Ing に感謝いたします。本研究で用いた画像解析ソフトウェア (ImageGrabber) のプログラミングにダンカン ・ ヴァン ・ トヨタプリウス。この研究を提供するための資金調達からオランダ科学研究 (グラント 016.136.372) 機構のビディ助成金によって。

すべての動物実験は、ローカル動物のケアと倫理委員会で承認されています。応じて外因ランプの端までマウスで麻酔導入からプロトコル全体は、約 2 時間かかります。
1. 顕微鏡の準備
<ol><li>14 時間後 20-25 g の重量を量る男性マウスの鎮痛と麻酔作用やフェンタニル (0.31 mg/kg)、ミダゾラム (6.25 mg/kg)、アセプロマジン (6.25 mg/kg) (FMA 麻酔) の腹腔内注入断食を一晩の上に置きます、37 ° C の体温を維持する直腸温度管理された恒温加熱パッド</li>
	<li>アルコール ベースのソリューションを使用して数回機器操作テーブルを消毒します。</li>
	<li>27 G 針を付ける 10 cm 長いポリエチレン管 (PE 20)、4 ウェイ コネクタにチューブを取り付けます。尾静脈に針を挿入し、組織接着剤のゲルを使用してそれを固執します。このカニューレは、マイクロバブル、インスリン、グルコース、麻酔の注入に使用されます。 注: 追加するヘパリン (5 U/mL)、穿刺時に滅菌生理食塩水で尾静脈 (約 10 μ L) をフラッシュするプロセスは、詰まっているカニューレの可能性を低減できます。</li>
	<li>手術の手順、実験的プロトコルを通して基、33.75 μ L/kg/分の速度で尾静脈カニューレを介して FMA 麻酔の持続静脈内投与による麻酔を維持します。</li>
	<li>腹側にマウスを配置し、上部太ももの領域を公開する耐熱性のテープを使用して、足を修正します。太ももの内転筋コンパートメントで筋肉のストレッチを標準化するのに膝関節、股関節 (後肢の足が上向き)、40-60 ° の角度のわずかな exorotation を使用します。</li>
	<li>脚の付け根と二国間脱毛クリームを使用して太ももの上部エリアで髪を削除します。湿った綿棒を使ってすべての抜け毛を収集します。</li>
	<li>顕微鏡の下にマウスを置き、10 X 16 X の倍率を使用して次の手術の手順を実行します。</li>
	<li>腹部の曲率 (図 1) のすぐ外側鼠径靱帯に平行に走る皮はさみを使用して 2 cm の切開を行います。遠位ブルドッグ クランプ (図 1) を使用して切開部の遠位側にトラクションを適用します。これはウィンドウを必要に応じて調整し、(1.12 で説明) パラフィン オイルを保持するために役立ちます。</li>
	<li>腹壁から脂肪組織を解剖します。出血を避けるため、パッドを介して直接解剖ではなく壁から脂肪パッドを優しきます。遠位方向に脂肪質のパッドで穏やかなトラクションはプロセス (図 1) を容易にするため。</li>
	<li>大腿動脈を識別し、最初の主要な枝 (薄動脈と下腹壁動脈) の下にそれに従う (図 2)。薄動脈は大内転筋で実行されている大腿動脈の最初の主要な支店は、薄筋への深い実行されます。IVM の薄動脈が使用されます。</li>
	<li>透明深在筋膜、筋肉や血管をカバーを識別します。シャープな鉗子を使用して、上向きに筋を引くし、microscissor を使用してそれをカットします。</li>
	<li>薬用液体パラフィンのドロップ (200 μ L) で露出した筋肉をカバー (室温、または 37 ° C に加温) 準備されたティッシュが乾くを防ぐために。油滴が漏れ出ないことを確認します。ブルドッグ クランプを使用して血管を浴び、パラフィン オイルを保持するために小さな空洞を作成する切開の皮膚のひだを調整します。</li>
	<li>薄動脈がコンピューターの画面に縦書きになるように校正以前顕微鏡 (16 X 光学倍率) の下にマウスを配置します。顕微鏡カメラとコンピューターを付けるイメージ データ セットから血管の直径を抽出する解析システムです。直径は、容器の 2 つの内腔側の間の距離です。継続的な監視と動脈径の測定が望ましいです。</li>
	<li>光から頭の伝導を減らすために後肢から十分な距離を (最低 20 cm) に光源を配置します。</li>
	<li>Prewarmed 超音波伝達ゲルを上部の対側の後肢に適用します。大腿骨の長軸に垂直な超音波プローブを配置します。</li>
	<li>内転筋群の断面ビューを取得する超音波プローブの方向と角度を慎重に調整します。マウスに対する超音波プローブの位置を基準と応じて測定の同じ画像平面を保つために安定させるために注意してください。</li>
	<li>30 分間を安定させるマウスをしましょう。薄動脈の直径は基準径を記録する前に 10 分間安定しているはずです。</li>
</ol>2. ベースラインと応じて測定
<ol><li>ベースライン薄動脈径が、IVM に使用されるコンピューター プログラムによって保存されたことを確認します。</li>
	<li>コールター カウンター 2.5 倍の実験の前にちょうど 10 の9泡/mL の濃度を説明35カウントとマイクロバブルを事前に準備します。</li>
	<li>
気泡は超音波検査機のコントラスト モードでのみ表示できる、イメージに影響を与えるパラメーターを制御コントラスト データ収集 (に記載されている 2.3.1) と集録中に一貫して使用します。
	<ol>
<li>超音波検査機で次の設定を使用: コントラスト利得 35 デシベル。時間オフに補償を得るため線密度高;全体; する焦点ゾーンの数4% に動力を伝達します。標準; にビーム幅を送信します。4 SV ゲート感度を 1 にオフに永続化します。関心領域の中央に焦点ゾーンの場所をレベルします。</li>
	</ol>
</li>
	<li>短いを保存 (5 s) クリップ。これは、バック グラウンド信号を計算するため使用されます。</li>
	<li>バイアルの均一懸濁に手でマイクロバブルを振る。5 μ L/分の速度で尾静脈カニューレを使用してマイクロバブルを注入を開始します。マイクロバブルの均一な懸濁液を維持するために振動渦 (毎分 200 x) に注入管を配置します。</li>
	<li>定常状態レベルに達するので、マイクロバブルの連続的な注入の 5 分を許可してください。マイクロバブル注入 (図 3 a) の開始後 5 分、10 分の超音波検査機で泡マイクロバブル破壊関数 (MBD) を使用しての時間強度曲線を取得するのに進みます。ベースライン血流データを取得するこれらの 2 つの測定の平均信号を取る。</li>
	<li>
ベースライン データを取得した後に、説明34として応じて外因クランプを起動します。インスリンとグルコース (および麻酔) を管理する (1.3 に配置) 尾カニューレを使用します。
	<ol>
<li>60 分使用インスリン持続注入 (7.5 mU/kg/分) に続いて 200 mU/kg インスリン ボーラスを導入することで 20% の可変注入に応じて状態を一言で言えば、誘導 D-グルコース euglycemia を維持するために。</li>
		<li>血糖値モニタリング デバイスと 5 分ごとの尾静脈から血糖値を評価し、5 mM 可変ブドウ糖点滴速度を調整することによって維持します。最後の 30 分間平均グルコース注入率を平均することによってインスリン感受性を決定します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>薄動脈の直径が (10, 30, 60 分) で、例えばコンピューターのプログラムで応じて外因クランプの開始の目的の期間に記載されていることを確認します。</li>
	<li>25 分後やインスリン クランプの 55 分は、30 または 60 分、MBV をそれぞれ文書化する 2 番目の (応じて) CEUS 測定を開始します。2.4 および 2.5 に記載されている同じ手順に従います。デタッチし、マイクロバブルを注入する 4 ウェイ コネクタの麻酔ポートを使用します。マイクロバブル注入の終わりの後麻酔チューブを接続し直します。</li>
	<li>IVM とインスリン注入 CEUS 測定開始後 60 分の終了後、後で分析のため心臓穿刺処置によりマウスから血を撤回します。これはまたマウスを安楽死させます。慎重に薄と大腿動脈を分析し、さらに必要な実験のために保存 (例えば、西部のしみのため前のヴィヴォ圧力図法、免疫組織化学実験36,37、 38)。</li>
</ol>3. オフライン解析

