כמה זנים סופקו על ידי המרכז הגנטיקה Caenorhabditis (CGC), אשר ממומן על ידי NIH משרד תוכניות מחקר מחקר (P40 OD010440). עבודה זו נתמכת על ידי הווארד יוז רפואי המכון, שבו PWS הוא חוקר.

<ol>
	<li>White, J. G., Southgate, E., Thomson, J. N., Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+the+nervous+system+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans.">The structure of the nervous system of the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 314, 1-340 (1986).</li><li>Bargmann, C. I., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemosensory+neurons+with+overlapping+functions+direct+chemotaxis+to+multiple+chemicals+in+C.+elegans.">Chemosensory neurons with overlapping functions direct chemotaxis to multiple chemicals in C. elegans.</a> Neuron. 7 (5), 729-742 (1991).</li><li>Bargmann, C. I., Hartwieg, E., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odorant-selective+genes+and+neurons+mediate+olfaction+in+C.+elegans.">Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C. elegans.</a> Cell. 74 (3), 515-527 (1993).</li><li>Hilliard, M. A., Bargmann, C. I., Bazzicalupo, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=C.+elegans+responds+to+chemical+repellents+by+integrating+sensory+inputs+from+the+head+and+the+tail.">C. elegans responds to chemical repellents by integrating sensory inputs from the head and the tail.</a> Curr Biol. 12 (9), 730-734 (2002).</li><li>Hilliard, M. A., Bergamasco, C., Arbucci, S., Plasterk, R. H., Bazzicalupo, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Worms+taste+bitter:+ASH+neurons,+QUI-1,+GPA-3+and+ODR-3+mediate+quinine+avoidance+in+Caenorhabditis+elegans.">Worms taste bitter: ASH neurons, QUI-1, GPA-3 and ODR-3 mediate quinine avoidance in Caenorhabditis elegans.</a> EMBO J. 23 (5), 1101-1111 (2004).</li><li>Zariwala, H. A., Miller, A. C., Faumont, S., Lockery, S. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Step+response+analysis+of+thermotaxis+in+Caenorhabditis+elegans.">Step response analysis of thermotaxis in Caenorhabditis elegans.</a> J Neurosci. 23 (10), 4369-4377 (2003).</li><li>Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemotaxis+by+the+nematode+Caenorhabditis+elegans:+identification+of+attractants+and+analysis+of+the+response+by+use+of+mutants.">Chemotaxis by the nematode Caenorhabditis elegans: identification of attractants and analysis of the response by use of mutants.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 70 (3), 817-821 (1973).</li><li>Wicks, S. R., de Vries, C. J., van Luenen, H. G., Plasterk, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CHE-3,+a+cytosolic+dynein+heavy+chain,+is+required+for+sensory+cilia+structure+and+function+in+Caenorhabditis+elegans.">CHE-3, a cytosolic dynein heavy chain, is required for sensory cilia structure and function in Caenorhabditis elegans.</a> Dev Biol. 221 (2), 295-307 (2000).</li><li>Jansen, G., Weinkove, D., Plasterk, R. H. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+G-protein+subunit+gpc-1+of+the+nematode+C.+elegans+is+involved+in+taste+adaptation.">The G-protein subunit gpc-1 of the nematode C. elegans is involved in taste adaptation.</a> EMBO J. 21 (5), 986-994 (2002).</li><li>Srinivasan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+blend+of+small+molecules+regulates+both+mating+and+development+in+Caenorhabditis+elegans.">A blend of small molecules regulates both mating and development in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 454 (7208), 1115-1118 (2008).</li><li>Choe, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ascaroside+signaling+is+widely+conserved+among+nematodes.">Ascaroside signaling is widely conserved among nematodes.</a> Curr Biol. 22 (9), 772-780 (2012).</li><li>Ezcurra, M., Tanizawa, Y., Swoboda, P., Schafer, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Food+sensitizes+C.+elegans+avoidance+behaviours+through+acute+dopamine+signalling.">Food sensitizes C. elegans avoidance behaviours through acute dopamine signalling.</a> EMBO J. 30 (6), 1110-1122 (2011).</li><li>Ward, A., Liu, J., Feng, Z., Xu, X. Z. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Light-sensitive+neurons+and+channels+mediate+phototaxis+in+C.+elegans.">Light-sensitive neurons and channels mediate phototaxis in C. elegans.</a> Nat Neurosci. 11 (8), 916-922 (2008).</li><li>Kunitomo, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concentration+memory-dependent+synaptic+plasticity+of+a+taste+circuit+regulates+salt+concentration+chemotaxis+in+Caenorhabditis+elegans.">Concentration memory-dependent synaptic plasticity of a taste circuit regulates salt concentration chemotaxis in Caenorhabditis elegans.</a> Nat Commun. 4, 2210 (2013).</li><li>Snow, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+anterograde+intraflagellar+transport+motors+cooperate+to+build+sensory+cilia+on+C.+elegans+neurons.">Two anterograde intraflagellar transport motors cooperate to build sensory cilia on C. elegans neurons.</a> Nat Cell Biol. 6 (11), 1109-1113 (2004).</li><li>Tobin, D. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combinatorial+expression+of+TRPV+channel+proteins+defines+their+sensory+functions+and+subcellular+localization+in+C.+elegans+neurons.">Combinatorial expression of TRPV channel proteins defines their sensory functions and subcellular localization in C. elegans neurons.</a> Neuron. 35 (2), 307-318 (2002).</li><li>Waggoner, L. E., Zhou, G. T., Schafer, R. W., Schafer, W. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Control+of+alternative+behavioral+states+by+serotonin+in+Caenorhabditis+elegans.">Control of alternative behavioral states by serotonin in Caenorhabditis elegans.</a> Neuron. 21 (1), 203-214 (1998).</li><li>Sawin, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Genetic and cellular analysis of modulated behaviors in Caenorhabditis elegans. , (1996).</li><li>Ramot, D., Johnson, B. E., Berry, T. L., Carnell, L., Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+parallel+worm+tracker:+A+platform+for+measuring+average+speed+and+drug-induced+paralysis+in+nematodes.">The parallel worm tracker: A platform for measuring average speed and drug-induced paralysis in nematodes.</a> PLoS One. 3 (5), e2208 (2008).</li><li>Swierczek, N. A., Giles, A. C., Rankin, C. H., Kerr, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-throughput+behavioral+analysis+in+C.+elegans.">High-throughput behavioral analysis in C. elegans.</a> Nat Methods. 8 (7), 592-598 (2011).</li></ol>

למחברים אין מה לגלות.

