Alfredo Attisano was supported by a European Social Fund studentship. James T. Murphy is supported by USDA-NIFA Award 2013-34103-21437.

1. לבנות מיל הטיסה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבנות את מבנה תמיכת פלסטיק אקרילי: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותך גיליונות אקריליק השקוף עבים 3 מ&quot;מ לשני קירות אנכיים בחוץ, הקיר המרכזי אחד אנכי וחמישה מדפים אופקיים כמפורט בעיצוב מוצג באיור 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרכיב על ידי הוספת המדפים (איורים 1 ו -2; HS) לקירות אנכיים (איורים 1 ו -2; OW וCW) כדי ליצור את מבנה התמיכה (איור 2 א). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחזק את המבנה על ידי הוספת עמודות קלקר בפינות החיצונית בחלק האחורי של המכשיר (איור 2 א ואיור 2C). אם נדרש, להדביק קטעים קצרים של קצה-מגיני זווית הנכונים לאורך צמתים קיר אנכי המרכזיים לספק תמיכה נוספת למדפים אופקיים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבנות pivotinהרכבה זרוע גרם: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דבק אורך 5 סנטימטר של צינורות פלסטיק בקוטר 1 סנטימטר למרכז החלק העליון של כל תא. דבק אורך 2 סנטימטר של צינורות פלסטיק בקוטר 1 סנטימטר למרכז החלק התחתון של כל תא, כדי לוודא שצינור העליון ותחתון בכל תא מיושר. שימוש בדבק חם, להדביק שני מגנטים ניאודימיום N42 10 מ&quot;מ x 4 מ&quot;מ לסוף כל תמיכה, ויצר נושאת המגנטית לזרועו של הטחנה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס סיכת אנטומולוגיה לקצה פיפטה 20 μl ולתקן במקום עם דבק חם. מקם את הפינים כך ששני הקצוות להאריך מתוך קצה פיפטה כדי ליצור את האבזור של טחנת הטיסה. הערה: במהלך ניסויי הטיסה, ראש הסיכה מוחזק במקום על-ידי הערכה העליונה של מגנטים. הסט התחתון של מגנטים הוא לשמור על האבזור במצב אנכי, שמאפשר לו סובב סביב הציר שלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחתוך באורך 24 סנטימטר של צינור מזרק שאינו מגנטי 19 מד פלדה. שימוש בדבק חם, להדביק נקודת המרכז לחלק העליון של F קצה פיפטהצעד ROM 1.2.2. סוף הנד אחד של הצינור ב 2 סנטימטר מהקצה לזווית של 95 מעלות, שעזב את זרוע ארוכה של 12 סנטימטרים מנקודת המרכז וזרוע קצרה עם רדיוס של 10 סנטימטרים מהמרכז לעיקול (איור 2). הערה: אורך הרדיוס יכול להיות מגוון כדי להתאים מרחקי מהפכה שונים. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להגדיר את חיישן IR ונתונים לוגר: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקן את חיישני IR לצדדים הנצחיים של כל תא באמצעות דבק שפכטל לשימוש חוזר, המאפשר לחיישן להאריך לתוך התא דרך הפתחים לחתוך לתומך החיצוני האנכי קיר (איור 2 ג). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את חיישני IR לאוגרי נתונים דרך מעגלים אלקטרוניים בסיסיים מאוד בנויים על קרש חיתוך ללא הלחמה (איור 3). חיבור שני נגדים של 180 Ω ו -2.2 ק&quot;ג-אוהם בהתאמה על הקלט והפלט של חיבור האינפרא אדום על קרש החיתוך (איור 3 א &#39;, ב&#39;). מניחים את הנגדים בAlteשורות rnate לאורך קרש החיתוך כדי למזער טיפות באות המתח במהלך הקלטה מחיישנים מרובים (ראו איור 3 ג). </li></ol></li></ol> 2. ניסויים טיסה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לקשור חרקים לזרוע טחנת טיסה בעקיפין באמצעות סיכת חרקים: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים דגל נייר קטן בסוף סוף unbent של זרוע הציר על מנת למקסם את השיבוש של קרן IR בחיישן ולפעול כמשקל נגד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בהתאם לאזור זמין עבור קובץ מצורף של החרק בגודל וציפורן, לצרף את החרקים הניסיוניים לסיכת חרקים עם מרק דבק לשימוש חוזר או דבק עור שאינו רעיל. במידת צורך, להרדים את החרקים על ידי אחד או מצמרר עם CO 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Mould כמות קטנה של מרק דבק סביב הקצה המעוגל של סיכת אנטומולוגיה ולכסות אותו עם טיפה של דבק עור שאינו רעיל. בעדינות להחיל על אזור pronotum ולחכות עד 5-10s הדבק יבש. הערה: פרוcedure בשלב 2.1.3 מתאים לחרקים עם קשיח (חיפושית, חרקים) או רכות (צרעות, זבובים) ציפורן. חרקים עם ציפורן שעיר (עש, פרפרים) יצטרכו לקבל את השיער בעדינות להסיר עם מכחול דק מאוד לפני הקשירה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את הסיכה עם החרקים המצורפים לסוף הכפוף להרכבת זרוע ציר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר טיסת הניסוי הסתיים, להסיר את הקשירה עם מלקחיים בסדר. הערה: לוגר נתונים להגדיר ורכישה כבר מותאמת באופן הבא לציוד הספציפי המופיע בטבלת החומרים וצריכים להיות מותאם לשימוש עם ציוד חלופי. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ליזום הפעלת הקלטה עם תוכנת WinDAQ לייט זמינה באופן חופשי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוריד ולהתקין את התוכנה החופשית WinDAQ לייט (ראה רשימת ציוד). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את מנהל חומרת המכשיר, בחר את הנתונים לוגר מהרשימה מוקפצת ולחץ על &quot;התחל Windaq &#39;. חלון חדש ייפתח וסימן הקלטאל מכל חיישן תוכלו לראות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את תדר דגימה הרצויה שבו הנתונים לוגר קורא ומציג פלט של החיישן. הערה: תדר הדגימה יהיה תלוי במהירות הטיסה של החרקים, אבל דגימת תדרים הנעים בין 30-45 הרץ יהיה מהיר מספיק כדי ללכוד את הטיסה של חרקים בגודל קטנים-בינוניים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחץ על Ctrl-F4 כדי להתחיל הקלטה. בחר את נתיב היעד של קובץ ההקלטה בחלון הקופץ הראשון. בחר את האורך המתאים של זמן להקליט טיסה לחרקים וניסוי מסוימים. להגדיר זמן הקלטה בחלון הקופץ השני. ברגע שזמן ההקלטה חלף לחץ על Ctrl-S כדי לסיים את הקובץ המוקלט. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לבדוק את האיכות של ההקלטה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> פתח את מסלול הטיסה שנרשם ובחר ערוץ מתח. לחץ על Ctrl-T כדי לפתוח חלון מוקפץ עם סטטיסטיקת המתח עבור כל ערוץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא שאין טיפות גדולותבמינימום הביא ערך מטיפי מתח על פני המעגל (איור 4). לבטל את כל ערוצים שבהבדל בין ממוצע הערוץ והמתח מינימאלי הוא יותר מ -0.1 V. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור את הקובץ בפורמט ה- CSV *: עבור אל קובץ&gt; שמירה בשם ובחלון המוקפץ בחר &quot;הדפסת גיליון אלקטרוני (CSV)&quot;. בחלון &quot;תגובות גיליון&quot; המוקפץ בחר &quot;זמן קרוב&quot; ובטל את כל האפשרויות האחרות. לחץ על אישור כדי לשמור את הקובץ. </li></ol> 3. ניתוח של נתונים באמצעות טיסת 3.4.x פייתון <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התקן את הגרסה האחרונה 3.4.x פייתון. הורד את הארכיון <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/Python_scripts.zip">Python_scripts.zip</a> (משלימה קבצים), לפתוח אותו, ולשמור standardize_peaks.py וflight_analysis.py על שולחן העבודה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סטנדרטיזציה ובחר את הפסגות באות נרשמהכדלהלן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחץ לחיצה ימנית על סמל standardize_peaks.py. בחר &#39;פתח עם IDLE&#39;. הערה: IDLE הוא עורך ברירת המחדל עבור פייתון, אבל כל עורך טקסט יכול לשמש למטרה זו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקווים 18-19, ציין את ערכי הסף סביב המתח הממוצע המשמש לביצוע סטנדרטיזציה של אות המתח עבור כל ערוץ. הערה: ערכי ברירת המחדל מוגדרים לספק סטנדרטיזציה אות לכוונן, אבל המשתמש יכול להגדיר כל סף רצוי בהתאם לערך של ממוצע המתח עבור כל ערוץ. אלה ניתן למצוא בחלון סטטיסטיקת מתח (ראה שלב 2.3). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 45, הקלד את הנתיב לתיקייה שבה קובץ CSV נרשם * נשמר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 91, הקלד את הנתיב לתיקייה שבה אתה רוצה להקליט את קובץ השיא * .txt. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 61 וקו 72, לציין את מספר הערוצים הדרושים. הוספה או מחיקה של ערוצים על ידי מחיקה # בתחילת השורה 61-63 ועד 72-74 מקסימוםמרב של 8 ערוצים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמור את הקובץ ולהפעיל את התסריט על ידי הקשה על F5. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזן את השם של הקובץ * CSV (עם כל תת-תיקיות נוספות) לחלון הקופץ וחזרה לחץ לשמור קובץ txt * חדש עם האותות תקניים בתיקייה שצוינה. הערה: בהתאם למספר הערוצים המשמשים n, קובץ זה מכיל עמודות 1 n +: העמודה הראשונה היא הזמן היחסי של אירוע הדגימה, עמודות n האחרות מייצגות את הבסיס ופסגות אירועים מערוצי n משמשים להקלטה. ערך של 0 מייצג את מתח הבסיס, ואילו ערך 1 מייצג שיא נובע מהמעבר של הדגל באמצעות חיישן IR. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח את מסלול הטיסה באמצעות הקובץ הסטנדרטי: ערוך את תסריט flight_analysis.py כדי להתאים את תנאי ניסוי המשתמש: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחץ לחיצה ימנית על סמל flight_analysis.py. בחר &#39;פתח עם IDLE&#39;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 39 וקו 80 להתאים את האורךשל נתיב הטיסה חוזר לפי רדיוס הזרוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> במידת הצורך, להפעיל תיקון מהירות לולאה אופציונלית על ידי מחיקה # בקווי 50-52. לשנות את ערך מהירות בהתאם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 77 וקו 85, לערוך את סף המהירות וערכי פער הזמן כדי לתקן את קריאות שווא מהירות במסלול הטיסה וחשבון לפערי זמן קצרים מאוד המתרחשים בין שני התקפי טיסה רצופים ארוכים ללא הפרעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 198, ציין את זמן הקלטה הכולל בשניות. לשנות את טווחי הערך בקווי הפלט מקו 287 והלאה. הערה: ניתן לשנות טווחי ברירת המחדל על פי דרישות ניסוי המשתמש. כדי לעשות זאת, כל הערכים המספריים בתוך הפונקציה (כלולים אלה בשם המשתנה, למשל ב&quot; flight_300_900 &quot;משתנה) צריכים להיות שונה לערך הרצוי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בסוג 248 קו הנתיב אל התיקייה שבי * הקובץ הסטנדרטי .txt נשמר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ציין את המספרערוצים. הוספה או מחיקה של ערוצים על ידי הוספה או מחיקה # בתחילת הקווים 257-259, קווי 270-272 וקווים 279-281 עד למקסימום של 8 ערוצים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בקו 304 הקלד את הנתיב לתיקייה שבה ברצונך לשמור את קבצי הפלט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שצוינו כל הגדרות המשתמש, לשמור את הקובץ ולהפעיל את התסריט על ידי הקשה על F5. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הזן את השם של הקובץ * .txt לנתח (עם כל תת-תיקיות נוספות) בחלון הקופץ ותמורה לעיתונות. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Hardie, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flight+Behavior+in+Migrating+Insects.">Flight Behavior in Migrating Insects.</a> J. Agric. Entomol. 10, 239-245 (1993).</li><li>Reynolds, D., Riley, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remote-sensing,+telemetric+and+computer-based+technologies+for+investigating+insect+movement:+a+survey+of+existing+and+potential+techniques.">Remote-sensing, telemetric and computer-based technologies for investigating insect movement: a survey of existing and potential techniques.</a> Comput. Electron. in Agric. 35, 271-307 (2002).</li><li>Davis, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Geographic+patterns+in+the+flight+ability+of+a+monophagous+beetle.">Geographic patterns in the flight ability of a monophagous beetle.</a> Oecologia. 69, 407-412 (1986).</li><li>Dingle, H., Blakley, N. R., Miller, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Variation+in+body+size+and+flight+performance+in+milkweed+bugs+(Oncopeltus).">Variation in body size and flight performance in milkweed bugs (Oncopeltus).</a> Evolution. , 371-385 (1980).</li><li>Gatehouse, A., Hackett, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+technique+for+studying+flight+behaviour+of+tethered+Spodoptera+exempta+moths.">A technique for studying flight behaviour of tethered Spodoptera exempta moths.</a> Physiol. Entomol. 5, 215-222 (1980).</li><li>Grace, B., Shipp, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+laboratory+technique+for+examining+the+flight+activity+of+insects+under+controlled+environment+conditions.">A laboratory technique for examining the flight activity of insects under controlled environment conditions.</a> Inter. J Biometeorol. 32, 65-69 (1988).</li><li>Kennedy, J., Booth, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Free+flight+of+aphids+in+the+laboratory.">Free flight of aphids in the laboratory.</a> J. Exp. Biol. 40, 67-85 (1963).</li><li>Kennedy, J., Ludlow, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Co-ordination+of+two+kinds+of+flight+activity+in+an+aphid.">Co-ordination of two kinds of flight activity in an aphid.