著者らは、感染実験の技術支援をしてくれたLynne Foster、SEMへのアクセスについてワシントン大学セルアーイメージングセンター(WUCCI)のJames Fitzpatrick氏、UTI89kanR UPEC株についてScott Hultgren氏、原稿を批判的に読んだDavid Hunstad氏に感謝している。
この研究は、米国国立科学財団(VPO#DGE - 1143954の大学院研究フェローシップ)、ワシントン大学医学部の女性感染症研究センター(NMGへのパイロット研究賞)、米国心臓協会:#12POST12050583(NMG)および#14POST20020011(NMG)、および国立衛生研究所、NIAID:R01 AI114635(ALL)およびNIDDKの支援を受けました。 R21 DK092586 (すべて)、P50 DK064540-11 (SJH、プロジェクト III PI:ALL) および K01 DK110225-01A1 (NMG)動物実験のいくつかは、NCRR助成金C06 RR015502によって支援された施設で行われた。ワシントン大学細胞イメージングセンター(WUCCI;SEMが実施された場所)とMSJは、ワシントン大学医学部、ワシントン大学小児発見研究所、セントルイス小児病院(CDI-CORE-2015-505)、バーンズ・ユダヤ人病院財団(3770)、国立神経障害・脳卒中研究所(NS086741)の支援を受けた。資金提供者は、研究デザイン、データ収集と分析、出版の決定、または原稿の準備において何の役割も持っていませんでした。

著者らは、この研究に関連する利益相反はないと宣言している。

このモデルの最初の重要なステップは、一次UTI期にUPEC細菌尿症をクリアしていないマウスを同定する。これらのマウスは、G.膣炎曝露後のUPEC細菌尿症の割合を混乱させるため、実験から除去する必要があります。最初のUPEC接種後、細菌クリアランスを監視するために毎週尿を採取する必要があります。C57BL/6マウスの約65~80%が4週間以内にUTI89kanR感染をクリアします。他の近交系マウス系統は、UPECクリアランス42,43およびリザーバ形成に対して異なる傾向を有し、したがって、このモデルには適していない可能性がある。第2の重要な点は、実証研究により、PBSのみに曝露された対照マウスで起こるバックグラウンド自然発生よりも有意な貯水池出現を引き起こすために、G.膣炎の2つの連続接種(12時間または1wk間隔のいずれか)が必要であることが決定されたことである。2つの連続露光の間の他の時間はテストされていないが、同様の結果をもたらす可能性がある。UPEC膀胱力価の低下は、G.膣炎曝露が1wk間隔39を与えられたモデルでのみ観察されたことに注意することが重要です。2回以上のばく露を投与することができるが、経験的証拠は、反復カテーテル検査のみで出現が増加することを示唆しており、その結果の解釈を混乱させるか、または曝露群と対照群の違いを区別するためにより多くの動物を必要とする可能性がある。最後に、in situ膀胱固定法にはいくつかの重要なステップがある。固定剤がクランプされた膀胱内に留まるようにするには、いくつかのスキルが必要です。収縮した膀胱はSEMでイメージングするのがより困難になります。固定剤含有カテーテルで尿路上皮を掻き取ると、G.膣炎によって引き起こされるものとは無関係に尿路上皮剥離を誘発することができるので、固定液を膀胱に接種するときは非常に穏やかであることも不可欠です。固定剤カクテルに記載されているすべての濃度は最終濃度です。これらの不適切な比率は、不十分な固定および細胞の腫脹または収縮をもたらし得る。固定液は、細胞および組織における温度ショックを避けるために生理学的温度に加温されるべきである。温暖化はまた、原形質膜を通る固定剤の拡散速度にわずかな改善をもたらす。SEM分析用に調製したサンプルではオスミウム染色を省略できることがよくありますが、臨界点乾燥時の脂質を安定化させ、細胞膜の亀裂を防ぐためには、このプロトコルで不可欠なステップです。