צעד קריטי בפרוטוקול הוא להבטיח כי צלחות assay יש רמה עקבית של יובש על פני ימים ניסיוניים שונים. רמות יובש שונות יגרמו לשיעורי דיפוזיה שונים של הפתרון לתוך אגר וכתוצאה מכך, שינויים בתוצאות ההתנהגותיות. לפיכך, צלחות assay תמיד צריך להיות טרי על אחר הצהריים לפני ניסויים. מספר תולעים נבדק לכל assay צריך גם להיות מוסדר עבור הקלות השוואה בין טיפולים. עבור התייחסות, תולעת wild-type מטילה 4-10 ביצים / h על התשואה הממוצע&gt; 360 תולעים לכל assay אם פרוטוקול סינכרון תולעת לעיל הוא אחריו 17 . אם זנים מסוימים מוטציה הם ביצים הנחת פגום, לבחור יותר תולעים מבוגר גרב לביצה להטיל להגיע למספר היעד של הצאצאים. צעד חשוב נוסף בפרוטוקול הוא לטפל בתולעים בעדינות במהלך תהליך הכביסה ותולעת. תולעים רגישות לגירויים מכניים, אשר מעוררים תגובות מתח כגון<html> היפוך מעכבי ביצים 18 . יתר על כן, יש להקפיד להגדיר את ההחזר על ההשקעה במדויק ולקבוע את הערך האופטימלי סף קבוע עבור תנאי תאורה ספציפיים לפני שתמשיך עם ניתוח וידאו. כמו כן, מומלץ לחזור על תהליך הכיול ותהליך הסף אם חלף פרק זמן ממושך מאז הפעלת הניסוי האחרון. מגבלה של שיטה זו היא כי היא אינה מתאימה assaying תולעים קטנות אוכלוסיות. עם זאת, אם הבקרות המתאימות כדי לקבוע את ההשפעה של נוכחות של מזון על התנהגות חושית מבוצעות, ולאחר מכן ניצול מזון כדי להגביל את המיקום הגלישה מרחבית תולעים כמו assay השמירה אפשרי גם עם ההתקנה הזו. בנוסף, שיטה זו אינה מיועדת ללימוד ניווט גירויים גירוי בשל הקרבה ואת כמויות קטנות של שליטה וטיפות פתרון ניסיוני בשימוש. E_content &quot;&gt; בעתיד, תוכנת תכנות המאפשרת רב תולעת מעקב יחיד תולעת תכונה תולעת יכול להיות משולב לתוך מערכת זו 19 , 20. הקלטה פרמטרים התנהגות עדינה של התנהגות תולעת בודדת כגון מהירויות היפוך משרעת של כיפוף הגוף יספק תמונה מפורטת יותר של התנהגות chemosensory של תולעת בודדת בהקשר של assay מבוססי אוכלוסיה.ה assay יכול גם להיות שונה ללמוד הרגל על ​​ידי חורים משעמם באמצעות ההחזר על ההשקעה באמצעות מחטים מזרק עם גודל מד המתאים ומילוי החורים עם אגר חדורים עם מתחם ניסיוני או חיץ בקרה.זה יבטיח ריכוז השטח עקבית יותר של המתחם על פני תקופה ארוכה יותר של זמן ההקלטה כפי שנדרש במהלך מחקרים הרגולציה.יישום פוטנציאלי נוסף של שיטה זו היא לערוך מחקרים התנהגות השוואתית על פני מינים שונים nematode. בנוסף, תא התנהגותיכול להיות שונה במספר דרכים ללמוד תגובות התנהגותיות לגירויים multimodal. עבור יישומים optogenetic, בעוצמה גבוהה LED מערכים ניתן לחבר ליד המצלמה הר כדי סלקטיבי להפעיל נוירונים של עניין במהלך assay. אלמנטים חימום, מערכות קירור, חיישני טמפרטורה ניתן גם להוסיף את ההתקנה כדי ללמוד את ההשפעות של טמפרטורה על התנהגויות חושיות. יתר על כן, הריח מערכות משלוח יכול להיות מותקן בתוך החדר לחקור אינטראקציות בין אודורנסורי ו chemosensory modalities.

חיות החיות חייבות לשלב תשומות ממספר שיטות חישה ולבחור אסטרטגיות התנהגותיות מתאימות כדי לנווט בהצלחה את סביבתן. ההבנה כיצד מקבלים תשומות סנסוריות חיצוניות ומועברות לתוך מידע עצבי להנחיית בחירה בפעולה היא מטרה מרכזית בתחום הנוירוביולוגיה. נמטודת הגדילה הגנטית, C. elegans , היא אורגניזם מודל אטרקטיבי שבו ניתן לחקור את המנגנונים העצביים שבבסיס הביולוגיה החושית והאינטגרציה המולטימודלית. למרות C. elegans יש רק 302 נוירונים, הוא יכול לזהות להבחין בין מגוון רחב של גירויים סביבתיים, כולל תרכובות מסיסות, ריחני נדיפים, טמפרטורת הסביבה 1 , 2 , 3 , 4 , 5 , 6 , 7 . הNematode C. elegans מסתמך בכבדות על מנגנון chemosensory שלה כדי למקם מקורות מזון להתריע בפני איומים פוטנציאליים. לפיכך, מבחני התנהגות שנועדו לסנן את התגובות של wild-type ומוטנטים C. elegans כדי גירויים כימיים לשחק תפקיד מכריע לנתח את המנגנונים הגנטיים, הסלולר, ואת עצבי ביסוד C. elegans &#39;יכולות חושיות יוצאת דופן. כדי לענות על התגובה לתרכובות מסיסות, שלושה סוגים של מבחני תוארו - מבחן ירידה, assay chemotaxis, ואת assay השמירה. במבחן הירידה, טיפה קטנה של המתחם ממוקמת בזנב של תולעת נעה והחלטת התולעת להפוך או להתקדם כאשר הנוזל מגיע למנגנון החושי הקדמי הוא הבקיע 4 . מבחן הירידה דורש הכנה ניסיונית קטנה והוא שימושי כאשר גודל המדגם של תולעים הוא קטן, כמו במקרה של תולעים המופעלות באמצעות לייזר. עם זאת, כמו רק תולעת אחתיכול להיות assayed בכל פעם הנסיין חייב להיות נוכח לאורך כל תקופת assay, מבחן ירידה יכול להיות זמן רב. מבחן הירידה הוא גם פגיע וריאציות ירידה משלוח בין כל תולעת בתוך מדגם, אשר עשוי להשפיע על התוצאות הכוללות של assay. מגבלה נוספת של מבחן הירידה היא כי ניתן להשתמש בו רק כדי assay התגובה של תולעת על תרכובות מרתיעה כפי שאי אפשר להפלות בין אפקט אטרקטיבי או נייטרלי של המתחם מהתנועה קדימה של התולעת. Assay chemotaxis עבור תרכובות מסיסות בדרך כלל מחייב חלוקת צלחת אגר לארבעה הרביעים, עם פתרון ניסיוני מעורב לתוך אגר של שני הרביעים מנוגדים פתרון שליטה מעורבב לתוך שני הרביעים השני 8 , 9 . בתחילת assay, טיפה של תולעים המכיל חיץ ממוקם במרכז הצלחת ואת מספר התולעים ב<html> כל רבע הוא הבקיע בנקודות זמן שונות. Assay chemotaxis מספק כוח סטטיסטי גדול יותר בהשוואה לבדיקת ירידה כמו מספר גדול של תולעים נבדקים assay כל. עם זאת, מגבלה אחת של שיטה זו היא כי הכנת לוחות assay chemotaxis דורש כמויות גדולות של המתחם ניסיוני. זה יקשה על ביצוע מסכי התנהגות בקנה מידה גדול, אם תהליך טיהור מסובך עם תשואות מוגבלות נדרש כדי להשיג את התרכובת של עניין, כמו במקרה של מולקולות איתות ascaroside 10 . בנוסף, ספירה ידנית של תולעים לאורך assay הוא רגישים שגיאות הפרעות של לוחות במהלך תהליך הספירה עשוי להשפיע על התוצאות. שלא כמו שתי השיטות הנ&quot;ל, assay שמירה משתמשת חזון המכונה, אשר ממזער שגיאה במהלך תהליך הבקיע ומקטין את ההתערבות של הנסיין במהלך assay<html> &gt; 11. ניתוח ממוחשב של הקלטות וידאו של התנהגות תולעת יכול גם לחשוף דינמיקה התנהגותית מתוחכמת כי יחמיץ כאשר הבקיע מבוצעת רק בכמה נקודות זמן בדידה. ב assay שימור, שתי נקודות כתמים מתווספים בצדדים הנגדיים של תיקון מזון קטן חיידקי עגול ואחריו המיקום של מספר קטן של תולעים באמצע תיקון המזון. התנהגות של תולעים אז הוא נרשם וידאו, ניתח, וערך אינדקס העדפה מחושב בהתבסס על המספר הכולל של פיקסלים תולעת בכל אזור פתרון. למרות נוכחותו של תיקון מזון אטרקטיבי מאפשר אוכלוסיות קטנות של תולעים לשמש assay כל, מזון בעבר הוכח רגיש התנהגויות הימנעות כדי repellants מסיסים 12 . יתר על כן, תולעים התערוכה תגובה photophobic אור אורך גל קצר ושימוש במקורות אור מיקרוסקופ כי לפלוט אור לבן בהתקנה ההקלטה התנהגות עשוי להשפיע על התנהגותS = &quot;xref&quot;&gt; 13. מטרת השיטה דנו במאמר זה היא להקליט ולנתח C. העדפת elegans עבור תרכובות מסיסות באמצעות assay מבוסס האוכלוסייה. לשם כך, השיטה הנוכחית משלבת ומשפרת על היבטים מכל שלוש השיטות שנדונו קודם לכן. זה מאפשר אוכלוסיות גדולות של תולעים להיבדק דורש רק כמויות קטנות של הפתרון הניסיוני לשמש בכל assay. בנוסף, assay מתנהל בתוך חדר התנהגות סגורה בנוי עם תאורה אחורית אינפרא אדום LED כדי למזער את ההשפעות של אור אורך גל קצר על ההתנהגות. כל חדר יכול להיות גם outfitted עם מספר רב של מצלמות מיקרוסקופ, אשר מגדיל את התפוקה הניסויית מבלי להתפשר שטח הספסל. לבסוף, תוכנת ניתוח וידאו פלט את ערך מדד ההעדפות עבור כל וידאו, כמו גם תלונת התפיסה הנלווית העלילה לדמיין את התנהגות הדינמיקה האוכלוסייה לאורך זמן. ההגדרה קאמרית ופרוטוקול ssay ניתן לשנות עוד ללמוד תגובות התנהגות multimodal כגון ההשפעה של odorants או טמפרטורה על התנהגויות chemosensory. מאמר זה מתאר את הבנייה של החדר התנהגות פרוטוקול assay. זה גם מדגים את התועלת של שיטה זו assaying התגובה של תולעים wild-type ו chemosensory מוטנטים פגומים לדוחה מסיסים ידוע, יונים נחושת 4 . לבסוף, תהליך ניתוח וידאו באמצעות התוכנה שסופקה מפורטת.