注: IVM と CEUS 測定解析をオフラインで実行して盲検治験責任医師によってする必要があります。CEUS は、一時的に MBD 関数を使用して高強度超音波による微小気泡の破壊によって大きな船から微小循環を区別するために可能性を提供しています。((A.u)、任意の単位で測定) 大きな船の信号が対応する血管内微小気泡速度のため微小循環のそれらより速く復元されます。
<ol><li>超音波マシンでオフライン ワークステーションまたはソフトウェアを使用して、分析を行う。</li>
	<li>利益率 (ROI) に微小循環を含めるの領域を描画します。大きい大腿血管 (図 3 a) を含める別の ROI を描画します。</li>
	<li>ソフトウェアの構築投資収益率コピー関数を使用して応じて、基準バック グラウンド測定用微小循環のとより大きな船・ ロワを重複してください。</li>
	<li>ベースラインからバック グラウンド測定と応じて測定値の輝度信号を減算します。</li>
	<li>大腿血管の輝度信号による微小循環の輝度信号を分割します。ベースラインと応じて MBVs を比較今すぐことができます。</li>
</ol>

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大きい動脈 (IVM を使用) と (CEUS 使用) 骨格筋の微小循環のインシュリンの血管操作を同時に推定する手法を開発しました。成功し、信頼性の高い測定の重要なステップは、: 1) 出血せず薄動脈を正しく公開します。2) 入浴動脈; パラフィン油の漏れを防止します。3) 投与による血管作動性化合物 (インスリン) および造影剤 (マイクロバブル) の特許静脈アクセス (尾静脈カニューレ) を持ちます。
筋障害の研究は肥満とインスリン抵抗性14,25,39,40のコンテキストで注目を得ています。肥満とインスリン抵抗性の血管機能の負の影響は、血管のツリーのさまざまなレベルで示されています。今後は、これらの変更を評価するために異なるアプローチが必要です。同じマウス IVM と CEUS テクニックの併用は、血管系のさまざまなレベルでのインスリンの効果を定量化するための強力なツールを提供します。IVM は、直接可視化と抵抗動脈の定量分析でき CEUS インスリンによる筋血流の変化の評価のため。
内転筋コンパートメントを勉強していくつかの利点があります。動脈は、容易にアクセス可能と切開の表面的な性質はそれに実験が完了したら 5.0 滅菌縫合で皮膚切開を閉じるすることが可能。動物は、0.1 mg/kg の用量で鎮痛剤として、実験後ブプレノルフィンを皮下注射され、暖かい環境でリカバリできます。マウスは、非常によく手順を容認し、我々 は動物の損失も 35 を超える動物は勉強で後肢の感染症を経験します。これは、フォロー アップすることができます。 または縦断的方法で動物を研究します。しかし、これらの実験に使用される動物は 1.8% 吸入イソフルラン麻酔マスクが 0.4 L/分で流れる酸素とのバランスを使用して麻酔されました。イソフルラン麻酔41,42と対照をなして FMA 麻酔は末梢のインスリン感受性を妨害しません。今後の予定は、マウスが FMA 麻酔から回復する方法も研究することです。
内転筋のコンパートメントは、ローカル仲介各種血管作動性化合物からも便利と下流の血管の効果を評価することができます。たとえば、標的組織にこれらの化合物の局所塗布は superfusion 技術28手術操作や周囲の血管43薬剤溶出カフスの注入を使用して実行可能です。さらに、薄動脈を分離し、圧力の第 1 報で勉強できます。当社グループは、他の人がこの動脈前のヴィヴォ36,37,38.に及ぼすインスリンと他の血管作動性物質を文書化する圧力の第 1 報を使用して相当な実験的証拠を集めています。
IVM の技術の使用に固有の制限は筋肉の手術博覧会、船舶を安定させるためにパラフィン油のアプリケーション。これらの操作に影響を与える動脈のネイティブ環境かどうかは不明です。ただし、図 3 aは、パラフィン オイルを浴びて薄動脈のベースラインの直径が大きく変化しないことを示しています。鉱物油が正常濃度条件44から組織を保護する、酸素の拡散を阻害することも示されています。さらに、油は動脈の基準径の変化を減らすのに役立ちます。だからこそ、パラフィン オイルを使用し、少なくとも 30 分間準備休ませて掲げました。注記のうち、オイル- またはないオイルの代わりにバッファーに格納された生理食塩水の使用は-非常に可変直径および容器 (データは示されていない) を圧迫することで結果。また、実験の最後に、パラフィン オイルを浴びて - 薄動脈を分離し、圧力の第 1 報でその反応をテスト前のヴィヴォ。パラフィン オイルを浴びて動脈反応同様にインスリンとアセチルコリン (血管拡張薬) で刺激したときの動脈を制御する (データは示されていない)。一貫性のあるインスリン依存性血管拡張反応は明らかに本 IVM プロトコルは、信頼性の高い結果を生成することを示します。
同じマウスの両方の技術を適用することの利点は、他の手法の 1 つの本質的な制限の一部を克服: 妨げられていない筋肉、体内CEUS 見積もり MBV が、個々 の船舶を見ることができない;IVM では MBV を推定できないとはいえ、個々 の船舶を見ることが可能。将来計画は、CEUS 対側の内転筋の挙睾筋の組み合わせでの IVM 顕微鏡を利用することです。この変更は、(使用 CEUS) MBV と直接光 (IVM を使用して) 毛細血管への推定を提供できます。プロトコルをさらに変更することができます。尾カニューレの使用 4 ウェイ コネクタは、5 ウェイ コネクタに切り替えることができます。これにより、我々 は (ポイント 2.9 で説明) 2 番目 CEUS 測定を実行しながら麻酔チューブをデタッチを避けることができます。我々 の経験では、マウスは現在のプロトコルを忍しました。このプロトコルを作ることができるもう一つの変更は、使用されるインスリン クランプ速度です。超生理的と考えられている 7.5 の mU/kg/分クランプ速度を使いました。研究によって低いインスリン クランプ率 (たとえば 3 mU/kg/min) を使用できます。
我々 は信頼性の高い説明プロトコルを発見した、注意を必要とする特定の制限があります。血管径の計測が最適でない場合があります。準備の手順を実行すると、モデルといくつかの経験が必要です。船の邪魔し、別の 30 分間、動脈の残りをさせる必要がある、直径を変更、新しいオイルを継ぎ足すことに、容器環境からパラフィン オイルが漏れていないことが重要です。また、パラフィン油の表面に (プロトコルの 1.14 の手順で説明) 光の反射が明るすぎる、動脈を表示するのには難しくありました。これはパラフィン油面と動脈と平行に斜めに光が落ちるように光源を指揮して相殺することができます。
結論として、本 IVM CEUS 技術の組み合わせの場合、血管系のさまざまなレベルでのインスリンの効果の違いを定量化することが可能になります。薄動脈の IVM CEUS を用いて下流の微小血管血流に貢献する上流の血管の変化への洞察力を提供します。我々 はより同じマウスにおける実験技術のいくつかの組み合わせは血管の機能を評価する支持者します。

