The authors would like to acknowledge the Center for Advanced Vehicular Systems (CAVS) at Mississippi State University for providing testing facilities and Rush Sports Medical of Meridian, Mississippi for their monetary support.

注：提示された試験方法のためのプロトコルは、（http://nocsae.org/で入手可能）は、以下のNOCSAEドキュメントを参照していますNOCSAE DOC.002-13m13：18「新たに製造されたフットボールヘルメットのための標準的な性能仕様」。 NOCSAE DOC.011-13m14d：24「試験にNOCSAE規格の製品サンプル選択のための製造業者手順ガイド」。 NOCSAE DOC.087-12m14：25「衝撃試験とサッカーFACEGUARDS FOR性能要求する標準的な方法」。 NOCSAE DOC.100-96m14：26「試験装置及び衝撃試験に関するトラブルシュート・ガイド」。 NOCSAE DOC.101-00m14a：「機器の校正手順」27 1.テストのセットアップ<ol><li> NOCSAEのDOCのセクション15.1で定義されているようにNOCSAEツインワイヤドロップキャリッジアセンブリを構築します。 図5に示すように001、18。それを確認しますアセンブリのすべてのコンポーネントがしっかりと取り付けられています。 </li><li>ヘッドフォーム回転子アジャスター上の所望の位置にヘッドフォームのカラーを揃えることにより、およびヘッドフォームのねじロックリングを締めて、ドロップキャリッジアセンブリのサイズ「大」NOCSAEのヘッドフォームを取り付けます。 注：ヘッドフォームは、新規または修理の場合は、NOCSAEのDOCのセクション5を参照してください。 100 26 </li><li>しっかり頭型の重心に位置する加速度計プレートに三軸加速度計を取り付けます。加速度センサープレートの穴と加速度計の両方の穴を並べ加速度計プレートの中央に加速度計を配置します。アレンヘッドドライバを使用すると、両方のネジを挿入して、加速度計が確実に加速度計プレートに装着されるまで時計方向に締め付けてください。 </li><li> 製造業者の仕様に従ってデータ収集システムを構成します。 28 <ol><li>続データ収集アセンブリのためのケーブルはt。 <ol><li>同軸スプリッタの各出力に同軸ケーブルを接続した後、3ウェイ同軸スプリッタに加速度計のケーブルを接続します。 </li><li>アンプモジュールの背面にある3ウェイ同軸チャンネル1、2用のセンサ入力ポートにスプリッタ、及び3から各同軸ケーブルの自由端を接続します。 </li><li>増幅器モジュール（チャネル1、2、3）データ収集システム（チャネル1、それぞれ2及び3）の前面に入力接続への出力ポートからの同軸ケーブルを接続します。 </li><li>データ収集システムの背面コネクタにRS-232ケーブルの分割端を接続します。 </li><li>パーソナルコンピュータ（PC）のCOMポート1に残りのRS-232ケーブルを接続します。 </li></ol></li><li>パーソナルコンピュータ（PC）やログインの電源をオンにします。 </li><li>コンピュータにデータ収集システムのソフトウェアをダウンロードし、インストールします。 </li><li>データ収集アセンブリの電源をオンにします：電源に各コンポーネントに120ボルトのコンセントを差し込み、次に「上」の位置にアンプトグルスイッチを入れます。 </li><li>ソフトウェアを開くには、デスクトップ上にあるデータ取得プログラムのアイコンをダブルクリックします。 </li><li>モジュールの状態を確認するように求めるプロンプトを観察し、「はい」をクリックします。 </li><li>テストのセットアップファイルをロードします。 「設定」タブをクリックして「開く」までスクロールし、「テスト設定」を選択します。 <ol><li> 、コンピュータのディレクトリをブラウズ探し、「NOCSAE1.TSF」と表示されたテスト・セットアップ・ファイルを選択します。 「ロード」をクリックしてください。 </li></ol></li><li>加速度計のためのセンサ情報を入力します。 <ol><li>アクティブモジュールにチャンネル3用の黄色のセンサー入力]アイコンをクリックします。 </li><li> 「CAL値」テキストボックスに、z軸加速度計の校正値（MV / G）を挿入します。 </li><li> 「PREV」ボタンをクリックします。 </li><li>繰り返し1.4.8.1手順 - y軸加速度計のための1.4.8.3を（チャネル2）と目のためにE x軸加速度計（チャネル1）。 </li><li>センサーを終了するには、緑色の「戻る」アイコンをクリックします。 </li></ol></li><li>緑色の「保存」アイコンをクリックし、「NOCSAE-Joveの &quot;としてテストのセットアップに名前を付けます。 </li><li> 「保存」をクリックします。 </li></ol></li></ol> 2.ヘルメットの準備<ol><li>衝撃試験用のヘルメットのモデルを選択します。ヘルメットの認定については、NOCSAE DOC.011に従ってテストするためのサンプルを選択します。 24試験サンプルは、 表1に記載し、 図1及び図 2に示すように。 </li><li>選択された各ヘルメットモデルに対応するfaceguardsを選択します。 NOCSAE規格とは異なり、このようなヘルメットのベースラインfaceguardとベースヘルメット衝撃試験を実施しています。 </li><li>フィリップスヘッドドライバを使用して、安全に試験のために選択した各ヘルメットに正しいfaceguard、すべてのfaceguard特定のハードウェアを取り付けます。 NOCSAE標準試験メトとは対照的にdは、添付faceguardsですべてのヘルメットをテストします。 </li><li> 温度の条件のヘルメット、表1によれば、NOCSAEのDOC。 002 7、および ラボ環境や環境室にそれらをさらすことによって NOCSAE DOC.087 25。周囲温度で初期のヘルメット落下試験を実施しています。 <ol><li>実験室環境に選択したヘルメット、72°F、±5°F（22°C、±2℃）、試験前に少なくとも4時間を移動します。 </li><li>すべての周囲温度の影響が行われている場合は、もう24時間以上4は、 表1によれば、空調の温度にヘルメットを公開しないが。 7 注：少なくとも二つが、最高記録SIにつながる4個以下のインパクトの位置は高い温度でテストされる周囲温度が下がるために値はありません。 </li></ol></li></ol> 3.キャリブレーション<ol><li> ヘッドフォームキャリブレーションを実行します。各ヘッドフォームは、従来の三軸加速度計、3「キャリブレーションMEPパッドを使用してテストするに較正し、その特定のキャリブレーションMEPパッドの年間NOCSAE校正パッド資格報告書によって識別されるような場所/速度をドロップする必要があります。 <ol><li>しっかり六角レンチを使用して、アンビルに3「校正MEPパッドを取り付けます。 </li><li>毎年恒例のNOCSAE校正パッド資格レポートを使用して、インパクト位置と対応する衝突速度を選択します。 </li><li>ヘッドフォーム回転子アセンブリおよびアンビルガイドレールを使用して、希望の衝撃の向き（正面、側面、または上面）にヘッドフォームとアンビルを調整します。 表1、NOCSAEのDOCの付録2を参照してください。 001、18とNOCSAEのDOC。 100 26 <ol><li>ヘッドフォーム回転子アセンブリからテーパー-LOCのボルトを外し、所望の位置にボルト穴を整列させるためにヘッドフォーム調整を向けます。挿入し、しっかりとFAテーパー-LOCボルトをステン。 </li><li>ヘッドフォームのねじロックリングを緩めて、必要な向きにヘッドフォームの鼻の位置を回転させます。しっかり頭型のねじロックリングを締めます。 </li><li> 2ベースプレートアンビルのボルトを緩め、希望のインパクト位置が達成されるまで、アンビルにスライドさせます。ベース板状アンビルボルトを締めて、すべての接続がしっかりと固定されていることを確認します。 </li></ol></li><li>キャリッジアセンブリを削除するには、リリースシステムを取り付けます。放出システムの高さにドロップキャリッジアセンブリを持ち上げます。その後、「オン」の位置に電磁放出系のためのトグルスイッチを入れるドロップキャリッジアセンブリ上のアタッチメントポイントにリリースシステムを中央に配置します。 </li><li>希望の衝突速度を達成するために決定される特定の高さにドロップキャリッジアセンブリを持ち上げます。注：特定の高さは、摩擦変動によるシステムごとに異なる場合があります。追加の影響は、正しいインバウンド速度があることを確認するために高さを変える実施する必要があるかもしれませんchieved。 </li><li> （仕様28を製造しているに応じて）イベントを記録するための準備データ収集システム。 <ol><li>テストのセットアップファイルをロードします。 「テスト」タブをクリックし、「データの収集」をクリックします。 </li><li> 、コンピュータのディレクトリをブラウズ探し、「NOCSAE-JoVE.TSF」と表示されたテスト・セットアップ・ファイルを選択します。 「ロード」をクリックしてください。 </li><li> 「OK」をクリックします。 </li><li>テストの説明「説明」ダイアログボックスを入力し、「タブ」キーを押してください。 </li><li> 「JoVE1」と入力し、5文字のテストIDを提供し、「続行」をクリックします。 </li><li> 「続行」をクリックします。 </li><li>暖機運転計器を観察します。カウンタが15秒に達したら、「続行」をクリックします。 </li><li>自動的に加速度計のキャリブレーションを行うシステムを観察します。すべてのボックスが緑色に着色されたら、「続ける」をクリックします。 </li></ol></li><li>放出システムを使用して、キャリッジassemblドロップYと同時に放出システム電源制御ボックス上に配置両方トグルスイッチを反転することによって、イベントを記録するためのデータ収集システムをトリガします。 </li><li>計算し、結果のSI値を記録します。結果は1200 SIは±2％であることを確認してください。 </li><li>手順を繰り返して、3.4.2-3.4.8結果は必要な3つのインパクトの位置のそれぞれについて得られるまで。 注：キャリブレーションパッドはNOCSAEで指定された研究所で毎年requalifiedする必要があります。 </li></ol></li><li>システムチェックを実行し、結果を維持します。 （セクション18、NOCSAE DOC.001 18を参照してください） </li></ol> 4.テスト手順<ol><li>システムチェックを実行し、結果を維持します。 </li><li> MEP試験パッドのためのキャリブレーションに使用MEPパッドを交換します。 </li><li> 表1によるとテストするためのインパクト位置と速度を選択します。 注：影響は、最高に最低落下速度から行わなければなりません。周囲温度の影響shoul馴化の影響の前に行うことdは。 </li><li>適切図1および図 2に示すように、所望の衝撃位置を達成するために、ヘッドフォームの向きとアンビルの位置を調整し、セクション3の手順に従いました。 </li><li>テスト用のヘルメットを選択します。 </li><li>適切に指示とNOCSAE手順をフィッティングヘルメットメーカーに応じてヘッドフォームに選択されたヘルメットをフィット。調整し、確実にヘッドフォームにヘルメットのヒゲを添付します。 注：faceguardの追加の制約のため、タルカムパウダーの光のアプリケーションは、ヘッドフォームにヘルメットのフィッティングを助けることができます。 </li><li>キャリッジアセンブリをドロップするように機械的な放出系を取り付けます。 </li><li>希望の衝突速度を達成するために決定される特定の高さにドロップキャリッジアセンブリを持ち上げます。 </li><li>イベントを記録するための準備データ収集システム。繰り返しは、3.4.8を介して3.4.1を繰り返します。 </li><li>機械的な放出系を使用すると、CARRIをドロップ年齢アセンブリと同時に、イベントを記録するためのデータ収集システムをトリガします。 </li><li>すぐに衝突後、レコードSI、HIC、およびピーク加速度結果。 </li><li>基準を合格/不合格ために記録された結果を比較してください。 NOCSAE標準とは異なり、/すべての5.46、4.88、および4.23メートル/秒の影響のために700 SIの値を失敗するパスを設定します。すべての3.46メートル/秒の影響のために300 SIの基準をパス/フェイルを維持します。 </li><li>結果は、必要なすべての影響のために得られるまで繰り返し、4.3から4.11を繰り返します。 注：ヘッドフォームの向きとアンビルの位置を変更する前に与えられた衝撃の場所のすべてのヘルメットをテストするために許容可能です。 </li><li>テストの完了時にシステムチェックを実行し、結果を維持します。 </li><li>データ検証：プレテストとポストテストシステムのチェックを比較し、いずれかの変化が7％以下であることを確認してください。 </li></ol><img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53929/53929table1.jpg" /> 表1：落下速度（メートル/秒）とインパクト位置によって必要な影響を示すフットボールのヘルメット落下試験マトリックス。 （表NOCSAEのDOCから変更された。002-13m13） <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53929/53929table1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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The authors have nothing to disclose.