<table><tbody><tr><td>Aluminum T-slotted framing extrusions</td><td>McMaster-Carr</td><td>47065T101</td><td>Single profile, 1&quot; size, solid</td></tr><tr><td>Brackets</td><td>McMaster-Carr</td><td>47065T236</td><td>1&quot; long for 1&quot; high single profile extrusions</td></tr><tr><td>Compact end-feed fasteners</td><td>McMaster-Carr</td><td>47065T139</td><td>1&quot; (single), pack of 4</td></tr><tr><td>Twist-in solid panel holders</td><td>McMaster-Carr</td><td>47065T251</td><td>For 1&quot; high extrusion</td></tr><tr><td>Plastic end caps</td><td>McMaster-Carr</td><td>47065T91</td><td>For 1&quot; high extrusion</td></tr><tr><td>Optically clear cast acrylic sheet</td><td>McMaster-Carr</td><td>8560K211</td><td>3/16&quot; thick, 12&quot; x 12&quot;</td></tr><tr><td>Vinyl-coated polyester fabric</td><td>McMaster-Carr</td><td>88505K57</td><td>0.027&quot; thick, 61&quot; width, black</td></tr><tr><td>Brass grommets</td><td>McMaster-Carr</td><td>9604K22</td><td>Trade size 0, 0.545&quot; outer diameter</td></tr><tr><td>Steel washers</td><td>McMaster-Carr</td><td>90107A029</td><td>1/4&quot; screw size</td></tr><tr><td>Rounded head screws</td><td>McMaster-Carr</td><td>90272A546</td><td>1/4&quot; - 20 thread size, 1 - 1/2&quot; long</td></tr><tr><td>Standard operating backlight</td><td>Smart Vision Lights</td><td>See local vendor</td><td>8&quot; x 8&quot;, infrared 850 nm</td></tr><tr><td>IVP-C1 Variable Control Pot</td><td>Smart Vision Lights</td><td>See local vendor</td><td></td></tr><tr><td>T1 Power Supply</td><td>Smart Vision Lights</td><td>See local vendor</td><td></td></tr><tr><td>Dino lite Pro AM4113T</td><td>Dino-Lite Digital Microscope</td><td>See local vendor</td><td></td></tr><tr><td>MS09B microscope stand</td><td>Dino-Lite Digital Microscope</td><td>See local vendor</td><td></td></tr></tbody></table>

automated analysis of a nematode population-based chemosensory preference assay

Nematode, Caenorhabditis elegans &#39;מערכת העצבים קומפקטית של רק 302 נוירונים מבסס רפרטואר מגוון של התנהגויות. כדי להקל על דיסקציה של מעגלים עצביים בבסיס התנהגויות אלה, פיתוח מבחני התנהגות חזקים לשעתקו נחוץ. מחקרים קודמים של C. elegans השתמשו בווריאציות של &quot;בדיקת טיפה&quot;, &quot;assay chemotaxis&quot; ו- assay לשמירה על מנת לחקור את התגובה של C. elegans לתרכובות מסיסות. השיטה המתוארת במאמר זה שואפת לשלב את החוזקות המשלימות של שלוש מבחני הנ&quot;ל. בקצרה, מעגל קטן באמצע כל צלחת assay מחולק לארבעה הרביעים עם שליטה פתרונות ניסיוניים להציב לסירוגין. לאחר התוספת של תולעים, צלחות assay נטענים לתוך חדר התנהגות שבו מצלמות מיקרוסקופ להקליט את המפגשים של תולעים עם האזורים המטופלים. ניתוח וידאו אוטומטי מבוצעת לאחר מכןNd נוצר ערך אינדקס מועדף (PI) עבור כל סרטון. רכישת וידאו ותכונות ניתוח אוטומטי של שיטה זו ממזער את מעורבותו של הנסיין ואת כל השגיאות הקשורות. יתר על כן, כמויות זעירות של המתחם ניסיוני משמשים assay ואת ההתקנה של החדר מרובה מצלמה ההתקנה מגדילה את התפוקה הניסויית. שיטה זו שימושית במיוחד לניהול מסכים התנהגותיים של מוטציות גנטיות ותרכובות כימיות חדשות. עם זאת, שיטה זו אינה מתאימה ללימוד ניווט גירוי שיפוע בשל הקרבה של אזורי פתרון ניסיוני. זה גם לא אמור לשמש כאשר רק אוכלוסייה קטנה של תולעים זמין. בעוד מתאים assaying תגובות רק תרכובות מסיסות בצורתו הנוכחית, שיטה זו יכולה להיות שונה בקלות כדי להתאים אינטראקציה חושי multimodal ומחקרים optogenetic. שיטה זו יכולה גם להיות מותאם כדי assay תגובות chemosensory של מינים אחרים nematode. </P&gt;

