כדי להתחיל, הכנס את החלק התחתון של קצה פיפטה חתוך, 200 מיקרוליטר לתוך מכשיר מלכודת microfluidic מוכן מראש. פיפטה, באמצעות מזרק מצויד בפילטר 0.2 מיקרומטר, כדי להזריק 400 מיקרוליטר של תמיסת קזאין בטא למאגר הכניסה של השבב. צנטריפוגה את השבב ב 900 G במשך שש דקות.
רמת הנוזל צריכה להיות שווה כעת הן בכניסה והן ביציאה. צייר קו מתאר של המרווח בשתי שקופיות אובייקטיביות. נקה את המגלשות עם פלזמה חמצן גבוהה במשך דקה אחת כדי להפוך אותם הידרופיליים.
מוסיפים אגרוז בטמפרטורה נמוכה על גבי המגלשה עד שהיא מכוסה לחלוטין באגרוז. לאחר מכן הטו את המגלשה בזווית של 90 מעלות ונקזו עודפי אגרוז על רקמה. הניחו את המגלשות על 50 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
עם סוניקטור בדיקה כף יד, מצויד גשושית מילימטר אחד, sonicate proteoliposomes מוכן. שמור את רכבי השטח של פרוטאו על קרח למשך 30 שניות לפני שתחזור על הסוניק חמש פעמים. עם מזרק 100 מיקרוליטר, להפקיד 0.5 טיפות מיקרוליטר של רכבי השטח proteo על ג'ל agarose מוכן.
השתמשו בזרימת החנקן במשך כ-10 דקות כדי לייבש את הטיפות. בעזרת מזרק ומחט, פיפטה את תמיסת הנפיחות לתוך תא מוכן דרך חור קטן בצד, ולאפשר שלפוחיות להתנפח ב 22 מעלות צלזיוס לפחות 30 דקות. הקש על התא על משטח מוצק כדי לקצור את ה- GUV מהג'ל.
כדי ללכוד את ה- GUV למיקרוסקופיה, הרכיבו שבב מיקרופלואידי פסיבי על מיקרוסקופ. לאחר בדיקת פגמים, חבר את הצינור עם מחט כפופה למוצא המאגר. לאחר חיבור הקצה השני מזרק מיליליטר אחד, להרכיב את המזרק למשאבה עם קצב זרימה מקסימלי של 10 מיקרוליטר לדקה.
החלף את חיץ השטיפה של המאגר בתווך טרי. לשטוף עם לפחות 80 מיקרוליטר של חיץ P.לאחר הסרת החיץ העודף, להוסיף את GUV proteo למאגר. נטר את השבב לאורך זמן עד שמספיק GUV נלכדו בשבב.
פיפטה החוצה את תמיסת ה- GUV העודפת. לאחר מכן הוסף את מאגר הכביסה P בקצב זרימה של 0.1 עד מיקרוליטר אחד לדקה. לבסוף, למקם את המלכודות עם כמות מספקת של שלפוחיות.
לאחר החלת ההגדרות על המיקרוסקופ, הוסף חיץ R למאגר בקצב זרימה של 0.5 מיקרוליטר לדקה. התייבשות של פרוטאו LUV מיובשים על ג'ל אגרוז בטמפרטורה נמוכה הביאה להיווצרות שלפוחיות בגודל מיקרומטר. ה-GUV נקטפו ונלכדו במכשיר מיקרופלואיד פסיבי מסוג בטא קזאין.