</a> J. Exp. Biol. 61, 173-196 (1974).</li><li>Laughlin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+modified+Kennedy+flight+chamber.">A modified Kennedy flight chamber.</a> Aust. J. Entomol. 13, 151-153 (1974).</li><li>Krell, R. K., Wilson, T. A., Pedigo, L. P., Rice, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+bean+leaf+beetle+(Coleoptera:+Chrysomelidae)+flight+capacity.">Characterization of bean leaf beetle (Coleoptera: Chrysomelidae) flight capacity.</a> J. Kansas Entomol Soc. , 406-416 (2003).</li><li>Liu, Z., Wyckhuys, K. A., Wu, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Migratory+adaptations+in+Chrysoperla+sinica+(Neuroptera:+Chrysopidae).">Migratory adaptations in Chrysoperla sinica (Neuroptera: Chrysopidae).</a> Environ. Entomol. 40, 449-454 (2011).</li><li>Wang, X. G., Johnson, M. W., Daane, K. M., Opp, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+effects+of+heat+stress+and+food+supply+on+flight+performance+of+olive+fruit+fly+(Diptera:+Tephritidae).">Combined effects of heat stress and food supply on flight performance of olive fruit fly (Diptera: Tephritidae).</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 102, 727-734 (2009).</li><li>Dingle, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Migration: the biology of life on the move. , (2014).</li><li>Blackmer, J. L., Naranjo, S. E., Williams, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tethered+and+untethered+flight+by+Lygus+hesperus+and+Lygus+lineolaris+(Heteroptera:+Miridae).">Tethered and untethered flight by Lygus hesperus and Lygus lineolaris (Heteroptera: Miridae).</a> Environ. Entomol. 33, 1389-1400 (2004).</li><li>Riley, J., Downham, M., Cooter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+the+performance+of+Cicadulina+leafhoppers+on+flight+mills+with+that+to+be+expected+in+free+flight.">Comparison of the performance of Cicadulina leafhoppers on flight mills with that to be expected in free flight.</a> Entomol. Exp. App. 83, 317-322 (1997).</li><li>Taylor, R., Bauer, L. S., Poland, T. M., Windell, K. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flight+performance+of+Agrilus+planipennis+(Coleoptera:+Buprestidae)+on+a+flight+mill+and+in+free+flight.">Flight performance of Agrilus planipennis (Coleoptera: Buprestidae) on a flight mill and in free flight.</a> J. Insect Behav. 23, 128-148 (2010).</li><li>Cooter, R., Armes, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tethered+flight+technique+for+monitoring+the+flight+performance+of+Helicoverpa+armigera+(Lepidoptera:+Noctuidae).">Tethered flight technique for monitoring the flight performance of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae).</a> Environ. Entomol. 22, 339-345 (1993).</li><li>Chambers, D., Sharp, J., Ashley, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tethered+insect+flight:+A+system+for+automated+data+processing+of+behavioral+events.">Tethered insect flight: A system for automated data processing of behavioral events.</a> Behav. Res. Meth. Instr. 8, 352-356 (1976).</li><li>Clarke, J., Rowley, W., Christiansen, S., Jacobson, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microcomputer-based+monitoring+and+data+acquisition+system+for+a+mosquito+flight.">Microcomputer-based monitoring and data acquisition system for a mosquito flight.</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 77, 119-122 (1984).</li><li>Resurreccion, A., Showers, W., Rowley, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microcomputer-interfaced+flight+mill+system+for+large+moths+such+as+black+cutworm+(Lepidoptera:+Noctuidae).">Microcomputer-interfaced flight mill system for large moths such as black cutworm (Lepidoptera: Noctuidae).</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 81, 286-291 (1988).</li><li>Taylor, R., Nault, L., Styer, W., Cheng, Z. -. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Computer-monitored,+16-channel+flight+mill+for+recording+the+flight+of+leafhoppers+(Homoptera:+Auchenorrhyncha).">Computer-monitored, 16-channel flight mill for recording the flight of leafhoppers (Homoptera: Auchenorrhyncha).</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 85, 627-632 (1992).</li><li>Bruzzone, O. A., Villacide, J. M., Bernstein, C., Corley, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flight+variability+in+the+woodwasp+Sirex+noctilio+(Hymenoptera:+Siricidae):+an+analysis+of+flight+data+using+wavelets.">Flight variability in the woodwasp Sirex noctilio (Hymenoptera: Siricidae): an analysis of flight data using wavelets.</a> J. Exp. Biol. 212, 731-737 (2009).</li><li>Schumacher, P., Weyeneth, A., Weber, D. C., Dorn, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long+flights+in+Cydia+pomonella+L.+(Lepidoptera:+Tortricidae)+measured+by+a+flight+mill:+influence+of+sex,+mated+status+and+age..">Long flights in Cydia pomonella L. (Lepidoptera: Tortricidae) measured by a flight mill: influence of sex, mated status and age..</a> Physiol. Entomol. 22, 149-160 (1997).</li><li>Attisano, A., Tregenza, T., Moore, A. J., Moore, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oosorption+and+migratory+strategy+of+the+milkweed+bug,+Oncopeltus+fasciatus.">Oosorption and migratory strategy of the milkweed bug, Oncopeltus fasciatus.</a> An. Behav. 86, 651-657 (2013).</li><li>Martini, X., Hoyte, A., Stelinski, L. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Abdominal+color+of+the+Asian+citrus+psyllid+(Hemiptera:+Liviidae)+is+associated+with+flight+capabilities.">Abdominal color of the Asian citrus psyllid (Hemiptera: Liviidae) is associated with flight capabilities.</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 107, 627-632 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