איור 3 א מציג את ערכי מדד ההעדפה המתקבלים עבור גנוטיפ שונים זוגות הטיפול. ערך אינדקס מועדף של 1 מציין נקודת משיכה חזקה לפתרון המוצב בחזר ה- ROI הניסיוני, בעוד שערך מדד ההעדפה של -1 מציין דחייה חזקה. מדד העדפה של 0.02 התקבל כאשר הפתרון M13 חיץ הוצב הן את השליטה ואת ההחזר על ההשקעה ניסיוני, הוכחת כי אין הטיה מרחבית כלפי החזר ההשקעה או. N2 תולעים נמנע מאוד יונים נחושת וכתוצאה מכך מדד ההעדפה של -0.67, אשר מאמת הממצאים הקודמים כי יונים נחושת הם רפלנט חזק ( סרט משלים 1 ) 4 . מוטציות אוסמו-3 , אשר חסר מבנה תקין של קטעים דיסטלי של אברי החוש, הראו ירידה משמעותית של יונים נחושת (PI = -0.19) 15 . Ocr-2 מוטציות, אשר דה<html> (FI = 0.19) ( סרט משלים 2 ) 16 . איור 3 ב מציג נציג התופסן תולעים מגרשים, אשר מצביעים על צפיפות של תולעים בשליטה לעומת החזר ROIs ניסיוני לאורך זמן בכל וידאו. ככל שהצבע כהה יותר, כך יגדל מספר הפיקסלים בתולעת החזר ה- ROI. חלקת התפוסה עבור תולעים N2 שטופלו עם חיץ M13 מראים כי מספר התולעים בשני החזרים להשקעה נשאר דומה לאורך כל assay. עם זאת, החלקה התפוסה עבור תולעים N2 מטופלים עם יונים נחושת עולה כי התולעים חזק בעקביות למנוע את ההחזר על ההשקעה ניסיוני לאורך assay. Gimg &quot;src =&quot; / files / ftp_upload / 55963 / 55963fig1.jpg &quot;/&gt; איור 1: תמונה וייצוג סכמטי של עיצוב התנהגות קאמרית. ( א ) מבט הקדמי של הגדרת החדר קאמרית (משמאל) וייצוג סכמטי המקביל של מסגרת קאמרית (מימין). סדינים פוליאסטר אטומים להקיף את החדר על כל הפרצופים למעט בפנים התחתונה, המאפשרת אור דרך הפנס תאורה אחורית אינפרא אדום. המספרים 1, 2 ו -3 תואמים את שכבות ההבלטה ב (B). ( ב ) סכמטי של תצוגה העליון של שכבות שחול המהווה את מסגרת החדר התנהגות. זה כולל את השכבה העליונה (1), באמצע המצלמה הר הרכבה שכבת (2), ואת השכבה שלב התחתון (3). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55963/55963fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55963/55963fig2.jpg"/&gt; איור 2: תבניות מיקום-מיקום ויישור יישור. ( א ) לתבנית המיקום של פתרון יש ארבעה רבעים וסמני יישור מספרים. פתרון הבקרה ממוקם בצד שמאל העליון התחתון ימין quadrants ואילו הפתרון הניסיוני ממוקם העליון הימני ואת התחתון משמאל quadrants. ( ב ) תבנית יישור צלחת יש רק מספר סמנים יישור כדי למזער חסימה של התולעים בתחום התצוגה במהלך הקלטת וידאו וניתוח. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55963/55963fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55963/55963fig3.jpg" /> איור 3: נתונים לדוגמה שנאספו באמצעות Assay זה. ( A ) ערכי ההעדפה (PI) ערכים עבור wild-type N2 ו מוטציה C. elegans </e<html> M&gt; בתגובה למאגר M13 ו 10 מ&quot;מ CuCl 2 . תולעי N2 לא הראו כל העדפה בין בקרה לבין החזר ROI ניסיוני, כאשר פתרון בקרת M13 הושם בשני החזרים להשקעה, אך נמנע מאוד מהחזר ה- ROI הניסויי כאשר יונים נחושת הונחו בו (PI = 0.02 ו- -0.67, בהתאמה). ( מוטציות ) ו -3 ocr -2 ( מוטציות ak47) הראו ירידה משמעותית בהימנעות מיוני נחושת בהשוואה ל- N2 (PI = -0.1 ו -0.2, בהתאמה). N = 6 מבחני כל זיווג טיפול גנוטיפ, 360 תולעים לכל assay, ברים שגיאה מצביעים ± 1 SEM, *** p &lt;0.001, חד כיווני ANOVA ואחריו פוסט הוק הוקרה משמעותי הבדל משמעותי (HSD) הבדיקה. ( ב ) נציג תולעת התפקידים מגרשים עבור N2 תולעים עם חיץ M13 בשני ROIs (למעלה) ו N2 תולעים עם חיץ M13 ב ROI ההשקעה ויונים נחושת ההחזר על ההשקעה ניסיוני (התחתון). סולם הצבעים שמתחת לכל חלקת תפוסה מייצג את מספר פיקסלים התולעים.Pload / 55963 / 55963fig3large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו. סרט משלים 1: תגובה התנהגותית של תולעים N2 ל 10 מ&quot;מ כלוריד נחושת. תולעים נמשכים לרבעי הבקרה עם חיץ M13 (שמאל עליון וימני תחתון), אך נמנעים מאוד מהרבעים המכילים יונים נחושת מומסים במאגר M13 (ימין עליון ותחתון משמאל). וידאו הוקלט ב 1 מסגרת לשנייה ו sped up 15x. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55963/Supplementary_Video_1.mp4">לחץ כאן להורדת הקובץ.</a> סרט משלים 2: תגובה התנהגותית של ocr-2 (ak47) תולעים 10 מ&quot;מ כלוריד נחושת. תולעים לשוטט במידה שווה בערך בשני הרביעים שליטה עם חיץ M13 (השמאלי העליון והתחתון מימין) ואת הרבעS המכיל יונים נחושת מומס במאגר M13 (השמאלית העליונה והתחתית השמאלית) לאורך משך ההקלטה. מוטציות התערוכה עדיפות קלה עבור הרביעים המכילים יונים נחושת בתחילת ההקלטה. וידאו הוקלט ב 1 מסגרת לשנייה ו sped up 15x. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55963/Supplementary_video_2.mp4">לחץ כאן להורדת הקובץ.</a> קובץ משלים: פתרון-מיקום ויישור תבניות יישור. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55963/JoVE_template.pptx">לחץ כאן להורדת הקובץ.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Automated Analysis of a Nematode Population-based Chemosensory Preference Assay at JoVE.com