カップルはフットボールヘルメットとfaceguardドロップ衝撃試験をNOCSAE報告の方法論は、現代のフットボールヘルメットの優れた性能特性を評価するためのユニークな技術を提供しています。現代のフットボールヘルメットのこの優れた性能特性を評価するための最も重要なステップは、次のとおりです。1）が正しく機械試験装置をセットアップします。 2）正確に較正手順を行います。 3）?...

動機 この修正された落下塔試験法の主な目的は、より密接にアメリカンフットボールのヘルメットシステムのオン・フィールドの影響を表し、強化安全基準を促進することです。伴う試験方法は、効果的に脳震盪の防止のための強化されたヘッドギアを開発するために必要なヘルメット体系的応答についての知識を提供することができます。脳震盪の発生が持続的にそのようなアメリカンフットボールのように、コンタクトスポーツを悩ませてきました。米国だけでも、スポーツ関連脳震盪は毎年160万〜3.8回発生すると推定されています。 1のサッカー選手は、1,500以上のヘッド影響各シーズンを持つことができます。 2、3、最も影響の大きさはサブ震とうかもしれないが、慢性外傷性脳症（CTE）として知られている衝撃誘発される神経変性疾患への長期的な脳損傷につながる可能性があり、これらの影響の蓄積。 4CTEは、記憶喪失、行動や人格変化、パーキンソン症候群、音声、時には自殺につながっている歩行異常につながる、脳内のタウ蛋白の蓄積にリンクされています。 5サッカーのヘルメットは、過去15年間にいくつかの技術の進歩をしたが、それでも今日の最も先進的なヘルメットは完全にヘルメットに入射力のすべてを緩和しない、したがって、選手はまだ脳震盪を負います。 BARTSCH らによって行われた研究。ヴィンテージレザーヘルメットを身に着けている間6は、多くの場合、頭部衝撃の用量および頭部外傷のリスクことが示されたフットボールヘルメットの設計および試験基準の改善の必要性を説明する、広く使用されている21世紀のヘルメットを身に着けているものと同等でした。特に、NOCSAE認定7は、ヘルメットのための落下試験に含まれるべきfaceguardを必要としません。トンから追加された剛性彼は劇的に全体的な機械的応答を変更し、ヘルメットに接続faceguard。本研究は、安全ヘルメットの設計を促進するための駆動力として役立つ、より堅固なヘルメットの安全基準を提供するための方法を伴います。 バックグラウンド 頭部外傷メトリック 脳震盪に関連する正確な生物学的メカニズムは、正体不明のまま。多くの仕事は、様々な傷害の指標によって頭部損傷公差を定量化しようとする中で行われてきたが、意見の相違は、これらの基準に関する生物医学界で生じています。直線加速度、回転加速度、衝撃の持続時間、およびインパルス：これらの傷害メカニズムは、いくつかのエンティティに関連することになっています。 8、9、10、11、いくつかの傷害基準は、線形加速度の尺度として脳震盪を定義するために使用されてきました。ウェイン州立トレランスカーブ（WSTC） <suPクラス= &quot;外部参照&quot;&gt; 12、13、14は、衝撃持続時間に対して線形加速閾値曲線境界を定義することにより、正面からの衝撃の間、自動車のクラッシュのために頭蓋骨骨折を予測するために開発されました。 WSTCは、重症度指数（SI）11のような他の傷害基準の拠点を務めています 2最も一般的に使用される基準であり、頭部損傷基準（HIC）、15。 SIおよびHIC直線加速 - 時間プロファイルの重み付き積分に基づいて、両方の測定値への影響の重大度。これらの基準は、直線加速度のしきい値を定義しているが、他の基準は、このようなヘッドインパクトパワー指標として、回転加速度を説明するために提案されてきました。 8、10、16今日のヘルメットの検査基準は、多くの場合にウェイン州立基づい傷害基準を使用しますlerance曲線（すなわちHICまたはSI）やピーク加速度基準または両方のいくつかの例インチいくつかの変更は、標準的な性能基準に角加速度を追加するために必要とされる一方で、直線加速度ベースの基準が優勢のまま。 この研究では、それぞれのヘルメットを提供相対的な安全性を評価するために使用されるメトリックは、ピーク得られた加速度、SI、及びHIC値でした。これらの指標のうち唯一のSIは、アスレチック機器（NOCSAE）フットボールヘルメット規格の基準に関する現在の国家運営委員会での評価のために使用されています。 SIは、以下の式に基づいて、 <img alt="式（1）" src="/files/ftp_upload/53929/53929eq1.jpg" width="100" /> （1） Aはヘッドの重心（CG）の並進加速度であり、Tは 、加速期間です。 11は 、17 SIは、Tを算出しました。計算は、得られた加速度曲線に沿って4 Gのしきい値によって制限されNOCSAE規格18、O。 HIC値は、次式により算出しました<img alt="式（1）" src="/files/ftp_upload/53929/53929eq2.jpg" width="325" /> （2） ヘッドのCGの並進加速度であり、t 1およびt 2は、HICが最大値となる間隔で、それぞれ、最初と最後の時間である場合。本研究で算出すべてのHIC値は、時間間隔の持続時間は36ミリ秒に制限されHIC 36でした。 NOCSAEフットボールヘルメットのテスト基準 NOCSAE概要 1969年NOCSAEは、スポーツ関連傷害を減少させることを目標に、アメリカンフットボールヘルメット/ faceguardsおよび他のスポーツ用品の性能基準を開発するために設立されました。 17 NOCSAEフットボールヘルメット規格はフットボールヘルメット/ faceguardsため、衝撃減衰と構造的完全性の要件を確立することにより、頭部外傷を減らすためにウェイン州立大学の博士フォークトホジソン9によって開発されました。これらのフットボールヘルメット規格が認証試験やヘルメットの年間再認証手順を含みます。 2015年には、NOCSAEは、特定の米国規格協会（ANSI）ヘルメット認定の認定を受けて体の使用を必要とする品質保証プログラムを実施しました。 NOCSAE試験方法 ヘルメット滴が行われる前に、それは彼らの除去のために呼び出すようNOCSAEフットボールヘルメット規格はfaceguardsとヘルメットのテストが含まれていません。 NOCSAEヘルメット検査基準17は、必要な衝撃速度にヘッドフォームとヘルメットの組み合わせを加速するために、重力に依存しているツインワイヤードロップインパクターを利用します。 NOCSAEのヘッドフォームは、wが計測され重心におけるi番目の三軸加速度計。ヘッドフォームとヘルメットの組み合わせは、その後12.7ミリメートル厚の硬質ゴムモジュラーエラストマープログラマー（MEP）パッドで覆われたスチール製のアンビル上に特定の速度でドロップされます。衝突時に、瞬間的な加速度を記録し、SI値を算出します。これらのSI値は/必要なインパクトの位置と速度と周囲と高温の影響を含む2つの温度、さまざまな上に基準を失敗パスと比較されます。任意の影響の結果のSI値がしきい値を違反した場合、その後、ヘルメットはテストに合格しません。 個別の標準試験法は、サッカーfaceguard認証のために使用されます。 NOCSAEサッカーfaceguard規格は、構造的完全性の分析だけでなく、faceguard、ヒゲの衝撃減衰性能を評価し、その添付ファイル・システムが含まれています。各衝撃測定は無し面接触なし私と一緒に、試験に合格するために1200 SI以下でなければなりませんNOCSAE標準によって定義された任意のコンポーネントのchanical故障、。 19 が提案追加NOCSAEテスト（リニアインパクター（LI））faceguardとヘルメットが含まれて20があるが、それは王冠への影響を認めることができないので、それがフットボールヘルメットの認定には適していません。 LIは、角加速度を誘導するためにリニアベアリングテーブルに搭載されたハイブリッドIIIダミー首を搭載したNOCSAEのヘッドフォーム上に配置ヘルメットに影響を与えるために、空気圧ラムを使用しています。このためLIテストは、追加の電流ツインワイヤNOCSAE落下試験手順へのテストではなく、代替品です。 20は 、その代わりにLI試験の21は 、単純に現在のツインワイヤ落下試験手順にさらに2つのシナリオを追加することを提案します。 フットボールヘルメットの認定のためのNOCSAEの標準的な試験方法は、現在6所定の衝撃ロカを含みションと1のランダムなインパクト位置。フロント（F）、フロントボス（FB）、横（S）、リア（R）、リアボス（RB）、およびトップ（T）：所定のインパクトの位置は、以下を含みます。ランダムなインパクト位置試験は、ヘルメットの定義された許容可能なインパクトエリア内の任意の点から地域を選択してもよいです。当社の修正NOCSAEの落下塔のテストのためのインパクトの位置は、フロントトップ（FT）とフロントトップボス（FTB）インパクトの位置と命名したもので、以前に定義されたフロントとフロントボスインパクトの位置を交換するなどがあります。私たちのフロントトップとフロントトップボスインパクト位置も落下試験のためのfaceguardを含むラクロスヘルメット用NOCSAE標準のフロントと右フロントボスインパクトの場所、と同じです。交換前と前側ボスの位置を含む22ヘルメットシェル衝撃位置は、 図1に示されています。 また、私たちの本研究の修正されたヘルメット試験方法は2 faceguard IMPACを含みFGフロント命名されたトンの場所とFGボトム。 2 faceguardインパクトの位置は現在のNOCSAE faceguardの認証手続きに必要な衝撃の場所と同じです。本研究の改変NOCSAE衝撃試験用の8インパクトの位置は、 図2に示されています。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/53929/53929fig1.jpg" /> 図1：フットボールヘルメットのためのおおよそのインパクト場所。 6は現在NOCSAE落下試験ヘルメットの衝撃位置、フロント（F）、フロントボス（FB）、横（S）、トップ（T）、リア（R）、および背面ボス（RB）、および2つの提案された衝撃の場所を必要と、フロントトップ（FT）、およびフロントトップボス（FTB）。注：保護ヘッドギアのためのNOCSAEの標準的な試験方法は、フロントトップとフロントトップボス衝撃の場所が含まれていません（赤いテキストで示されている）と、この研究のために、彼らはフロントとフロントボスインパクトの位置を交換してください。 （画像NOCSAEのDOCから変更された。001-13m15b） <ahref = &quot;https://www.jove.com/files/ftp_upload/53929/53929fig1large.jpg&quot;ターゲット= &quot;_空白&quot;&gt;この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/53929/53929fig2.jpg" /> 図2：8 の衝撃位置を示すNOCSAE落下試験の設定を変更しました。フロントトップ、フロントトップボス、サイド、Faceguard（FG）フロント、リア、リアボス、トップ、およびFaceguardボトム（FB）。注：NOCSAE標準はfaceguardの添付ファイルが含まれていませんし、ここでフロントトップとフロントトップボスは、標準的なフロントとフロントボスインパクトの位置を交換してください。 （NOCSAEのDOCから変更されたイメージ。002-11m12） <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53929/53929fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> NOCSAEフットボールヘルメット規格がhのfaceguardを含めたことがないのに対し、ヘルメットのデザインは次第に、過去10年間で変更されましたフットボールヘルメットの性能仕様を評価する際にelmet。 、最近改正は/最低速度の影響（3.46メートル/秒）のために300 SIの値を失敗パスを含むようになされているが、/ 1200 SIの限界に失敗し、一般的パスは、以前は1997年に1997年17から変更されていませんNOCSAEは/基準を合否1500 SIを使用していました。ホジソンら。 （1970）は、540のSI値が非ヘルメットをかぶった死体の衝撃試験でリニア頭蓋骨骨折を生産しているが1,000より大きいのSI値は、命に危険であることが示されています。 23最近のほとんどのフットボールヘルメットは全てではないが、SI 540以下も1200 SIの制限の下を通過することが示されています。

