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* Questi autori hanno contribuito in egual misura
Qui presentiamo un protocollo per la generazione e la verifica funzionale di cellule T sensibili al recettore chimerico dell'antigene (CAR)-T sensibili all'ipossia. Questo protocollo presenta la generazione di cellule CAR-T sensibili all'ipossia basate su lentivirus e la loro caratterizzazione, inclusa la convalida dell'espressione CAR ipossia-dipendente e della citotossicità selettiva.
Studi approfonditi hanno dimostrato la promettenza della terapia cellulare con recettore dell'antigene chimerico T (CAR-T) nel trattamento delle neoplasie ematologiche. Tuttavia, il trattamento dei tumori solidi rimane impegnativo, come esemplificato dai problemi di sicurezza che sorgono quando le cellule CAR-T attaccano le cellule normali che esprimono gli antigeni bersaglio. I ricercatori hanno esplorato vari approcci per migliorare la selettività tumorale della terapia cellulare CAR-T. Una strategia rappresentativa in questo senso è la costruzione di cellule CAR-T sensibili all'ipossia, che sono progettate fondendo un dominio di degradazione dipendente dall'ossigeno con la porzione CAR e sono strategiche per ottenere un'elevata espressione di CAR solo in un ambiente ipossico, il microambiente tumorale (TME). Questo articolo presenta un protocollo per la generazione di tali cellule CAR-T e la loro caratterizzazione funzionale, inclusi metodi per analizzare i cambiamenti nell'espressione di CAR e nella capacità di uccisione in risposta a diversi livelli di ossigeno stabiliti da una camera di incubazione mobile. Si prevede che le cellule CAR-T costruite dimostrino l'espressione e la citotossicità di CAR in modo sensibile all'ossigeno, supportando così la loro capacità di distinguere tra TME ipossico e tessuti normali normossici per l'attivazione selettiva.
La terapia con cellule T del recettore dell'antigene chimerico (CAR-T) ha rappresentato una svolta significativa nel trattamento del cancro. Da quando la Food and Drug Administration (FDA) ha approvato la prima terapia CAR-T per il trattamento del linfoma avanzato/resistente e della leucemia linfoblastica acuta nel 2017 1,2,3, 10 terapie CAR-T mirate al CD19 o all'antigene di maturazione delle cellule B (BCMA) hanno ricevuto l'approvazione a livello globale4. Tuttavia, nonostante un'ampia ricerca,....
In questo studio, HER2-BBz-ODD, un CAR sensibile all'ipossia che ha come bersaglio HER2 (ID gene: 2064) è stato confrontato con la sua controparte regolare, HER2-BBz. Gli schemi dei due CAR sono illustrati nella Figura 1A, che mostra che HER2-BBz-ODD è derivato da HER2-BBz aggiungendo la sequenza ODD al C-terminale di CD3ξ. La costruzione di vettori lentivirali che esprimono i due CAR e la generazione del lentivirus corrispondente mediante trasfezione cellulare 293T è stata precedentemente descritta31.
1. Generazione di cellule CAR-T sensibili all'....
La fusione del dominio ODD di HIF-1α con la porzione CAR rappresenta una strategia primaria per generare un CAR sensibile all'ipossia. Il CAR bersaglio di HER2 sensibile all'ipossia analizzato in questo studio, denominato HER2-BBz-ODD, è stato costruito utilizzando questa strategia integrando la sequenza ODD nel suo HER2-BBz convenzionale (Figura 1A). In questo studio, abbiamo utilizzato la trasduzione lentivirale per esprimere HER2-BBz-ODD CAR o HER2-BBz .......
I problemi di sicurezza sono questioni significative che devono essere affrontate affinché qualsiasi terapia cellulare CAR-T passi all'uso clinico. L'utilizzo delle proprietà uniche delle cellule tumorali o della TME è diventata una direzione di ricerca primaria incentrata sullo sviluppo di cellule CAR-T che colpiscono selettivamente i tessuti tumorali. La progettazione di un CAR-T sensibile all'ipossia è una strategia interessante in questa direzione, con diversi approcci in fase di.......
Gli autori non hanno conflitti di interesse da dichiarare.
Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni del National Key Research and Development Program of China (2016YFC1303402), del National Megaproject on Key Infectious Diseases (2017ZX10202102, 2017ZX10304402-002-007) e del Programma generale della Commissione sanitaria municipale di Shanghai (201740194).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
1.5 mL Centrifuge tube | QSP | 509-GRD-Q | Supernatants and cells cellection Protocol Step 2,3,4 |
10% ExpressCast PAGE | NCM biotech | P2012 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
10x PBS | NCM biotech | 20220812 | Cell culture Protocol Step 4 |
10 mL pipette | Yueyibio | YB-25H | Pipetting Protocol Step 1 |
10xTRIS-Glycine-SDS electrophoresis buffer | Epizyme | 3673020 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
15 mL Centrifuge tube | Thermo Scientific | 339650 | Supernatants and cells cellection Protocol Step 1 |
25 cm2 EasYFlask | Thermo Scientific | 156367 | Cell culture Protocol Step 3,4 |
4x Protein SDS PAGE Loading Buffer | Takara | 9173 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
6-well flat-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 140675 | T Cells culture Protocol Step 1 |
96-well black flat-bottom tissue culture plates | Greiner | 655090 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
96-well ELISA plates | Corning | 3590 | ELISA Protocol Step 5 |
96-well plate shaker | QILINBEIER | MH-2 | Shake Protocol Step 4 |
96-well U-bottom tissue culture plates | Thermo Scientific | 268200 | Supernatants cellection Protocol Step 4,5 |
anti-FLAG antibody | Sigma | F1804-50UG | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbinol | Sinopharm | 10010061 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Carbon dioxide incubator | Thermo Scientific | 360 | Cell culture Protocol Step 1,2,3,4 |
Cell counting plate | Hausser scientific | 1492 | Cell counting Protocol Step 1,3,4 |
CELLection Pan Mouse IgG Kit | Thermo Scientific | 11531D | Mouse IgG magnetic beads Protocol Step 1 |
Centrifuge | Thermo Scientific | 75002432 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Chemiluminescence gel imaging system | BIO-RAD | 12003154 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Cobalt chloride solution (0.5 M) | bioleaper | BR4000203 | Hypoxic condition Protocol Step 2,3,4 |
DMEM | Corning | 10-103-CV | Cell culture Protocol Step 4 |
Electronic balance | Sartorius | PRACTUM612-1CN | weigh Protocol Step 5 |
FBS | BI | 04-001-1ACS | Cell culture Protocol Step 3,4 |
GAPDH Mouse mAb | ABclonal | AC002 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Gel electrophoresis apparatus | BIO-RAD | 1645070 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
GloMax Microplate Readers | Promega | GM3000 | luciferase activity measurement Protocol Step 4 |
Goat anti-Mouse IgG (H+L) | Yeasen | P1126151 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
High speed microfreezing centrifuge | eppendorf | 5810 R | Cell culture Protocol Step 1 |
Human IFN-γ ELISA Set | BD | 555142 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IFN-γ Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IFN-γ , Capture Antibody Purified Anti-Human IFN-γ, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
Human IL-2 ELISA Set | BD | 555190 | ELISA Protocol Step 5 Items: Recombinant Human IL-2 Lyophilized Standard, Detection Antibody Biotin Anti-Human IL-2 , Capture Antibody Purified Anti-Human IL-2, Enzyme Reagent Streptavidin-horseradish peroxidase conjugate (SAv-HRP) |
IL-15 | R&D systems | P40933 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-21 | Novoprotein | GMP-CC45 | T Cells culture Protocol Step 1 |
IL-7 | R&D systems | P13232 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Inverted microscope | Olympus | CKX41 | Cell culture Protocol Step 1,3,4 |
Jurkat | ATCC | TIB-152 | CAR-Jurkat construction Protocol Step 3 |
LSRFortessa | BD | LSRFortessa | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Luciferase Assay System | Promega | E1501 | luciferase reporter assay Protocol Step 4 Items: Passive lysis buffer, firefly luciferase substrate |
Microplate reader | BioTek | HTX | ELISA Protocol Step 5 |
mobile CO2/O2/N2 Incubator Chamber | China Innovation Instrument Co., Ltd. | Smartor118 | Hypoxic condition Protocol Step 2, 3, 4 |
Mouse Anti-Hexa Histidine tag | Sigma | SAB2702218 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
NcmBlot Rapid Transfer Buffer | NCM biotech | WB4600 | Immunoblotting |
NcmECL Ultra | NCM biotech | P10300 | Immunoblotting Protocol Step 3 Items: NcmECL Ultra Luminol/Enhancer Reagent (A) ,NcmECL Ultra Stabilized Peroxide Reagent (B) |
NovoNectin -coated 48-well flat plates | Novoprotein | GMP-CH38 | CAR-T cells construction Protocol Step 1 |
OPD (o-phenylenediamine dihydrochloride) tablet set | Sigma | P9187 | Substrate Reagent Protocol Step 5 Items: OPD tablet (silver foil),urea hydrogen peroxide tablet (gold foil) |
PE-conjugated anti-DYKDDDDK | Biolegend | 637310 | Flow cytometry Protocol Step 2 |
Protamine sulfate | Sigma | P3369-1OG | Lentivirus infection Protocol Step 1 |
Protein Marker 10 Kda-250 KDa | Epizyme | WJ102 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Purifed NA/LE Mouse Anti-Human CD3 | BD | 566685 | T Cells culture Protocol Step 1 |
Purified NA/LE Mouse Anti-Human CD28 | BD | 555725 | T Cells culture Protocol Step 1 |
PVDF membrane | Millipore | 168627 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
RPMI 1640 | Corning | 10-040-CVRC | Cell culture Protocol Step 3 |
Skim milk powder | Yeasen | S9129060 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
SKOV3-Luc | ATCC | HTB-77 | Cytotoxicity assay Protocol Step 4 |
Trypsin-EDTA | NCM biotech | C125C1 | Cell culture Protocol Step 4 |
Tween 20 | Sinopharm | 30189328 | Immunoblotting Protocol Step 3 |
Water bath | keelrein | NB014467 | Heating Protocol Step 1 |
X-VIVO 15 | LONZA | 04-418Q | Serum-free lymphocyte culture medium Protocol Step 1 |
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