血糖値の上昇に対し、膵臓は血流がすぐに抵抗血管と毛細血管を介して、骨格筋などの標的臓器に分散にインスリンを分泌します。骨格筋は食後のグルコース取り込み1~ 80% を担当です。骨格筋の間質へのインスリンの配信は、律速段階のブドウ糖の処分2,3、4を促進インスリンの代謝活動に示されています。10-15 分以内は、インスリンは、毛細血管の血液量 (微小血管募集)、総血流量増加5,6前に発生する効果を増加します。微小血管募集栄養素 (とインスリン) の交換7,8で利用できる内皮表面領域を展開します。インスリンを介した血管募集の前に、独立して骨格筋糖取り込み8,9の変更に関連付けられています。インスリンの血管系に及ぼす影響は、'血管インスリン感受性」と呼ばれています。
インスリンを介した血管募集とインスリン依存性の血管拡張、肥満 Zucker ラット10,11で損なわれることが示されています。さらに、減らされた毛細血管密度と無駄のないマウスは、筋インスリン抵抗12を表示します。自分の影響力のある仕事、久保田らを示した血管内皮細胞におけるシグナル伝達障害のインスリン インスリン誘発微小採用で、約 4013によって骨格筋でのグルコース取り込みを減少の減少を引き起こした。血管機能のこれらの異常のみで発生しない筋肉、他の複数の組織や臓器、心臓などにも網膜や腎臓の14,,1516。これらの例と他の研究17,18,19,20インスリンの血管作用がインスリン抵抗性の (病態) 生理学で重要なメカニズムであることを示唆していると、合併症。
インスリンが微小血管の血液量 (MBV) 骨格筋5,6を増加する実質的な証拠がある、この問題が発生するメカニズムは完全に理解9ありません。内皮依存性血管拡張血管インスリン感度21,22,23血管系のさまざまなレベルでの多くの側面に不可欠です。血管のインスリン感受性でマニフェスト自体抵抗血管のインスリンによる弛緩、微小血管の灌流交換表面積7,24、増加する前毛細血管細動脈の緩和 25。
生体顕微鏡 (IVM) はさまざまなマウス28とハムスターの頬袋のマウス背部26、27のマウスおよびラットの腸間膜虚血肢のモデルの皮下脂肪のチャンバーを含むティッシュの準備で使用されています29. 造影超音波検査 (CEUS) は骨格筋31と同様、心臓30微小循環の評価ができる別のイメージング テクニック。Rheologically 赤血球として動作し血管の内腔内に完全に残る不活性ガス封入のマイクロバブルを使用しています。これらのマイクロバブルは、定常状態を達成するために一定の速度で静脈内に注入されます。高エネルギーの超音波を使用して、気泡を破壊すると、できます。マイクロバブルの補充速度領域 (ROI) では、流速 (MFV) を表します。コントラスト画像の全信号強度は、MBV を表します。CEUS は (人間) にも繰り返し実行することができ、(バレットらで説明したインスリン抵抗性の状態は、血管の機能不全の理解が進んだ32)。
現在の研究で筋灌流、IVM と CEUS の同時使用を規制を研究のための新しい技術について述べる。ここで、マウスの後肢筋内転筋コンパートメント内のインスリンの血管アクションに焦点を当てます。この区画は、代表的な筋肉ローカル糖代謝の研究を有効にするマウス最大の骨格筋肉グループのひとつです。この区画は、準備と動脈の可視化が容易にアクセスできる標準化された手術28IVM に最適です。また、私たち自身のグループとその他が、このコンパートメント33,34CEUS ことを示されています。
IVM と CEUS 術の利点は、大きい細動脈 (フィードまたは抵抗動脈) と同じ筋群における微小循環 (毛細血管ベッド) のレベルでのインスリンの効果を評価する可能性です。さらに、2 つのメソッドの同時アプリケーションは、抵抗血管の微小循環レベルでのインスリンの時空間行動に洞察力を提供します。これは IVM を組み合わせるし、CEUS 手法は他の血管生物学分野でも実装できます。たとえば、ノックアウト モデルを用いた様々 なタンパク質や血管内皮細胞に影響を与える特定の病態生理学的条件の役割を学ぶことができます。また、複数時点の時間と研究のコスト削減で 1 つのマウスで両方の方法を使用できます。