<table>
	<tbody>
		<tr>
			<td>PCB Triaxial Accelerometers</td>
			<td>PCB</td>
			<td>Model 353B17</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TDAS2 Data Acqusition System</td>
			<td>Diversified Technical Systems, Inc.&#160;</td>
			<td>TDAS2</td>
			<td>Or an equivalent Data Acquisition System</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Current Source (Amplifier)&#160;</td>
			<td>Dytran Instruments, Inc.</td>
			<td>4114B1</td>
			<td>Or equivalent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Velocity gate and flag</td>
			<td>CADEX</td>
			<td>SB203</td>
			<td>Or an equivalent velocimeter</td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="2">Selected Football Helmet(s)/faceguard assem.</td>
			<td></td>
			<td>including chinstrap and faceguard hardware</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Height Gauge</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Torque wrench</td>
			<td>Snap-on</td>
			<td>QD21000</td>
			<td>range to 200 in/lb minimum, 5 % accuracy</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td colspan="4">Twin-wire Guide Assembly</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Drop Carriage&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/2&#34; MEP Testing Pad</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8&#34; Faceguard Testing Pad</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3&#34; MEP Calibration Pad</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1005</td>
			<td>Including Annual NOCSAE Calibration Pad Qualification Report</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/8&#34; Hook-eye Turnbuckle</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1043</td>
			<td>Forged Steel with a 6&#34; take-up&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8&#34; Wire Rope Thimble&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8&#34; Spring Music Wire&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1045</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>1/8&#34; Wire Rope, Tiller Rope Clamp, Bronze&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1046</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/8&#34; 16 x 3 &#8220; Eye Bolt&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1041</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3/8&#34; Forged Eye Bolt</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1040</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Right Angle DC Hoist Motor&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2000</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Single Groove Sheave (Pulley), 3 &#190;&#34;&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2002</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Top Mount Plate</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>18&#34; Top Channel Bracket&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2004</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Wall Mount Channel Bracket, 4&#39; x 1 5/8&#34;&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mechanical Release System&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lift Cable, Wire Rope, 20&#39; Coil&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2007</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anvil Base Plate&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2010</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anvil&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2011</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Headform Adjuster&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2012</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Headform Rotator Stem</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2013</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Headform Threaded Lock ring</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2016</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>&#160;Headform Collar&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2014</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nylon Bushing&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1803</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Small Headform&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Medium Headform&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1101</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Large Headform</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>1102</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Taper-Loc Bolt</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>DC Motor Speed Controller (Reversible)&#160;</td>
			<td>SIRC</td>
			<td>2001</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

