biochemistry and Cell Biology. 43 (3), 286-289 (2011).
  24. Chamberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing. Stem Cells. 25 (11), 2739-2749 (2007).
  25. Abdallah, B. M., Alzahrani, A. M., Abdel-Moneim, A. M., Ditzel, N., Kassem, M. A simple and reliable protocol for long-term culture of murine bone marrow stromal(mesenchymal) stem cells that retained their in vitro and in vivo stemness in long-term culture. Biology Proceedings Online. 21, 3 (2019).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

162mesenchymalmBMSCs

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved