עבודה זו נתמכה בחלקה על ידי האגודה האמריקאית לכירורגיה של פרס פיילוט יד ו- NIH / NIAMS 1K01AR068386-01 (כדי AEL) ו NIAMS / NIH P30AR061307.

<html> ועדת אוניברסיטת על בעלי חיים למחקר באוניברסיטת רוצ&#39;סטר אישר את כל הניסויים בבעלי חיים. עשרה-12 בשבוע C57BL נקבה בת / 6J שמש. 1. הכנת בעלי חיים לכירורגיה גיד מכופף (~ 15 דקות) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכשירי ניתוח חיטוי לעקר, ללבוש כפפות סטריליות במהלך, ולשמור על שדה הפעלה סטרילי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר באמצעות זריקה intraperitoneal (IP) עם נפח של קטמין (80 מ&quot;ג / ק&quot;ג) ו xylazine (10 מ&quot;ג / ק&quot;ג) המתאים למשקל הגוף. אשר עומק הרגעה באמצעות העדר רפלקס הבוהן קמצוץ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נהל שיכוך כאבים מנע (עצירות, 0.05-0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג) באמצעות זריקה תת עורית. החל משחת עיניים כדי למנוע את העיניים מהתייבשות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכין את האתר כירורגית על ידי גזירה את הפרווה על הגפיים האחוריים כולו. לעקר את העור על ידי שפשוף ברצף עם יוד povidone, ואחריו אתנול 70%, ושוב עם יוד povidone. </li></ol>ילדה = &quot;jove_title&quot;&gt; 2. Murine מכופף פגיעה גיד וכירורגיה תיקון (~ 10 דקות) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מצא את longus digitorum המכופף (FDL) הגיד, ראה שטחי בהיבט המדיאלי של העגל. באמצעות אזמל, לעשות חתך 0.5-1 ס&quot;מ קטן בעור עם מספריים מיקרו לחשוף את הגיד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים כדי להפריד את גיד FDL מן הרקמה שמסביב ואת עקבות אותו עד לצומת myotendinous. חותך את הגיד בצומת זה במספריים באביב כדי לשחרר אותו, מקפיד להימנע עורק הטיביאלי האחורי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את העור עם 5-0 תפרי ניילון. הערה: חיתוך רוחב ותיקון FDL (שלבים 2.4) צריך להתבצע באמצעות סטראו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביצוע חתך 3 מ&quot;מ מעל היבט posterolateral של הכף האחורית באמצעות באביב-מספרי מייקרו. בעדינות לחזור בו רקמות שריר הרכות שמסביב עם מלקחיים, והקפד למזער נזק לרקמות, ולזהות את גיד FDL. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להעלות את גיד FDL והוא לחלוטין transect אותו באמצעות מיילהקרו-מספריים. לתפור את הקצוות של FDL יחד גיד בדפוס קסלר שונה עם 8-0 תפרים, הימנעות ייבוש של גיד באמצעות הרטבתה עם מי מלח מעת לעת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חלף רקמות שריר רכים מעל הגיד, ואז לסגור את החתך עם 5-0 תפרי ניילון. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים עכברים בשקופית סט חם עד 37 מעלות צלזיוס, כדי לשמור על טמפרטורת הגוף עד התאושש מן ההרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג עכברים שלאחר ניתוח עבור סימנים לירידת ערך או זיהום כוללים בדיבור מוגבר ופרווה פרועה. להזריק עצירות (50 μl / עכבר) כמו משכך כאבים כל 12 שעות עד העכברים כבר לא מראים סימנים של כאב או מצוקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר עכברים לרפא לתקופה של 10 ימים שלאחר ניתוח לפני שתמשיך אל השלבים הבאים. הערה: תאים ניתן לקצור בכל עת נקודות שלאחר ניתוח. הנה, 10 ימים הם נבחרו ניסויי נציגים אלה בהתחשב cellularity הגבוהה יחסית של הרקמה בשלב זה. </li></ol> 3. Labeling של תאי רכיבה על אופניים (~ 10 דקות) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן EDU (5-ethynyl-2&#39;deoxyuridine) פתרון (10 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​ב בופר פוספט סטרילי [PBS] + 1% דימתיל sulfoxide [DMSO] להגדיל מסיסות). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להזריק עכברים עם 100 μl EDU (50 מ&quot;ג / ק&quot;ג) באמצעות הזרקה IP 24 שעות לפני להקריב. </li></ol> 4. קציר תאים ציטולוגיה צנטריפוגה (2.5 שעות, ~ 30 hands-on דקות זמן) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן 3 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​collagenase אני PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים העכבר באמצעות מחנק פחמן דו חמצני בקצב זרימה של לא יותר מ -3 ליטר / דקה, ולבצע נקע בצוואר הרחם כאמצעי משני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את הגיד לתקן אותה בעזרת צעד 2.4 לעיל, ולבודד רקמת גיד ידי קיצוץ של כ 2 מ&quot;מ משני צדי במקום פציעה עם מספרי מייקרו. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> רקמת בשר טחון עם אזמל בצלחת פטרי עם 1 מ&quot;ל של 3 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​collagenase, ולאחר מכן להעביר התערובת דרך מחט G 18 מספר פעמים כדי לשבור את הרקמה. אסוף התערובת לתוך צינור 1.5 מ&quot;ל צנטריפוגות. </li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> תקציר רקמת גיד במשך שעה 1 ב 37 מעלות צלזיוס עם רעד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספין רקמות למטה (300 XG במשך 5 דקות), collagenase לשאוב, ואז התאים resuspend / רקמות עם 500 μl 3% אלבומין בסרום שור (BSA) ב- PBS על ידי pipetting מעלה ומטה מספר פעמים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תא ההשעיה סינון דרך מסננת תא 70 מיקרומטר להסיר פסולת חתיכות גדולות של גיד, ומניחים בצד בתוך 37 ° C חממה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים רקמות גיד לתוך צינור צנטריפוגות 1.5 מ&quot;ל אחר, ולרענן עם פתרון collagenase 1 מ&quot;ל, pipetting מעלה ומטה כדי לערבב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה רקמת עוד שעה על 37 מעלות צלזיוס עם רעד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספין למטה רקמת גיד מתעכל (300 XG במשך 5 דקות), resuspend אז BSA 500 μl 3% ב PBS על ידי pipetting מעלה ומטה מספר פעמים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סנן השעית תא דרך מסננת תא 70 מיקרומטר, לשלב עם ההשעיה מבודדת 4.3.3, ואז לספור תאים עם hemocytometer. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו תאים פעם נוספת עם 3% BSA ב PBS, ואז resuspend 3-6x 10 4/100 μl. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף משפך ציטולוגיה לשקופית בעלי מטען חשמלי חיובי וכלא לתוך המוביל שקופית. הכנס את המנגנון כולו לתוך צנטריפוגות ציטולוגיה ולהוסיף 100 השעית תא μl אל המשפך. צנטריפוגה XG ב 300 במשך 5 דקות כדי לפזר את התאים על לשקופית. </li></ol> 5. Immunocytochemistry כדי זיהוי edu (2 hr, ~ 45 hands-on דקות זמן) הערה: כל שלבי הדגירה צריכות להתבצע בחושך להגביל photobleaching של fluorophores. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים מעגל עם עט מחסום הידרופובי למזער הפתרון הנדרש עבור השלבים הבאים, ולאחר מכן מיד לתקן עם 150 μl paraformaldehyde 3% ב 15 דקות PBS בטמפרטורת החדר (RT). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו פעמיים במשך 5 דקות עם BSA 150 μl 3% ב PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תאים Permeabilize עם 0.5% Triton-X 100 ב 20 דקות PBS ב RT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שלב לשטוף חזור כמו 5.1.1. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כן cockt תגובת eduail בהתאם להוראות ערכה לא יותר מ -30 דקות לפני השימוש. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף 150 μl קוקטייל כל שקופית, דגירה 30 דקות ב RT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שלב לשטוף חזור כמו 5.1.1. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה עם 150 μl גרעיני counterstain Hoechst33342 בדילול 1: 2,000 ב 30 דקות PBS ב RT. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטפו פעמיים במשך 5 דקות עם 150 μl 1x PBS. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להוסיף 1-2 טיפות לדעוך אנטי הרכבה בינונית לתאים, ואז coverslip התחתון לאט כדי למנוע בועות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר הרכבה בינונית לרפא לילה בחושך ב RT. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש ברור לק כדי לאטום את coverslip לשקופית. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שקופיות תמונה בהגדלה 40X באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי מצויד מסנני עירור / פליטה של ​​מסוגלים גילוי DAPI (Hoeschst33342), וטקסס אדומה (אלקסה פלואוריד 594). </li></ol>