Automated Analysis of a Nematode Population-based Chemosensory Preference Assay

אנו מציגים התנהגות הקלטה הקלטה ופרוטוקול המאפשר ניתוח אוטומטי של נמטודות, Caenorhabditis elegans &#39;העדפת תרכובות מסיסות באסאי מבוסס האוכלוסייה. מאמר זה מתאר את הבנייה של תא התנהגות, פרוטוקול assay התנהגותי, וניתוח וידאו השימוש בתוכנה.

ניתוח אוטומטי של אוכלוסיה מבוססת נמטודות מבוססי Assay העדפה

The nematode, Caenorhabditis elegans' compact nervous system of only 302 neurons underlies a diverse repertoire of behaviors. To facilitate the dissection ...

automated-analysis-nematode-population-based-chemosensory-preference

Research

JoVE Journal

Behavior

7.4K Views.  California Institute of Technology.  אנו מציגים התנהגות הקלטה הקלטה ופרוטוקול המאפשר ניתוח אוטומטי של נמטודות, Caenorhabditis elegans 'העדפת תרכובות מסיסות באסאי מבוסס האוכלוסייה. מאמר זה מתאר את הבנייה של תא התנהגות, פרוטוקול assay התנהגותי, וניתוח וידאו השימוש בתוכנה. 

Video: Automated Analysis of a Nematode Population-based Chemosensory Preference Assay

Fat Preference: A Novel Model of Eating Behavior in Rats

Obesity is a growing problem in the United States of America, with more than a third of the population classified as obese. One factor contributing to this multifactorial disorder is the consumption of a high fat diet, a behavior that has been shown to increase both caloric intake and body fat content. However, the elements regulating preference for high fat food over other foods remain understudied.
To overcome this deficit, a model to quickly and easily test changes in the preference for dietary fat was developed. The Fat Preference model presents rats with a series of choices between foods with differing fat content. Like humans, rats have a natural bias toward consuming high fat food, making the rat model ideal for translational studies. Changes in preference can be ascribed to the effect of either genetic differences or pharmacological interventions. This model allows for the exploration of determinates of fat preference and screening pharmacotherapeutic agents that influence acquisition of obesity.

Dietary fat content influences both energy intake and body fat composition in mammals. By examining rats&#8217; preference for high fat food in a series of choice experiments, it is possible to test genetic differences and pharmacological interventions on their preference for high fat food.

העדפות שומן: דגם רומן של התנהגות אכילה בחולדות

Obesity is a growing problem in the United States of America, with more than a third of the population classified as obese. One factor contributing to ...

Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

This protocol provides multiple methods for the analysis and quantification of predatory feeding behaviors in nematodes. Many nematode species including Pristionchus pacificus display complex behaviors, the most striking of which is the predation of other nematode larvae. However, as these behaviors are absent in the model organism Caenorhabditis elegans, they have thus far only recently been described in detail along with the development of reliable behavioral assays 1. These predatory behaviors are dependent upon phenotypically plastic but fixed mouth morphs making the correct identification and categorization of these animals essential. In P. pacificus there are two mouth types, the stenostomatous and eurystomatous morphs 2, with only the wide mouthed eurystomatous containing an extra tooth and being capable of killing other nematode larvae. Through the isolation of an abundance of size matched prey larvae and subsequent exposure to predatory nematodes, assays including both "corpse assays" and "bite assays" on correctly identified mouth morph nematodes are possible. These assays provide a means to rapidly quantify predation success rates and provide a detailed behavioral analysis of individual nematodes engaged in predatory feeding activities. In addition, with the use of a high-speed camera, visualization of changes in pharyngeal activity including tooth and pumping dynamics are also possible.

Assaying Predatory Feeding Behaviors in Pristionchus and Other Nematodes

Behavioral assays provide powerful tools for understanding neuronal function. Here we present several protocols for quantifying predatory feeding behavior found in the model nematode Pristionchus pacificus and its relatives. Additionally, we provide methods for analyzing predatory feeding adaptations including mouth structures and teeth.

Assaying הרגלי התזונה הם טורפים ב<em&gt; Pristionchus</em&gt; נמטודות אחרים

This protocol provides multiple methods for the analysis and quantification of predatory feeding behaviors in nematodes. Many nematode species including ...

Environment

C. elegans Positive Butanone Learning, Short-term, and Long-term Associative Memory Assays

The memory of experiences and learned information is critical for organisms to make choices that aid their survival. C. elegans navigates its environment through neuron-specific detection of food and chemical odors1, 2, and can associate nutritive states with chemical odors3, temperature4, and the pathogenicity of a food source5.
Here, we describe assays of C. elegans associative learning and short- and long-term associative memory. We modified an aversive olfactory learning paradigm6 to instead produce a positive response; the assay involves starving ~400 worms, then feeding the worms in the presence of the AWC neuron-sensed volatile chemoattractant butanone at a concentration that elicits a low chemotactic index (similar to Toroyama et al.7). A standard population chemotaxis assay1 tests the worms' attraction to the odorant immediately or minutes to hours after conditioning.
After conditioning, wild-type animals' chemotaxis to butanone increases ~0.6 Chemotaxis Index units, its "Learning Index". Associative learning is dependent on the presence of both food and butanone during training. Pairing food and butanone for a single conditioning period ("massed training") produces short-term associative memory that lasts ~2 hours. Multiple conditioning periods with rest periods between ("spaced training") yields long-term associative memory (&lt;40 hours), and is dependent on the cAMP Response Element Binding protein (CREB),6 a transcription factor required for long-term memory across species.8
Our protocol also includes image analysis methods for quick and accurate determination of chemotaxis indices. High-contrast images of animals on chemotaxis assay plates are captured and analyzed by worm counting software in MatLab. The software corrects for uneven background using a morphological tophat transformation.9 Otsu's method is then used to determine a threshold to separate worms from the background.10 Very small particles are removed automatically and larger non-worm regions (plate edges or agar punches) are removed by manual selection. The software then estimates the size of single worm by ignoring regions that are above a specified maximum size and taking the median size of the remaining regions. The number of worms is then estimated by dividing the total area identified as occupied by worms by the estimated size of a single worm.
We have found that learning and short- and long-term memory can be distinguished, and that these processes share similar key molecules with higher organisms.6,8 Our assays can quickly test novel candidate genes or molecules that affect learning and short- or long-term memory in C. elegans that are relevant across species.

