化学の切断とSchmidtea メディテラネアプラナリアの咽頭再生

要約

プラナリアSchmidtea メディテラネアは、幹細胞と組織再生を研究するための優れたモデルです。この文書では、化学のアジに動物を公開することによって 1 つの器官、咽頭を選択的に削除する方法について説明します。このプロトコルはまた咽頭再生を監視する方法を説明します。

要約

プラナリアは、扁形動物の非常に効率的な再生です。彼らは、任意のタイプの傷害に即応できる幹細胞の数が多いこの能力を借りています。これらの動物の共通の傷害モデルは、複数の臓器に損傷組織の大量を削除します。この広範な組織の損傷を克服するために我々 はSchmidtea メディテラネアプラナリアの咽頭、一つの臓器を選択的に削除する方法をここで説明します。我々 はチトクロム酸化酵素阻害剤アジ化ナトリウムを含む溶液に浸漬の動物によってこれを達成します。アジ化ナトリウムを簡単に暴露により咽頭の押出成形、「化学的切断」と呼ばれる動物から化学切断全体の咽頭を削除し、咽頭が腸へアタッチ小さな傷を生成します。広範な洗浄後は、すべての切断された動物は、約 1 週間で咽頭が完全に機能を再生成します。体の残りの部分の幹細胞は、新しい咽頭の再生を駆動します。ここで、詳細な提供化学切断のプロトコルおよび成功の切断と再生を評価する組織と行動の両方の方法について説明します。

概要

再生は、再生能力ある無脊椎動物の完全なボディ再生から脊椎動物¹のより制限された能力に至るまで動物界全体が発生する現象です。機能的な組織の交換は複雑なプロセスであり、種類の細胞の同時復元をしばしば伴います。たとえば、サンショウウオの四肢、骨芽細胞、軟骨細胞、神経細胞、筋肉とする上皮細胞に必要なを再生成するには、²を置き換えられます。これらの細胞が新たに生成された型はまた新しい下肢の機能を容易にするために適切に編成する必要があります。これらの複雑なプロセスを理解すると、特定の細胞のタイプおよび器官への統合の再生に焦点を当てる技術が必要です。

再生反応に関する研究を簡素化する採用戦略は、いずれかの特定の細胞型のターゲットの切除や組織の大規模な収集があります。たとえば、ゼブラフィッシュ、特定の細胞型でニトロの式はメトロニダゾールの^3、4を適用した後彼らの破壊に します。ショウジョウバエ幼虫の組織特異的発現プロモーター下プロ アポトーシス遺伝子を表現するには成虫ディスク^5,6の特定の領域を切除できることは選択的に。両方これらの戦略の急速な制御された損傷の原因し、再生の分子・細胞メカニズムを解剖に使用されています。

本稿では、我々 はSchmidtea メディテラネアプラナリアの咽頭と呼ばれる全体の器官を選択的に切除する方法をについて説明します。プラナリアが再生、その多作の再生能力で知られての古典的なモデルも分の断片が全体動物^7,8を再生することができます。彼らは幹細胞の多能性細胞と前駆細胞の血統制限^9,,1011から成る大規模な異種の人口があります。これらの細胞は、増殖し、咽頭、神経系、消化と排泄系と筋上皮細胞^9,10,12など、すべての不足している組織を置換するを区別します。これらの幹細胞が再生を開始することを私たちは知っている、すべてのこれらの異なった細胞のタイプを交換するそれらを駆動する分子メカニズムは完全に納得しません。正確な幹細胞応答を引き出す定義の人が負傷した方法は、この複雑なプロセスを明確に役立ちます。

咽頭の授乳に必要な大規模な円筒形のチューブであり、神経細胞、筋肉、上皮細胞と分泌細胞^13,29を含んでいます。通常動物の腹部の側面のポーチに隠された、それは食品の存在を感じる時に開く動物の単一ボディに引かれます。咽頭を選択的に切断、化学と呼ばれるナトリウムのアジ化物、線虫^14,15,16の一般的に使用される麻酔薬でプラナリアを浸します。プラナリアのアドラーらによって報告された。、2014¹²で。アジ化ナトリウムへの露出の数分以内プラナリア押し出し、pharynges と穏やかな攪拌と咽頭を動物から切り離します。私たちは「化学切断」として咽頭の完全かつ選択的損失額を参照してください。切断後 1 週間完全に機能的な咽頭は復元された¹²です。咽頭は、供給する必要があるので、機能再生は摂食行動を監視することによって測定できます。化学の切断および咽頭の再生と摂食行動の回復を評価するためのプロトコルをご紹介いたします。