modified drop tower impact tests for american football helmets

A modified National Operating Committee on Standards for Athletic Equipment (NOCSAE) test method for American football helmet drop impact test standards is presented that would provide better assessment of a helmet's on-field impact performance by including a faceguard on the helmet. In this study, a merger of faceguard and helmet test standards is proposed. The need for a more robust systematic approach to football helmet testing procedures is emphasized by comparing representative results of the Head Injury Criterion (HIC), Severity Index (SI), and peak acceleration values for different helmets at different helmet locations under modified NOCSAE standard drop tower tests. Essentially, these comparative drop test results revealed that the faceguard adds a stiffening kinematic constraint to the shell that lessens total energy absorption. The current NOCSAE standard test methods can be improved to represent on-field helmet hits by attaching the faceguards to helmets and by including two new helmet impact locations (Front Top and Front Top Boss). The reported football helmet test method gives a more accurate representation of a helmet's performance and its ability to mitigate on-field impacts while promoting safer football helmets.

この方法論の結果の詳細な定量分析はラッシュらによって発表されました。結果の概要と結合さfaceguardシェルヘルメットテスト方法の関連する有効性は、ローリングス量子プラス、リデル360、シャッツイオン4D、および例としてXenith X2のヘルメットを使用して、落下試験結果に表示されます（提出）。 faceguardsなしのヘルメットと比較した場合、faceguards...

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Modified Drop Tower Impact Tests for American Football Helmets

This article provides a novel technique to assess the performance characteristics of American football helmets by inclusion of faceguards during NOCSAE Standard drop tests. Additionally, two more impact locations are proposed to be added to the NOCSAE certification.

アメリカンフットボールのヘルメットのための修正されたドロップタワー衝撃試験

A modified National Operating Committee on Standards for Athletic Equipment (NOCSAE) test method for American football helmet drop impact test standards ...

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10.8K ビュー.  Mississippi State University. This article provides a novel technique to assess the performance characteristics of American football helmets by inclusion of faceguards during NOCSAE Standard drop tests. Additionally, two more impact locations are proposed to be added to the NOCSAE certification. 

ビデオ: Modified Drop Tower Impact Tests for American Football Helmets

A Simple Hanging Drop Cell Culture Protocol for Generation of 3D Spheroids

Studies of cell-cell cohesion and cell-substratum adhesion have historically been performed on monolayer cultures adherent to rigid substrates. Cells within a tissue, however, are typically encased within a closely packed tissue mass in which cells establish intimate connections with many near-neighbors and with extracellular matrix components. Accordingly, the chemical milieu and physical forces experienced by cells within a 3D tissue are fundamentally different than those experienced by cells grown in monolayer culture. This has been shown to markedly impact cellular morphology and signaling. Several methods have been devised to generate 3D cell cultures including encapsulation of cells in collagen gels1or in biomaterial scaffolds2. Such methods, while useful, do not recapitulate the intimate direct cell-cell adhesion architecture found in normal tissues. Rather, they more closely approximate culture systems in which single cells are loosely dispersed within a 3D meshwork of ECM products. Here, we describe a simple method in which cells are placed in hanging drop culture and incubated under physiological conditions until they form true 3D spheroids in which cells are in direct contact with each other and with extracellular matrix components. The method requires no specialized equipment and can be adapted to include addition of any biological agent in very small quantities that may be of interest in elucidating effects on cell-cell or cell-ECM interaction. The method can also be used to co-culture two (or more) different cell populations so as to elucidate the role of cell-cell or cell-ECM interactions in specifying spatial relationships between cells. Cell-cell cohesion and cell-ECM adhesion are the cornerstones of studies of embryonic development, tumor-stromal cell interaction in malignant invasion, wound healing, and for applications to tissue engineering. This simple method will provide a means of generating tissue-like cellular aggregates for measurement of biomechanical properties or for molecular and biochemical analysis in a physiologically relevant model.

We describe a simple, rapid method of generating 3D tissue-like spheroids and their potential application to quantify differences in cell-cell interactions.

3D楕円体の生成のための簡単​​なハンギングドロップ細胞培養プロトコル

Studies of cell-cell cohesion and cell-substratum adhesion have historically been performed on monolayer cultures adherent to rigid substrates. Cells ...