C. elegans Positive Butanone Learning, Short-term, and Long-term Associative Memory Assays

Here we describe methods to test C. elegans associative learning and short- and long-term associative memory. These population assays employ the worms abilities to chemotax toward volatile odorants, and form positive associations upon pairing food with the chemoattractant butanone. Increasing the number of conditioning periods induces long-term memory.

סי אלגנס למידה חיובית Butanone, לטווח קצר, לטווח ארוך מבחני זיכרון אסוציאטיבי

The memory of experiences and learned information is critical for organisms to make choices that aid their survival. C. elegans navigates its environment ...

Neuroscience

A High-throughput Assay for the Prediction of Chemical Toxicity by Automated Phenotypic Profiling of Caenorhabditis elegans

Applying toxicity testing of chemicals in higher order organisms, such as mice or rats, is time-consuming and expensive, due to their long lifespan and maintenance issues. On the contrary, the nematode Caenorhabditis elegans (C. elegans) has advantages to make it an ideal choice for toxicity testing: a short lifespan, easy cultivation, and efficient reproduction. Here, we describe a protocol for the automatic phenotypic profiling of C. elegans in a 384-well plate. The nematode worms are cultured in a 384-well plate with liquid medium and chemical treatment, and videos are taken of each well to quantify the chemical influence on 33 worm features. Experimental results demonstrate that the quantified phenotype features can classify and predict the acute toxicity for different chemical compounds and establish a priority list for further traditional chemical toxicity assessment tests in a rodent model.

A High-throughput Assay for the Prediction of Chemical Toxicity by Automated Phenotypic Profiling of Caenorhabditis elegans

A quantitative method has been developed to identify and predict the acute toxicity of chemicals by automatically analyzing the phenotypic profiling of Caenorhabditis elegans. This protocol describes how to treat worms with chemicals in a 384-well plate, capture videos, and quantify toxicological related phenotypes.

וזמינותו תפוקה גבוהה עבור חיזוי של רעילות כימית על ידי אוטומטית פרופילים פנוטיפי של Caenorhabditis elegans

Applying toxicity testing of chemicals in higher order organisms, such as mice or rats, is time-consuming and expensive, due to their long lifespan and ...

<meta charset="utf8"></head><body>מיצוי וכימות של תגובות פרומון מין נדיפות ב- C. elegans

Volatile Sex Pheromone Extraction and Chemoattraction Assay in Caenorhabditis elegans

Chemical communication is vital in organismal health, reproduction, and overall well-being. Understanding the molecular pathways, neural processes, and computations governing these signals remains an active area of research. The nematode Caenorhabditis elegans provides a powerful model for studying these processes as it produces a volatile sex pheromone. This pheromone is synthesized by virgin females or sperm-depleted hermaphrodites and serves as an attractant for males.
This protocol describes a detailed method for isolating the volatile sex pheromone from several C. elegans strains (WT strain N2, daf-22, and fog-2) and C. remanei. We also provide a protocol for quantifying the male chemotaxis response to the volatile sex pheromone. Our analysis utilizes measurements such as chemotaxis index (C.I.), arrival time (A.T.), and a trajectory plot to compare male responses under various conditions accurately. This method allows for robust comparisons between males of different genetic backgrounds or developmental stages. Furthermore, the experimental setup outlined here is adaptable to investigating other chemoattraction chemicals.

<meta charset="utf8"></head><body>מחבר זרקור: בחינת השפעת פרומון המין הנדיף על התנהגות גברי C. elegans

This protocol establishes methods for extracting and quantifying responses to the volatile sex pheromone in C. elegans, providing tools to study chemical communication and navigation trajectory.

מיצוי פרומון מין נדיף ובדיקת כימותרפיה ב- Caenorhabditis elegans

Chemical communication is vital in organismal health, reproduction, and overall well-being. Understanding the molecular pathways, neural processes, and ...

A Caenorhabditis elegans Nutritional-status Based Copper Aversion Assay

To ensure survival, organisms must be capable of avoiding unfavorable habitats while ensuring a consistent food source. Caenorhabditis elegans alter their locomotory patterns upon detection of diverse environmental stimuli and can modulate their suite of behavioral responses in response to starvation conditions. Nematodes typically exhibit a decreased aversive response when removed from a food source for over 30 min. Observation of behavioral changes in response to a changing nutritional status can provide insight into the mechanisms that regulate the transition from a well-fed to starved state.
We have developed an assay that measures a nematode&#39;s ability to cross an aversive barrier (i.e. copper) then reach a food source over a prolonged period of time. This protocol builds upon previous work by integrating multiple variables in a manner that allows for continued data collection as the organisms shift towards an increasingly starved condition. Moreover, this assay permits an increased sample size so that larger populations of nematodes can be simultaneously evaluated.
Organisms defective for the ability to detect or respond to copper immediately cross the chemical barrier, while wild type nematodes are initially repelled. As wild type worms are increasingly starved, they begin to cross the barrier and reach the food source. We designed this assay to evaluate a mutant that is incapable of responding to diverse environmental cues, including food sensation or detection of aversive chemicals. When evaluated via this protocol, the defective organisms immediately crossed the barrier, but were also incapable of detecting a food source. Hence, these mutants repeatedly cross the chemical barrier despite temporarily reaching a food source. This assay can straightforwardly test populations of worms to evaluate potential pathway defects related to aversion and starvation.

