È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.
Presentiamo una piattaforma sperimentale personalizzata e un protocollo di coltura tissutale che ricrea il cambiamento fibrocartilagineo guidato dall'impingement dell'inserzione del tendine d'Achille in espianti murini dell'arto posteriore con vitalità cellulare sostenuta, fornendo un modello adatto per esplorare la meccanobiologia dell'impingement tendineo.
L'impingement del tendine sull'osso genera un ambiente di deformazione meccanica multiassiale con deformazione compressiva trasversale marcatamente elevata, che suscita un fenotipo localizzato della fibrocartilagine caratterizzato dall'accumulo di matrice ricca di glicosaminoglicani (GAG) e dal rimodellamento della rete di collagene. Mentre la fibrocartilagine è una caratteristica normale nelle regioni colpite dei tendini sani, l'eccesso di deposizione di GAG e la disorganizzazione della rete di collagene sono caratteristiche distintive della tendinopatia. Di conseguenza, l'impingement è clinicamente riconosciuto come un importante fattore estrinseco nell'inizio e nella progressione della tendinopatia. Ciononostante, la meccanobiologia alla base dell'impingement tendineo rimane poco studiata. Gli sforzi precedenti per chiarire la risposta cellulare all'impingement tendineo hanno applicato la compressione uniassiale alle cellule e asportato espianti tendinei in vitro. Tuttavia, le cellule isolate mancano di un ambiente extracellulare tridimensionale cruciale per la meccanorisposta, e sia gli studi in vitro che quelli sull'espianto asportato non riescono a ricapitolare l'ambiente di deformazione multiassiale generato dall'impingement tendineo in vivo, che dipende dalle caratteristiche anatomiche della regione impattata. Inoltre, i modelli in vivo di impingement tendineo mancano di controllo sull'ambiente di deformazione meccanica. Per superare queste limitazioni, presentiamo un nuovo modello murino di espianto dell'arto posteriore adatto allo studio della meccanobiologia dell'impingement del tendine d'Achille. Questo modello mantiene il tendine d'Achille in situ per preservare l'anatomia locale e riproduce l'ambiente di deformazione multiassiale generato dall'impatto dell'inserzione del tendine d'Achille sul calcagno durante la flessione dorsale della caviglia applicata passivamente, mantenendo le cellule all'interno del loro ambiente nativo. Descriviamo un protocollo di coltura tissutale parte integrante di questo modello e presentiamo i dati che stabiliscono la vitalità dell'espianto sostenuta per 7 giorni. I risultati rappresentativi dimostrano una migliore colorazione istologica del GAG e una diminuzione dell'allineamento delle fibre di collagene secondarie al impingement, suggerendo un'elevata formazione di fibrocartilagine. Questo modello può essere facilmente adattato per studiare diversi regimi di carico meccanico e consente la manipolazione di percorsi molecolari di interesse per identificare i meccanismi che mediano il cambiamento fenotipico nel tendine d'Achille in risposta all'impingement.
Una moltitudine di tendini, tra cui il tendine d'Achille e i tendini della cuffia dei rotatori, subiscono un conflitto osseo a causa del normale posizionamento anatomico1,2,3,4. L'impingement tendineo genera una deformazione di compressione diretta trasversalmente all'asse longitudinale della fibra5,6,7. Le regioni di conflitto tendineo dimostrano un fenotipo unico della fibrocartilagine in cui le cellule rotonde e rimpicciolite (fibrocondrociti) so....
Tutto il lavoro sugli animali è stato approvato dal Comitato per le risorse animali dell'Università di Rochester.
1. Preparazione dei terreni di coltura tissutale
Le immagini rappresentative delle sezioni di tessuto colorate con TUNEL dimostrano nuclei apoptotici minimi all'interno del corpo del tendine d'Achille dopo 7 giorni di coltura di espianto in tutti i gruppi sperimentali (Figura 2A). La quantificazione di queste immagini fornisce la prova che il protocollo di coltura tissutale mantiene in media fino al 78% di vitalità all'interno del tendine d'Achille dopo 7 giorni di coltura di espianto in tutte le condizioni di carico (
La piattaforma sperimentale di espianto dell'arto posteriore murino abbinata al protocollo di coltura tissutale descritto in questo studio fornisce un modello adatto per studiare la meccanobiologia della formazione di fibrocartilagine guidata dal conflitto all'inserzione del tendine d'Achille. L'utilità di questo modello di espianto è dimostrata dai risultati rappresentativi, che indicano il mantenimento della vitalità cellulare in concomitanza con un cambiamento significativo e spazialmente eterogeneo nella colorazio.......
Gli autori non hanno nulla da rivelare.