<ol>
	<li>Lin, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biomechanics+of+tendon+inury+and+repair.">Biomechanics of tendon inury and repair.</a> J Biomech. 37, 865-877 (2004).</li><li>Strickland, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+flexor+tendon+surgery:+twenty-five+years+of+progress.">Development of flexor tendon surgery: twenty-five years of progress.</a> J Hand Surg [Am]. 25, 214-235 (2000).</li><li>Bunnell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Repair+of+tendons+in+the+fingers+and+description+of+two+new+instruments.">Repair of tendons in the fingers and description of two new instruments.</a> Surg Gynecol Obstet. 26, 103-110 (1918).</li><li>Aydin, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-stage+flexor+tendoplasty+in+the+treatment+of+flexor+tendon+injuries.">Single-stage flexor tendoplasty in the treatment of flexor tendon injuries.</a> Acta Orthop Traumatol Turc. 38, 54-59 (2004).</li><li>Gelberman, R. H., Steinberg, D., Amiel, D., Akeson, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fibroblast+chemotaxis+after+tendon+repair.">Fibroblast chemotaxis after tendon repair.</a> J Hand Surg Am. 16, 686-693 (1991).</li><li>Lundborg, G., Rank, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+intrinsic+healing+of+flexor+tendons+based+upon+synovial+fluid+nutrition.">Experimental intrinsic healing of flexor tendons based upon synovial fluid nutrition.</a> J Hand Surg Am. 3, 21-31 (1978).</li><li>Aoki, M., Kubota, H., Pruitt, D. L., Manske, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biomechanical+and+histologic+characteristics+of+canine+flexor+tendon+repair+using+early+postoperative+mobilization.">Biomechanical and histologic characteristics of canine flexor tendon repair using early postoperative mobilization.</a> J Hand Surg Am. 22, 107-114 (1997).</li><li>Kim, H. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Technical+and+biological+modifications+for+enhanced+flexor+tendon+repair.">Technical and biological modifications for enhanced flexor tendon repair.</a> J Hand Surg Am. 35, 1031-1037 (2010).</li><li>Aoki, M., Manske, P. R., Pruitt, D. L., Kubota, H., Larson, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Work+of+flexion+after+flexor+tendon+repair+according+to+the+placement+of+sutures.">Work of flexion after flexor tendon repair according to the placement of sutures.</a> Clin Orthop Relat Res. , 205-210 (1995).</li><li>Zhao, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Award+for+Outstanding+Orthopaedic+Research:+Engineering+flexor+tendon+repair+with+lubricant,+cells,+and+cytokines+in+a+canine+model.">Award for Outstanding Orthopaedic Research: Engineering flexor tendon repair with lubricant, cells, and cytokines in a canine model.</a> Clin Orthop Relat Res. 472, 2569-2578 (2014).</li><li>Wong, J., Bennett, W., Ferguson, M. W., McGrouther, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microscopic+and+histological+examination+of+the+mouse+hindpaw+digit+and+flexor+tendon+arrangement+with+3D+reconstruction.">Microscopic and histological examination of the mouse hindpaw digit and flexor tendon arrangement with 3D reconstruction.</a> J Anat. 209, 533-545 (2006).</li><li>Katzel, E. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+Smad3+loss+of+function+on+scarring+and+adhesion+formation+during+tendon+healing.">Impact of Smad3 loss of function on scarring and adhesion formation during tendon healing.</a> J. Orthop. Res. 29, 684-693 (2011).</li><li>Loiselle, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bone+marrow-derived+matrix+metalloproteinase-9+is+associated+with+fibrous+adhesion+formation+after+murine+flexor+tendon+injury.">Bone marrow-derived matrix metalloproteinase-9 is associated with fibrous adhesion formation after murine flexor tendon injury.</a> PloS one. 7, e40602 (2012).</li><li>Lee, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Parathyroid+hormone+1-34+enhances+extracellular+matrix+deposition+and+organization+during+flexor+tendon+repair.">Parathyroid hormone 1-34 enhances extracellular matrix deposition and organization during flexor tendon repair.</a> J Orthop Res. 33, 17-24 (2015).</li><li>Geary, M. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Systemic+EP4+Inhibition+Increases+Adhesion+Formation+in+a+Murine+Model+of+Flexor+Tendon+Repair.">Systemic EP4 Inhibition Increases Adhesion Formation in a Murine Model of Flexor Tendon Repair.</a> PloS one. 10, e0136351 (2015).</li><li>Loiselle, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+antisense+oligonucleotide+(ASO)+technology+against+Tgf-beta+signaling+to+prevent+scarring+during+flexor+tendon+repair.">Development of antisense oligonucleotide (ASO) technology against Tgf-beta signaling to prevent scarring during flexor tendon repair.</a> J Orthop Res. 33, 859-866 (2015).</li><li>Orner, C. A., Geary, M. B., Hammert, W. C., O'Keefe, R. J., Loiselle, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Low-dose+and+short-duration+Matrix+Metalloproteinase+9+Inhibition+does+not+affect+adhesion+formation+during+murine+flexor+tendon+healing.">Low-dose and short-duration Matrix Metalloproteinase 9 Inhibition does not affect adhesion formation during murine flexor tendon healing.</a> Plast Reconstr Surg. , (2016).</li><li>Loiselle, A. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Remodeling+of+murine+intrasynovial+tendon+adhesions+following+injury:+MMP+and+neotendon+gene+expression.">Remodeling of murine intrasynovial tendon adhesions following injury: MMP and neotendon gene expression.</a> J Orthop Res. 27, 833-840 (2009).</li><li>Tsubone, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+TGF-beta+inducible+early+gene+deficiency+on+flexor+tendon+healing.">Effect of TGF-beta inducible early gene deficiency on flexor tendon healing.</a> J Orthop Res. 24, 569-575 (2006).</li><li>Beason, D. P., Kuntz, A. F., Hsu, J. E., Miller, K. S., Soslowsky, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+and+evaluation+of+multiple+tendon+injury+models+in+the+mouse.">Development and evaluation of multiple tendon injury models in the mouse.</a> J Biomech. 45, 1550-1553 (2012).</li><li>David, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tendon+repair+is+compromised+in+a+high+fat+diet-induced+mouse+model+of+obesity+and+type+2+diabetes.">Tendon repair is compromised in a high fat diet-induced mouse model of obesity and type 2 diabetes.</a> PloS one. 9, e91234 (2014).</li><li>Wong, J. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cellular+biology+of+flexor+tendon+adhesion+formation:+an+old+problem+in+a+new+paradigm.">The cellular biology of flexor tendon adhesion formation: an old problem in a new paradigm.</a> Am J Pathol. 175, 1938-1951 (2009).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests

הליך כירורגי עבור מודל Murine של חיתוך רוחב מלא ותיקון של גיד longus digitorum מכופף מוצג במחקר זה. בנוסף יישום רומן לרכז אוכלוסיות תאים קטנות עם צנטריפוגות ציטולוגיה מודגם, המאפשר ניתוח immunocytochemical כמוני של הסביבה הסלולר במהלך ריפוי גיד מכופף. מודל זה של תיקון גיד מכופף מדגים תג...

גידים מכופפים בעבודת היד בתיאום עם השרירים המכופפים של אמת נדנים דיגיטליים כדי לאפשר כיפוף של הספרות ותפקוד אחיזה של היד. גידים מכופפים לרוץ לאורך היבט Palmar של היד; יחסית שטחית במיקום זה לעתים קרובות תוצאות פציעות בגידים המכופפים במהלך טראומה אל היד. גידים לרפא באמצעות תגובת צלקת רקמות ולא התחדשות של גיד נורמלי רקמות 1. בעוד רקמת צלקת זה מספקת המשכיות לגיד, פונקציה דרמטית פחת יחסית גיד בריא. מרוכבים רקמת גיד-צלקת מאופיינים תכונות מכניות לקוי 1, טיוח הגידים לתיקון סביר יותר להתפקע. בנוסף, רקמת צלקת חסרה את הארגון של מבנה סיבי קולגן גיד הילידים, וכתוצאה מכך לעלייה בגודל גיד וצובר. בהתחשב במגבלות האנטומי של יחידת-נדן הגיד, אפילו עלייה מתונה גודל גיד יכול דרסטי אדוםתחיקת פונקצית הגלישה של הגיד, ולכן טווח ספרה של תנועה ותפקוד יד. לפני של פציעות 1960 עד הגידים המכופפים, בעיקר אלו המופיעות Zone II של היד, לא תוקנו באופן שיגרתי עקב הסיבוכים החמורים בריפוי שהתעוררו עם תיקונים אלה 2. אזור זה של היד כונה &quot;שטח הפקר&quot; 3. עם זאת, שיפורים בטכניקות הכירורגיות, דפוסי תפר ופרוטוקולים שיקום פיזיותרפיה השתפרו באופן דרמטי התוצאות של תיקונים גיד מכופף 2. למרות ההתפתחויות הללו, עד 40% של תיקונים לגרום להיווצרות הדבקה מספיק כדי לעכב ביד פונקציה 4. לכן, גישה ביולוגית נדרשה לשפר את הריפוי. למרבה הצער, מעט מאוד ידוע על תהליך ריפוי הגיד ברמה התאית ומולקולרית. לכן, המטרה הייתה לפתח מודל בעכברים שיכולים לשמש כדי לשפר את מבין מה היסודגרם של רכיבים התאיים ומולקולריים של ריפוי גיד מכופף ותגובת היווצרות הצלקת, כאמצעי לזיהוי מטרות טיפוליות חדשניות כדי לשפר את הריפוי. גדולים יותר במודלים של בעלי חיים כבר סייעו לקדם הבנה של תהליך ריפוי הגיד המכופף. מחקרים בכלבי ארנב הוכיחו הוא את יכולת הריפוי הפנימית וחיצונית של גידים מכופפים 5,6, את החשיבות של תנועה פסיבית מבוקרת מוקדם מזעור ביחס היווצרות הידבקות לחוסר מעש 7, כמו גם את ההשפעות של דפוסי תפר שונים על תהליך הריפוי 8 , 9. בנוסף, מודל הכלבים כבר שימושי בבדיקת גישות רקמות הנדסת translational כדי לשפר את הריפוי 10. עם זאת, ישנם מספר יתרונות חשובים באמצעות קרוב משפחה במודל Murine מודל חיה גדולה, כולל בעלות היחסית, זמינות של ריאגנטים ספציפיים בעכברים, ואת הקלות של יצירת knoc העולמיk-outs או בונת מחיקה / ביטוי יתר רקמות ספציפיות. יתר על כן, את הדמיון התפקודי בין אדם ועכברים ביחס גידים מכופפים 11 מצביע על התועלת הפוטנציאלית בפיתוח מודל בעכברים. פיתוח של מודל Murine של מחקת תיקון חיתוך רוחב ו גיד מכופף היבטים רבים של ריפוי קליני, כוללים ההיווצרות של רקמת צלקתית שופעת תכונות מכאניות לקויות. המודל המתואר כאן אינו ששחזור אמיתי של פרקטיקה קלינית עקב חיתוך רוחב של FDL בצומת myotendinous כדי להגן על האתר לתקן. יתר על כן, מודל זה אינו לוקח בחשבון את התרומה של תאי נדן סינוביאלי לתגובת הריפוי, כפי שאין נדן סינוביאלי כיסוי החלק באמצע של הגיד שבו התיקון מתרחש. למרות מגבלות אלה, מודל זה יש את היתרון של מגוון המניב של הידבקויות הגבלת תנועה, אשר טרם הוכיח במודלי Murine שיותר קלואיליי להיות קרובים ככל האפשר תרחיש הקליני. מודל זה נעשה שימוש כדי להעריך מודלים עכבר נוק-אאוט 12,13, וכדי לבחון גישות פרמקולוגיות שונות כדי לשפר את הריפוי 14-17. היסטולוגית מנתח של מודל זה, באמצעות אימונוהיסטוכימיה ו הכלאה באתרו, יכול לספק תובנות חשובות ל לוקליזציה של גנים מפתח וחלבונים במהלך הריפוי. עם זאת, היסטולוגיה מספק רק ניתוח מרחבי חתך ואינו מאפשר כימות ברחבי הרקמה כולה. Cytometry זרימה מייצגת גישה כמותית יותר, אך רק מספר מצומצם מאוד של תאים יכול להיות מבודד רקמת גיד ריפוי במודל העכבר, ומספר זה ירד עוד יותר במהלך שלבי קיבעון, permeabilization, ואת כביסה. אם תיקח את זה לחשבון, cytometry זרימה הופך גישה ישימה בשל מספר בעלי החיים אשר יידרש. שיטה חלופית יש צורך לשמר את רוב האוכלוסייה תא קטן זה כדיעוד לאפיין את סביבת הריפוי. השיטה המשמשת להשגת יעד זה, המוצג כאן, כרוך ריכוז של תאים בודדים באמצעות צנטריפוגה ציטולוגיה לשקופית זכוכית, ואחריו immunocytochemistry. במחקר הנוכחי EDU (5-ethynyl-2&#39;deoxyuridine, אנלוגי thymidine) התאגדות התיוג הבא שמשה כדי לקבוע את מצב השגשוג היחסי של תאים באתר הריפוי. גישה זו ניתן ליישם על מנת לבחון את היעילות של טיפול תרופתי על התפשטות תאים, גני נוק-אאוט או ביטוי יתר, או לזהות ולכמת אוכלוסיות תאים שונות.