<table><tbody><tr><td>C57BL/6 Mice</td><td>Charles river</td><td></td><td>Mice used were bred in-house</td></tr><tr><td>Vevo 2100 high-resolution ultrasound system</td><td>VisualSonics inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>MS250 non-linear transducer</td><td>VisualSonics inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vevo 2100 software</td><td>VisualSonics inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound gel (Aquasonic 100, colourless)</td><td>CSP Medical</td><td>133-1009</td><td>Ultrasound gel used to transmit the ultrasound waves</td></tr><tr><td>Vortex</td><td>VWR international</td><td>58815-234</td><td></td></tr><tr><td>Heating pad&amp;nbsp;</td><td>Pantlab</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Freestyle Precision Xceed&amp;nbsp;</td><td>Abbott</td><td></td><td>To measure blood glucose level during the hyperinsulinemic-euglycemic clamp</td></tr><tr><td>Insulin Novorapid</td><td>Novo Nordisk</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Glucose monohydrate&amp;nbsp;</td><td>Merck Millipore</td><td>1083421000</td><td></td></tr><tr><td>Buffered saline solution</td><td>B. Braun</td><td>152118062</td><td></td></tr><tr><td>PE-20 medical tubing</td><td>Becton, Dickinson and Company</td><td>427405</td><td></td></tr><tr><td>Needle, 27 Gauge&amp;nbsp;</td><td>Becton-Dickinson &amp;amp; Co</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>Medical tape</td><td>3M</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultrasound probe holder</td><td></td><td></td><td>Built In-house</td></tr><tr><td>Cotton swabs</td><td></td><td></td><td>Multiple Equivalent</td></tr><tr><td>Creme depilator</td><td></td><td></td><td>Multiple Equivalent</td></tr><tr><td>Gel tissue adhesive</td><td>Derma+flex</td><td>GA30005-2222</td><td></td></tr><tr><td>Infusion pump</td><td>Harvard Apparatus</td><td>Harvard Apparatus PHD 2000</td><td></td></tr><tr><td>Small fine straight scissors</td><td>Fine Science Tools (FST)</td><td>14090-09</td><td></td></tr><tr><td>Needle holder</td><td>Fine Science Tools (FST)</td><td>12500-12</td><td></td></tr><tr><td>Straight forceps with fine tip</td><td>Fine Science Tools (FST)</td><td>11251-20</td><td></td></tr><tr><td>Stereomicroscope</td><td>Olympus</td><td>SZX12</td><td></td></tr><tr><td>Camera</td><td>Basler</td><td>scA1390-17gc</td><td></td></tr><tr><td>Image Grabber program</td><td>Built in-house</td><td></td><td>Image acquisition system</td></tr><tr><td>Timer</td><td>VWR</td><td>33501-418</td><td></td></tr><tr><td>Syringes, 1 mL</td><td>Fisher</td><td>14-817-25</td><td></td></tr><tr><td>Light source, fiber-optic</td><td>Schott</td><td>KL1500</td><td>Ideally has adjustable arms</td></tr><tr><td>Paraffin oil</td><td></td><td></td><td>Multiple Equivalent</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Name&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Company&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Catalog Number&lt;/strong&gt;</td><td>&lt;strong&gt;Comments&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Microbubbles&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1,2-Distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholine&amp;nbsp;</td><td>Avanti Polar Lipids</td><td>850365C</td><td></td></tr><tr><td>polyoxyethylene stearate&amp;nbsp;</td><td>&amp;nbsp;Sigma</td><td>p3440</td><td></td></tr><tr><td>perfluorobutane gas&amp;nbsp;</td><td>F2 Chemicals</td><td>C4F10(g)</td><td></td></tr><tr><td>Decon FS200 ultrasonic bath&amp;nbsp;</td><td>Decon Ultrasonics Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vialmix&amp;nbsp;</td><td>Lantheus Medical Imaging</td><td>515370-0810</td><td></td></tr><tr><td>Multisizer Coulter Counter</td><td>Beckman Coulter Inc</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

combined intravital microscopy and contrast-enhanced ultrasonography of the mouse hindlimb to study insulin-induced vasodilation and muscle perfusion

インスリンの血管アクションがインスリン感受性の調節に貢献することが実証されています。筋肉の血流のインシュリンの効果は、栄養素やホルモンのインシュリン敏感なティッシュへの配信食後を調節します。ここで生体顕微鏡 (IVM) と筋肉抵抗血管を同時に可視化するマウスの後肢筋内転筋コンパートメントおよび血流の造影超音波 (CEUS) を組み合わせるためのテクニックについて述べる、微小循環体内。同時に血管のツリーの複数のレベルでのインスリンの効果の評価は、インスリンの複数の血管作動性効果と筋血流との関係を研究することが重要です。本研究では実験はマウスで行われました。まず、麻酔、血管作動性化合物、超音波造影剤 (脂質でカプセル化されたマイクロバブル) の注入の尾静脈カニューレが挿入されます。第二に、小切開は内転筋コンパートメントの動脈のツリーを公開する鼠径部で行われました。超音波プローブに断面で筋肉を表示する対側上後肢で配置します。血管径の評価基準パラメーターを評価するために、マイクロバブル、筋血流と血管の血液量 (MBV) を推定する一定の速度で注入してその後。前に、応じて外因クランプの間に適用されると、IVM と CEUS の組み合わせは動脈径、微小血管筋灌流と全身のインスリン感受性インスリン誘発性変化の評価を許可します。さらに、微小循環の反応およびインスリン抵抗性動脈の時間的関係を定量化することができます。フォロー アップすることが可能、マウス縦の時間だ、血管や全身のインスリン感受性の変化を研究するための貴重なツールとなって