このプロトコルは、他のUPECおよび/または G.膣 炎株がリザーバを形成し、それらの出現を誘発する能力についてそれぞれ試験するために変更することができる。他の実験因子、例えば、他の膣細菌(例えば、 ラクトバチルス・クリスパトゥス PVAS100)または熱死 したG.膣炎への曝露なども加えることができ、いずれもこのモデルにおいて病理を実証していない39。試験する他の細菌株を選択する場合、標準的な接種物濃度をすべての実験で使用できるように、一貫した増殖を実証することが重要です。JCP8151BSmR の成長は、嫌気性チャンバー内で最適化されています。この株は嫌気性GasPakシステムで培養できる可能性が高いが、これには堅牢な細菌増殖を確実にするための最適化が必要である。最後に、モデル内の特定のステップのタイミングを変更できる場合があります。例えば、UPECリザーバ形成段階の早い時点で尿を収集して、CFUまたは宿主の応答を監視することができる。初期の時点(3、6、12hpi)で尿サンプルを採取することの感染の進行または貯水池の確立に対する悪影響は、このモデルでは観察されていない。UPECリザーバの出現は、2回のJCP8151BSmR 用量が12時間または1wk投与された後に起こることが報告されているが、他の時間間隔はまだ試験されていない。また、多くのマウスがこの時までに細菌尿症をクリアするので、UPECリザーバ形成段階を2週間(4週間ではなく)に減少させることによって、モデルの全期間を短縮することも可能であり得る。化学角質除去剤への膀胱曝露後のUPEC出現を調べる以前の研究は、1または2wkのUPECリザーバ形成段階17、18を使用した。しかし、UPEC細菌尿症のクリアランスの時間を減らすことは、より多くの動物を実験から淘汰する必要があるという犠牲を払って来るかもしれません。最後に、膀胱のSEM分析は、尿路上皮に対する G.膣 炎の効果の持続時間を観察するために、追加の時点で行うことができる。
トラブルシューティングに関しては、特に膀胱SEM分析に関していくつかの重要な考慮事項があります。使用されるマウスの背景および存在する炎症の量に応じて、いくつかの膀胱は非常に薄い壁で提示される。これらの膀胱は臨界点乾燥中によりカールする傾向があり、カウリーシェルのような形状をもたらす可能性がある。この場合、最良の方法は、カールした界面に沿って殻状の膀胱を半分に切断し、次に2回目に張り出した組織の大部分を除去することである。切断は、PTFEコーティングされた両刃のカミソリ刃で最適に機能します。過剰な脂肪は、オスミウム染色工程中に可溶化することがあります。これは、すすぎおよび脱水ステップ中に洗い流されない可能性があり、その後の乾燥中に膀胱表面に沈降する可能性がある不要な不溶性脂肪滴をもたらし得る。これらの液滴は、小さな球体またはサンプル上に散在する円盤状の構造として現れることがあります(図4D)。これは、できるだけ多くの脂肪組織が膀胱の周囲から除去されることを確実にすることによって緩和することができる。白金はイリジウムコーティングの代わりに使用できますが、細かい構造の詳細のマスキングを減らすために厚さを最小限に抑える必要があります。コーティング中に回転ステージを使用することを強くお勧めします。