プロトコル

1. 準備

1. プラナリア水の準備¹⁷
   1. 1 X Montjuïc 塩溶液でプラナリアを維持します。水をプラナリアを準備するには、個々 の在庫ソリューション 1 M CaCl₂, 1 M MgSO₄, 1 M MgCl₂の 1 M の KCl と純水で 5 M の NaCl を確認します。0.2 μ m ボトル上部フィルターの長期的なストレージを持つフィルター滅菌します。
      注:モンジュイックに塩を準備する (18.2 MΩ 25 ° C での電気抵抗) と超高純度の脱イオン水だけを使用します。
   2. 5 X 塩溶液の 1 L 在庫を準備、1 M CaCl₂、1 M MgSO₄MgCl₂、1.6 mL 900 mL 純水に食塩を 5 M の KCl の 0.5 mL の 0.5 mL の 5 mL の 5 mL を組み合わせます。このソリューションに 0.504 NaHCO₃ g を加えて混ぜ合わせます。塩酸と 7.0 に pH を調整します。
   3. 希釈原液を大容量カーボイなど滅菌コンテナーにおける超純水の使用濃度 X 1 X この 5 (材料の表を参照してください)。無性のプラナリアを維持するには、この 1 の X ソリューションを使用します。
      注:モンジュイック食塩の代わりに、ローカル購入のばね水または市販の水槽の塩を含む超純水を使用濃度 of0.5 g/L¹⁸(材料の表を参照) をミックスします。
   4. ¹⁹静置培養で細菌の感染を防ぐためには、抗生物質を含む水でプラナリアを維持します。超純水中の硫酸ゲンタマイシンの原液 50 mg/mL を準備し、フィルター殺菌します。動物の保管場所のコンテナーにゲンタマイシン硫酸塩を最終濃度 50 μ g/mL (1: 1000 希釈) に追加します。
2. レバー ペーストの準備
   1. プラナリアは、オーガニックの食事で繁栄する、牧草飼育牛レバー、新鮮な肝臓を購入、24 時間内のプロセス削除そっと剥がして肝臓をカプセル化膜カプセル。〜 1 cm キューブに肝臓を切るし、刃を使用してこすり、すべての肝静脈と動脈を破棄します。
   2. 食品工場やフード プロセッサを使用して肝臓の部分を漬け込むし、ワイヤー メッシュの食品ストレーナを通過します。ペストリー袋に結合し、注射器や 35 mm シャーレに分注します。授乳前に空気の泡を削除に軽く遠心します。
   3. 年および使用する前に解凍まで-80 ° C で肝臓の因数を格納します。解凍後、再冷凍、残った肝臓は一度、または 24 h まで 4 ° C で保存します。
3. 動物のメンテナンス
   1. プラナリアは成長し、給餌の頻度に応じて様々 なサイズに縮小します。1 週間毎 (14 日に一度) プラナリアをフィードします。長期の大量培養 (材料表参照) 様々 なサイズのプラスチック製の容器を使用します。
   2. 動物の飼料、金属のヘラまたはプラスチック ピペットを使用してボックスに肝臓の豆粒大のドロップを配置します。ボックスをクリーニングする前に食べる 1-2 削除残りの食糧のために動物を許可します。
   3. 供給できない場合 (直接授乳後一度と一度 2 日後) を供給する場合週 2 回または週に一度ワームをきれい。きれいに慎重にボックスでプラナリアを維持しながら水を注ぐことによってプラスチック ビーカーに水を排出します。ボックス紙タオルで表面を拭くし、箱がきれいになるまで、すべての側面に繰り返します。
   4. (ボックスのボリュームの約 3/4) に水を交換し、50 μ G/ml の最終的な集中にゲンタマイシンを追加します。暗いキャビネットまたは 20 の ° C の定温器で動物を格納します。
4. ワーム各種
   1. 5-7 日前に供給されたワームを選択します。
      注:最近 (切断の前に 1-2 日) を供給されているワームから pharynges を切断するため困難です。動物を供給、またアジ化ナトリウムに敏感。
   2. 約 6 ミリメートルの長さは、ワームを選択します。ワームのサイズを見積もるには、プラスチックの転送ピペットを使用してシャーレにそれを転送します。フラット 6 の定規またはペトリ皿の下に 5 mm × 5 mm 方眼紙を置き、それをクロール中にワームの長さを測定します。
      注:長さ 6 mm より小さいワームは、切断しにくい。
5. アジ化ナトリウムの準備
   1. プラナリア水でナトリウム アジ化物粉末を溶解することにより 100 ミリメートルのソリューションを準備します。
      注意:アジ化ナトリウムは毒性があり慎重に処理する必要があります。排水溝にアジ化ナトリウムを廃棄しないでください。次を使用、有害廃棄物としての処分のために個別に収集します。

