Alfredo Attisano was supported by a European Social Fund studentship. James T. Murphy is supported by USDA-NIFA Award 2013-34103-21437.

1.フライトミルを構築<ol><li> アクリル系プラスチック支持構造体を構築します 。 <ol><li> 図1に示される設計で指定されたように、2つの外側の垂直な壁、一つの中央垂直壁と5横の棚に厚さ3mmの透明なアクリルシートをカットします。 </li><li>支持構造体（ 図2A）を形成するために 、垂直壁（OWとCW 図1及び図2）に、棚（HS 図1および図2）を挿入することによって組み立てます。 </li><li>デバイス（ 図2Aおよび図2C）の背面の外部コーナーにポリスチレン列を挿入することにより、構造を強化します。必要に応じて、水平方向の棚のための追加サポートを提供するために、中央垂直壁の接合部に沿って直角エッジプロテクターの小品を接着。 </li></ol></li><li> pivotinを構築グラムアームアセンブリ。 <ol><li>各セルの上部中央に直径1cmのプラスチック管の5cmの長さを接着。各セルの上部と下部のチューブが整列されていることを確認すること、各セルの下部中央に直径1cmのプラスチック管の2cmの長さを接着。ホットグルーを使用して、工場の腕のための磁気軸受を形成し、各支持の最後に2つの10ミリメートル×4ミリメートルN42のネオジム磁石を貼り付けます。 </li><li> 20μlのピペットチップに昆虫学のピンを挿入し、ホットグルーで所定の位置に固定します。両端が飛行ミルのアーマチュアを形成するために、ピペットチップの外に延びるようにピンを配置します。 注：飛行試験中に、ピンの頂部は、磁石の上部セットによって適所に保持されます。磁石の下部セットは、その軸線を中心に展開することができ、垂直位置にアーマチュアを維持することです。 </li><li> 19ゲージの非磁性皮下鋼管24センチ長さに切ります。ホットグルーを使用して、ピペットチップfの頂部に中心点を固定ロムステップ1.2.2。 95°の角度に端から2センチメートルでチューブの曲げ一端ベンド（ 図2B）に中心点から12cmの長腕と中心から10cmの半径の短腕を残します。 注：半径の長さが異なる回転距離に対応するために変化させることができます。 </li></ol></li><li> 赤外線センサーとデータロガーを設定します。 <ol><li>センサーが外部垂直壁のサポート（ 図2C）にカットした開口部を通って細胞内に拡張することができ、再利用可能な接着剤パテを使用して、各セルの永遠の側面にIRセンサを修正。 </li><li>ブレッドボード（ 図3）上に構築された非常に基本的な電子回路を介してデータロガーへのIRセンサを接続します。ブレッドボード（ 図3A、B）のIR接続の入力と出力にそれぞれ180Ωと2.2kΩのの二つの抵抗を接続します。アルテに抵抗を配置します複数のセンサからの記録時の電圧信号の低下を最小限に抑えるために、ブレッドボードに沿っrnate行が（ 図3Cを参照）。 </li></ol></li></ol> 2.フライト試験<ol><li> 虫ピンを介して間接的に飛行ミルアームに昆虫をテザー ： <ol><li>センサーのIRビームの破壊を最大化し、カウンターウェイトとして機能するように旋回アームの曲がっていない最後の最後に小さな箔フラグを配置します。 </li><li>添付ファイルに使用可能な昆虫のサイズとキューティクルエリアに応じて、再利用可能な接着剤パテまたは非毒性の皮膚接着剤で虫ピンに実験的な昆虫を添付します。必要に応じて、冷却またはCO 2とのいずれかの方法で虫を麻酔。 </li><li>昆虫学ピンの丸い先端の周りに接着剤パテ、少量の金型と非毒性の皮膚接着剤のドロップでそれをカバーしています。ゆっくりと前胸背板の領域に適用し、接着剤が乾燥するまで5-10s待ちます。 注：プロステップ2.1.3でcedureハード（カブトムシ、バグ）またはソフト（スズメバチ、ハエ）キューティクルと昆虫に適しています。毛深いクチクラと昆虫（蛾、蝶が）髪が優しくテザリング前に、非常に微細な絵筆で除去されている必要があります。 </li><li>ピボットアームアセンブリの屈曲端に取り付けられた昆虫とのピンを挿入します。 </li><li>飛行試験が終了した後、細かい鉗子でテザリングを削除します。 注：データロガーの設定と取得は、材料の表に記載されている特定の機器のために、以下のように最適化されており、代替機器で使用するために調整する必要があります。 </li></ol></li><li> 自由に利用できるWinDAQ Liteソフトウェアで記録セッションを開始 <ol><li>フリーソフトウェアWinDAQ Liteは（機器のリストを参照）ダウンロードし、インストールします。 </li><li>機器のハードウェア・マネージャを開き、ポップアップリストからデータロガーを選択し、キーを押し、「開始Windaq」。新しいウィンドウが開きますと入力記号各センサからのアルが表示されます。 </li><li>データロガーは、センサの出力を読み取り、表示される所望のサンプリング周波数を選択します。 注：サンプリング周波数は、しかし、30〜45 Hzの間の範囲のサンプリング周波数は、小中規模の昆虫の飛行をキャプチャするのに十分に高速になり、昆虫の飛行速度に依存します。 </li><li>記録セッションを開始するにはCtrlキーを押しながらF4キー。最初のポップアップウィンドウで記録ファイルの保存先のパスを選択します。特定の昆虫と実験のための飛行を記録するために適切な時間の長さを選択してください。 