このモデルの1つの制限は、多数のマウスを必要とすることである。C57BL/6マウスの65~80%のみがUPEC細菌尿症をクリアし 、その後のG.膣炎 またはPBS接種に適している( 図2C参照)。1群あたり10〜12匹のマウス(G.膣炎 接種対PBS)を得るためには、〜30匹のマウスを最初にUPECに感染させるべきである。さらに、統計的有意性を検出するために必要な生物学的複製を達成するためには、複数の実験が必要になる可能性が高い。ばく露を1wk間隔で行った場合、UPECの出現はPBSにばく露されたマウスの14%で発生した(図3B)。したがって、PBS対照(0.8で動力を与えられた;α=0.05[片側])と比較して 、G.膣炎 ばく露マウスにおけるUPEC rUTIの有意な増加を検出するには、各ばく露群について少なくとも40匹のマウスの累積合計を試験する必要がある。追加の考慮事項は、これらの実験が高価で労働集約的であるということです。マウスはUPECクリアランスについて毎週監視する必要があり、実験の時間経過は 、G. vaginalis が12時間の時間枠で2回与えられるか、または1wk間隔で2回与えられるかに応じて4〜5wkである。SEMは労働集約的であり、顕微鏡の可用性とサービス料によってはコストがかかる場合があります。SEM用に膀胱全体を準備すると、分析のための豊富な材料が提供されますが、欠点は、各膀胱の分析に時間がかかる可能性があることです。したがって、尿および組織力価に使用されるより高い動物数と比較して、限られた数の膀胱しかSEMによって分析できない可能性が高い。さらに、膀胱「カップ」の曲面の高品質の画像を得るには、視認性を妨げる可能性のある影のためにスキルが必要です。膀胱SEMは尿路上皮剥離を視覚化するための有用なツールであるが、この方法は主に定性的である。試料は丸く固定されており、また固定液にグルタルアルデヒドを使用しているため、蛍光発現菌を光学顕微鏡でスクリーニングすることはできない。免疫染色および化学染料は、ほとんどの抗原およびオスミウムを架橋し、抗原部位をマスクし、組織を暗くするグルタルアルデヒドの使用のために、このプロセスと互換性がない。つまり、SEM技術は、細胞サイズ48、49などの追加のプローブを使用せずに定量的に評価できるパラメータに有用です。
このモデルには、前述の方法以外にもいくつかの利点があります。これは、外部源から膀胱への再導入とは対照的に、膀胱リザーバからの出現によって引き起こされるUPEC rUTIのメカニズムの検討を可能にする。膀胱貯留層からの出現によるrUTIの他のモデルは、化学薬品(硫酸プロタミンまたはキトサン)を使用して尿路上皮剥離を引き起こし、17,18、これは女性のrUTIの引き金にはならない。G.膣炎は、一部の女性においてカテーテル法または恥骨上吸引を介して膀胱から直接収集された尿中に検出された一般的な泌尿生殖器細菌である23,26。この事実は、BV(G.膣炎が膣内で過剰に増殖する)とUTIとの間の既知の関連と相まって、G.膣炎がrUTIの臨床的にもっともらしい引き金であることを示唆している。最後に、in situ膀胱固定法は、膀胱の超構造を維持し、損傷を制限し、膀胱層が互いに分離しないようにする。尿路上皮を視覚化するための以前の方法は、伝統的に、使用者が無菌的に膀胱を収穫し、二等分し、伸ばし、そして伸ばして、伸ばした膀胱を固定液48に沈める前に、解剖トレイ上に膀胱をピン留めする。この方法は、非常に平坦なサンプルをもたらすが、組織の均一または自然なストレッチを保証せず、過度および下回るストレッチされた領域(非常にしわのある組織をもたらす)をもたらし、膀胱層分離を引き起こす可能性がある。さらに、組織を伸ばして固定するための膀胱のこれらの物理的操作は、尿路上皮剥離を含む損傷を引き起こす可能性がある。別の方法は、パラフィンに包埋し、ミクロトームで薄い切片を得る前に、無傷の膀胱を固定液に沈めることである。薄い切片は、細菌および宿主タンパク質の局在を調べるための免疫組織化学実験にとって非常に貴重ですが、薄い切片では尿路上皮表面の可視化はできません。このSEM法は、膀胱全体の表面を一度に検査することを可能にする。