2. 咽頭切断

1. 場所は、35 mm 径シャーレのワームします。お皿からプラスチック製のピペットを使用してすべてのプラナリア水を慎重に取り外します。
   注:最大 20 の 6 mm のワームはこのサイズのディッシュ快適収容できます。
2. 顕微鏡下で皿を置き、複数のワームを同時に見ることができるように倍率を調整 (例えば10 倍)。プラナリア水を 100 mM アジ化ナトリウム溶液に置き換えます。
   注:35 mm のペトリ皿のアジ化ナトリウムの約 5 mL で十分です。ソリューションは、プラナリアを水没完全にする必要があります。大きい皿のための解決の容積を必要に応じて調整します。
3. 顕微鏡と最初の 3 〜 4 分の皿を移動するからリフレインの下で動物を監視します。
4. 顕微鏡; で咽頭の押出を観察します。咽頭は咽頭嚢から突出し、完全に拡張 (長さ約 1 mm)図 1 bに示すように。
   注:咽頭はさらに進む前に完全に拡張を完了するまで待機することが重要です。咽頭は、動物から出て、一度完全な拡張は約 1 分かかります。
5. プラスチック ピペットを使用して、皿の周りに動物を噴出します。ピペットに動物を吸うし、強制的にそれらを解放、皿に幾つかの時間。咽頭が完全に場合、この積極的なピペッティングを解除を引き起こすが。
6. また、図 1に示すように、その長さに沿って垂直方向、または水平方向に微細鉗子 (材料の表を参照してください) のペアを使用して円周に沿って咽頭を把握します。鉗子で咽頭、メニスカスに向かって上向きに動物を持ち上げます。動物が上昇するにつれて、表面張力は動物からデタッチする咽頭になります。
   注:このメソッドは、強制的な旋回が不十分 (長さ 1-3 mm) な小動物の pharynges を削除する使用できます。突きまたはそれ以外の場合、動物の体を負傷を避けます。
7. ピペットを使用して、切断された動物を新鮮なプラナリア水を含んでいる新しい皿に移動します。
8. 一度転送、リンスは完全に水を 3 回交換、プラナリア水で徹底的に動物を切断しました。50µg/ml のゲンタマイシンのプラナリア水を含んでいる新しい皿に転送します。
   注:これらの 3 つの洗浄の間に完全なバッファー交換は、アジ化ナトリウムの除去を確実に不可欠です。
9. 次の日、ゲンタマイシンの 50 μ g/mL を含む新鮮なプラナリア水皿の水に置き換えます。その後にすべての他の日を繰り返します。

3. 切断後咽頭除去の評価

1. 図 2 aに示すように、ダーク スポットが、咽頭の成功の除去後登場しているかどうかを判断する (10-20 倍の倍率) と顕微鏡下で動物を検討します。
2. また、修正し、ピアソンらによって記述されたプロトコルに従って動物をブリーチ²⁰。 ソーク動物 4', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) または蛍光標識ストレプトアビジンで一晩 (1 X 0.3% を含有したリン酸バッファー生食 1 Mg/ml に希釈 1: 500 トリトン X)。80% glycerol/20% 1 X リン酸バッファー生理食塩水と蛍光顕微鏡 (図 2 b) 下の画像のスライドの動物をマウントします。
   注:この原稿のすべての画像は、1.0 X 目的で蛍光顕微鏡で捕えられました。