עיצוב טחנת טיסה במחיר סביר, גמיש, וניתן להתאמה. חרקים טיסת התנהגות היא עניין לטווח של מדענים, מאלו שמתעניייינים בהתנהגות הבסיסית של חרקים תחת סביבות משתנים למומחים בbiocontrol שצורך להבין כיצד תנאים להשפיע על הנטייה של מיני מזיקים לפיזור. טיסת התנהגות ניתן ללמוד על ידי שיטות שונות שנעות בין &quot;הליכונים&quot; הטיסה ומנהרות רוח שתנאי שטח משוערים לשלג מכשירי טיסה קשורים. טחנות טיסה קשורות, כמו זו שהוצגה כאן, מוגבלות שבהיבטים מסוימים של טיסה, כגון שינויים בגובה, לא ניתן למדוד 14. עם זאת, טחנות טיסה קשורות מאפשרות חרקים לטוס ללא הפרעה ובכך מאפשרים לחוקרים לכמת פרמטרים כגון מהירות, מרחק ומחזוריות של טיסה ולתאם פרמטרים אלה עם תנאי סביבה, פיזיולוגיה, ומטרorphology. טחנת הטיסה מוצגת כאן נועדה לאפשר לחוקרים ללא ידע מיוחד של אלקטרוניקה לבנות ולהשתמש טחנת טיסה קשורה כדי ללמוד טיסת התנהגות בחרקים. אחד יתרונות של עיצוב זה הוא כי העלות הכוללת של טחנת הטיסה היא נמוכה בהשוואה לעיצובים אחרים. העלות הכוללת יכולה להישמר גם מתחת ל -300 דולרים. גיליונות אקריליק הפלסטיק הם הפריט היקר ביותר. היתרון השני הוא שטחנת הטיסה היא להתאמה למוגבלת סביבות עבודה מבוקרות המצב זמין במעבדות רבות, בניגוד למנהרת רוח מיוחדת. השימוש בגיליונות 3 מ&quot;מ עובי שקוף אקריליק פלסטיק אומר שהמבנה הוא גם שקוף, כדי לאפשר התבוננות קלה של החרקים, וגם קל משקל, המאפשר לטחנת הטיסה ליועבר למיקום המתאים לניסויי טיסה. התצורה נערמה של תאי טחנת טיסה למקסימום את מספר הדגימות לרוץ תוך מזעור הרגללהדפיס של המכשיר. יתר על כן, המכשיר יכול להיות מפורק בקלות לאחסון. בנוסף, טחנת הטיסה נועדה לאפשר למספר גדול של אנשים שנדגמו בקלות יחסית. כל טחנת טיסה מכילה 8 תאים, המאפשר לחוקרים להקליט פעילות טיסה של אנשים בו זמנית. חיבור חרקים בעקיפין לזרוע הציר דרך סיכת חרקים מאפשר לחרקים בודדים כדי להיות ממוקמים ובהוסרו מטחנת הטיסה במהירות. לבסוף, האלקטרוניקה הקלטת נתונים היא פשוטה וקלה לשימוש, עם תוכנה זמינה באופן חופשי לניתוח נתונים. לאחר הרכבה, טחנת הטיסה משתמשת בחיישני IR פשוט להקליט פעילות טיסה. המעבר של דגל נייר בסוף הזרוע באמצעות קרן אינפרא אדום מאפשר לכל מהפכה של הזרוע שתירשם. שיעור המהפכה מאפשר נתונים כמו מהירות, מרחק שעבר, זמן טיסה כולל ודפוסים של טיסה שיירשמו כקלט לנתונים לוגר. טחנת הטיסההוא מסוגל להיות מותאם למספר סוגים שונים של חרקים של. השימוש בצינורות פלדת מזרק לזרוע הציר הוא יעיל יותר מאשר אפשרויות אחרות, כגון מקלות עץ או קשיות שתייה כי, למרות שיותר כבד, הגרירה מיוצרת היא מופחת על ידי הקוטר הצר, המאפשרת אפילו חרקים קטנים להיות במבחן טיסה. לאחרונה, חתיכות קטנות של סיבים אופטיים כבר בשימוש בטחנת טיסה לחרקים קטנים 25. הסוף הכפוף של הזרוע יכול להיות דבוק לאבזור בזוויות שונות ביחס לציר התמיכה על מנת למצב את החרק הניסיוני בכיוון הטיסה הטבעי שלה. בעיצוב שהוצג, שברדיוס הוא 10 ס&quot;מ אורך, כל המרחק שעבר במהפכה אחת הוא 62.8 סנטימטר. הסרת הקיר האנכי המרכזי תאפשר תצורה חלופית של טחנת הטיסה שברדיוס הזרוע יכול להיות מוכפל באורך כדי להתאים חרקים גדולים ומהפכה מרחקים של עד 1.20 מ &#39;. במקרה זה, מגנטים חזקים הם recommenטוליפ אין כדי להתאים ולייצב את זרועו של הטחנה עוד. כאמור בכל, עיצוב טחנת הטיסה הוא גמיש להתאמה למיני חרקים של עניין וחוקרים מסוגלים להתאים אותו לצרכים שלהם בפרט. זה כולל לא רק צרכי הפיזיים של החרקים, כוללים פרמטרים כגון גודל, כוח, מבנה של הציפורן, אלא גם הבדלים ביולוגיים בין מינים. חסרון פוטנציאלי אחד לכל טחנות הטיסה הוא שחוסר החרקים &quot;הכוחות&quot; תמיכת tarsal לעוף, אולי עד כדי אפיסת כוחות. אמנם זה נכון בכמה מינים, למשל, ראה את תגובת הטיסה האוטומטית עם ניסויי באג פרח חלבלובנו, זה לא נכון לכל החרקים שנבדקנו (לדוגמא vespilloides נ). עם זאת, אפילו עם התגובה האוטומטית, שמעולם לא נצפו חרקים מעופפים לתשישות או מוות, בין שאר בשל זמן ההקלטה בחרנו כדי להתאים את הביולוגיה של החרקים. לפיכך, חשוב לעשותתצפיות ראשוניות על החרקים של עניין להבין את ההתנהגות שלה במפעל הטיסה על מנת לייעל את איסוף הנתונים. סוגיה נוספת, ידועה בטחנות טיסה, היא שיכולה לשמור על אינרציה תנועה גם לאחר החרקים הפסיקו באופן פעיל מעופף. התסריט סיפק חשבונות לטעויות בהבנה בשל אינרציה של טחנת הטיסה, מאופיין בירידה מהירה במהירות טיסה והגדלת מרחקים בין פסגות. &quot;Flight_analysis.py &#39;התסריט מוחק&quot; פסגות שווא&#39; אלה ובונה אות חדשה לניתוח. המשתמש יכול לבחור את סף המהירות לתיקון, כפי שמוסבר בהערות שנקבעו בתסריט. 5 V מקור כוח מספיק כדי לקבל אות מתח קריא, אולם כוח יחידה עם מתח יציאה משתנה יכולה לשמש כמקור כוח כדי לאפשר קלט הכח להיות מגוון ובכך לייעל את העבודה במתח לכל חיישן. פתרון כזה יכול גם לעזור להגדיל את o איכות ההדמיהאותות שיא F בממשק ההקלטה של ​​התוכנה. הפלט של החיישן מוצג בממשק התוכנה שכהוקם על ידי מתחי בסיס ושיא שבו מתח הבסיס מייצג את המתח הנמוך ביותר הפלט מהחיישן במנוחה (כאשר קרן האינפרא האדומה לא הפסיקה), ואילו מתח השיא היא העלייה ממתח הבסיס המתרחש כאשר קרן IR נקטעה כזרוע נוסעת דרך הקרן. מתח כניסה של 5 V מספק עלייה של כ -100 mV תוך הגדלת הקלט 7 V מגביר עלייה של השיא ל -300 mV מאפשרת לאפליה ברורה יותר של מתחי בסיס ושיא. גודלו של קרש חיתוך ההלחמה נבחר קובע כיצד ניתן לאכלס תאי טיסה רבים. על מנת למזער את הטיפות באות המתח במהלך הקלטה מחיישנים מרובים, מומלץ למקם את הנגדים בשורות חלופיות לאורך קרש החיתוך (ראה איור 3 ג). תקינת אות להתאמה אישית וanalysiתסריטים של נכתבו עבור פייתון שפת תכנות הגישה הפתוחה. התקינה והניתוח של אות המתח מתבצעים באמצעות תסריטים שנכתבו מותאם אישית בפייתון, שהיא שפה חופשית, בשימוש נרחב למטרות כלליות ורמה גבוהה תכנות. משתמש הקצה יכול בקלות להתאים אישית את התסריטים לעבודה עם הגדרות שצוינו עצמו. ההתאמה האישית מושגת פשוט על ידי שינוי ערכים מספריים או שמות משתנים. ניתן למצוא הערות על איך להתאים את הפרמטרים בתוך התסריטים עצמם. ערכי ברירת המחדל בתסריטים מוגדרים לספק סטנדרטיזציה אות לכוונן, אבל המשתמש יכול להגדיר כל סף רצוי בהתאם לערך של ממוצע המתח עבור כל ערוץ. בתסריט ניתוח הטיסה, flying_bouts הפונקציה מקו 105 מחשבת את משך הזמן בשניות של הארוך ביותר ועפנו התקפים הקצרים ביותר, את אחוז הזמן שבילה בטיסה מעל כולל זמן ההקלטה ומספר טיסת התקף אירועים של מגוון משך צוין. ניתן לשנות הטווחים בהתאם לדרישות ניסוי המשתמש. כדי לעשות זאת, כל הערכים המספריים בתוך הפונקציה (כלולים אלה בשם המשתנה, למשל ב&quot; flight_300_900 &quot;משתנה) צריכים להיות שונה לערך הרצוי. מספר הטווחים ומשך הזמן שלהם פשוט תלוי במפרט של המשתמש. התסריט יודפס על מסך את התוצאות של הניתוח לכל ערוץ. אלה כוללים: מהירות ממוצעת מעופפת, הכולל זמן טיסה, מרחק שעבר, וארוך ביותר מעופף התקפים הקצרים והרכב טיסה. בנוסף, התסריט חוזר קובץ הזאתי מחתה * לכל ערוץ ושומר אותו בתיקיית הפלט שצוינה על ידי המשתמש. כל קובץ הזאתי מחתה * מכיל שתי עמודות: הראשון מייצג את הזמן היחסי של אירוע השיא, שני הווריאציה מהירות מפורטת בין שני אירועי שיא רצופים הוא. קובץ זה יכול להיות מיובא ב- Excel או R כדי לייצר גרף של הווריאציה על המהירותזמן ולדמיין את דפוסי פעילות הטיסה. לסיכום, תוצאות אלו מראות כי עיצוב טחנת טיסה זו יכול להיות מיושמת בקלות ובהצלחה כדי לאסוף נתונים עבור מחקרים התנהגותיים מסתכלים על טיסת דפוסי פעילות בדגמי חרקים שונים. נתונים אלה יכולים לשמש כדי לחקור וריאציה בודדת בדפוסים תלויים כמו למשל על פיזיולוגיה ומורפולוגיה תנועה. זה יכול להציע תובנות גדולות לתכונות הפיזיולוגיות ומורפולוגיה בסיס קביעת וריאציה בודדת בדפוסי תנועה כמו ליקוט או פעילות נודדת, שסופו של דבר משפיע על אוכלוסייה בכללותה. הווריאציה המהירות מפורטת לאורך זמן ניתן להשתמש בשילוב עם מדידות פיסיולוגיות ומורפולוגיות מפורטות, מציע כלי ללמוד דפוסי צריכת משאבים או השפעות של שינוי במורפולוגיה חלק גוף על פעילות הטיסה.