記載されているように、このモデルの将来の用途には、他のUPEC株を試験して細胞内リザーバを形成するかどうかを判断し、他の G.膣 炎株を試験して剥離を誘発し、UPEC出現がrUTIを引き起こすかどうかを評価することが含まれる。C57BL/6マウス以外の他のマウス系統も試験され得るが、慢性膀胱炎を発症する傾向が高いマウス(C3Hバックグラウンドのマウスなど)は、実験から淘汰される必要があるマウスが多すぎるため、推奨されない。C57BL/6マウスのさらなる利点は、多くの遺伝子ノックアウト株が市販されていることである。このような株は、貯留層の形成および/または出現に関与する宿主因子を尋問する機会を提供する。

尿路感染症(UTI)は世界中で大きな医療負担を課しており、毎年何百万人もの人々、特に女性の生活の質に影響を与えています1。尿路病原性大腸菌(UPEC)は、UTI1の最も頻繁な原因である。UTIを発症する多くの患者(約20〜30%)は、抗生物質媒介性の初期感染のクリアランスにもかかわらず、6ヶ月以内に再発性UTI(rUTI)を経験する2。残念なことに、閉経前の女性の5%が毎年3つ以上のrUTIに苦しんでいます3,4。rUTIの逐次エピソードは、インデックスケース5、6、7、8からの同じUPEC株の持続性によって引き起こされ得る。ヒトサンプルおよびマウスモデルからのデータは、同じ株rUTIが、膀胱内の静止リザーバ内に存在するUPECによって引き起こされる可能性があることを示唆している。ヒトにおいて、UPECは、UTI 9、10、11、12、13を有する患者の上皮細胞および膀胱生検において検出された。C57BL/6マウスの研究では、UPECの一部の株が、蛍光顕微鏡検査および膀胱組織の均質化および培養によって検出されるように、膀胱内に静止期の細胞内貯留層を確立できることが実証されており、それらは細菌尿症の分離後数ヶ月間維持される14,15,16。膀胱上皮(尿路上皮)の剥離を誘導する薬剤、例えば硫酸プロタミン17またはキトサン18による膀胱の治療は、リザーバからのUPECの出現を誘発してrUTIを引き起こす。これらのデータは、以前の感染から膀胱UPECリザーバーを保有している女性において、尿路上皮剥離につながる膀胱曝露がrUTIを引き起こす可能性があることを示唆している。
膣内微生物叢が尿路感染症に寄与しているという証拠が山積みです19,20。ガードネレラ膣炎は、膣および尿中微生物叢の両方の頻繁なメンバーである21、22、23、24、25、26、27、28、29。膣内では、高レベルのG.膣炎の存在は、細菌性膣炎(BV)として知られる微生物嚥下障害と関連しており、これは女性の〜30%に影響を及ぼす30、31、32。BVを有する女性は、ラクトバチルス33,34,35,36,37が支配する膣内コミュニティを有する女性と比較して、UTIを経験するリスクが高い。マウスモデルでは、G.膣は、膣38および膀胱39の両方において上皮剥離を引き起こす。UPEC膀胱リザーバを保有するC57BL/6マウスでは、G.膣炎への2回の連続した膀胱曝露(PBSにはない)は、リザーバからのUPECの再出現をもたらし、UPEC rUTIを引き起こした。この出現は、以前にUPEC細菌尿症を解消したマウスからの尿中のUPEC力価の出現と、その後のPBS曝露対照動物と比較して犠牲時のUPEC膀胱ホモジネート力価の低下によって証明される39。興味深いことに、膀胱内のG.膣炎による永続的なコロニー形成はない。大多数の症例において、尿中の生存可能なG.膣炎のそれぞれが12(h)未満を有する2つの短時間曝露は、尿路上皮剥離を誘発し、rUTIを促進するのに十分である。
このプロトコルは、再発を誘発するために G.膣膀 胱接種を使用して、細胞内膀胱リザーバに常駐するUPECによって引き起こされるrUTIのマウスモデルを記述する。このモデルによって達成された進歩は、 G.膣炎 が以前に使用された化学薬品と比較してrUTIの臨床的に関連する生物学的トリガーであるということです。さらに、マウス尿路における G.膣 炎の比較的短命な生存は、性活動の後に起こり得るように、尿路上皮に対する一過性の微生物曝露の影響を調べることを可能にする。rUTIモデルの概要を説明することに加えて、このプロトコルは、走査型電子顕微鏡(SEM)による尿細胞診およびin situ膀胱固定および尿路皮のイメージングのための方法も記載する。