生物工学

Hydrophobic Salt-modified Nafion for Enzyme Immobilization and Stabilization

Over the last decade, there has been a wealth of application for immobilized and stabilized enzymes including biocatalysis, biosensors, and biofuel cells.1-3 In most bioelectrochemical applications, enzymes or organelles are immobilized onto an electrode surface with the use of some type of polymer matrix. This polymer scaffold should keep the enzymes stable and allow for the facile diffusion of molecules and ions in and out of the matrix. Most polymers used for this type of immobilization are based on polyamines or polyalcohols - polymers that mimic the natural environment of the enzymes that they encapsulate and stabilize the enzyme through hydrogen or ionic bonding. Another method for stabilizing enzymes involves the use of micelles, which contain hydrophobic regions that can encapsulate and stabilize enzymes.4,5 In particular, the Minteer group has developed a micellar polymer based on commercially available Nafion.6,7 Nafion itself is a micellar polymer that allows for the channel-assisted diffusion of protons and other small cations, but the micelles and channels are extremely small and the polymer is very acidic due to sulfonic acid side chains, which is unfavorable for enzyme immobilization. However, when Nafion is mixed with an excess of hydrophobic alkyl ammonium salts such as tetrabutylammonium bromide (TBAB), the quaternary ammonium cations replace the protons and become the counter ions to the sulfonate groups on the polymer side chains (Figure 1). This results in larger micelles and channels within the polymer that allow for the diffusion of large substrates and ions that are necessary for enzymatic function such as nicotinamide adenine dinucleotide (NAD). This modified Nafion polymer has been used to immobilize many different types of enzymes as well as mitochondria for use in biosensors and biofuel cells.8-12 This paper describes a novel procedure for making this micellar polymer enzyme immobilization membrane that can stabilize enzymes. The synthesis of the micellar enzyme immobilization membrane, the procedure for immobilizing enzymes within the membrane, and the assays for studying enzymatic specific activity of the immobilized enzyme are detailed below.

This article will describe the procedure for synthesizing a hydrophobically modified Nafion enzyme immobilization membrane and how to immobilize proteins and/or enzymes within the membrane and test their specific activity.

酵素の固定化と安定化のための疎水性の塩で修飾ナフィオン

Over the last decade, there has been a wealth of application for immobilized and stabilized enzymes including biocatalysis, biosensors, and biofuel ...

3D Orbital Tracking in a Modified Two-photon Microscope: An Application to the Tracking of Intracellular Vesicles

The objective of this video protocol is to discuss how to perform and analyze a three-dimensional fluorescent orbital particle tracking experiment using a modified two-photon microscope1. As opposed to conventional approaches (raster scan or wide field based on a stack of frames), the 3D orbital tracking allows to localize and follow with a high spatial (10 nm accuracy) and temporal resolution (50 Hz frequency response) the 3D displacement of a moving fluorescent particle on length-scales of hundreds of microns2. The method is based on a feedback algorithm that controls the hardware of a two-photon laser scanning microscope in order to perform a circular orbit around the object to be tracked: the feedback mechanism will maintain the fluorescent object in the center by controlling the displacement of the scanning beam3-5. To demonstrate the advantages of this technique, we followed a fast moving organelle, the lysosome, within a living cell6,7. Cells were plated according to standard protocols, and stained using a commercially lysosome dye. We discuss briefly the hardware configuration and in more detail the control software, to perform a 3D orbital tracking experiment inside living cells. We discuss in detail the parameters required in order to control the scanning microscope and enable the motion of the beam in a closed orbit around the particle. We conclude by demonstrating how this method can be effectively used to track the fast motion of a labeled lysosome along microtubules in 3D within a live cell. Lysosomes can move with speeds in the range of 0.4-0.5 &#181;m/sec, typically displaying a directed motion along the microtubule network8.

In this video protocol we track - at high speed and in three dimensions - fluorescently labeled lysosomes within living cells, using the orbital tracking method in a modified two-photon microscope.

細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

The objective of this video protocol is to discuss how to perform and analyze a three-dimensional fluorescent orbital particle tracking experiment using a ...

Gene Transfection toward Spheroid Cells on Micropatterned Culture Plates for Genetically-modified Cell Transplantation

To improve the therapeutic effectiveness of cell transplantation, a transplantation system of genetically modified, injectable spheroids was developed. The cell spheroids are prepared in a culture system on micropatterned plates coated with a thermosensitive polymer. A number of spheroids are formed on the plates, corresponding to the cell adhesion areas of 100 &#181;m diameter that are regularly arrayed in a two-dimensional manner, surrounded by non-adhesive areas that are coated by a polyethylene glycol (PEG) matrix. The spheroids can be easily recovered as a liquid suspension by lowering the temperature of the plates, and their structure is well maintained by passing them through injection needles with a sufficiently large caliber (over 27 G). Genetic modification is achieved by gene transfection using the original non-viral gene carrier, polyplex nanomicelle, which is capable of introducing genes into cells without disrupting the spheroid structure. For primary hepatocyte spheroids transfected with a luciferase-expressing gene, the luciferase is sustainably obtained in transplanted animals, along with preserved hepatocyte function, as indicated by albumin expression. This system can be applied to a variety of cell types including mesenchymal stem cells.

This protocol describes a cell transplantation system using genetically modified, injectable spheroids. Cell spheroids are cultured on micropatterned culture plates and recovered after gene introduction using polyplex nanomicelles. This system facilitates prolonged transgene expression from the transplanted cells in host animals while maintaining the innate function of the cells.

遺伝的に改変された細胞移植のためのマイクロパターン培養プレート上スフェロイド細胞に対する遺伝子導入

To improve the therapeutic effectiveness of cell transplantation, a transplantation system of genetically modified, injectable spheroids was developed. ...

Visualizing Angiogenesis by Multiphoton Microscopy In Vivo in Genetically Modified 3D-PLGA/nHAp Scaffold for Calvarial Critical Bone Defect Repair

The reconstruction of critically sized bone defects remains a serious clinical problem because of poor angiogenesis within tissue-engineered scaffolds during repair, which gives rise to a lack of sufficient blood supply and causes necrosis of the new tissues. Rapid vascularization is a vital prerequisite for new tissue survival and integration with existing host tissue. The de novo generation of vasculature in scaffolds is one of the most important steps in making bone regeneration more efficient, allowing repairing tissue to grow into a scaffold. To tackle this problem, the genetic modification of a biomaterial scaffold is used to accelerate angiogenesis and osteogenesis. However, visualizing and tracking in vivo blood vessel formation in real-time and in three-dimensional (3D) scaffolds or new bone tissue is still an obstacle for bone tissue engineering. Multiphoton microscopy (MPM) is a novel bio-imaging modality that can acquire volumetric data from biological structures in a high-resolution and minimally-invasive manner. The objective of this study was to visualize angiogenesis with multiphoton microscopy in vivo in a genetically modified 3D-PLGA/nHAp scaffold for calvarial critical bone defect repair. PLGA/nHAp scaffolds were functionalized for the sustained delivery of a growth factor pdgf-b gene carrying lentiviral vectors (LV-pdgfb) in order to facilitate angiogenesis and to enhance bone regeneration. In a scaffold-implanted calvarial critical bone defect mouse model, the blood vessel areas (BVAs) in PHp scaffolds were significantly higher than in PH scaffolds. Additionally, the expression of pdgf-b and angiogenesis-related genes, vWF and VEGFR2, increased correspondingly. MicroCT analysis indicated that the new bone formation in the PHp group dramatically improved compared to the other groups. To our knowledge, this is the first time multiphoton microscopy was used in bone tissue-engineering to investigate angiogenesis in a 3D bio-degradable scaffold in vivo and in real-time.