טכניקות מעבדה כמה פותחו עבור המחקר של 1,2 טיסת התנהגות חרקים. אלה נעות בין 3,4 קשירת סטטי פשוטה למכשירים מתוחכמים המאפשרים חופש תנועה לחרקים קשורים 5. לתאי טיסת תאריך 6-9 מייצגים את המכשירים המאפשרים את הרמה הגבוהה ביותר של חופש הטיסה בתנאים מבוקרים. טכניקה זו יש שני חסרונות עיקריים: קשה להשתמש לחקר חרקים גדולים וההליך הידני של איסוף הנתונים הוא זמן רב. טחנות טיסה לייצג אחת הטכניקות הנפוצות וזולות ביותר ללימוד טיסת חרקים בתנאי מעבדה 10-12. טכניקה זו היא עדיפה על קשירת סטטי כי הוא מציע נע 13 גירויים, אבל זה שונה מטיסה חופשית תגובה התנהגותית 14-16. היבטים מסוימים של התנהגות הטיסה על הטחנה ובטבע הם similar 5,17 כך למרות מגבלות מסוימות, טחנות טיסה מייצגות אפשרות מעשית לחקור שאלות בנוגע להתרחשותן של תגובות טיסת התנהגות מסוימות, כמו במקרה של סוג טיסה נודד. כמו כן, טחנות טיסה קלות יותר להבין מאשר מנהרות רוח או תאי טיסה ואיסוף נתונים בקלות יכול להיות אוטומטי. לפיכך, חוקרים מעוניינים בטיסה התנהגות לעתים קרובות מוצאים שטחנות הטיסה הן הבחירה הטובה ביותר, אבל צריך להיות מודע למגבלות הפוטנציאל לשיטה. הנה, עיצוב טחנת טיסה גמיש וניתן להתאמה אישית מוצג לחוקרים שבחרו לנצל את טחנות טיסה לחקור טיסת התנהגות. כמה מחברים מתארים עיצובי טחנת טיסה חלופיים. באופן כללי את החלק העיקרי של מערכת טיסת הטחנה, כלומר, הזרוע של טחנת הציר, הוא די פשוט להבין. פשוט פחות הוא החלק האלקטרוני של מערכת טחנת טיסה, המאפשרת ההקלטה של ​​הנתונים. התמודדות עם אלעיצוב מעגלי ectronic יכול להיות מאתגר, במיוחד לחוקר החרקים או אקולוג ההתנהגות חסר בידע רקע של אלקטרוניקה. חלק מהחברים לתאר מסובך או מתוך רכיב במעגלים אלקטרוני תאריך בעיצובם טחנת טיסת 18-21, או התיאור של החלק האלקטרוני של טחנת הטיסה חסרה 22,23. עיצובים אחרים לתאר actographs המסובך מכאני, שהם די מסובכים להבין, אבל יכול לעזור לחוקרים לבצע תצפיות התנהגותיות מורכבות יותר 5. במאמר זה עיצוב לפשוט לבנות, טחנת טיסה זולה יחסית ללימוד טיסה קשורה בחרקים מתוארת. יחד עם הרכיב האלקטרוני פשוט מאוד, יש לו את העיצוב מספר היתרונות. טחנת הטיסה מיועדת לשימוש בחללים מוגבלים בדרך כלל הזמינים במעבדה לאקולוגיה של חרקים סטנדרטית. המבנה עשוי מp אקריליק השקוףlastic כך שמקור אור יחיד באופן שווה יכול להגיע לכל אדם בתאים נפרדים של הטחנה. בהתחשב בשקיפות של החומר וגודל קטן, טחנת הטיסה ניתן להשתמש באינקובטור לתנאי אור וטמפרטורה סטנדרטיים. לבסוף, את המבנה כולו ניתן להרכיב ומפורקים בקלות, וברגע מפורק, זה יכול להיות מאוחסן בחלל קטן. יתרון נוסף לעיצוב של המבנה הוא שטחנת הטיסה יכולה להיות שונה כדי לאפשר המחקר של חרקים בגודל שונה ושימוש במרחקי מהפכה שונים. טחנת טיסה זו נעשתה שימוש כדי לאסוף נתונים על חרקים מגוונים כמו בגודל וצורה כמו חרקי פרח חלבלוב, 24, באגים פאסקיאטוס Oncopeltus kudzu, cribraria Megacopta, וחיפושיות לקבור, vespilloides Nicrophorus. עיצוב טחנת הטיסה גם מאפשר לגבוה דרך-מכר הנדרש ללימודים דורשים גודל מדגם גדול. ניתן לאסוף נתונים באמצעות 8 ערוצים בו זמנית לכל אחד מאוגרי נתונים uSED כך שמספר גבוה של אנשים ניתן לנתח בו זמנית ומספר גדול של דגימות יכול להיות מטופלים באותו היום. אין צורך בתוכנה יקרה כדי להקליט ולדמיין את הנתונים ואת התסריט כתב מותאם אישית לניתוח נתונים יכול להיות שונה הבא הצרכים הספציפיים של תכנון הניסוי. תגובת טיסה היא משתנה מאוד במינים חרקים שונים. לפיכך, לפני ביצוע ניסוי טחנת טיסה מלא, בדיקות ראשוניות על תגובת הטיסה של דגם החרקים מוקדי מומלצות. אלה יספקו הבנה של היקף הווריאציה ההתנהגות בתגובה טיסה, אשר תשמש להיבטים לכוונן של ניתוח הטיסה כגון זמן הקלטה או טווח מהירות טיסה.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="854">
	<tbody>
		<tr height="147">
			<td height="147" style="height:147px;width:248px;">Data Logger</td>
			<td style="width:137px;">DATAQ Instruments, Ohio, USA</td>
			<td style="width:137px;">DI-149</td>
			<td style="width:332px;">These particular data loggers were chosen because they can be easily connected via USB to a computer and come with free proprietary software (WinDaq/Lite, DATAQ Instruments, Ohio, USA) to visualize and record the sensor&#39;s output, increasing the affordability of the flight mill design.</td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;width:248px;">Data Logger - potential alternative</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">A potential alternative to the DATAQ data loggers&#160; is an RS232 to USB adaptor, readily available through office or electronic supply stores.&#160; These should be able to read data directly from the serial port via the pyserial module.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:248px;">Entomological pins</td>
			<td style="width:137px;">BioQuip</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">Hypodermic steel tubing 19 guage</td>
			<td style="width:137px;">Small Parts</td>
			<td style="width:137px;">B000FN5Q3I</td>
			<td style="width:332px;">Available through Amazon.com; other suppliers are available but be sure to purchase austenitic steel tubing to ensure the arm in non-magnetic</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:248px;">IR Sensors</td>
			<td style="width:137px;">Optek Technology Inc., Texas USA</td>
			<td style="width:137px;">OPB800W</td>
			<td style="width:332px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">N42 neodymium magnets</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">Readily available; can be purchased through specialized magnet suppliers, hobby stores or Amazon</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:248px;">Plexiglass/perspex</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">Readily available at any hardware store</td>
		</tr>
		<tr height="105">
			<td height="105" style="height:105px;width:248px;">Polystyrene columns for support</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:332px;">Any polystyrene or styrofoam packing materials that might otherwise be discarded or recycled can be used to fashion the support columns for the flight mill.&#160; Otherwise, styrofoam insulation sheets are available at any hardware store.</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">Solderless Breadboard Power Supply Module</td>
			<td style="width:137px;">Arrela</td>
			<td style="width:137px;">MB102</td>
			<td style="width:332px;">The 5V power unit, breadboard and solderless male-male jumper wires can be easily purchased as a kit.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a simple flight mill for the study of tethered flight in insects