2つ目のポップアップウィンドウで、録音時間を定義します。記録時間は、プレスを経過した後にCtrl-Sが記録されたファイルを確定します。 </li></ol></li><li> 録音の品質を確認してください 。 <ol><li>記録された飛行軌道を開き、電圧チャンネルを選択します。各チャネルの電圧統計でポップアップウィンドウを開くには、Ctrlキーを押しながら、T。 </li><li>それは大きな液滴を確認していません最小値回路の両端の電圧降下（ 図4）から生じました。チャネルの平均値と最小電圧との差が0.1 [V]よりも大きい任意のチャネルを捨てます</li></ol></li><li> *の.CSV形式でファイルを保存します。ファイルに移動&gt;として保存し、ポップアップウィンドウで「スプレッドシートの印刷（CSV）」を選択します。 「スプレッドシートのコメント「ポップアップウィンドウで、「相対時間」を選択し、他のすべてのオプションの選択を解除します。ファイルを保存するには、[OK]をクリックします。 </li></ol> Pythonのバージョン3.4.xを使用して3フライトデータの解析<ol><li> 最新のPythonのバージョン3.4.xのバージョンをインストールします 。アーカイブをダウンロード<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/Python_scripts.zip">Python_scripts.zip、（</a>補足ファイル）を開き、デスクトップにstandardize_peaks.pyとflight_analysis.pyを保存します。 </li><li> 標準化し、記録された信号のピークを選択します次のように<ol><li> standardize_peaks.pyのアイコンを右クリックします。 「IDLEで開く」を選択します。 注：IDLEは、Pythonのデフォルトのエディタであるが、任意のテキストエディタは、この目的のために使用することができます。 </li><li>行18-19において、各チャネルの電圧信号の標準化を行うために使用される平均電圧付近しきい値を指定。 注：デフォルト値は微調整信号の標準化を提供するために設定されているが、ユーザーは各チャンネルの平均電圧の値に応じて、任意の所望のしきい値を定義することができます。これらは、電圧統計ウィンドウで見つけることができます（ステップ2.3を参照）。 </li><li>ライン45には、記録された* .CSVファイルが保存されているフォルダへのパスを入力します。 </li><li>行91で、あなたは* .TXTピークファイルを記録するフォルダへのパスを入力します。 </li><li>ライン61とライン72には、必要なチャネルの数を指定します。最大までのライン61-63と72-74の先頭に＃を削除することによって、チャンネルを追加または削除8チャンネルのIMUM。 </li><li>ファイルを保存し、F5キーを押してスクリプトを起動します。 </li><li>指定されたフォルダ内の標準化された信号を使用して新しい* .txtファイルを保存するには、ポップアップウィンドウを押し戻すための（追加のサブフォルダを含む）* .CSVファイルの名前を入力します。 注：nは使用されるチャネルの数に応じて、このファイルは、n + 1列があります。最初の列は、サンプリングイベントの相対的な時間であり、他のn列を記録するために使用されるnチャネルからのベースとピークのイベントを表します。 1の値は、IRセンサを介してフラグの通路に由来するピークを表す0の値は、ベース電圧を表します。 </li></ol></li><li> 標準化されたファイルを使用してフライトトラックを分析 ：ユーザー実験条件に対応するためにflight_analysis.pyスクリプトを編集します。 <ol><li>右flight_analysis.pyアイコンをクリックしてください。 「IDLEで開く」を選択します。 </li><li>ライン39とライン80で長さを調整しますアーム半径に応じて円形飛行経路の。 </li><li>必要に応じて、ライン50-52の＃を削除することによって、任意の速度補正ループを有効にします。それに応じて速度値を変更します。 </li><li>ライン77とライン85で、飛行軌道で誤った速度の測定値を補正するために速度閾値との時間差の値を編集して、二つの連続する長い中断のない飛行の試合の間に発生する非常に短い時間のギャップを占めています。 </li><li>ライン198で、秒単位で記録時間を指定します。以降のライン287からの出力線の値の範囲を変更します。 注：デフォルトの範囲は、ユーザーの実験の要件に応じて変更することができます。そうするためには、関数内のすべての数値は、（変数「flight_300_900」で、たとえば変数名でものを、含まれている）を所望の値に変更する必要があります。 </li><li>ライン248種類に* .txtの標準化されたファイルが保存されているフォルダへのパス。 </li><li>番号を指定しますチャンネルの。 8チャンネルの最大値まで279から281を追加または削除するチャンネルをライン257〜259の先頭に＃を追加または削除して、ライン270から272及びライン。 </li><li>ライン304であなたは、出力ファイルを保存するフォルダへのパスを入力します。 </li><li>すべてのユーザー設定を指定すると、ファイルを保存し、F5キーを押してスクリプトを起動します。 </li><li>ポップアップウィンドウを押しリターンで（追加のサブフォルダを含む）を分析する* .TXTファイルの名前を入力します。 </li></ol></li></ol>