A Caenorhabditis elegans Nutritional-status Based Copper Aversion Assay

Here, we present a Caenorhabditis elegans-specific assay designed to evaluate changes in copper aversion behavior and the ability to locate a common food source, as the organism progresses from a well-fed to starved nutritional state.

א<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; מצב תזונתיים מבוססי Assay Assersion

To ensure survival, organisms must be capable of avoiding unfavorable habitats while ensuring a consistent food source. Caenorhabditis elegans alter their ...

C. elegans Chemotaxis Assay

Many organisms use chemotaxis to seek out food sources, avoid noxious substances, and find mates. Caenorhabditis elegans has impressive chemotaxis behavior.
 The premise behind testing the response of the worms to an odorant is to place them in an area and observe the movement evoked in response to an odorant. Even with the many available assays, optimizing worm starting location relative to both the control and test areas, while minimizing the interaction of worms with each other, while maintaining a significant sample size remains a work in progress 1-10. The method described here aims to address these issues by modifying the assay developed by Bargmann et al.1. A Petri dish is divided into four quadrants, two opposite quadrants marked "Test" and two are designated "Control". Anesthetic is placed in all test and control sites. The worms are placed in the center of the plate with a circle marked around the origin to ensure that non-motile worms will be ignored. Utilizing a four-quadrant system rather than one 2 or two 1 eliminates bias in the movement of the worms, as they are equidistant from test and control samples, regardless of which side of the origin they began. This circumvents the problem of worms being forced to travel through a cluster of other worms to respond to an odorant, which can delay worms or force them to take a more circuitous route, yielding an incorrect interpretation of their intended path. This method also shows practical advantages by having a larger sample size and allowing the researcher to run the assay unattended and score the worms once the allotted time has expired.

C. elegans Chemotaxis Assay

A method of quantitatively evaluating the chemotactic response of Caenorhabditis elegans is described. A chemotactic index (CI) was employed as a way to precisely evaluate the response of worms to certain targets, and serve as a platform of comparison between strains and compounds of interest.

Assay Chemotaxis סי אלגנס

Many organisms use chemotaxis to seek out food sources, avoid noxious substances, and find mates.  Caenorhabditis elegans has impressive chemotaxis ...

Biology

Caenorhabditis elegans as a Model System for Discovering Bioactive Compounds Against Polyglutamine-Mediated Neurotoxicity

Age-related misfolding and aggregation of pathogenic proteins are responsible for several neurodegenerative diseases. For example, Huntington&#39;s disease (HD) is principally driven by a CAG nucleotide repeat that encodes an expanded glutamine tract in huntingtin protein. Thus, the inhibition of polyglutamine (polyQ) aggregation and, in particular, aggregation-associated neurotoxicity is a useful strategy for the prevention of HD and other polyQ-associated conditions. This paper introduces generalized experimental protocols to assess the neuroprotective capacity of test compounds against HD using established polyQ transgenic Caenorhabditis elegans models. The AM141 strain is chosen for the polyQ aggregation assay as an age-associated phenotype of discrete fluorescent aggregates can be easily observed in its body wall at the adult stage due to muscle-specific expression of polyQ::YFP fusion proteins. In contrast, the HA759 model with strong expression of polyQ-expanded tracts in ASH neurons is used to examine neuronal death and chemoavoidance behavior. To comprehensively evaluate the neuroprotective capacity of target compounds, the above test results are ultimately presented as a radar chart with profiling of multiple phenotypes in a manner of direct comparison and direct viewing.

Caenorhabditis elegans as a Model System for Discovering Bioactive Compounds Against Polyglutamine-Mediated Neurotoxicity

Here, we present a protocol to assess the neuroprotective activities of test compounds in Caenorhabditis elegans, including polyglutamine aggregation, neuronal death, and chemoavoidance behavior, as well as an exemplary integration of multiple phenotypes.

Caenorhabditis elegans כמערכת מודל לגילוי תרכובות ביו-אקטיביות נגד רעילות עצבית בתיווך פוליגלוטמין

Age-related misfolding and aggregation of pathogenic proteins are responsible for several neurodegenerative diseases. For example, Huntington&#39;s ...

ניתוח אוטומטי של אוכלוסיה מבוססת נמטודות מבוססי Assay העדפה

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

העדפות שומן: דגם רומן של התנהגות אכילה בחולדות

Assaying הרגלי התזונה הם טורפים ב

סי אלגנס למידה חיובית Butanone, לטווח קצר, לטווח ארוך מבחני זיכרון אסוציאטיבי

וזמינותו תפוקה גבוהה עבור חיזוי של רעילות כימית על ידי אוטומטית פרופילים פנוטיפי של Caenorhabditis elegans

מיצוי פרומון מין נדיף ובדיקת כימותרפיה ב- Caenorhabditis elegans

מיצוי פרומון מין נדיף ובדיקת כימותרפיה ב- Caenorhabditis elegans

מיצוי פרומון מין נדיף ובדיקת כימותרפיה ב- Caenorhabditis elegans

א

Assay Chemotaxis סי אלגנס

Caenorhabditis elegans כמערכת מודל לגילוי תרכובות ביו-אקטיביות נגד רעילות עצבית בתיווך פוליגלוטמין