Gli autori sono grati per il supporto e l'assistenza forniti da Jeff Fox e Vidya Venkatramani del Centro per la ricerca muscoloscheletrica dell'Università di Rochester per l'istologia, la biochimica e l'imaging molecolare (HBMI) Core, finanziato in parte da P30AR06965. Inoltre, gli autori desiderano ringraziare il Center for Light Microscopy and Nanoscopy (CALMN) presso l'Università di Rochester Medical Center per l'assistenza con la microscopia multifotone. Questo studio è stato finanziato da R01 AR070765 e R01 AR070765-04S1, nonché da 1R35GM147054 e 1R01AR082349.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Absorbent underpads | VWR | 82020-845 | For benchtop dissection |
Acrylic bath | Source One | X001G46CB1 | Contains the explant platform submerged in culture media |
Autoclave bin | Thermo Scientific | 13-361-20 | Used as secondary containment, holds two platforms |
Base | - | - | 3D printed from CAD files provided as Supplementary Files |
Braided line | KastKing | 30lb test | Used to wrap around paw and apply ankle dorsiflexion |
Clip | - | - | 3D printed from CAD files provided as Supplementary Files |
Cover glass | Fisherbrand | 12-541-034 | Rectangular, No. 2, 50 mm x 24 mm |
Cytoseal XYL | VWR | 8312-4 | Xylene-based mounting media for coverslipping Toluidine blue stained tissue sections |
Dexamethasone | MP Biomedical LLC | 194561 | CAS#50-02-2 |
Dimethyl sulfoxide (DMSO), anhydrous | Invitrogen by ThermoFisher | D12345 | CAS#67-68-5, use to solubilize dexamethasone into concentrated stock solutions |
Double-sided tape | Scotch Brand | 34-8724-5195-9 | To attach sandpaper to Grip platens |
Dulbecco's Modified Eagle Medium (1X DMEM) | Gibco by ThermoFisher | 11965092 | high glucose, (-) pyruvate, (+) glutamine |
EDTA tetrasodium salt dihydrate | Thermo Scientific Chemicals | J15700.A1 | CAS#10378-23-1, used to make 14% EDTA solution for sample decalcifcation |
Ethanol, 200 proof | Thermo Scientific | T038181000 | CAS#64-17-5, 1 L supply |
Foam biopsy pads | Leica | 3801000 | Used with processing cassettes, help hold ankle joints in desired position during fixation and decalcification |
Forceps, #SS Standard Inox | Dumont | 11203-23 | Straight, smooth, fine tips |
Forceps, Micro-Adson 4.75" | Fisherbrand | 13-820-073 | Straight, fine tips with serrated teeth |
Garnet Sandpaper, 50-D Grit | Norton | M600060 01518 | Or other coarse grit sandpaper |
Glacial acetic acid | Fisher Chemical | A38S-500 | CAS#64-19-7, for adjusting pH of sodium acetate buffer used for Toluidine blue histology, as well as 14% EDTA decalcification solution |
Grips | ADMET | GV-100NT-A4 | Stainless steel vice grips, screws and springs described in the protocol are included |
Histobond Adhesive Microscope Slides | VWR | 16005-108 | Sagittal sections of hind limbs explants reliably adhere to these slides through all staining protocols |
In situ Cell Death Detection Kit, TMR Red | Roche | 12156792910 | TUNEL assay |
Labeling tape | Fisherbrand | 15-959 | Or any other labeling tape of preference |
L-ascorbic acid | Sigma-Aldrich | A4544-100G | CAS#50-81-7, for culture media formulation |
Neutral buffered formalin, 10% | Leica | 3800600 | For sample fixation, 5 gallon supply |
Nunc petri dishes | Sigma-Aldrich | P7741-1CS | 100 mm diameter x 25 mm height, maintain explants submerged in 70 mL of culture media as described in protocol |
Penicillin-streptomycin (100X) | Gibco by ThermoFisher | 15140122 | Add 5 mL to 500 mL 1X DMEM for 1% v/v (1X) working concentration |
Polylactic acid (PLA) 1.75 mm filament | Hatchbox | - | Choose filament diameter compatible with your 3D printer extruder, in color of choice. |
Processing cassettes | Leica | 3802631 | For fixation, decalcification and paraffin embedding |
Prolong Gold Antifade Reagent with DAPI | Invitrogen by ThermoFisher | P36931 | Mounting media for coverslipping tissue sections after TUNEL |
Proteinase K | Fisher BioReagents | BP1700-50 | CAS#39450-01-6, used for antigen retrieval in TUNEL protocol |
Scissors, Fine | FST | 14094-11 | Straight, sharp |
Slide Staining Set, 12-place | Mercedes Scientific | MER 1011 | Rack with 12 stain dishes and slide dippers for Toluidine blue histology |
Sodium acetate, anhydrous | Thermo Scientific Chemicals | A1318430 | CAS#127-09-3, used to make buffer for Toluidine blue histology |
Tissue-Tek Accu-Edge Low Profile Microtome Blades | VWR | 25608-964 | For paraffin sectioning |
Toluidine Blue O | Thermo Scientific Chemicals | 348601000 | CAS#92-31-9 |
Volume Reduction Insert | - | - | 3D printed from CAD files provided as Supplementary Files |
Xylenes | Leica | 3803665 | 4 gallon supply for histological staining |
Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE
Richiedi AutorizzazioneEsplora altri articoli
This article has been published
Video Coming Soon