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L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Abdominal+color+of+the+Asian+citrus+psyllid+(Hemiptera:+Liviidae)+is+associated+with+flight+capabilities.">Abdominal color of the Asian citrus psyllid (Hemiptera: Liviidae) is associated with flight capabilities.</a> Ann. Entomol. Soc. Am. 107, 627-632 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

、手頃な価格で柔軟、そして調節可能なフライトミル設計 。 昆虫の飛行動作条件が分散する害虫種の傾向に影響を与えるかを理解する必要が生物防除の専門家への変数の環境下での昆虫の基本的な動作に興味のある人から、科学者の範囲に関心があります。飛行行動は、飛行​​「トレッドミル」とおおよそのフィールド条件がつなが飛行デバイスをstaticに風洞の範囲で種々の方法により研究することができます。係留飛行工場は、ここに提示されている1つのように、14を測定することができない、そのような高度の変化など、フライトの特定の側面に限定されています。しかし、繋留飛行工場は虫が中断飛ぶので、研究者は、このような飛行速度、距離や周期などのパラメータを定量化することを可能にし、環境条件、生理学、およびmのこれらのパラメータを相関させることができますorphology。 ここで紹介するフライトミルは、エレクトロニクスの専門知識がなくても、研究者が昆虫で飛行挙動を研究するために繋留飛行工場を建設し、使用できるように設計されました。この設計の一つの利点は、飛行ミルの全体のコストは他の設計に比べて低いことです。全体的なコストは、よく300ドル未満に維持することができます。プラスチックアクリルシートは最も高価なアイテムです。第2の利点は、特殊な風洞とは対照的に、フライトミルは、多くの研究室で利用可能な制限され制御された状態のワークスペースに適応であるということです。厚さ3mmの透明なアクリルプラスチックシートの使用は、飛行試験のための適切な場所に移動する飛行ミルを可能にする、昆虫の容易な観察、また軽量化を可能にするために、構造体は、透明でもあることを意味します。足を最小限に抑えながら飛行ミルセルの積層構造は、実行のサンプルの数を最大化しますデバイスの印刷。さらに、装置を容易に保管するために分解することができます。また、フライトミルは、個人の多くは、比較的容易にサンプリングすることができるように設計しました。各フライトミルは、同時に複数の個人の飛行活動を記録するために研究者を可能にする、8個の細胞が含まれています。個々の昆虫が中に入れ、急速にフライトミルから除去するために虫ピンを介して回動アームに間接的に昆虫を取り付けることができます。最後に、データ記録用電子機器は、データ分析のために自由に利用可能なソフトウェアと、シンプルで使いやすいです。組み立てた後、飛行ミルは、フライトの活動を記録するために、単純なIRセンサを使用しています。赤外線ビームを介して、アームの端部におけるホイルフラグの通路は、アームの各回転を記録することを可能にします。革命の速度は、速度、距離などのデータは、データロガーへの入力として記録するフライトの総飛行時間やパターンを旅することを可能にします。 フライトミル昆虫の異なる種類の数に適合させることが可能です。重い、生産ドラッグが狭い直径減少していても、ため、ピボットアームのための皮下鋼管の使用は、小さな昆虫は飛行試験することができるように、そのような木の棒やストローなどの他のオプション、より有効です。近年、光ファイバの小片は、小昆虫飛行25ミルで使用されてきました。アームの屈曲終了は、その天然の飛行方向で実験昆虫を位置決めするために支持軸に対して異なる角度で、電機子に接着することができます。半径は長さ10cmである提示の設計では、一回転で旅全体の距離は62.8センチメートルです。中央垂直壁を削除すると、アームの半径が大きくなる昆虫や革命1.20メートルまでの距離に対応するために、長さが倍増することができるフライトミルの別の構成が可能になります。この場合には、より強力な磁石はrecommenあります長い工場のアームに対応し、安定させるためにDED。 全体で述べたように、フライトミルのデザインは、柔軟で、関心の昆虫種に適応可能であると研究者は、彼らの特定のニーズに合わせてカスタマイズすることができます。これは、サイズ、消費電力、キューティクルの構造だけでなく、種間の生物学的な違いのようなパラメータを含む昆虫の物理的なニーズだけでなく、含まれています。すべてのフライト工場への一つの潜在的な欠点は、足根サポート「軍の昆虫の欠如は、おそらく枯渇に、飛ぶことということです。