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Surgical preparation&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>C57BL/6J mice&amp;nbsp;</td><td>Jackson Laboratories</td><td>000664</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine</td><td>Hospira</td><td>NDC# 0409-2051-05</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Lloyd Inc.</td><td>NDC# 61311-482-10</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine</td><td>Par Pharmaceutical Inc.</td><td>NDC# 42023-179-10</td><td></td></tr><tr><td>0.9% sodium chloride irrigation</td><td>Hospira</td><td>NDC# 0409-6138-03</td><td>For preparation of ketamine/xylazine and buprenorphine solutions</td></tr><tr><td>1 ml syringe</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>30 G needle</td><td>BD</td><td>305106</td><td></td></tr><tr><td>Povidone-Iodine solution</td><td>Aplicare</td><td>82-226</td><td></td></tr><tr><td>70% ethanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Puralube vet opthalmic ointment</td><td>Dechra Veterinary Products</td><td>NDC# 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Surgical tools&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Portable balance 200 g</td><td>Ohaus</td><td>SP202</td><td></td></tr><tr><td>Spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15124-12</td><td></td></tr><tr><td>Dumont #5 forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11251-30</td><td></td></tr><tr><td>Needle holders</td><td>Fine Science Tools</td><td>91201-13</td><td></td></tr><tr><td>Micro spring scissors</td><td>Fine Science Tools</td><td>15003-08</td><td></td></tr><tr><td>Micro needle holders</td><td>Fine Science Tools</td><td>12061-02</td><td></td></tr><tr><td>5-0 nylon sutures</td><td>Ethicon</td><td>668G</td><td></td></tr><tr><td>8-0 microsurgery nylon sutures</td><td>Ethicon</td><td>2808G</td><td></td></tr><tr><td>Lab-Line histology slide warmer</td><td>Barnstead International</td><td>26025</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Cytospin method&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Collagenase Type I, lyophilized</td><td>Life Technologies&amp;nbsp;</td><td>1700-017</td><td></td></tr><tr><td>Bovine Serum Albumin</td><td>Cell Signaling Technologies</td><td>9998S</td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td>Thermo Fisher</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Cytology funnels</td><td>Fisher HealthCare</td><td>10-354</td><td></td></tr><tr><td>HistoBond+ microscope slides</td><td>VWR</td><td>16005-110</td><td></td></tr><tr><td>Cytospin 2 centrifuge</td><td>Shandon</td><td>SH-CYTO2</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Immunocytochemistry&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Slide staining tray with black lid</td><td>IHC World</td><td>M920-2</td><td></td></tr><tr><td>Click-iT Plus EdU Imaging Kit</td><td>Life Technologies&amp;nbsp;</td><td>C10639</td><td>Includes EdU and&amp;nbsp; Hoeschst 33342</td></tr><tr><td>Immedge hydrophobic barrier pen</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-4000</td><td></td></tr><tr><td>ProLong Diamond mounting medium</td><td>Thermo Fisher</td><td>P36970</td><td></td></tr><tr><td>Glass coverslips 24 x 50 mm #1.5</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Clear nail polish</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