応じて外因クランプ (インスリン感受性) の中にグルコース注入率は 180.21 であった ± 19.81 µmol/kg/分船を安定させるために内転筋コンパートメントにパラフィン油のローカル アプリケーションは、ベースラインの平均直径を変更していません。動脈 (μ μ m ± 17.9 68.8; 対 29.0 ± 73.6p = 0.58) が、変化を減らす助け動物テスト (図 4 a)。インスリン一貫して薄動脈径 (14.58 ± 6.2% 増 60 分;N = 9) 大幅に異なるだった (p < 0.0001) 生理食塩水注入による径変化から (-6.3 ± 4.9%;N = 6)。かなりインスリン依存性の血管拡張をした 10 分 (10.09 ± 5.1%;p = 0.002) し、30 分後、その緩慢な定員の約 95% に達した。
CEUS でインスリン一貫して筋 MBV (図 5 a) 33.5% 増 (± 31.04%、N = 7; p = 0.0009) 生理食塩水注入と比較されたとき (-10.63 ± 27.87%、N = 6) (図 5 b)。表示されるデータは、筋大腿血管に分割した MBV の信号強度です。これは、実験的変化 (データは示されていない) の別のマウスと異なる測定の間減少します。大腿血管の信号強度はマイクロバブル循環 (図 3) の濃度を直線的に対応しています。マイクロバブル使用 (図 3 D) の濃度の違いを理論的に大腿血管の信号を補正を修正します。データは、平均 ± 標準偏差、このセクションに掲載されています。
<img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54912/54912fig1.jpg"> 図 1:、後肢の内転筋コンパートメントの手術博覧会。(A) を切開で、脚の付け根、鼠径靭帯の方向に平行。(B) 遠位方向 (黒矢印) に脂肪のパッドで穏やかなトラクション結合組織の脂肪パッドと腹壁の間 (*) が表示されます。(C) 皮膚切開のひだは、血管を浴び、パラフィン オイルを保持するために小さいキャビティを作成するブルドッグのクランプを使用して調整できます。校正の顕微鏡を使用して準備された薄動脈を表示した後、(D) 超音波プローブは対側の上部の後肢に配置されます。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54912/54912fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/54912/54912fig2.jpg"> 図 2:マウスの後肢の生体顕微鏡観察します。大腿動脈 (A) (B) 下腹壁動脈と内転筋群 (D) 経由で実行される薄動脈 (C) を生じさせる。薄動脈は、校正された顕微鏡を用いた IVM に使用されます。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54912/54912fig2large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/54912/54912fig3.jpg"> 図 3:信号筋肉血管の血液量と大腿血管の造影超音波の強度。(A) 男性マウスの上側後肢でマイクロバブル持続注入中に画像表示デジタル イメージング プラットフォームのモード非線形コントラストのビュー。右側のパネル: 2 ・ ロワは、MBV の筋肉と大腿の血管を表すに描かれています。内転筋コンパートメントの表面的な部分のみ信号として投資収益率で強度は深さの減少します。左側のパネル: 筋肉 MBV ROI から時間強度曲線。垂直線は、高エネルギーの波とマイクロバブル (MBD) の破壊を表しています。直後、MBD に造影剤が徐々 に気泡を埋めるために開始する画像の面で存在しません。10-15 秒後コントラスト強調のピークに達しています。(B・D)2.5 x 109泡/mL の注入率が倍増した定常信号に達した後 (5, 10, 20 μ L/分)。信号強度から筋肉 MBV (B)、大腿血管 (C) 並列循環のマイクロバブル濃度の倍増します。(D) 訂正筋肉 MBV のため大腿血管の信号は異なるマイクロバブル濃度による信号強度変動を削除します (N = 9; - エラーバーは標準偏差を表す)。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54912/54912fig3large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/54912/54912fig4.jpg"> 図 4:薄動脈の生体顕微鏡測定。(A) パラフィン油が安定した平均基準径 (68.8 ツオ対 73.6 μ m を維持しながら (油を適用した後は、パラフィン vs 17.9 μ m なし 29.0 μ m) の異なる動物の薄動脈の変化を低減p = 0.58)。(B) 動脈直径ベースライン時とインスリンまたは生理食塩水の輸液の 60 分後。60 分注入は一貫して薄動脈を拡張後インスリン (p < 0.0001) 生理食塩水輸液と比較した場合。(C) インスリン依存性血管拡張反応は注入開始後 10 分で発生します (p = 0.002) 30 分誤差範囲を表す標準偏差での最大値の 95% に達すると独立スチューデントの T 検定は統計情報に使用されます。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54912/54912fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。
<img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/54912/54912fig5.jpg"> 図 5:マウスの後肢筋内転筋コンパートメントの造影超音波による微小血管の血液体積測定。(A) インスリンは、インスリン注入開始後 MBV 30 分で一貫して増加につながった。(B)、応じてとベースライン測定 (MBV 変更) の違いは、インスリンを介した血管募集として示されます。インスリン誘発 33.5% (± 31.04%, p = 0.016;N = 7) 生理食塩水輸液と比較して血管の募集 (-10.63 ± 27.87%、N = 6)。誤差範囲を表す標準偏差;独立スチューデントの T 検定は統計情報に使用されます。<a href="http://cloudflare.jove.com/files/ftp_upload/54912/54912fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

Watch this Scientific Journal Video about Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion at JoVE.

Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion

インスリン依存性血管拡張筋の血流を調節するなり、微小血管表面積 (微小血管募集) 溶質の交換に使用できる血液と組織の間質の間。生体顕微鏡を組み合わせたと造影超音波検査は同時に大きな船と微小循環でインスリンの作用を評価するために提示体内。

インスリン依存性血管拡張や筋肉の血流を研究する生体顕微鏡観察とマウスの後肢の造影超音波検査

It has been demonstrated that insulin's vascular actions contribute to regulation of insulin sensitivity. Insulin's effects on muscle perfusion regulate ...

combined-intravital-microscopy-contrast-enhanced-ultrasonography

Research

JoVE Journal

Medicine

8.7K ビュー.  VU University Medical Center. インスリン依存性血管拡張筋の血流を調節するなり、微小血管表面積 (微小血管募集) 溶質の交換に使用できる血液と組織の間質の間。生体顕微鏡を組み合わせたと造影超音波検査は同時に大きな船と微小循環でインスリンの作用を評価するために提示体内。

