Isolamento del cervello e cellule mononucleari del midollo spinale Uso dei gradienti Percoll

Riepilogo

L'articolo attuale descrive un protocollo rapido per isolare in modo efficace le cellule mononucleate da tessuti cerebrali e del midollo spinale che può essere efficacemente utilizzato per le analisi di citometria a flusso.

Abstract

Isolamento di cellule immunitarie che si infiltrano nel sistema nervoso centrale (SNC) durante l'infezione, traumi, malattie autoimmuni o neurodegenerazione, è spesso necessaria per definire la loro fenotipo e funzioni effettrici. Approcci istochimiche sono strumentali per determinare la posizione delle celle di infiltrarsi e di analizzare il sistema nervoso centrale associata patologia. Tuttavia, in situ e tecniche di colorazione istochimica immunofluorescenza sono limitati dal numero di anticorpi che possono essere usati in una sola volta a caratterizzare sottotipi di cellule immunitarie in un particolare tessuto. Pertanto, gli approcci istologici in collaborazione con immuno-fenotipo mediante citometria di flusso sono fondamentali per caratterizzare completamente la composizione del locale infiltrazione sistema nervoso centrale. Questo protocollo si basa sulla separazione del sistema nervoso centrale sospensioni cellulari più discontinue gradienti di Percoll. L'articolo attuale descrive un protocollo rapido per isolare in modo efficace le cellule mononucleate da tessuti cerebrali e del midollo spinale che può essere efficacemente utilizzato per l'identificazione delle varie popolazioni di cellule immunitarie in un singolo campione mediante citometria di flusso.

Protocollo

Preparazione dei reagenti

Preparare magazzino isotonica Percoll (SIP), 4 ml al cervello, mescolando 9 parti di Percoll con una parte di HBSS 10X senza Ca + + e Mg + +.

Preparare SIP al 70% in 1X HBSS senza Ca + + e Mg + +, 2 ml al cervello dispensato in un tubo da 15 ml in polipropilene.

Nota: Si raccomanda di Percoll dovrebbe essere usato a temperatura ambiente, se usato a freddo, le cellule tendono a raggrupparsi e la separazione delle cellule è meno efficiente.

Tessuto di raccolta e omogeneizzazione

Anestetizzare topi e profumato attraverso il ventricolo sinistro con HBSS 1X ghiacciata. Sezionare il cervello e il midollo spinale e mantenere in RPMI senza rosso fenolo fino a quando tutti i topi vengono sacrificati.

Tessuti posto in 7 o 15 ml dounce omogeneizzatore contenente 3 ml di RPMI, gentilmente fare una sospensione cellulare con una linea morbida pestello (Una dimensione) seguito da un Tigh-montaggio pestello (dimensione B) per dissociare ulteriormente i tessuti. Completa il volume della sospensione cellulare a 7 ml con RPMI.

Gradiente impostato

Aggiungere 3 ml di SIP alla sospensione cellulare per fare un SIP finale del 30%

Lentamente lo strato di sospensione cellulare 10 ml sulla parte superiore della SIP 70%. Questa è la fase più critica della procedura, utilizzare una pipetta-aiuto al modo di gravità evitando la miscelazione del 70% e il 30% delle soluzioni. Una linea molto chiara piatto dovrebbe essere visibile al 70% -30% di giunzione.

Centrifugare 30 min a 500G 18 ° C. Assicurarsi centrifuga si ferma con freno minimo o nessun modo che l'interfase non è disturbato.

Utilizzando una pipetta di trasferimento, rimuovere delicatamente lo strato di detriti dalla parte superiore del tubo e raccogliere 2,0-3,0 ml di 70% -30% interfase in una provetta pulita conica contenente 8 ml di 1X HBSS. Assicurarsi che il Percoll contenente l'interfase viene diluita a circa tre volte, mescolare un paio di volte per inversione e centrifugre 7 min a 500G a 18 ° C.

Risospendere il pellet in 1 ml di buffer di colorazione della cellula e trasferirlo in una provetta da 1,5 ml e lavare ancora una volta utilizzando un micro-centrifuga a 10.000 G 1 min a 4 ° C.

Anticorpi colorazione

Pellet Risospendere in 50 ml di purificato antimouse CD16/CD32 diluito 1:200 in tampone di colorazione delle cellule per bloccare i siti di legame Fc. Incubare sul ghiaccio per 10 minuti. Contare le cellule utilizzando un emocitometro.

Aggiungere 50 ml di miscela di anticorpi cocktail e incubare in ghiaccio per 30 min. Ogni anticorpo deve essere il primo titolato a valutare la diluizione ottimale. Uso appropriato combinazioni fluorocromo scelti in base alla capacità di laser e impostazioni del filtro del citofluorimetro particolare.

Lavare le cellule in tampone di colorazione della cellula, pellets risospendere in 100-200 ml di buffer di colorazione della cellula e di analizzare immediatamente nel citometro, o in alternativa le cellule possono essere risospese in 2% paraformaldeide (PFA), preparati in PBS e conservato durante la notte a 4 ° C .

Rappresentante dei risultati:

Dopo avere girato le pendenze, il 70% -30% interfase dovrebbe avere definito un alone bianco, e la quantificazione delle cellule recuperate da un mouse ingenuo deve cedere 3-5 x10 ⁵ celle per il mouse (cervello più midollo spinale). Cervello infiammato potrebbe avere i numeri che variano a seconda delle cellule infiammatorie del sistema nervoso centrale insulto o modello di malattia (Figura 1).

Figura 1. Isolamento di cellule mononucleate, da ingenuo e EAE-cervello a malattia di picco. Le cellule cerebrali sono stati separati sospensioni più discontinuo del 70% / pendenze Percoll 30%. Macchiato le cellule sono state incubate con Fc-block seguiti da anticorpi anti-CD45 per 30 minuti sul ghiaccio. Le cellule sono state lavate in tampone di colorazione della cellula, e fissato nel 2% PFA prima acquisizione in un LSR-II. CD45 intensità è misurata in asse Y, dove tre popolazioni distinte sono visualizzati. Un'ulteriore caratterizzazione del fenotipo CD45 delle cellule immunitarie di ^alta infiltrazione è implementata utilizzando anticorpi aggiuntivi e successivamente analizzati mediante citometria di flusso.

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Discussione

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Materiali