murine flexor tendon injury and repair surgery

גיד מתחבר שרירים ועצמות השלד, הקלת התנועה של כמעט את כל הגוף. ביד, גידים מכופפים (FTS) לאפשר כיפוף האצבעות ותפקוד יד בכלל. פציעות FTS נפוצות, וריפוי משביע רצון לעתים קרובות נפגע בשל רקמת צלקתית עודפי הידבקויות בין גיד הרקמה שמסביב. עם זאת, מעט מאוד ידוע על הרכיבים המולקולריים התאיים של תיקון FT. לשם כך, מודל Murine של תיקון FT כי משחזר היבטים רבים של ריפוי בבני אדם, כולל מגוון לקוי של תנועה וירידה תכונות מכניות, פותחה שתואר לעיל. הנה הדגמה מעמיקה של הליך כירורגים זה מסופקת, מעורב חיתוך רוחב והתיקון הבא של longus digitorum המכופף (FDL) גיד הכף האחורית בעכברים. טכניקה זו יכולה לשמש כדי לבצע ניתוח שושלת של תאים מסוגים שונים, להעריך את ההשפעות של רווח גן או פסד של פונקציה, וכדי לבדוק את האפיםcacy של התערבויות תרופתיות בתהליך הריפוי. עם זאת, ישנן שתי מגבלות עיקריות מודל זה: i) גיד FDL באמצע החלק של הכף האחורית בעכברים, שבו חיתוך הרוחב והתיקון להתרחש, אינו מוקף נדן סינוביאלי. לכן מודל זה אינו לוקח בחשבון את התרומה הפוטנציאלית של הנדן לתהליך היווצרות צלקת. ii) כדי להגן על היושרה של אתר התיקון, FT הוא שוחרר בצומת myotendinous, ומקטין את הכוחות המכאניים של הגיד, תורם סביר היווצרות צלקת מוגברת. בידוד של תאים מספיק מן הרקמה פרור של FT במהלך תהליך הריפוי עבור ניתוח תזרים cytometric הוכיח מאתגר; צנטריפוגה ציטולוגיה להתרכז תאים אלה היא שיטה חלופית בשימוש, ומאפשר הדור של ההכנות התא שעליו תיוג immunofluorescent יכול להתבצע. באמצעות שיטה זו, כימות של תאים או חלבונים בעלי עניין במהלך ריפוי FT הופכת אפשרית.

Longus digitorum מכופף השרירים (FDL), הממוקמים העגל, פועל כדי להגמיש את הספרות של הכף האחורית עכבר באמצעות הגיד המכופף (התווה בכחול באיור 1A, והראה היסטולוגית באיור 2 א), אשר פועלת proximally מן myotendinous צומת של דבר הוא מגיע הפלנגות דיסטלי. במודל זה של...

Watch this Scientific Journal Video about Murine Flexor Tendon Injury and Repair Surgery at JoVE.com

Murine Flexor Tendon Injury and Repair Surgery

גידים מכופפים ביד נפצעים נפוץ, מה שמוביל פונקצית יד לקויה. עם זאת, תגובת ריפוי צלקת הרקמות אינה מאופיינת היטב. מודל Murine של ריפוי גיד מכופף מודגם כאן. מודל זה יכול לשפר את ההבנה הכוללת של תהליך הריפוי ולהעריך גישות טיפוליות כדי לשפר את הריפוי.