Flight in insects can be long-range migratory flights, intermediate-range dispersal flights, or short-range host-seeking flights. Previous studies have shown that flight mills are valuable tools for the experimental study of insect flight behavior, allowing researchers to examine how factors such as age, host plants, or population source can influence an insects' propensity to disperse. Flight mills allow researchers to measure components of flight such as speed and distance flown. Lack of detailed information about how to build such a device can make their construction appear to be prohibitively complex. We present a simple and relatively inexpensive flight mill for the study of tethered flight in insects. Experimental insects can be tethered with non-toxic adhesives and revolve around an axis by means of a very low friction magnetic bearing. The mill is designed for the study of flight in controlled conditions as it can be used inside an incubator or environmental chamber. The strongest points are the very simple electronic circuitry, the design that allows sixteen insects to fly simultaneously allowing the collection and analysis of a large number of samples in a short time and the potential to use the device in a very limited workspace. This design is extremely flexible, and we have adjusted the mill to accommodate different species of insects of various sizes.

איור 5 מראה דוגמאות מייצגות של הסוג של גרפים שניתן להשיג באמצעות התסריטים מתוארים בסעיף הקודם. נתוני טיסה התקבלו מנערכה במחלקה לזואולוגיה באוניברסיטת קיימברידג &#39;עבודה ניסויית באמצעות החיפושית קוברת Nicrophorus vespilloides כמודל (Attisano, נתונים שלא פורסמו). שני זכרים ךזוג צעירים של כ 20 ימים של גיל היו קשורים לטחנות הטיסה ו ממוקם בתנאים סביבתיים בשליטה של ​​14:10 L: D ו- 21 מעלות צלזיוס. החיפושיות נשארו בטיסת הטחנה במשך 8 שעות ברציפות ופעילות הטיסה נרשמה. על ניתוח מסך והפלט הגרפי מאפשר לפתור הבדלים אישיים בדפוסי פעילות טיסה. לדוגמא, הגבר הראשון (איור 5 א &#39;) הראה פעילות טיסה חזקה בתוך השעה הראשונה של הקלטה, המתאפיין במהירות גבוהה וטיסה רצופה שנמשכה כשלוש שעות. ההוא שלב פעילות ממושך מאופיין בירידה הדרגתית במהירות מכ -1.6 מ &#39;/ s כ 1 מ&#39; / s ש. לאחר התקף הטיסה הראשוני, הפרט הראה דפוס כמעט תקופתי של טיסה קצרה יחסית התקפי כל משך כ 10-15 דקות. הזכר השני הראה דפוס טיסה שונה מאוד עפו עם התקפים שמעולם לא עלו על משך 15-20 דקות (איור 5). באדם זה את פעילות הטיסה מאופיינת בהתפשטות רחבה של טיסת התקפים ב -4 השעות הראשונות של הקלטה, לאחר שפעילותה הופכת כמעט תקופתית. אדם זה הציג גם מהירות טיסה נמוכה מאוד שעלתה רק מדי פעם 0.4 מ &#39;/ s. דוגמא נוספת נציג הושגה תוך שימוש במודל חרקים שונה, פאסקיאטוס Oncopeltus באג פרח חלבלוב. הנתונים נאספו במהלך מחקר על התנהגות הנדידה ותגובה פיזיולוגית ללחץ מזון בנקבות באג פרח חלבלוב 24. במחקר זהזמן הקלטה נקבע לשעה אחת כדי לאפיין נקבות כמהגרים או התושבים. אלו סוגי התנהגות מאופיינים בתגובה &quot;הכל או לא כלום&quot;. נקבות נודדות לעסוק בטיסות ממושכות ורציפות בדרך כלל נמשכים כמה שעות, ואילו נקבות תושב לא להראות פעילות טיסה ארוכה יותר מכמה דקות. לפיכך, נקבת עבודה תציג דפוס טיסה כמו באיור 6 א, ואילו נקבת תושב תהיה מאופיינת בדפוס תנועה כמו באיור 6. <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig1.jpg" /> תצורת 1. עיצוב דמות למבנה תמיכת פלסטיק אקרילי. מבנה תמיכת פלסטיק אקרילי לטחנות הטיסה בנויה משלושה מרכיבים שונים. ישנם שני קירות חיצוניים אנכיים (OW) המכילים את שני החריצים למדפים ופתיחה כדי להתאים את sens IRORS (). יש קיר אחד מרכזי אנכי (CW) עם חריצים למדפים. ויש 5 מדפים אופקיים (HS) עם חריצים לקירות. הציר המגנטי דבוק למדפים אופקיים בב עמדה <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig2.jpg" /> איור 2. מורכב טחנת טיסה. מבנה תמיכת פלסטיק אקרילי () מורכב על ידי הזזה חמישה המדפים אופקיים (HS) לתוך החריצים בשני קירות חיצוניים (OW) והקיר המרכזי (CW), וכתוצאה מכך מבנה עם 8 תאים בודדים כל המכיל מגנטי להיות ציר וחיישן IR, מה שמאפשר ליחידים ל8 טסו באותו הזמן. זרוע הציר שאליו החרקים קשורים ניתן לבנות לaccomm (ב)<html> Odate מגוון גדלים ומורפולוגיות של חרקים. (ג) כחרק הקשור נע זרוע הציר התלויה בין המגנטים, דגל נייר בקצה השני של הזרוע מפעיל את חיישן IR (חץ). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig3.jpg" /> עיצוב 3. איור של מעגל חיבור חיישני IR לוגר נתונים. () מעגל פשוט מתחבר קלט מחיישן IR לוגר נתונים. (ב) כל וגר הנתונים יכול להיות מופעל ומחובר לוגר נתונים באמצעות קרש חיתוך הלחמה באמצעות התרשים. ניתן לחבר חיישנים מרובים (ג) לוגר נתונים היחיד באמצעות אותו קרש החיתוך.&quot;Target =&quot; _ large.jpg blank &quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig4.jpg" /> איור 4. דוגמאות של אירועים שנרשמו טיסה. פסגות מתח מייצגות מהפכות של זרועה של טיסת הטחנה מלאה. (א) הקלטה באיכות גבוהה של אירוע טיסה ללא מתח יורדת באות נרשמה. אירוע טיסה עם ירידת מתח באות שנרשמה (ב &#39;). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig5.jpg" /> איור 5. נתוני טיסת נציג מvespilloides Nicrophorus החיפושית לקבור. וריאציה בודדת בטיסההתנהגות מוכרת בקלות בהקלטות הטיסה. (א) אדם אחד טס ברציפות במשך כשלוש שעות לאחר תחילת המשפט ולאחר מכן טס מעת לעת במהירות גבוהה בכל שאר המשפט. (ב) התנהגותו של הפרט היא שונה בכך שחיפושית זו טסה רק לסירוגין במשך כל המשפט, ומעולם לא טסה במהירויות גבוהות ראו באדם בפנל (שימו לב להבדלים בקנה מידה על ציר Y). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן ל לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 6" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig6.jpg" /> איור 6. נתוני טיסת נציג מפאסקיאטוס Oncopeltus באג פרח חלבלוב. שני דפוסי ההתנהגות שונים הם נצפו באופן ברור בין הקלטות נתוני טיסה. ( </strong&gt;) הקלטה זו היא אופיינית לסוג טיסת התנהגות ראה באנשים נודדים. אנשים נודדים לטוס במהירות יחסית יציבה על פני תקופות זמן ארוכות. (ב) ההתנהגות בלוח היא בניגוד לטיסה האופיינית ההתנהגות של פרט תושב. התושבים לטוס במהירויות והתקפי טיסה נמוכות רק יימשכו זמן קצר (שים לב להבדלים בקנה מידה על ציר X לA ו- B). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