これはいくつかの種では事実ですが、例えば、私たちはトウワタバグ試験で自動飛行応答は、それは我々が（例えばN.のvespilloidesのために）テストしたすべての昆虫には当てはまりません観察しました。記録時間の私達は昆虫の生態に適応することを選んだので、しかし、自動応答で、我々は、部分的に、枯渇または死に飛翔昆虫を観察することはありません。したがって、それは行うことが重要です興味のある昆虫の予備的観察は、データ収集を最適化するために、飛行ミルでその挙動を理解します。フライト工場と追加、よく知られた問題で、慣性が昆虫が積極的に飛行を停止した後も運動を維持することができるということです。スクリプトは、飛行速度の急激な低下を特徴とし、ピーク間の距離を増加させ、原因飛行ミルの慣性に誤読のアカウントを提供しました。スクリプト「flight_analysis.py &#39;は、これらの「偽ピーク」を破棄し、分析のための新しい信号を作成します。スクリプトで提供ノートで説明したように、ユーザは、補正のための速度閾値を選択することができます。 5 V電源は、しかし、可変出力電圧電源装置は、電力入力を変化させ、したがって、各センサのための動作電圧を最適化できるように動力源として使用することができ、読み取り可能な電圧信号を得るのに十分です。このような溶液はまた、視覚化品質Oを高めるのを助けることができますソフトウェアの記録インタフェースのピークfの信号。ベース電圧がピーク電圧がベース電圧から上昇している間（IRビームが遮断されていない）安静時のセンサからの最低出力電圧を表し、ベースピーク電圧によって形成されるように、センサの出力は、ソフトウェアインタフェースに表示されアームがビームを通過するように赤外線ビームが遮断されたときに発生します。 7 Vへの入力を増加させながら、5 Vの入力電圧は、ベースとピーク電圧のより明確な区別を可能にする300 mVのピークの上昇が増加し、約100 mVの上昇を提供します。選択したブレッドボードの大きさは、多くの飛行細胞を収容することができる方法を決定します。複数のセンサからの記録時の電圧信号の低下を最小限に抑えるためには、（ 図3Cを参照）ブレッドボードに沿って交互の列に抵抗を配置することが推奨されます。 カスタマイズ可能な信号の標準化とanalysiオープンアクセスプログラミング言語のPython用に書かれたのスクリプト。 電圧信号の標準化と解析は、フリー、広く使用されている汎用および高レベルのプログラミング言語ではPythonで書かれたカスタムスクリプトを使用して行われます。エンドユーザーが簡単に自分の指定した設定で動作するようにスクリプトをカスタマイズすることができます。カスタマイズは、単に数値や変数の名前を変更することによって達成されます。パラメータをカスタマイズする方法についての注意事項は、スクリプト自身の中に見つけることができます。スクリプトのデフォルト値を微調整信号の標準化を提供するために設定されているが、ユーザーは各チャンネルの平均電圧の値に応じて、任意の所望のしきい値を定義することができます。飛行解析スクリプトでは、ライン105からの機能flying_boutsは、最長の秒単位の持続時間と最短飛行発作、総記録時間にわたって飛行に費やした時間の割合とイベント試合飛行の数を計算します指定された期間の範囲の秒。範囲は、ユーザーの実験の要件に応じて変更することができます。そうするためには、関数内のすべての数値は、（変数「flight_300_900」で、たとえば変数名でものを、含まれている）を所望の値に変更する必要があります。範囲の数とその期間は、単にユーザーの仕様に依存します。このスクリプトは、画面上の各チャネルの解析結果を出力します。これらには、平均飛行速度、総飛行時間、走行距離、最短と最長の飛行発作と飛行組成を。また、スクリプトは、各チャネルの* .datファイルを返し、ユーザが指定した出力フォルダに保存します。各* .DATファイルには、2つの列があります。最初のものは、ピークイベントの相対時間を表し、第二は、2つの連続した​​ピークのイベント間の詳細な速度変化です。このファイルは、上で速度変化のグラフを作成するために、ExcelまたはRにインポートすることができます時間や飛行活動パターンを可視化します。 結論として、これらの結果は、このフライトミルの設計を容易にし、正常に異なる昆虫モデルにおいて活動パターンを飛行見行動研究のためのデータを収集するために実施することができることを示しています。このようなデータは、生理学および形態学上の例のように依存する移動パターン内の個々の変化を調査するために使用することができます。これは、最終的に全体として人口に影響を与える採餌や遊走活性などの動きのパターンには個人差を決定する基礎となる生理学的および形態学的な特性に優れた洞察力を提供することができます。経時的な詳細な速度変動は、リソース消費のパターンまたは飛行活性に対する身体部分の形態の変化の影響を研究するためのツールを提供し、詳細な生理学的および形態学的測定と組み合わせて使用​​することができます。