פגיעת גיד מכופף Murine וכירורגיה תיקון

Tendon connects skeletal muscle and bone, facilitating movement of nearly the entire body. In the hand, flexor tendons (FTs) enable flexion of the fingers ...

murine-flexor-tendon-injury-and-repair-surgery

Research

JoVE Journal

Medicine

13.0K Views.  University of Rochester Medical Center.  גידים מכופפים ביד נפצעים נפוץ, מה שמוביל פונקצית יד לקויה. עם זאת, תגובת ריפוי צלקת הרקמות אינה מאופיינת היטב. מודל Murine של ריפוי גיד מכופף מודגם כאן. מודל זה יכול לשפר את ההבנה הכוללת של תהליך הריפוי ולהעריך גישות טיפוליות כדי לשפר את הריפוי....

Video: Murine Flexor Tendon Injury and Repair Surgery

A Mini-Invasive Internal Fixation Technique for Studying Immobilization-Induced Knee Flexion Contracture in Rats

Joint contracture, resulting from a prolonged joint immobilization, is a common complication in orthopedics. Currently, utilizing an internal fixation to restrict knee joint mobility is a widely accepted model to generate experimental contracture. However, implanting application will inevitably cause surgical trauma to the animals. Aiming to develop a less invasive approach, we combined a muscle-gap separation modus with a previously reported mini-incision skill during the surgical procedure: Two mini skin incisions were made on the lateral thigh and leg, followed by performing muscle-gap separation to expose the bone surface. The rat knee joint was gradually immobilized by a preconstructed internal fixation at approximately 135&#176; knee flexion without interfering essential nerves or blood vessels. As expected, this simple technique permits rapid postoperative rehabilitation in animals. The correct position of the internal fixation was confirmed by an x-ray or micro-CT scanning analysis. The range of motion was significantly restricted in the immobilized knee joint than that observed in the contralateral knee joint demonstrating the effectiveness of this model. Besides, histological analysis revealed the development of fibrous deposition and adhesion in the posterior-superior knee joint capsule over time. Thus, this mini-invasive model may be suitable for mimicking the development of immobilized knee joint contracture.

Here, we present a protocol to describe a minimally invasive technique for knee joint immobilization in a rat model. This reproducible protocol, basing on muscle-gap separation modus and the mini-incision skill, is suitable for studying the underlying molecular mechanism of acquired joint contracture.

מיני פולשנית שיטה פנימית ללמידה בברך שנגרמה כתוצאה מצמצום בחולדות

Joint contracture, resulting from a prolonged joint immobilization, is a common complication in orthopedics. Currently, utilizing an internal fixation to ...

Developmental Biology

A Novel Tenorrhaphy Suture Technique with Tissue Engineered Collagen Graft to Repair Large Tendon Defects

Surgical management of large tendon defects with tendon grafts is challenging, as there are a finite number of sites where donors can be readily identified and used. Currently, this gap is filled with tendon auto-, allo-, xeno-, or artificial grafts, but clinical methods to secure them are not necessarily translatable to animals because of the scale. In order to evaluate new biomaterials or study a tendon graft made up of collagen type 1, we have developed a modified suture technique to help maintain the engineered tendon in alignment with the tendon ends. Mechanical properties of these grafts are inferior to the native tendon. To incorporate engineered tendon into clinically relevant models of loaded repair, a strategy was adopted to offload the tissue engineered tendon graft and allow for the maturation and integration of the engineered tendon in vivo until a mechanically sound neo-tendon was formed. We describe this technique using incorporation of the collagen type 1 tissue engineered tendon construct.

In this paper, we present an in vitro and in situ protocol to repair a tendon gap of up to 1.5 cm by filling it with engineered collagen graft. This was performed by developing a modified suture technique to take the mechanical load until the graft matures into the host tissue.

טכניקת תפירת טנורהאפי חדשנית עם שתל קולגן מהונדס רקמה לתיקון פגמים גדולים בגיד

Surgical management of large tendon defects with tendon grafts is challenging, as there are a finite number of sites where donors can be readily ...

Bioengineering

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

Endochondral fracture healing is a complex process involving the development of fibrous, cartilaginous, and osseous tissue in the fracture callus. The amount of the different tissues in the callus provides important information on the fracture healing progress. Available in vivo techniques to longitudinally monitor the callus tissue development in preclinical fracture-healing studies using small animals include digital radiography and &#181;CT imaging. However, both techniques are only able to distinguish between mineralized and non-mineralized tissue. Consequently, it is impossible to discriminate cartilage from fibrous tissue. In contrast, magnetic resonance imaging (MRI) visualizes anatomical structures based on their water content and might therefore be able to noninvasively identify soft tissue and cartilage in the fracture callus. Here, we report the use of an MRI-compatible external fixator for the mouse femur to allow MRI scans during bone regeneration in mice. The experiments demonstrated that the fixator and a custom-made mounting device allow repetitive MRI scans, thus enabling longitudinal analysis of fracture-callus tissue development.

In Vivo Evaluation of Fracture Callus Development During Bone Healing in Mice Using an MRI-compatible Osteosynthesis Device for the Mouse Femur

The evaluation of tissue development in the fracture callus during endochondral bone healing is essential to monitor the healing process. Here, we report the use of a magnetic resonance imaging (MRI)-compatible external fixator for the mouse femur to allow MRI scans during bone regeneration in mice.