Watch this Scientific Journal Video about A Simple Flight Mill for the Study of Tethered Flight in Insects at JoVE.com

A Simple Flight Mill for the Study of Tethered Flight in Insects

Flight in insects is influenced by a number of factors and the propensity to disperse is an important variable in understanding insect ecology and biological control strategies. We describe the construction and use of a simple, relatively inexpensive, and flexible flight mill for measuring parameters of tethered flight in insects.

טיסת מיל פשוט לחקר Tethered הטיסה בחרקים

Flight in insects can be long-range migratory flights, intermediate-range dispersal flights, or short-range host-seeking flights. Previous studies have ...

a-simple-flight-mill-for-the-study-of-tethered-flight-in-insects

Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.8K Views.  Polish Academy of Sciences. Flight in insects is influenced by a number of factors and the propensity to disperse is an important variable in understanding insect ecology and biological control strategies. We describe the construction and use of a simple, relatively inexpensive, and flexible flight mill for measuring parameters of tethered flight in insects.

Video: A Simple Flight Mill for the Study of Tethered Flight in Insects

A Simple Composite Phenotype Scoring System for Evaluating Mouse Models of Cerebellar Ataxia

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebella ataxia. It is derived from previously published phenotype assessments in several disease models, including spinocerebellar ataxias, Huntington s disease and spinobulbar muscular atrophy. Measures include hind limb clasping, ledge test, gait and kyphosis. Each measure is recorded on a scale of 0-3, with a combined total of 0-12 for all four measures. The results effectively discriminate between affected and non-affected individuals, while also quantifying the temporal progression of neurodegenerative disease phenotypes. Measures may be analyzed individually or combined into a composite phenotype score for greater statistical power. The ideal combination of the four described measures will depend upon the disorder in question. We present an example of the protocol used to assess disease severity in a transgenic mouse model of spinocerebellar ataxia type 7 (SCA7).
Albert R. La Spada and Gwenn A. Garden contributed to this manuscript equally.

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebellar ataxia. Measures include hind limb clasping, ledge test, gait and kyphosis. This protocol effectively discriminates between affected and non-affected individuals, and detects the progression of affected individuals over time.

ניקוד פשוט Composite הפנוטיפ מערכת להערכת מודלים של עכבר אטקסיה cerebellar

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebella ataxia. It is derived from previously ...

The Vermicelli and Capellini Handling Tests: Simple quantitative measures of dexterous forepaw function in rats and mice

Previous characterizations of rodent eating behavior have revealed that they use coordinated forepaw movements to manipulate food pieces. We have extended upon this work to develop a simple quantitative measure of forepaw dexterity that is sensitive to lateralized impairments and age-dependent changes. Rodents learn skillful forepaw and digit movements to manage thin pasta pieces, which they eagerly consume. We have previously described methods for quantifying vermicelli handling in rats and showed that the measures are very sensitive to forelimb impairments resulting from unilateral ischemic lesions, middle cerebral artery occlusions and unilateral striatal dopamine depletion [Allred, R.P., Adkins, D.L., Woodlee, M.T., Husbands, L.C., Maldonado M.A., Kane, J.R., Schallert, T. &amp; Jones, T.A. The Vermicelli Handling Test: a simple quantitative measure of dexterous forepaw function in rats. J. Neurosci. Methods 170, 229-244 (2008)]. Here we present a more detailed protocol for this test in rats and compare it with a newly developed version for mice, the Capellini Handling Test. Rats and mice are videotaped while handling short lengths of uncooked vermicelli or capellini pasta, respectively, with a camera positioned to optimize the view of paw movements. Slow motion video playback allows for the identification of forepaw adjustments, defined as any distinct removal and replacement of the paw, or of any number of digits, on the pasta piece after eating commences. Forepaw adjustments per piece are averaged over trials per each testing session. Repeated testing permits sensitive quantitative analysis of changes in forepaw dexterity over time. Protocols for pre-testing habituation and handling practice, as well as procedures for characterizing atypical handling patterns, are described. Because rats and mice perform the pasta handling tests slightly differently, species-specific differences in administration and scoring of these tests are highlighted. All animal use was in accordance with protocols approved by the University of Texas at Austin Animal Care and Use Committee.

The Vermicelli and Capellini Handling Tests of forepaw dexterity take advantage of the natural inclination of rodents to manipulate food items using skillful forepaw and digit movements. Animals are videotaped while handling short strands of uncooked dry pasta. Slow motion video playback allows for the quantification of forepaw adjustments.

אטריה ו בדיקות Capellini טיפול: מדדים כמותיים פשוט פונקציה של מיומנות בכפו אצל חולדות ועכברים

Previous characterizations of rodent eating behavior have revealed that they use coordinated forepaw movements to manipulate food pieces. We have extended ...