いくつかの実験技術は、昆虫の飛行行動1,2の研究のために開発されてきました。つなが昆虫5の移動の自由度を可能にする洗練されたデバイスへの単純な静的テザリング3,4からこれらの範囲。日付飛行室6-9への制御された条件での飛行の自由の最高レベルを可能にするデバイスを表します。この技術は、2つの主要な欠点​​がある：それは時間がかかり、大きな昆虫やデータ収集の手動手順の研究のために使用することは困難です。 フライトミルは、実験室条件下で昆虫の飛行10-12の研究のための最も一般的で手頃な価格のいずれかの方法を表します。それは刺激13を動かす提供しているため、この技術は、静的なテザリングに好適であるが、それは自由飛行行動反応14-16とは異なります。ミルの野生での飛行動作の一部はsimilaです渡り鳥の飛行タイプの場合のようにR 5,17ので 、いくつかの制限にもかかわらず、飛行ミルは、特定の飛行行動応答の発生に関する質問を調査するために実行可能な選択肢を表します。また、フライトミルは、風洞や飛行室より実現が容易であり、データ収集が容易に自動化することができます。したがって、飛行行動に興味を持って研究者は多くの場合、飛行工場は最良の選択であることがわかりますが、メソッドへの潜在的な制限に注意する必要があります。ここでは、柔軟でカスタマイズ可能なフライトミル設計は飛行挙動を調査するために飛行工場を活用することを選択した研究者のために提示されます。 いくつかの著者は、代替フライトミルの設計について説明します。一般的に飛行ミルシステムの主要部分、 すなわち 、ピボットミルの腕は、実現するのは非常に簡単です。以下簡単なデータの記録を可能にする飛行ミルシステムの電子部品です。エルの対処ectronic回路の設計は、特に昆虫学者や電子機器の背景知識に欠けた行動生態学者のために、挑戦することができます。何人かの著者は彼らの飛行ミル設計18-21、または22,23が欠落しているフライトミルの電子部品の説明では、複雑な日付や電子回路部品のうちを記述する。他の設計は実現するのは非常に複雑であるが、より複雑な行動観察5に着手する研究者を助けることができ、機械的に複雑actographsを、説明します。 シンプルな設計を構築するために本論文​​では、昆虫でつなが飛行の研究のための比較的安価なフライトミルが記載されています。一緒に非常に簡単な電子部品を用いて、デザインは、多くの利点を有します。フライトミルは、標準的な昆虫生態学研究室で一般的に利用可能なスペースに制約で使用されるように設計されています。構造は、透明なアクリルPから作られます単一の光源を均一に粉砕機の別々のチャンバ内のすべての個々に到達できるようにラスチック。材料及び小型の透明性を与え、飛行ミルは、標準化された光および温度条件のためにインキュベーターに使用することができます。最後に、全体の構造が組み立てと分解を容易と、一度分解することができ、それは、小さなスペースに格納することができます。構造の設計に対する別の利点は、飛行ミルは、異なるサイズ、異なる回転距離を使用する昆虫の研究を可能にするように改変することができるということです。この飛行ミルはトウワタのバグ、Oncopeltus fasciatus 24、葛のバグ、 タイワンマルカメムシ 、およびカブトムシ、Nicrophorusのvespilloidesを埋め込 ​​むよう大きさや形状が多様な昆虫に関するデータを収集するために使用されています。フライトミルデザインも大きなサンプルサイズを必要とする研究のために必要なスループット高を可能にします。データは、データロガーUのそれぞれに対して8同時チャネルを使用して収集することができ個人の高い数を同時に分析することができ、多数のサンプルを同じ日に扱うことができるようにsedの。高価なソフトウェアは、データを記録し、可視化するために必要とされず、データ解析のためのカスタム書かれたスクリプトは、実験計画の具体的なニーズ以下の変更することができます。フライト応答が異なる昆虫種で非常に可変です。このように、フルフライトミル実験を行う前に、焦点昆虫モデルの飛行応答の予備試験をお勧めします。これらは、記録時間や飛行速度範囲として飛行解析の微調整の側面に使用される飛行応答の行動変化の程度の理解を提供します。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="854">
	<tbody>
		<tr height="147">
			<td height="147" style="height:147px;width:248px;">Data Logger</td>
			<td style="width:137px;">DATAQ Instruments, Ohio, USA</td>
			<td style="width:137px;">DI-149</td>
			<td style="width:332px;">These particular data loggers were chosen because they can be easily connected via USB to a computer and come with free proprietary software (WinDaq/Lite, DATAQ Instruments, Ohio, USA) to visualize and record the sensor&#39;s output, increasing the affordability of the flight mill design.</td>
		</tr>
		<tr height="126">
			<td height="126" style="height:126px;width:248px;">Data Logger - potential alternative</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">A potential alternative to the DATAQ data loggers&#160; is an RS232 to USB adaptor, readily available through office or electronic supply stores.&#160; These should be able to read data directly from the serial port via the pyserial module.</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:248px;">Entomological pins</td>
			<td style="width:137px;">BioQuip</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">Hypodermic steel tubing 19 guage</td>
			<td style="width:137px;">Small Parts</td>
			<td style="width:137px;">B000FN5Q3I</td>
			<td style="width:332px;">Available through Amazon.com; other suppliers are available but be sure to purchase austenitic steel tubing to ensure the arm in non-magnetic</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:248px;">IR Sensors</td>
			<td style="width:137px;">Optek Technology Inc., Texas USA</td>
			<td style="width:137px;">OPB800W</td>
			<td style="width:332px;"></td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">N42 neodymium magnets</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">Readily available; can be purchased through specialized magnet suppliers, hobby stores or Amazon</td>
		</tr>
		<tr height="53">
			<td height="53" style="height:53px;width:248px;">Plexiglass/perspex</td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:137px;"></td>
			<td style="width:332px;">Readily available at any hardware store</td>
		</tr>
		<tr height="105">
			<td height="105" style="height:105px;width:248px;">Polystyrene columns for support</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td style="width:332px;">Any polystyrene or styrofoam packing materials that might otherwise be discarded or recycled can be used to fashion the support columns for the flight mill.&#160; Otherwise, styrofoam insulation sheets are available at any hardware store.</td>
		</tr>
		<tr height="63">
			<td height="63" style="height:63px;width:248px;">Solderless Breadboard Power Supply Module</td>
			<td style="width:137px;">Arrela</td>
			<td style="width:137px;">MB102</td>
			<td style="width:332px;">The 5V power unit, breadboard and solderless male-male jumper wires can be easily purchased as a kit.</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a simple flight mill for the study of tethered flight in insects