אין ויוו הערכה של שבר פיתוח קסם במהלך עצם הריפוי בעכברים שימוש בהתקן התואם ל- MRI Osteosynthesis את העכבר אתי

Endochondral fracture healing is a complex process involving the development of fibrous, cartilaginous, and osseous tissue in the fracture callus. The ...

A Mouse Model of Orthopedic Surgery to Study Postoperative Cognitive Dysfunction and Tissue Regeneration

Surgery is commonly used to improve and maintain quality of life. Unfortunately, in vulnerable patients such as the elderly, complications may occur and significantly diminish the outcome. Indeed, after routine orthopedic surgery to repair a fracture, as many as 50% of elderly patients suffer from neurologic complications like delirium. Also, the capacity to heal and regenerate tissue after surgery decreases with age, and can impact the quality of fracture repair and even osseous integration of implants. Thus, a better understanding of mechanisms that drive these age-dependent changes could provide strategic targets to minimize risk for such complications and optimize outcomes. Here, we introduce a clinically relevant mouse model of tibial fracture. The postoperative changes in these mice mimic some of the cognitive impairments commonly observed after routine orthopedic surgery in humans. Briefly, an incision is performed in the right hind limb under strictly aseptic conditions. Muscles are disassociated, and a 0.38-mm stainless steel pin is inserted into the upper crest of the tibia, inside the intramedullary canal. Osteotomy is then performed, and the wound is stapled. We have used this model to investigate the effects of surgical trauma on postoperative neuroinflammation and behavioral changes. By applying this fracture model in combination with parabiosis, a surgical model in which 2 mice are anastomosed, we have studied cells and secreted factors that systemically rejuvenate organ function and tissue regeneration after injury. By following our step-by-step protocol, these models can be reproduced with high fidelity, and can be adapted to interrogate many biologic pathways that are altered by surgical trauma.

This protocol describes a mouse model of orthopedic surgery that has been used to study mechanisms of postoperative neuroinflammation and behavioral changes, and when combined with parabiosis, to study tissue regeneration during aging.

דגם העכבר של כירורגיה אורתופדית ללמוד לאחר הניתוח בתפקוד הקוגניטיבי ו התחדשות רקמות

Surgery is commonly used to improve and maintain quality of life. Unfortunately, in vulnerable patients such as the elderly, complications may occur and ...

הבנת פגיעה בגידים – מודל מורין אקספלנט לחקר מכנוביולוגיה

Murine Hind Limb Explant Model for Studying the Mechanobiology of Achilles Tendon Impingement

Tendon impingement upon bone generates a multiaxial mechanical strain environment with markedly elevated transverse compressive strain, which elicits a localized fibrocartilage phenotype characterized by accumulation of glycosaminoglycan (GAG)-rich matrix and remodeling of the collagen network. While fibrocartilage is a normal feature in impinged regions of healthy tendons, excess GAG deposition and disorganization of the collagen network are hallmark features of tendinopathy. Accordingly, impingement is clinically recognized as an important extrinsic factor in the initiation and progression of tendinopathy. Nevertheless, the mechanobiology underlying tendon impingement remains understudied. Prior efforts to elucidate the cellular response to tendon impingement have applied uniaxial compression to cells and excised tendon explants in vitro. However, isolated cells lack a three-dimensional extracellular environment crucial to mechanoresponse, and both in vitro and excised explant studies fail to recapitulate the multiaxial strain environment generated by tendon impingement in vivo, which depends on anatomical features of the impinged region. Moreover, in vivo models of tendon impingement lack control over the mechanical strain environment. To overcome these limitations, we present a novel murine hind limb explant model suitable for studying the mechanobiology of Achilles tendon impingement. This model maintains the Achilles tendon in situ to preserve local anatomy and reproduces the multiaxial strain environment generated by impingement of the Achilles tendon insertion upon the calcaneus during passively applied ankle dorsiflexion while retaining cells within their native environment. We describe a tissue culture protocol integral to this model and present data establishing sustained explant viability over 7 days. The representative results demonstrate enhanced histological GAG staining and decreased collagen fiber alignment secondary to impingement, suggesting elevated fibrocartilage formation. This model can easily be adapted to investigate different mechanical loading regimens and allows for the manipulation of molecular pathways of interest to identify mechanisms mediating phenotypic change in the Achilles tendon in response to impingement.

מחבר זרקור: חשיפת המכנוביולוגיה של פגיעה בגידים – מודל מולטיאקסיאלי של צמח גפיים אחוריות מורין 

We present a custom experimental platform and tissue culture protocol that recreates fibrocartilaginous change driven by impingement of the Achilles tendon insertion in murine hind limb explants with sustained cell viability, providing a model suitable for exploring the mechanobiology of tendon impingement.

מודל צמח הגפיים האחוריות של מורין לחקר המכנוביולוגיה של פגיעה בגיד אכילס

Tendon impingement upon bone generates a multiaxial mechanical strain environment with markedly elevated transverse compressive strain, which elicits a ...

Using Q Suture to Enhance Resistance to Gap Formation and Tensile Strength of Repaired Flexor Tendons

Peripheral epitendinous sutures are believed to enhance core suture strength in tendon repair and decrease the risk of gapping between tendon ends. Here Q suture, an alternative to peripheral sutures, is presented for the use in tendon repair. Its effects on gap formation and tensile strength of the repaired tendons were compared with conventional running peripheral sutures. Three 2-strand sutures and three 4-strand sutures were used in repairing porcine tendons. The time required for performing 2Q and running sutures were recorded. The repaired tendons were subjected to a cyclic loading test, and the cycle number, during which a 2-mm gap was formed, was determined. After the cyclic loading, the gap size at the tendon ends and the ultimate strength of the repaired tendons were measured. Augmentation with the Q sutures reduced the number of tendons showing 2-mm gaps at tendon ends during cyclic loading. With addition of Q sutures 2-strand sutures significantly increased the ultimate strength of the repaired tendons and 4-strand sutures decreased the gap distance at the repair site of tendons. The time required for performing 2Q sutures was significantly less than that for running sutures. Therefore, we conclude that the Q suture is efficient in enhancing the tensile resistance and tendon repair strength and can be an alternative to conventional peripheral sutures.