Studying the Neural Basis of Adaptive Locomotor Behavior in Insects

Studying the neural basis of walking behavior, one often faces the problem that it is hard to separate the neuronally produced stepping output from those leg movements that result from passive forces and interactions with other legs through the common contact with the substrate. If we want to understand, which part of a given movement is produced by nervous system motor output, kinematic analysis of stepping movements, therefore, needs to be complemented with electrophysiological recordings of motor activity. The recording of neuronal or muscular activity in a behaving animal is often limited by the electrophysiological equipment which can constrain the animal in its ability to move with as many degrees of freedom as possible. This can either be avoided by using implantable electrodes and then having the animal move on a long tether (i.e. Clarac et al., 1987; Duch &amp; Pfl&uuml;ger, 1995; B&ouml;hm et al., 1997; Gruhn &amp; Rathmayer, 2002) or by transmitting the data using telemetric devices (Kutsch et al, 1993; Fischer et al., 1996; Tsuchida et al. 2004; Hama et al., 2007; Wang et al., 2008). Both of these elegant methods, which are successfully used in larger arthropods, often prove difficult to apply in smaller walking insects which either easily get entangled in the long tether or are hindered by the weight of the telemetric device and its batteries. In addition, in all these cases, it is still impossible to distinguish between the purely neuronal basis of locomotion and the effects exerted by mechanical coupling between the walking legs through the substrate. One solution for this problem is to conduct the experiments in a tethered animal that is free to walk in place and that is locally suspended, for example over a slippery surface, which effectively removes most ground contact mechanics. This has been used to study escape responses (Camhi and Nolen, 1981; Camhi and Levy, 1988), turning (Tryba and Ritzman, 2000a,b; Gruhn et al., 2009a), backward walking (Graham and Epstein, 1985) or changes in velocity (Gruhn et al., 2009b) and it allows the experimenter easily to combine intra- and extracellular physiology with kinematic analyses (Gruhn et al., 2006).
We use a slippery surface setup to investigate the timing of leg muscles in the behaving stick insect with respect to touch-down and lift-off under different behavioral paradigms such as straight forward and curved walking in intact and reduced preparations.

We describe a method to record motor activity, timed to the electrically recorded tarsal contact signal in a tethered insect, walking on a slippery surface. This is used to study the neural basis of adaptive behavior under reduced influence of mechanical interaction between legs through the substrate.

ללמוד את הבסיס העצבי של התנהגות מסתגלת של תנועה בתוך חרקים

Studying the neural basis of walking behavior, one often faces the problem that it is hard to separate the neuronally produced stepping output from those ...

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

שיטה פשוטה וזולה לקביעה קרה רגישות והסתגלות בעכברים

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Dyeing Insects for Behavioral Assays: the Mating Behavior of Anesthetized Drosophila

Mating experiments using Drosophila have contributed greatly to the understanding of sexual selection and behavior. Experiments often require simple, easy and cheap methods to distinguish between individuals in a trial. A standard technique for this is CO2 anaesthesia and then labelling or wing clipping each fly. However, this is invasive and has been shown to affect behavior. Other techniques have used coloration to identify flies. This article presents a simple and non-invasive method for labelling Drosophila that allows them to be individually identified within experiments, using food coloring. This method is used in trials where two males compete to mate with a female. Dyeing allowed quick and easy identification. There was, however, some difference in the strength of the coloration across the three species tested. Data is presented showing the dye has a lower impact on mating behavior than CO2 in Drosophila melanogaster. The impact of CO2 anaesthesia is shown to depend on the species of Drosophila, with D. pseudoobscura and D. subobscura showing no impact, whereas D. melanogaster males had reduced mating success. The dye method presented is applicable to a wide range of experimental designs.

Dyeing Insects for Behavioral Assays: the Mating Behavior of Anesthetized Drosophila

This protocol describes a simple, cost effective way to individually identify Drosophila or other insects. Demonstration data investigating mating success across three species of Drosophila show that this method is comparable or better than the use of CO2 anaesthesia.

צביעת חרקים למבחני התנהגות: התנהגות חיזור של הרדים<em&gt; דרוזופילה</em

Mating experiments using Drosophila have contributed greatly to the understanding of sexual selection and behavior. Experiments often require simple, easy ...

In-depth Physiological Analysis of Defined Cell Populations in Acute Tissue Slices of the Mouse Vomeronasal Organ

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory neurons (VSNs) express a specific type of G protein-coupled receptor (GPCR) from at least three different chemoreceptor gene families allowing sensitive and specific detection of chemosensory cues. These families comprise the V1r and V2r gene families as well as the formyl peptide receptor (FPR)-related sequence (Fpr-rs) family of putative chemoreceptor genes. In order to understand the physiology of vomeronasal receptor-ligand interactions and downstream signaling, it is essential to identify the biophysical properties inherent to each specific class of VSNs.
The physiological approach described here allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons using a transgenic mouse line (Fpr-rs3-i-Venus). The use of this protocol, however, is not restricted to this specific line and thus can easily be extended to other genetically modified lines or wild type animals.

Here, we describe a physiological approach that allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons in acute coronal tissue slices of the mouse vomeronasal organ using whole-cell patch-clamp recordings.

מעמיק פיסיולוגי ניתוח של אוכלוסיות תאים מוגדרות ב אקוטי רקמות פרוסות של איברי עכבר vomeronasal

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

דרך פשוטה למדוד שינויים בהתנהגות שוחרת זכה שימוש<em&gt; תסיסנית</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

צעד-אחד פשוט פרוטוקול לנתיחה עבור כל הר הכנה למבוגרים<em&gt; תסיסנית</em&gt; Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Time-dependent Increase in the Network Response to the Stimulation of Neuronal Cell Cultures on Micro-electrode Arrays

Micro-electrode arrays (MEAs) can be used to investigate drug toxicity, design paradigms for next-generation personalized medicine, and study network dynamics in neuronal cultures. In contrast with more traditional methods, such as patch-clamping, which can only record activity from a single cell, MEAs can record simultaneously from multiple sites in a network, without requiring the arduous task of placing each electrode individually. Moreover, numerous control and stimulation configurations can be easily applied within the same experimental setup, allowing for a broad range of dynamics to be explored. One of the key dynamics of interest in these in vitro studies has been the extent to which cultured networks display properties indicative of learning. Mouse neuronal cells cultured on MEAs display an increase in response following training induced by electrical stimulation. This protocol demonstrates how to culture neuronal cells on MEAs; successfully record from over 95% of the plated dishes; establish a protocol to train the networks to respond to patterns of stimulation; and sort, plot, and interpret the results from such experiments. The use of a proprietary system for stimulating and recording neuronal cultures is demonstrated. Software packages are also used to sort neuronal units. A custom-designed graphical user interface is used to visualize post-stimulus time histograms, inter-burst intervals, and burst duration, as well as to compare the cellular response to stimulation before and after a training protocol. Finally, representative results and future directions of this research effort are discussed.

Mouse neuronal cells cultured on multi-electrode arrays display an increase in response following electrical stimulation. This protocol demonstrates how to culture neurons, how to record activity, and how to establish a protocol to train the networks to respond to patterns of stimulation.

זמן תלויי תגובת הרשת בתגובה לגירוי של תרבויות תאים עצביים על מערכי מיקרו-אלקטרודה

Micro-electrode arrays (MEAs) can be used to investigate drug toxicity, design paradigms for next-generation personalized medicine, and study network ...

Application of Automated Image-guided Patch Clamp for the Study of Neurons in Brain Slices

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a challenging and low-throughput technique due to its complexity and high reliance on user operation and control. This manuscript demonstrates an image-guided automatic patch clamp system for in vitro whole-cell patch clamp experiments in acute brain slices. Our system implements a computer vision-based algorithm to detect fluorescently labeled cells and to target them for fully automatic patching using a micromanipulator and internal pipette pressure control. The entire process is highly automated, with minimal requirements for human intervention. Real-time experimental information, including electrical resistance and internal pipette pressure, are documented electronically for future analysis and for optimization to different cell types. Although our system is described in the context of acute brain slice recordings, it can also be applied to the automated image-guided patch clamp of dissociated neurons, organotypic slice cultures, and other non-neuronal cell types.

This protocol describes how to conduct automatic image-guided patch-clamp experiments using a system recently developed for standard in vitro electrophysiology equipment.

יישום אוטומטי של תמונה מודרך תיקון מהדק לחקר נוירונים של פרוסות המוח

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a ...