4. 摂食行動を測定することにより咽頭再生の評価

1. 肝臓の準備
   1. 遠心または円錐管にレバー ペーストの必要量を転送します。空気の泡を削除する簡単にスピンします。肝臓の容積を推定し、その量の 1/5、赤い食品着色料の合計の容積の 2% にプラナリア水を追加します。たとえば、肝臓の 1000 μ L に貼り付け、プラナリア水の 200 μ L と 24 μ L の食品着色料を追加します。
   2. 食品着色料が均一でレバー ペーストになるまで徹底的にミックス プラスチック杵、ピペット チップまたは金属のヘラを使用する。もう一度簡単にスピンします。レバー ペーストは、24 h の 4 ° C で保存または因数長期保存用-80 ° C で凍結できます。
   3. 最大 25 の動物をテストする場合は、一皿 (約 1 μ L あたり動物のレバー ペーストの) レバー ペーストを 25 μ l 添加を準備します。
2. 摂食動物
   1. 化学切断後 7 日間は、新しいシャーレに動物を譲渡します。10-15 動物をテストする場合を使用して、35 mm ディッシュ;以上 15 の動物は、60 mm のペトリ皿にテスト必要があります。暗闇の中、邪魔されない、供給する前に約 1 時間で動物を飼います。
   2. はさみを使用して、トリミング大体狭い端の ½ の cm で P200 ピペット チップの幅を広げます。ピペット 25 μ L の皿に赤いレバー ペースト。
      注:最後をトリミング ピペッティング粘性のレバー ペーストの方が簡単になります。肝臓が表面に浮かぶことを防ぐために調剤中皿の底に先端に触れます。
   3. 30 分を供給する動物を許可します。
   4. 白地に動物を配置するまたは 10-20 倍の倍率での顕微鏡の下でそれらを調べることによって食べている動物の数を獲得します。
   5. 授乳後お皿から肝臓を削除し、きれい。

結果

アジ化ナトリウムへの暴露は、プラナリア、原因を伸ばし、身をよじる動物の通常の運動を混乱させます。これらの動きを強制的に咽頭、動物の腹部の側面から出てくるとアジ化ナトリウム溶液で約 6 分後、咽頭の白の先端を見ることができる(図 1 bの左側のパネル)。数分後、動物は積極的に契約し、強制的にボディからそれを押?...

ディスカッション

このプロトコルでは、アジ化ナトリウムを使用して咽頭の選択的アブレーションの方法について説明します。プラナリアの他のアブレーションの対象となる研究は、視細胞²¹または²²ドーパミン作動性ニューロンをアブレーションするのに薬物治療を削除するのに修正手術を使用しています。既存の方法と比べて化学切断の 1 つの重要な利点は、手術が必要...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Calcium Chloride Dihydrate (CaCl2)	Fisher Chemical	C79-3	Montjuïc salt solution
Magnesium Sulfate Anhydrous (MgSO4)	Fisher Chemical	M65-3	Montjuïc salt solution
Magnesium Chloride Hexahydrate (MgCl2)	Acros/VWR	41341-5000	Montjuïc salt solution
Potassium Chloride (KCl)	Acros Organics/VWR	196770010	Montjuïc salt solution
Sodium Chloride (NaCl)	Acros Organics/VWR	207790050	Montjuïc salt solution
Sodium Bicarbonate (NaHCO3)	Acros Organics/VWR	123360010	Montjuïc salt solution
Nalgene autoclavable polypropylene copolymer lowboy with spigot	ThermoFisher Scientific/VWR	2324-0015	Storing planaria water
Instant Ocean Sea Salt	Spectrum Brands	Amazon	Planaria water
Gentamicin Sulfate	Gemini Bio-products	400-100P	Planaria water
Razor blades	Electron Microscopy Sciences	71970	Mincing liver
Disposable pastry bags-16”, 12 pack	Wilton	Amazon	Liver aliquots
5 mL syringes	BD/VWR	309647	Liver aliquots
Petri dishes-35mm/60mm	Greiner Bio-One/VWR	82050-536/82050-544
Plastic containers (various sizes)	Ziploc	Amazon	Housing planarians in static culture
Sodium Azide	Sigma	S2002
Transfer pipette	Globe Scientific	138030
Forceps - Dumont Tweezer, Style 5	Electron Microscopy Sciences	72700-D (0203-5-PO)
Triton X-100	Sigma	T8787
DAPI	ThermoFisher	62247
Streptavidin, Alexa Fluor 488 conjugate	ThermoFisher	S11223
Glycerol	Fisher BioReagents	BP229-1