Flight in insects can be long-range migratory flights, intermediate-range dispersal flights, or short-range host-seeking flights. Previous studies have shown that flight mills are valuable tools for the experimental study of insect flight behavior, allowing researchers to examine how factors such as age, host plants, or population source can influence an insects' propensity to disperse. Flight mills allow researchers to measure components of flight such as speed and distance flown. Lack of detailed information about how to build such a device can make their construction appear to be prohibitively complex. We present a simple and relatively inexpensive flight mill for the study of tethered flight in insects. Experimental insects can be tethered with non-toxic adhesives and revolve around an axis by means of a very low friction magnetic bearing. The mill is designed for the study of flight in controlled conditions as it can be used inside an incubator or environmental chamber. The strongest points are the very simple electronic circuitry, the design that allows sixteen insects to fly simultaneously allowing the collection and analysis of a large number of samples in a short time and the potential to use the device in a very limited workspace. This design is extremely flexible, and we have adjusted the mill to accommodate different species of insects of various sizes.

図5は、前のセクションで説明したスクリプトを使用して得ることができるグラフの種類の代表的な例を示しています。フライトデータが埋め甲虫Nicrophorus vespilloidesモデルとして（Attisano、 未発表データ）を使用して、ケンブリッジ大学で動物学の学部で行われた実験研究から得られた。年齢の約20日の二人の若い嵌合解除男性は、フライトミルに繋がであり、 Dおよび21°C：14時10 Lの制御された環境条件に置か。カブトムシは連続8時間のフライトミルに残された飛行活動を記録しました。画面解析とグラフィック出力の飛行活動パターンの個人差を解消することを可能にします。例えば、第一の雄（ 図5A）は、約3時間続いた高速かつ連続的な飛行することを特徴とする記録の1時間以内の強い飛行活性を示しました。目長時間の活動期は、約1.6メートル/秒からの約1m /秒の速度で漸減することを特徴とするれます。最初の飛行試合後、個人が比較的短い飛行の試合は約10〜15分持続それぞれのほぼ周期的なパターンを示しました。第2雄は15〜20分（ 図5B）の継続時間を超えることはなかった飛行発作と非常に異なる飛行パターンを示しました。この個々の飛行活動は、その活動はほぼ定期的になった後、記録の最初の4時間で飛んで発作の普及によって特徴付けられます。この個人はまた、たまにしか0.4メートル/秒を超えた非常に低い飛行速度を提示しました。 別の代表的な例は、fasciatus Oncopeltus異なる昆虫モデル、トウワタのバグを使用して得ました。データは回遊行動とトウワタバグ女性24における食物ストレスに対する生理的反応に関する研究の間に採取しました。本研究では記録時間は、移住者や住民などの女性を特徴付けるために、1時間に設定しました。これらの行動タイプは、「全か無か」応答によって特徴づけられます。居住者女性が長く、数分以上飛行活性を示すことはありませんしながら、渡り鳥の女性は、通常は数時間持続する持続的かつ連続的な便に従事。居住者の女性は、図6（b）のような移動パターンによって特徴づけされつつ、移民女性は、 図6（a）のような飛行パターンが表示されます。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig1.jpg" /> アクリルプラスチック支持構造については、図1の設計構成飛行ミル用アクリル系プラスチック支持構造体は、3つの異なる構成要素から構成されています。シェルフの両方のスロットおよびIR SENSを収容するための開口部を含む外側の2つの垂直壁（OW）があります。ORS（A）。シェルフのスロットを備えた単一の中央垂直壁（CW）があります。そして、壁用スロットを備えた5水平棚（HS）があります。磁気ピボットが位置Bにある水平棚に接着され<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig1large.jpg" target="_blank">、この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig2.jpg" /> 図2.フライトミルを組み立て 。 （A）アクリル系プラスチック支持構造体は、磁気を含む各8個々の細胞に構造をもたらし、外側の2つの壁（OW）と中心壁（CW）のスロットに5水平棚（HS）を摺動させることによって組み立てられますピボット及びIRセンサ、8人が同時に飛行することが可能になります。 （B）昆虫accommに構成することができる係留されたピボットアーム<html>サイズや昆虫の種々の形態を大館。繋留昆虫は磁石の間中断ピボットアームを移動させると、（C）、アームの他端の箔フラグは、IRセンサー（矢印）を活性化する。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig3.jpg" /> データロガーにIRセンサを接続する回路図3.デザイン 。 （A）単純な回路は、データロガーにIRセンサからの入力を接続します。 （B）それぞれのデータロガーは、図を使ってブレッドボードを経由して電源が入っていて、データロガーに接続することができます。 （C）複数のセンサは、同じブレッドボードを使用して単一のデータロガーに接続することができます。large.jpg「ターゲット= &quot;_空白&quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig4.jpg" /> 記録された飛行イベントの図4.例。電圧ピークは、フライトミルの腕の完全な回転を表します。 （A）無電圧の飛行イベントの高品質記録が記録された信号に低下します。 （B）記録された信号の電圧降下で飛行イベント。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig5.jpg" /> 埋め込 ​​みカブトムシNicrophorusのvespilloidesから図5。代表的な飛行データ 。飛行中の個人差動作は簡単に飛行記録で認識されています。 （A）一人 ​​の個人は、試験開始後約3時間の連続飛び、その後試験の残りの部分で高速で定期的に飛びました。 （B）は、個々の動作は、このカブトムシが。裁判を通じて散発的にしか飛んで、決してパネルA（Y軸のスケールの違いに注意）個体において見られる高速で飛んだという点で異なっている<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig5large.jpg" target="_blank">には、ここをクリックしてくださいこの図の拡大版を表示します。</a> <img alt="図6" src="/files/ftp_upload/53377/53377fig6.jpg" /> fasciatus Oncopeltusトウワタのバグから図6.代表飛行データ 。動作の二つの異なるパターンが明らかに飛行データの記録の間に観察されます。 （ </strong&gt;）この記録は、渡り鳥の個体で見られる飛行行動のタイプの典型です。渡り鳥個人が長期間にわたって比較的安定した速度で飛行し​​ます。 （B）パネルAでの動作は、居住者の典型的な飛行行動と対比されます。住民は低速で飛行し、飛行の試合のみ（AとBのX軸のスケールの違いに注意）短い時間が続く。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53377/53377fig6large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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A Simple Flight Mill for the Study of Tethered Flight in Insects

Flight in insects is influenced by a number of factors and the propensity to disperse is an important variable in understanding insect ecology and biological control strategies. We describe the construction and use of a simple, relatively inexpensive, and flexible flight mill for measuring parameters of tethered flight in insects.

昆虫における係留飛行の研究のための簡単​​なフライトミル

Flight in insects can be long-range migratory flights, intermediate-range dispersal flights, or short-range host-seeking flights. Previous studies have ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

16.8K ビュー.  Polish Academy of Sciences. Flight in insects is influenced by a number of factors and the propensity to disperse is an important variable in understanding insect ecology and biological control strategies. We describe the construction and use of a simple, relatively inexpensive, and flexible flight mill for measuring parameters of tethered flight in insects.