ビデオ: Combined Intravital Microscopy and Contrast-enhanced Ultrasonography of the Mouse Hindlimb to Study Insulin-induced Vasodilation and Muscle Perfusion

In vivo Micro-circulation Measurement in Skeletal Muscle by Intra-vital Microscopy

BACKGROUND: Regulatory factors and detailed physiology of in vivo microcirculation have remained not fully clarified after many different modalities of imaging had invented. While many macroscopic parameters of blood flow reflect flow velocity, changes in blood flow velocity and red blood cell (RBC) flux does not hold linear relationship in the microscopic observations. There are reports of discrepancy between RBC velocity and RBC flux, RBC flux and plasma flow volume, and of spatial and temporal heterogeneity of flow regulation in the peripheral tissues in microscopic observations, a scientific basis for the requirement of more detailed studies in microcirculatory regulation using intravital microscopy. METHODS: We modified Jeff Lichtman's method of in vivo microscopic observation of mouse sternomastoid muscles. Mice are anesthetized,
ventilated, and injected with PKH26L-fluorescently labeled RBCs for microscopic observation.RESULT &amp; CONCLUSIONS: Fluorescently labeled RBCs are detected and distinguished well by a wide-field microscope. Muscle contraction evoked by electrical stimulation induced increase in RBC flux. Quantification of other parameters including RBC velocity and capillary density were feasible. Mice tolerated well the surgery, injection of stained RBCs, microscopic observation, and electrical stimulation. No muscle or blood vessel damage was observed, suggesting that our method is relatively less invasive and suited for long-term observations.

A new versatile method for observation of microcirculation is presented. It is considered suitable for long-term observation, and for combination with pharmacophysiological or molecular biological interventions.

イントラ不可欠な顕微鏡による骨格筋のin vivo微小循環測定における

BACKGROUND: Regulatory factors and detailed physiology of in vivo microcirculation have remained not fully clarified after many different modalities of ...

生物学

Programming Stem Cells for Therapeutic Angiogenesis Using Biodegradable Polymeric Nanoparticles

Controlled vascular growth is critical for successful tissue regeneration and wound healing, as well as for treating ischemic diseases such as stroke, heart attack or peripheral arterial diseases. Direct delivery of angiogenic growth factors has the potential to stimulate new blood vessel growth, but is often associated with limitations such as lack of targeting and short half-life in vivo. Gene therapy offers an alternative approach by delivering genes encoding angiogenic factors, but often requires using virus, and is limited by safety concerns. Here we describe a recently developed strategy for stimulating vascular growth by programming stem cells to overexpress angiogenic factors in situ using biodegradable polymeric nanoparticles. Specifically our strategy utilized stem cells as delivery vehicles by taking advantage of their ability to migrate toward ischemic tissues in vivo. Using the optimized polymeric vectors, adipose-derived stem cells were modified to overexpress an angiogenic gene encoding vascular endothelial growth factor (VEGF). We described the processes for polymer synthesis, nanoparticle formation, transfecting stem cells in vitro, as well as methods for validating the efficacy of VEGF-expressing stem cells for promoting angiogenesis in a murine hindlimb ischemia model.

We describe the method of programming stem cells to overexpress therapeutic factors for angiogenesis using biodegradable polymeric nanoparticles. Processes described include polymer synthesis, transfecting adipose-derived stem cells in vitro, and validating the efficacy of programmed stem cells to promote angiogenesis in a murine hindlimb ischemia model.

生分解性ポリマーナノ粒子を用いた治療的血管形成のためのプログラミング幹細胞

Controlled vascular growth is critical for successful tissue regeneration and wound healing, as well as for treating ischemic diseases such as stroke, ...

生物工学

Murine Model of Hindlimb Ischemia 

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide. Medical therapies for symptomatic relief are limited. Surgical or endovascular interventions are useful for some individuals, but long-term results are often disappointing. As a result, there is a need for developing new therapies to treat PAD. The murine hindlimb ischemia preparation is a model of PAD, and is useful for testing new therapies. When compared to other models of tissue ischemia such as coronary or cerebral artery ligation, femoral artery ligation provides for a simpler model of ischemic tissue. Other advantages of this model are the ease of access to the femoral artery and low mortality rate. 
In this video, we demonstrate the methodology for the murine model of unilateral hindimb ischemia. The specific materials and procedures for creating and evaluating the model will be described, including the assessment of limb perfusion by laser Doppler imaging. This protocol can also be utilized for the transplantation and non-invasive tracking of cells, which is demonstrated by Huang et al.1.

Murine Model of Hindlimb Ischemia

The surgical procedure for induction of unilateral hindlimb ischemia is demonstrated, with confirmation of ischemia by laser Doppler perfusion imaging.

後脚虚血症のマウスモデル

In the United States, peripheral arterial disease (PAD) affects about 10 million individuals, and is also prevalent worldwide.  Medical therapies for ...

Osmotic Drug Delivery to Ischemic Hindlimbs and Perfusion of Vasculature with Microfil for Micro-Computed Tomography Imaging

Preclinical research in animal models of peripheral arterial disease plays a vital role in testing the efficacy of therapeutic agents designed to stimulate microcirculation. The choice of delivery method for these agents is important because the route of administration profoundly affects the bioactivity and efficacy of these agents1,2. In this article, we demonstrate how to locally administer a substance in ischemic hindlimbs by using a catheterized osmotic pump. This pump can deliver a fixed volume of aqueous solution continuously for an allotted period of time. We also present our mouse model of unilateral hindlimb ischemia induced by ligation of the common femoral artery proximal to the origin of profunda femoris and epigastrica arteries in the left hindlimb. Lastly, we describe the in vivo cannulation and ligation of the infrarenal abdominal aorta and perfusion of the hindlimb vasculature with Microfil, a silicone radiopaque casting agent. Microfil can perfuse and fill the entire vascular bed (arterial and venous), and because we have ligated the major vascular conduit for exit, the agent can be retained in the vasculature for future ex vivo imaging with the use of small specimen micro-CT3.

We show here the in vivo insertion of an osmotic pump for constant local drug delivery and the creation of hindlimb ischemia in a mouse model. Moreover, the hindlimb vasculature is perfused with Microfil, a silicone radiopaque agent, to prepare for micro-computed tomography (micro-CT) imaging.

