La ricerca valuta la concentrazione di glucosio in campioni microbici utilizzando tecniche di quantificazione da filtri batterici e di lievito. L'obiettivo è quello di migliorare l'accuratezza del grammo di massa del glucosio negli studi microbiologici. Le sfide includono la quantificazione accurata della bassa concentrazione di glucosio in campioni microbici complessi e la distinzione tra fonti microbiche e ambientali di glucosio in colture miste.
La ricerca ha dimostrato una chiara correlazione tra specifici ceppi microbici e i loro tassi di consumo di glucosio, rivelando come i fattori ambientali influenzino le vie metaboliche. Il nostro protocollo migliora il rilevamento del glucosio migliorando la specificità e la sensibilità, riducendo al contempo i tempi di elaborazione. L'uso controllato dell'acido solforico riduce al minimo le interferenze.
La ricerca futura si concentrerà sull'ottimizzazione dei metodi di rilevamento del glucosio per applicazioni di microbiologia industriale e sullo studio del ruolo di un gene specifico nel metabolismo del glucosio in condizioni ambientali variabili. Per iniziare, pesare 1,28 grammi di fosfato monobasico di potassio e 0,1304 grammi di fosfato dipotassico in un becher di vetro. Aggiungere 70 millilitri di acqua deionizzata e regolare il pH a 5,5 utilizzando 1 molare di acido cloridrico o idrossido di potassio.
Quindi trasferire la soluzione in un matraccio tarato da 100 millilitri e regolare il volume a 100 millilitri con acqua deionizzata. Conservare la soluzione preparata in un contenitore ambrato a 4-8 gradi Celsius per un massimo di tre mesi. Quindi, pesare 0,01 grammi di o-Dianisidina dicloridrato in una provetta da centrifuga da 2 millilitri.
Utilizzando una pipetta da 1.000 microlitri, aggiungere 1 millilitro di acqua deionizzata per sciogliere il composto e mescolare lentamente la soluzione. Avvolgere la provetta da centrifuga in un foglio di alluminio per proteggerla dalla luce e conservarla a 20 gradi Celsius. Quindi aggiungere la soluzione di o-Dianisidina dicloridrato a 10 millilitri di tampone fosfato prelevato in un matraccio tarato da 100 millilitri e regolare il volume finale a 100 millilitri con il tampone fosfato.
Dopo aver trasferito la soluzione in un pallone d'ambra, conservarla a 4-8 gradi Celsius per 3-4 mesi. A questo punto mettete un matraccio tarato da 100 millilitri con 30 millilitri di acqua deionizzata in un bagno di ghiaccio. Dopo 10 minuti, versare lentamente 51 millilitri di acido solforico al 98% lungo le pareti del pallone, agitandolo delicatamente.
Successivamente, regolare il volume finale a 100 millilitri con acqua deionizzata e trasferire la soluzione in un pallone di vetro ambrato per la conservazione. Per la preparazione enzimatica, pesare 0,01 grammi di glucosio ossidasi in una microprovetta sterile da 2 millilitri. Aggiungere 1 millilitro di tampone acetato di sodio da 50 millimolari a pH 5 nella microprovetta e mescolare delicatamente.
Quindi, in una nuova microprovetta da 2 millilitri, pesare 0,0031 grammi di enzima perossidasi e scioglierlo in 1 millilitro di tampone fosfato impostato a pH 5,5. Coprire entrambe le microprovette contenenti enzimi con un foglio di alluminio e conservarle a 20 gradi Celsius. Quindi preparare 1 grammo per litro di soluzione standard di D-glucosio utilizzando acqua deionizzata.
Per iniziare, preparare lo standard glicemico e tutte le altre soluzioni necessarie per il saggio. Aggiungere il volume appropriato di glucosio in provette fresche da 2 millilitri. Impostare un termobagno asciutto a 37 gradi Celsius e lasciarlo stabilizzare.
Aggiungere i volumi appropriati di tampone a ciascuna microprovetta, seguiti da 3,3 microlitri di glucosio ossidasi e 1,2 microlitri di perossidasi. Incubare le provette a 37 gradi Celsius e impostare il timer su 20 minuti. Subito dopo l'incubazione, aggiungere 750 microlitri di acido solforico al 50% a ciascuna microprovetta e metterli in un bagno di ghiaccio per 2 minuti a raffreddare.
Trasferire la miscela raffreddata da 1.500 microlitri in una cuvetta di plastica e misurare l'assorbanza a 529 nanometri. Quindi pulire l'area di lavoro con una soluzione alcolica al 70% e accendere un bruciatore per garantire l'asepsi. Ottenere batteri o lieviti in un terreno di coltura liquido.
Trasferire 100 microlitri di coltura in microprovette da 1,5 millilitri utilizzando puntali sterili. Centrifugare i campioni a 7.500 G per 7 minuti a 4 gradi Celsius. Dopo la centrifugazione, rimuovere con cautela il surnatante, che contiene glucosio in soluzione.
Mescolare 0,5 microlitri di surnatante con tutti i componenti necessari per preparare la miscela di reazione. Incubare le microprovette per 20 minuti a 37 gradi Celsius e aggiungere immediatamente 750 microlitri di acido solforico al 50%. Lasciate raffreddare il composto in un bagno di ghiaccio per 2 minuti.
Infine, misurare l'assorbanza a 529 nanometri. L'analisi spettrofotometrica ha indicato un picco massimo di assorbanza a 529 nanometri. L'analisi del consumo di glucosio da parte di Debaryomyces hansenii ha dimostrato risultati coerenti tra i metodi della glucosio ossidasi e DNS fino a quando non sono emerse differenze significative a 6, 8 e 12 ore.
L'applicazione del metodo dell'acido glucosio ossidasi solforico ha facilitato l'analisi di alte concentrazioni di glucosio fino a 100 grammi per litro, con risultati affidabili dopo la diluizione.
