Per iniziare, sterilizzare la camera del dispositivo acustico con alcol al 75% per cinque minuti. Quindi, pulire il dispositivo con PBS sterile e irradiarlo con luce UV per un'ora. Montare il dispositivo acustico sterile su un tavolino da microscopio per l'osservazione dall'alto dell'interno della camera.
Posizionare un microscopio digitale sul lato del dispositivo privo di trasduttori PZT, consentendo l'osservazione laterale dell'interno della camera. Collegare in modo indipendente i fili dei tre trasduttori PZT in serie a tre amplificatori di potenza e tre canali di uscita dei generatori di funzioni. Programmare le impostazioni sui generatori di funzioni per ciascun trasduttore PCT, specificando parametri come forme d'onda sinusoidali, frequenza e ampiezza.
Colture di cellule 3CA in DMEM integrate con il 10% di FBS e l'1% di streptomicina di penicillina in un pallone di coltura cellulare T25. Quando le cellule diventano confluenti all'80%, lavare la coltura due volte con PBS. Dopo aver rimosso il PBS, aggiungere due millilitri di tripsina-EDTA allo 0,05% nel pallone e incubare a 37 gradi Celsius per il distacco cellulare.
Aggiungere due millilitri di terreno di coltura cellulare completo nel matraccio per fermare la tripsinizzazione. Trasferire la sospensione cellulare in una provetta da 15 millilitri e centrifugare a 200 G per cinque minuti.