Visualizing Angiogenesis by Multiphoton Microscopy In Vivo in Genetically Modified 3D-PLGA/nHAp Scaffold for Calvarial Critical Bone Defect Repair

Here, we present a protocol to visualize blood vessel formation in vivo and in real-time in 3D scaffolds by multiphoton microscopy. Angiogenesis in genetically modified scaffolds was studied in a murine calvarial critical bone defect model. More new blood vessels were detected in the treatment group than in controls.

頭蓋骨の重要な骨欠損修復の多光子顕微鏡In Vivo遺伝子組み換え 3 D-PLGA/nHAp 足場による血管新生を可視化

The reconstruction of critically sized bone defects remains a serious clinical problem because of poor angiogenesis within tissue-engineered scaffolds ...

Initial Evaluation of Antibody-conjugates Modified with Viral-derived Peptides for Increasing Cellular Accumulation and Improving Tumor Targeting

Antibody-conjugates (ACs) modified with virus-derived peptides are a potentially powerful class of tumor cell delivery agents for molecular payloads used in cancer treatment and imaging due to increased cellular accumulation over current ACs. During early AC in vitro development, fluorescence techniques and radioimmunoassays are sufficient for determining intracellular localization, accumulation efficiency, and target cell specificity. Currently, there is no consensus on standardized methods for preparing cells for evaluating AC intracellular accumulation and localization. The initial testing of ACs modified with virus-derived peptides is critical especially if several candidates have been constructed. Determining intracellular accumulation by fluorescence can be affected by background signal from ACs at the cell surface and complicate the interpretation of accumulation. For radioimmunoassays, typically treated cells are fractionated and the radioactivity in different cell compartments measured. However, cell lysis varies from cell to cell and often nuclear and cytoplasmic compartments are not adequately isolated. This can produce misleading data on payload delivery properties. The intravenous injection of radiolabeled virus-derived peptide-modified ACs in tumor bearing mice followed by radionuclide imaging is a powerful method for determining tumor targeting and payload delivery properties at the in vivo phase of development. However, this is a relatively recent advancement and few groups have evaluated virus-derived peptide-modified ACs in this manner. We describe the processing of treated cells to more accurately evaluate virus-derived peptide-modified AC accumulation when using confocal microscopy and radioimmunoassays. Specifically, a method for trypsinizing cells to remove cell surface bound ACs. We also provide a method for improving cellular fractionation. Lastly, this protocol provides an in vivo method using positron emission tomography (PET) for evaluating initial tumor targeting properties in tumor-bearing mice. We use the radioisotope 64Cu (t1/2 = 12.7 h) as an example payload in this protocol.

Viral-derived peptides coupled to antibody-conjugates (ACs) is an approach gaining momentum due to the potential of delivering molecular payloads with increased tumor cell accumulation. Utilizing common methods to evaluate peptide conjugation, AC and payload intracellular accumulation, and tumor targeting, this protocol helps researchers during the key initial development phases.

細胞集積量の増加と腫瘍標的化の改善のためウイルス由来ペプチド修飾抗体複合体の初期評価

Antibody-conjugates (ACs) modified with virus-derived peptides are a potentially powerful class of tumor cell delivery agents for molecular payloads used ...

Construction and Setup of a Bench-scale Algal Photosynthetic Bioreactor with Temperature, Light, and pH Monitoring for Kinetic Growth Tests

The optimal design and operation of photosynthetic bioreactors (PBRs) for microalgal cultivation is essential for improving the environmental and economic performance of microalgae-based biofuel production. Models that estimate microalgal growth under different conditions can help to optimize PBR design and operation. To be effective, the growth parameters used in these models must be accurately determined. Algal growth experiments are often constrained by the dynamic nature of the culture environment, and control systems are needed to accurately determine the kinetic parameters. The first step in setting up a controlled batch experiment is live data acquisition and monitoring. This protocol outlines a process for the assembly and operation of a bench-scale photosynthetic bioreactor that can be used to conduct microalgal growth experiments. This protocol describes how to size and assemble a flat-plate, bench-scale PBR from acrylic. It also details how to configure a PBR with continuous pH, light, and temperature monitoring using a data acquisition and control unit, analog sensors, and open-source data acquisition software.

This paper describes the assembly process and operation of a bench-scale photosynthetic bioreactor that can be used, in conjunction with other methods, to estimate pertinent kinetic growth parameters. This system continuously monitors the pH, light, and temperature using sensors, a data acquisition and control unit, and open-source data acquisition software.

動力学的成長試験のための温度、光およびpHモニタリングを有するベンチスケール藻類光合成バイオリアクターの構築およびセットアップ

The optimal design and operation of photosynthetic bioreactors (PBRs) for microalgal cultivation is essential for improving the environmental and economic ...

Fragility Assessment of Bovine Cortical Bone Using Scratch Tests

Bone is a complex hierarchical material with five distinct levels of organization. Factors like aging and diseases like osteoporosis increase the fragility of bone, making it fracture-prone. Owing to the large socio-economic impact of bone fracture in our society, there is a need for novel ways to assess the mechanical performance of each hierarchical level of bone. Although stiffness and strength can be probed at all scales &#8211; nano-, micro-, meso-, and macroscopic &#8211; fracture assessment has so far been confined to macroscopic testing. This limitation restricts our understanding of bone fracture and constrains the scope of laboratory and clinical studies. In this research, we investigate the fracture resistance of bone from the microscopic to the mesoscopic length scales using micro scratch tests combined with nonlinear fracture mechanics. The tests are performed in the short longitudinal orientation on bovine cortical bone specimens. A meticulous experimental protocol is developed and a large number (102) of tests are conducted to assess the fracture toughness of cortical bone specimens while accounting for the heterogeneity associated with bone microstructure.