ビデオ: A Simple Flight Mill for the Study of Tethered Flight in Insects

Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

The sense of smell is essential for insects to find foods, mates, predators, and oviposition sites3. Insect olfactory sensory neurons (OSNs) are enclosed in sensory hairs called sensilla, which cover the surface of olfactory organs. The surface of each sensillum is covered with tiny pores, through which odorants pass and dissolve in a fluid called sensillum lymph, which bathes the sensory dendrites of the OSNs housed in a given sensillum. The OSN dendrites express odorant receptor (OR) proteins, which in insects function as odor-gated ion channels4, 5. The interaction of odorants with ORs either increases or decreases the basal firing rate of the OSN. This neuronal activity in the form of action potentials embodies the first representation of the quality, intensity, and temporal characteristics of the odorant6, 7.
Given the easy access to these sensory hairs, it is possible to perform extracellular recordings from single OSNs by introducing a recording electrode into the sensillum lymph, while the reference electrode is placed in the lymph of the eye or body of the insect. In Drosophila, sensilla house between one and four OSNs, but each OSN typically displays a characteristic spike amplitude. Spike sorting techniques make it possible to assign spiking responses to individual OSNs. This single sensillum recording (SSR) technique monitors the difference in potential between the sensillum lymph and the reference electrode as electrical spikes that are generated by the receptor activity on OSNs1, 2, 8. Changes in the number of spikes in response to the odorant represent the cellular basis of odor coding in insects. Here, we describe the preparation method currently used in our lab to perform SSR on Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae, and show representative traces induced by the odorants in a sensillum-specific manner.

Single Sensillum Recordings in the Insects Drosophila melanogaster and Anopheles gambiae

Electrophysiological responses of olfactory sensory neurons to odorants can be measured in insects using single sensillum recordings. In this video article we will demonstrate how to perform single sensillum recordings in the antennae of the vinegar fly (Drosophila melanogaster) and the maxillary palps of the malaria mosquito (Anopheles gambiae).

昆虫における単一感覚子録音キイロショウジョウバエとハマダラカ</em

The sense of smell is essential for insects to find foods, mates, predators, and oviposition sites3. Insect olfactory sensory neurons (OSNs) are enclosed ...

神経科学

A Simple Composite Phenotype Scoring System for Evaluating Mouse Models of Cerebellar Ataxia

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebella ataxia. It is derived from previously published phenotype assessments in several disease models, including spinocerebellar ataxias, Huntington s disease and spinobulbar muscular atrophy. Measures include hind limb clasping, ledge test, gait and kyphosis. Each measure is recorded on a scale of 0-3, with a combined total of 0-12 for all four measures. The results effectively discriminate between affected and non-affected individuals, while also quantifying the temporal progression of neurodegenerative disease phenotypes. Measures may be analyzed individually or combined into a composite phenotype score for greater statistical power. The ideal combination of the four described measures will depend upon the disorder in question. We present an example of the protocol used to assess disease severity in a transgenic mouse model of spinocerebellar ataxia type 7 (SCA7).
Albert R. La Spada and Gwenn A. Garden contributed to this manuscript equally.

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebellar ataxia. Measures include hind limb clasping, ledge test, gait and kyphosis. This protocol effectively discriminates between affected and non-affected individuals, and detects the progression of affected individuals over time.

小脳性運動失調のマウスモデルを評価するための単純な複合表現型のスコアリングシステム

We describe a protocol for the rapid and sensitive quantification of disease severity in mouse models of cerebella ataxia. It is derived from previously ...

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

マウスにおける低温感受性と適応を決定するためのシンプルで安価な方法

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Dyeing Insects for Behavioral Assays: the Mating Behavior of Anesthetized Drosophila

Mating experiments using Drosophila have contributed greatly to the understanding of sexual selection and behavior. Experiments often require simple, easy and cheap methods to distinguish between individuals in a trial. A standard technique for this is CO2 anaesthesia and then labelling or wing clipping each fly. However, this is invasive and has been shown to affect behavior. Other techniques have used coloration to identify flies. This article presents a simple and non-invasive method for labelling Drosophila that allows them to be individually identified within experiments, using food coloring. This method is used in trials where two males compete to mate with a female. Dyeing allowed quick and easy identification. There was, however, some difference in the strength of the coloration across the three species tested. Data is presented showing the dye has a lower impact on mating behavior than CO2 in Drosophila melanogaster. The impact of CO2 anaesthesia is shown to depend on the species of Drosophila, with D. pseudoobscura and D. subobscura showing no impact, whereas D. melanogaster males had reduced mating success. The dye method presented is applicable to a wide range of experimental designs.

Dyeing Insects for Behavioral Assays: the Mating Behavior of Anesthetized Drosophila

This protocol describes a simple, cost effective way to individually identify Drosophila or other insects. Demonstration data investigating mating success across three species of Drosophila show that this method is comparable or better than the use of CO2 anaesthesia.

行動アッセイの染色昆虫：麻酔の配偶行動<em&gt;ショウジョウバエ</em

Mating experiments using Drosophila have contributed greatly to the understanding of sexual selection and behavior. Experiments often require simple, easy ...

In-depth Physiological Analysis of Defined Cell Populations in Acute Tissue Slices of the Mouse Vomeronasal Organ

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory neurons (VSNs) express a specific type of G protein-coupled receptor (GPCR) from at least three different chemoreceptor gene families allowing sensitive and specific detection of chemosensory cues. These families comprise the V1r and V2r gene families as well as the formyl peptide receptor (FPR)-related sequence (Fpr-rs) family of putative chemoreceptor genes. In order to understand the physiology of vomeronasal receptor-ligand interactions and downstream signaling, it is essential to identify the biophysical properties inherent to each specific class of VSNs.
The physiological approach described here allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons using a transgenic mouse line (Fpr-rs3-i-Venus). The use of this protocol, however, is not restricted to this specific line and thus can easily be extended to other genetically modified lines or wild type animals.

Here, we describe a physiological approach that allows identification and in-depth analysis of a defined population of sensory neurons in acute coronal tissue slices of the mouse vomeronasal organ using whole-cell patch-clamp recordings.

マウス鋤鼻器官の急性組織スライスで定義された細胞集団の中で、深さ生理学的解析

In most mammals, the vomeronasal organ (VNO) is a chemosensory structure that detects both hetero- and conspecific social cues. Vomeronasal sensory ...