マイクロコンピュータ断層撮影イメージング用Microfilで虚血後肢と血管系の灌流に浸透ドラッグデリバリー

Preclinical research in animal models of peripheral arterial disease plays a vital role in testing the efficacy of therapeutic agents designed to ...

医学

Methods for Acute and Subacute Murine Hindlimb Ischemia

Peripheral artery disease (PAD) is a leading cause of cardiovascular morbidity and mortality in developed countries, and animal models that reliably reproduce the human disease are necessary to develop new therapies for this disease. The mouse hindlimb ischemia model has been widely used for this purpose, but the standard practice of inducing acute limb ischemia by ligation of the femoral artery can result in substantial tissue necrosis, compromising investigators&#39; ability to study the vascular and skeletal muscle tissue responses to ischemia. An alternative approach to femoral artery ligation is the induction of gradual femoral artery occlusion through the use of ameroid constrictors. When placed around the femoral artery in the same or different locations as the sites of femoral artery ligation, these devices occlude the artery over 1 - 3 days, resulting in more gradual, subacute ischemia. This results in less substantial skeletal muscle tissue necrosis, which may more closely mimic the responses seen in human PAD. Because genetic background influences outcomes in both the acute and subacute ischemia models, consideration of the mouse strain being studied is important in choosing the best model. This paper describes the proper procedure and anatomical placement of ligatures or ameroid constrictors on the mouse femoral artery to induce subacute or acute hindlimb ischemia in the mouse.

Surgical induction of hindlimb ischemia in the mouse is useful to examine angiogenesis, however this is compromised in certain inbred mouse strains that display marked ischemia-induced tissue necrosis. Methods are described to induce subacute limb ischemia using ameroid constrictors to circumvent this problem through the induction of gradual arterial occlusion.

急性および亜急性ネズミ後肢虚血のための方法

Peripheral artery disease (PAD) is a leading cause of cardiovascular morbidity and mortality in developed countries, and animal models that reliably ...

Laser Doppler: A Tool for Measuring Pancreatic Islet Microvascular Vasomotion In Vivo

As a functional status of microcirculation, microvascular vasomotion is important for the delivery of oxygen and nutrients and the removal of carbon dioxide and waste products. The impairment of microvascular vasomotion might be a crucial step in the development of microcirculation-related diseases. In addition, the highly vascularized pancreatic islet is adapted to support endocrine function. In this respect, it seems possible to infer that the functional status of pancreatic islet microvascular vasomotion might affect pancreatic islet function. Analyzing the pathological changes of the functional status of pancreatic islet microvascular vasomotion may be a feasible strategy to determine contributions that pancreatic islet microcirculation makes to related diseases, such as diabetes mellitus, pancreatitis, etc. Therefore, this protocol describes using a laser Doppler blood flow monitor to determine the functional status of pancreatic islet microvascular vasomotion, and to establish parameters (including average blood perfusion, amplitude, frequency, and relative velocity of pancreatic islet microvascular vasomotion) for evaluation of the microcirculatory functional status. In a streptozotocin-induced diabetic mouse model, we observed an impaired functional status of pancreatic islet microvascular vasomotion. In conclusion, this approach for assessing pancreatic islet microvascular vasomotion in vivo may reveal mechanisms relating to pancreatic islet diseases.

Laser Doppler: A Tool for Measuring Pancreatic Islet Microvascular Vasomotion In Vivo

Pancreatic islet microvascular vasomotion regulates islet blood distribution and maintains the physiological function of islet &#946; cells. This protocol describes using a laser Doppler monitor to determine the functional status of pancreatic islet microvascular vasomotion in vivo and to assess the contributions of pancreatic islet microcirculation to pancreatic-related diseases.

レーザーのドップラー: 膵微小血管皮膚血管運動In Vivo測定のためのツール

As a functional status of microcirculation, microvascular vasomotion is important for the delivery of oxygen and nutrients and the removal of carbon ...

Quantitative Micro-CT Analysis of Aortopathy in a Mouse Model of &#946;-aminopropionitrile-induced Aortic Aneurysm and Dissection

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of aortic disease exist, in vivo imaging of the vasculature has been limited. In recent years, micro-computerized tomography (micro-CT) has emerged as a preferred modality for imaging both large and small vessels both in vivo and ex vivo. In conjunction with a method of vascular casting, we have successfully used micro-CT to characterize the frequency and distribution of aortic pathology in &#946;-aminopropionitrile-treated C57/Bl6 mice. Technical limitations of this method include variations in the quality of the perfusion introduced by poor animal preparation, the application of proper methodologies for vessel size quantification, and the non-survivability of this procedure. This article details a methodology for the intravascular perfusion of a lead-based radiopaque silicone rubber for the quantitative characterization of aortopathy in a mouse model of aneurysm and dissection. In addition to visualizing aortic pathology, this method may be used for examining other vascular beds in vivo or vascular beds removed post-mortem.

This article describes a detailed methodology of using a radiopaque lead-based silicone rubber to perfuse the murine vasculature for aortic diameter quantification in a mouse model of aortic aneurysm and dissection.

Aortopathy β-アミノプロピオニ トリルによる大動脈瘤と解離のマウスモデルでのマイクロ CT 定量分析

Aortic aneurysm and dissection is associated with significant morbidity and mortality in the population and can be highly lethal. While animal models of ...

Assessing Therapeutic Angiogenesis in a Murine Model of Hindlimb Ischemia

Critical limb ischemia (CLI) is a serious condition that entails a high risk of lower limb amputation. Despite revascularization being the gold-standard therapy, a considerable number of CLI patients are not suited for either surgical or endovascular revascularization. Angiogenic therapies are emerging as an option for these patients but are currently still under investigation. Before application in humans, those therapies must be tested in animal models and its mechanisms must be clearly understood. An animal model of hindlimb ischemia (HLI) has been developed by the ligation and excision of the distal external iliac and femoral arteries and veins in mice. A comprehensive panel of tests was assembled to assess the effects of ischemia and putative angiogenic therapies at functional, histologic and molecular levels. Laser Doppler was used for the flow measurement and functional assessment of perfusion. Tissue response was evaluated by the analysis of capillary density after staining with the anti-CD31 antibody on histological sections of gastrocnemius muscle and by measurement of collateral vessel density after diaphonization. Expression of angiogenic genes was quantified by RT-PCR targeting selected angiogenic factors exclusively in endothelial cells (ECs) after laser capture microdissection from mice gastrocnemius muscles. These methods were sensitive in identifying differences between ischemic and non-ischemic limbs and between treated and non-treated limbs. This protocol provides a reproducible model of CLI and a framework for testing angiogenic therapies.