Here, we present a &#8220;Q&#8221; suture technique that can be performed in tendon repair and its effects on the gap formation and tensile strength of the repaired tendons. Q suture is shown to be efficient in enhancing the tensile resistance and tendon repair strength.

באמצעות תפר Q כדי לשפר את ההתנגדות היווצרות פער חוזק מתיחה של הגידים כופף לתיקון

Peripheral epitendinous sutures are believed to enhance core suture strength in tendon repair and decrease the risk of gapping between tendon ends. Here Q ...

Polytetrafluoroethylene (PTFE) as a Suture Material in Tendon Surgery

With the evolution of suture materials, there has been a change in paradigms in primary and secondary tendon repair. Improved mechanical properties allow more aggressive rehabilitation and earlier recovery. However, for the repair to hold against higher mechanical demands, more advanced suturing and knotting techniques must be assessed in combination with those materials. In this protocol, the use of polytetrafluoroethylene (PTFE) as a suture material in combination with different repair techniques was investigated. In the first part of the protocol, both linear tension strength and elongation of knotted against not-knotted strands of three different materials used in flexor tendon repair were evaluated. The three different materials are polypropylene (PPL), ultra-high molecular weight polyethylene with a braided jacket of polyester (UHMWPE), and polytetrafluoroethylene (PTFE). In the next part (ex vivo experiments with cadaveric flexor tendons), the behavior of PTFE using different suture techniques was assessed and compared with PPL and UHMWPE.
This experiment is comprised of four steps: harvesting of the flexor tendons from fresh cadaveric hands, transection of the tendons in a standardized manner, tendon repair by four different techniques, mounting, and measurement of the tendon repairs on a standard linear dynamometer. The UHMWPE and PTFE showed comparable mechanical properties and were significantly superior to PPL in terms of linear traction strength. Repairs with four- and six-strand techniques proved stronger than two-strand techniques. Handling and knotting of PTFE are a challenge due to very low surface friction but fastening of the four- or six-strand repair is comparatively easy to achieve. Surgeons routinely use PTFE suture material in cardiovascular surgery and breast surgery. The PTFE strands are suitable for use in tendon surgery, providing a robust tendon repair so that early active motion regimens for rehabilitation can be applied.

Polytetrafluoroethylene PTFE as a Suture Material in Tendon Surgery

The present protocol illustrates a method for assessing the biophysical properties of tendon repairs ex vivo. A polytetrafluoroethylene (PTFE) suture material was evaluated by this method and compared to other materials under different conditions.

פוליטטרה-פלואוראתילן (PTFE) כחומר תפר בניתוחי גידים

With the evolution of suture materials, there has been a change in paradigms in primary and secondary tendon repair. Improved mechanical properties allow ...

A1 Pulley Reconstruction for Severe Trigger Finger

The aim of this study was to evaluate the effectiveness of A1 pulley reconstruction in treating severe trigger fingers and to compare its outcomes with those of the traditional A1 pulley release technique. A total of 43 patients participated in the study, divided into two groups: 22 patients underwent A1 pulley reconstruction, while the remaining 21 patients received the standard A1 pulley release procedure. The outcomes were assessed using the Michigan Hand Outcomes Questionnaire (MHQ) 1 month post-surgery. The results demonstrated that patients who received the A1 pulley reconstruction reported significantly better outcomes. These included enhanced hand function and quality of life, reduced levels of pain, improved aesthetic appearances, and higher overall satisfaction when compared to the traditional release group. The findings suggest that A1 pulley reconstruction offers superior benefits over the standard release procedure for individuals suffering from severe trigger fingers, highlighting its potential as a more effective surgical intervention.

Here, we present a protocol to compare A1 pulley reconstruction with traditional release surgery in treating a trigger finger, revealing enhanced outcomes and patient satisfaction through the Michigan Hand Outcomes Questionnaire.

שחזור גלגלת A1 לאצבע הדק חמורה

The aim of this study was to evaluate the effectiveness of A1 pulley reconstruction in treating severe trigger fingers and to compare its outcomes with ...

פגיעת גיד מכופף Murine וכירורגיה תיקון

Summary

Explore More Videos

מיני פולשנית שיטה פנימית ללמידה בברך שנגרמה כתוצאה מצמצום בחולדות

טכניקת תפירת טנורהאפי חדשנית עם שתל קולגן מהונדס רקמה לתיקון פגמים גדולים בגיד

אין ויוו הערכה של שבר פיתוח קסם במהלך עצם הריפוי בעכברים שימוש בהתקן התואם ל- MRI Osteosynthesis את העכבר אתי

דגם העכבר של כירורגיה אורתופדית ללמוד לאחר הניתוח בתפקוד הקוגניטיבי ו התחדשות רקמות

מודל צמח הגפיים האחוריות של מורין לחקר המכנוביולוגיה של פגיעה בגיד אכילס

מודל צמח הגפיים האחוריות של מורין לחקר המכנוביולוגיה של פגיעה בגיד אכילס

מודל צמח הגפיים האחוריות של מורין לחקר המכנוביולוגיה של פגיעה בגיד אכילס

באמצעות תפר Q כדי לשפר את ההתנגדות היווצרות פער חוזק מתיחה של הגידים כופף לתיקון

פוליטטרה-פלואוראתילן (PTFE) כחומר תפר בניתוחי גידים

שחזור גלגלת A1 לאצבע הדק חמורה