This study assesses the fracture toughness of bovine cortical bone at the sub-meso levels using microscopic scratch tests. This is an original, objective, rigorous, and reproducible method proposed to probe fracture toughness below the macroscopic scale. Potential applications are studying changes in bone fragility due to diseases like osteoporosis.

スクラッチ テストによるウシ皮質骨の脆弱性評価

Bone is a complex hierarchical material with five distinct levels of organization. Factors like aging and diseases like osteoporosis increase the ...

Fabrication and Characterization of Griffithsin-modified Fiber Scaffolds for Prevention of Sexually Transmitted Infections

Electrospun fibers (EFs) have been widely used in a variety of therapeutic applications; however, they have only recently been applied as a technology to prevent and treat sexually transmitted infections (STIs). Moreover, many EF technologies focus on encapsulating the active agent, relative to utilizing the surface to impart biofunctionality. Here we describe a method to fabricate and surface-modify poly(lactic-co-glycolic) acid (PLGA) electrospun fibers, with the potent antiviral lectin Griffithsin (GRFT). PLGA is an FDA-approved polymer that has been widely used in drug delivery due to its outstanding chemical and biocompatible properties. GRFT is a natural, potent, and safe lectin that possesses broad activity against numerous viruses including human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1). When combined, GRFT-modified fibers have demonstrated potent inactivation of HIV-1 in vitro. This manuscript describes the methods to fabricate and characterize GRFT-modified EFs. First, PLGA is electrospun to create a fiber scaffold. Fibers are subsequently surface-modified with GRFT using 1-Ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide (EDC) and N-hydroxysuccinimide (NHS)chemistry. Scanning electron microscopy (SEM) was used to assess the size and morphology of surface-modified formulations. Additionally, a gp120 or hemagglutinin (HA)-based ELISA may be used to quantify the amount of GRFT conjugated to, as well as GRFT desorption from the fiber surface. This protocol can be more widely applied to fabricate fibers that are surface-modified with a variety of different proteins.

This manuscript describes the procedure to fabricate and characterize Griffithsin-modified poly(lactic-co-glycolic acid) electrospun fibers that demonstrate potent adhesive and antiviral activity against human immunodeficiency virus type 1 infection in vitro. Methods used to synthesize, surface-modify, and characterize the resulting morphology, conjugation, and desorption of Griffithsin from surface-modified fibers are described.

作製と評価 Griffithsin 変更繊維足場の防止のため性的感染

Electrospun fibers (EFs) have been widely used in a variety of therapeutic applications; however, they have only recently been applied as a technology to ...

Visual Detection of Multiple Nucleic Acids in a Capillary Array

Multi-target, short time, and resource-affordable methodologies for the detection of multiple nucleic acids in a single, easy to operate test are urgently needed in disease diagnosis, microbial monitoring, genetically modified organism (GMO) detection, and forensic analysis. We have previously described the platform called CALM (Capillary Array-based Loop-mediated isothermal amplification for Multiplex visual detection of nucleic acids). Herein, we describe improved fabrication and performance processes for this platform. Here, we apply a small, ready-to-use cassette assembled by capillary array for multiplex visual detection of nucleic acids. The capillary array is pre-treated into a hydrophobic and hydrophilic pattern before fixing loop-mediated isothermal amplification (LAMP) primer sets in capillaries. After assembly of the loading adaptor, LAMP reaction mixture is loaded and isolated into each capillary, due to capillary force by a single pipetting step. The LAMP reactions are performed in parallel in the capillaries. The results are visually read out by illumination with a hand-held UV flashlight. Using this platform, we demonstrate monitoring of 8 frequently appearing elements and genes in GMO samples with high specificity and sensitivity. In summary, the platform described herein is intended to facilitate the detection of multiple nucleic acids. We believe it will be widely applicable in fields where high-throughput nucleic acid analysis is required.

This protocol describes the fabrication of a small, ready-to-use cassette that can be applied for visual detection of multiple nucleic acids in a single, test that is easy to operate. In this approach, a capillary array was used for multiplex and highly efficient detection of GMO targets.

キャピラリー配列で複数の核酸の視覚的検出

Multi-target, short time, and resource-affordable methodologies for the detection of multiple nucleic acids in a single, easy to operate test are urgently ...

アメリカンフットボールのヘルメットのための修正されたドロップタワー衝撃試験

要約

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この動画の章

3D楕円体の生成のための簡単なハンギングドロップ細胞培養プロトコル

酵素の固定化と安定化のための疎水性の塩で修飾ナフィオン

細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

遺伝的に改変された細胞移植のためのマイクロパターン培養プレート上スフェロイド細胞に対する遺伝子導入

頭蓋骨の重要な骨欠損修復の多光子顕微鏡In Vivo遺伝子組み換え 3 D-PLGA/nHAp 足場による血管新生を可視化

細胞集積量の増加と腫瘍標的化の改善のためウイルス由来ペプチド修飾抗体複合体の初期評価

動力学的成長試験のための温度、光およびpHモニタリングを有するベンチスケール藻類光合成バイオリアクターの構築およびセットアップ

スクラッチテストによるウシ皮質骨の脆弱性評価

作製と評価 Griffithsin 変更繊維足場の防止のため性的感染

キャピラリー配列で複数の核酸の視覚的検出

アメリカンフットボールのヘルメットのための修正されたドロップタワー衝撃試験

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3D楕円体の生成のための簡単​​なハンギングドロップ細胞培養プロトコル

酵素の固定化と安定化のための疎水性の塩で修飾ナフィオン

細胞内小胞の追跡への応用：変形二光子顕微鏡での3d軌道の追跡

遺伝的に改変された細胞移植のためのマイクロパターン培養プレート上スフェロイド細胞に対する遺伝子導入

頭蓋骨の重要な骨欠損修復の多光子顕微鏡In Vivo遺伝子組み換え 3 D-PLGA/nHAp 足場による血管新生を可視化

細胞集積量の増加と腫瘍標的化の改善のためウイルス由来ペプチド修飾抗体複合体の初期評価

動力学的成長試験のための温度、光およびpHモニタリングを有するベンチスケール藻類光合成バイオリアクターの構築およびセットアップ

スクラッチ テストによるウシ皮質骨の脆弱性評価

作製と評価 Griffithsin 変更繊維足場の防止のため性的感染

キャピラリー配列で複数の核酸の視覚的検出

3D楕円体の生成のための簡単なハンギングドロップ細胞培養プロトコル

スクラッチテストによるウシ皮質骨の脆弱性評価