Here, a critical hindlimb ischemia experimental model is presented followed by a battery of functional, histologic and molecular tests&#160;to assess the effectiveness of angiogenic therapies.&#8203;

ヒンドリム虚血のマウスモデルにおける治療血管新生の評価

Critical limb ischemia (CLI) is a serious condition that entails a high risk of lower limb amputation. Despite revascularization being the gold-standard ...

Laser Doppler Perfusion Imaging in the Mouse Hindlimb

Blood flow recovery is a critical outcome measure after experimental hindlimb ischemia or ischemia-reperfusion. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) is a common, noninvasive, repeatable method for assessing blood flow recovery. The technique calculates overall blood flow in the sampled tissue from the Doppler shift in frequency caused when a laser hits moving red blood cells. Measurements are expressed in arbitrary perfusion units, so the contralateral non-intervened upon leg is usually used to help control measurements. Measurement depth is in the range of 0.3-1 mm; for hindlimb ischemia, this means that dermal perfusion is assessed. Dermal perfusion is dependent on several factors&#8212;most importantly skin temperature and anesthetic agent, which must be carefully controlled to result in reliable readings. Furthermore, hair and skin pigmentation can alter the ability of the laser to either reach or penetrate to the dermis. This article demonstrates the technique of LDPI in the mouse hindlimb.

Here, we present a protocol that demonstrates the technique and necessary controls for Laser Doppler perfusion imaging to measure blood flow in the mouse hindlimb.

マウスの後肢におけるレーザードップラー灌流イメージング

Blood flow recovery is a critical outcome measure after experimental hindlimb ischemia or ischemia-reperfusion. Laser Doppler perfusion imaging (LDPI) is ...

Multiphoton Intravital Imaging for Monitoring Leukocyte Recruitment during Arteriogenesis in a Murine Hindlimb Model

Arteriogenesis strongly depends on leukocyte and platelet recruitment to the perivascular space of growing collateral vessels. The standard approach for analyzing collateral arteries and leukocytes in arteriogenesis is ex vivo (immuno-) histological methodology. However, this technique does not allow the measurement of dynamic processes such as blood flow, shear stress, cell-cell interactions, and particle velocity. This paper presents a protocol to monitor in vivo processes in growing collateral arteries during arteriogenesis utilizing intravital imaging. The method described here is a reliable tool for dynamics measurement and offers a high-contrast analysis with minimal photo-cytotoxicity, provided by multiphoton excitation microscopy. Prior to analyzing growing collateral arteries, arteriogenesis was induced in the adductor muscle of mice by unilateral ligation of the femoral artery.
After the ligation, the preexisting collateral arteries started to grow due to increased shear stress. Twenty-four hours after surgery, the skin and subcutaneous fat above the collateral arteries were removed, constructing a pocket for further analyses. To visualize blood flow and immune cells during in vivo imaging, CD41-fluorescein isothiocyanate (FITC) (platelets) and CD45-phycoerythrin (PE) (leukocytes) antibodies were injected intravenously (i.v.) via a catheter placed in the tail vein of a mouse. This article introduces intravital multiphoton imaging as an alternative or in vivo complementation to the commonly used static ex vivo (immuno-) histological analyses to study processes relevant for arteriogenesis. In summary, this paper describes a novel and dynamic in vivo method to investigate immune cell trafficking, blood flow, and shear stress in a hindlimb model of arteriogenesis, which enhances evaluation possibilities notably.

The recruitment of leukocytes and platelets constitutes an essential component necessary for the effective growth of collateral arteries during arteriogenesis. Multiphoton microscopy is an efficient tool for tracking cell dynamics with high spatio-temporal resolution in vivo and less photo-toxicity to study leukocyte recruitment and extravasation during arteriogenesis.

マウス後肢モデルにおける動脈形成中の白血球動員モニタリングのための多光子生体内イメージング

Arteriogenesis strongly depends on leukocyte and platelet recruitment to the perivascular space of growing collateral vessels. The standard approach for ...

インスリン依存性血管拡張や筋肉の血流を研究する生体顕微鏡観察とマウスの後肢の造影超音波検査

要約

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この動画の章

イントラ不可欠な顕微鏡による骨格筋のin vivo微小循環測定における

生分解性ポリマーナノ粒子を用いた治療的血管形成のためのプログラミング幹細胞

後脚虚血症のマウスモデル

マイクロコンピュータ断層撮影イメージング用Microfilで虚血後肢と血管系の灌流に浸透ドラッグデリバリー

急性および亜急性ネズミ後肢虚血のための方法

レーザーのドップラー: 膵微小血管皮膚血管運動In Vivo測定のためのツール

Aortopathy β-アミノプロピオニトリルによる大動脈瘤と解離のマウスモデルでのマイクロ CT 定量分析

ヒンドリム虚血のマウスモデルにおける治療血管新生の評価

マウスの後肢におけるレーザードップラー灌流イメージング

マウス後肢モデルにおける動脈形成中の白血球動員モニタリングのための多光子生体内イメージング

インスリン依存性血管拡張や筋肉の血流を研究する生体顕微鏡観察とマウスの後肢の造影超音波検査

要約

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イントラ不可欠な顕微鏡による骨格筋のin vivo微小循環測定における

生分解性ポリマーナノ粒子を用いた治療的血管形成のためのプログラミング幹細胞

後脚虚血症のマウスモデル

マイクロコンピュータ断層撮影イメージング用Microfilで虚血後肢と血管系の灌流に浸透ドラッグデリバリー

急性および亜急性ネズミ後肢虚血のための方法

レーザーのドップラー: 膵微小血管皮膚血管運動In Vivo測定のためのツール

Aortopathy β-アミノプロピオニ トリルによる大動脈瘤と解離のマウスモデルでのマイクロ CT 定量分析

ヒンドリム虚血のマウスモデルにおける治療血管新生の評価

マウスの後肢におけるレーザードップラー灌流イメージング

マウス後肢モデルにおける動脈形成中の白血球動員モニタリングのための多光子生体内イメージング

Aortopathy β-アミノプロピオニトリルによる大動脈瘤と解離のマウスモデルでのマイクロ CT 定量分析