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We demonstrate a simple way to tap into the fly reward system, modify experiences related to natural reward, and use voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states. The approach serves as a relevant tool to study the neurons and genes that play a role in experience-mediated changes of internal state. The protocol is composed of two discrete parts: exposing the flies to rewarding and nonrewarding experiences, and assaying voluntary ethanol consumption as a measure of the motivation to obtain a drug reward. The two parts can be used independently to induce the modulation of experience as an initial step for further downstream assays or as an independent two-choice feeding assay, respectively. The protocol does not require a complicated setup and can therefore be applied in any laboratory with basic fly culture tools.

A Simple Way to Measure Alterations in Reward-seeking Behavior Using Drosophila melanogaster

We describe a protocol for inducing rewarding and nonrewarding experiences in fruit flies (Drosophila melanogaster) using voluntary ethanol consumption as a measure for changes in reward states.

使用して報酬を求める行動の変化を測定するための簡単な方法<em&gt;キイロショウジョウバエ</em

We describe a protocol for measuring ethanol self-administration in fruit flies (Drosophila melanogaster) as a proxy for changes in reward states. We ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

大人のホールマウントの準備のためのシンプルなワンステップ解剖プロトコル<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;ブレインズ

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Time-dependent Increase in the Network Response to the Stimulation of Neuronal Cell Cultures on Micro-electrode Arrays

Micro-electrode arrays (MEAs) can be used to investigate drug toxicity, design paradigms for next-generation personalized medicine, and study network dynamics in neuronal cultures. In contrast with more traditional methods, such as patch-clamping, which can only record activity from a single cell, MEAs can record simultaneously from multiple sites in a network, without requiring the arduous task of placing each electrode individually. Moreover, numerous control and stimulation configurations can be easily applied within the same experimental setup, allowing for a broad range of dynamics to be explored. One of the key dynamics of interest in these in vitro studies has been the extent to which cultured networks display properties indicative of learning. Mouse neuronal cells cultured on MEAs display an increase in response following training induced by electrical stimulation. This protocol demonstrates how to culture neuronal cells on MEAs; successfully record from over 95% of the plated dishes; establish a protocol to train the networks to respond to patterns of stimulation; and sort, plot, and interpret the results from such experiments. The use of a proprietary system for stimulating and recording neuronal cultures is demonstrated. Software packages are also used to sort neuronal units. A custom-designed graphical user interface is used to visualize post-stimulus time histograms, inter-burst intervals, and burst duration, as well as to compare the cellular response to stimulation before and after a training protocol. Finally, representative results and future directions of this research effort are discussed.

Mouse neuronal cells cultured on multi-electrode arrays display an increase in response following electrical stimulation. This protocol demonstrates how to culture neurons, how to record activity, and how to establish a protocol to train the networks to respond to patterns of stimulation.

マイクロ電極アレイにおけるニューロン細胞培養の刺激に対するネットワーク応答の時間依存的増加

Micro-electrode arrays (MEAs) can be used to investigate drug toxicity, design paradigms for next-generation personalized medicine, and study network ...

Application of Automated Image-guided Patch Clamp for the Study of Neurons in Brain Slices

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a challenging and low-throughput technique due to its complexity and high reliance on user operation and control. This manuscript demonstrates an image-guided automatic patch clamp system for in vitro whole-cell patch clamp experiments in acute brain slices. Our system implements a computer vision-based algorithm to detect fluorescently labeled cells and to target them for fully automatic patching using a micromanipulator and internal pipette pressure control. The entire process is highly automated, with minimal requirements for human intervention. Real-time experimental information, including electrical resistance and internal pipette pressure, are documented electronically for future analysis and for optimization to different cell types. Although our system is described in the context of acute brain slice recordings, it can also be applied to the automated image-guided patch clamp of dissociated neurons, organotypic slice cultures, and other non-neuronal cell types.

This protocol describes how to conduct automatic image-guided patch-clamp experiments using a system recently developed for standard in vitro electrophysiology equipment.

脳スライスにおけるニューロン研究のための自動画像誘導パッチクランプの応用

Whole-cell patch clamp is the gold-standard method to measure the electrical properties of single cells. However, the in vitro patch clamp remains a ...

A Simple Neuronal Mechanical Injury Methodology to Study Drosophila Motor Neuron Degeneration

The degeneration of neurons occurs during normal development and in response to injury, stress, and disease. The cellular hallmarks of neuronal degeneration are remarkably similar in humans and invertebrates as are the molecular mechanisms that drive these processes. The fruit fly, Drosophila melanogaster, provides a powerful yet simple genetic model organism to study the cellular complexities of neurodegenerative diseases. In fact, approximately 70% of disease-associated human genes have a Drosophila homolog and a plethora of tools and assays have been described using flies to study human neurodegenerative diseases. More specifically the neuromuscular junction (NMJ) in Drosophila has proven to be an effective system to study neuromuscular diseases because of the ability to analyze the structural connections between the neuron and the muscle. Here, we report on an in vivo motor neuron injury assay in Drosophila, which reproducibly induces neurodegeneration at the NMJ by 24 h. Using this methodology, we have described a temporal sequence of cellular events resulting in motor neuron degeneration. The injury method has diverse applications and has also been utilized to identify specific genes required for neurodegeneration and to dissect transcriptional responses to neuronal injury.

A Simple Neuronal Mechanical Injury Methodology to Study Drosophila Motor Neuron Degeneration

Here we describe a simple and widely accessible method to injure segmental nerves in Drosophila larvae to visualize and quantify neurodegeneration of motor neurons at the neuromuscular junction (NMJ) of third instar larvae.

昆虫における係留飛行の研究のための簡単​​なフライトミル

昆虫における係留飛行の研究のための簡単なフライトミル