G.膣炎誘発再発性UPEC UTIのこのプロトコールは、カナマイシン耐性カセット(UTI89kanR)40を有するUPEC株UTI89を使用する。試験したUPECのすべての株がマウス41の急性感染期に細胞内細菌群集を形成できたわけではなく、UPECのすべての株が潜伏細胞内リザーバを形成する能力を有するかどうかはまだ分かっていない。リザーバの形成は、モデル内の他のUPEC株を使用する前に確認する必要があります。このプロトコルは、自発的なストレプトマイシン耐性G.膣炎単離物JCP8151BSmR38を使用する。JCP8151BSmRによるrUTIの誘導は、12時間または7日(d)離れて39のいずれかを与えられた2つの連続したG.膣炎接種を必要とする。他のG.膣炎株が剥離および/またはUPEC rUTIを誘導するかどうかは、このモデルで決定されるままである。抗生物質を寒天プレートに添加して、感染を監視するためのコロニー形成単位(CFU)の列挙を妨げる可能性のある内因性マウス微生物叢の増殖を防ぐために寒天プレートに添加できるため、既知の抗生物質耐性を有するUPECおよびG.膣炎株(UPECのカナマイシンまたはスペクチノマイシン、G.膣炎のストレプトマイシンなど)を使用することが不可欠です。マウスの尿には、抗生物質を含まない培養プレート上で過剰増殖する可能性のある他の細菌が頻繁に含まれているため、これは尿検体の培養に特に重要です。マウス尿中のこれらの内因性細菌の起源は不明であるが、尿採取中に拾われた尿道周囲および泌尿生殖器細菌を反映している可能性が高い。
G.膣炎は通性嫌気性細菌であり、したがって、このプロトコルは、嫌気性チャンバー内で成長するG.膣炎JCP8151BSmRを記載する。嫌気性チャンバが利用できない場合、嫌気性成長条件を維持するための他の方法(気密容器内のGasPakパウチなど)を利用することができる。あるいは、G.膣炎のいくつかの株(JCP8151BSmRを含む)は、標準的な組織培養インキュベーター(5%CO2)中で増殖するであろう。JCP8151BSmR以外のG.膣炎株を使用するには、細菌がこのモデルで同様に振る舞うことを確認するための試験が必要であるのと同様に、増殖条件を変えるには、所望の生存可能な接種濃度を達成するために、培養のための理想的な持続時間(プレート上および液体中)および光学密度(OD)600当量の経験的決定が必要である。さらに、成長状態がG.膣炎の病態生物学に影響を与えるかどうかは知られていない。
最後に、このモデルを利用するかどうかを検討する際には、研究者は、一般的なUTIマウスモデルよりもグループごとにより多くの動物を必要とする可能性があることに注意する必要があります。これは、rUTIの誘導が、マウスが膀胱の初期感染によって引き起こされるUPEC細菌尿症を解決することを必要とするためである。したがって、細菌尿症(通常は進行中の腎臓感染を示す表現型)をクリアできないマウスは、プロトコルのrUTIフェーズには含まれません。これらの研究に電力を供給するために必要なマウスの数は、尿中への「自発的」UPEC出現の割合(平均で12〜14%)によっても影響される。最後に、異なるマウス系統は、細胞内貯留層形成に対して慢性細菌尿症を発症する傾向が異なる42,43。このモデルでC57BL/6以外のマウス株を使用する場合、動物が静止UPEC細胞内リザーバを発達させることを確認しなければならない。

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>30G x 1/2 needles</td>
			<td>BD</td>
			<td>305106</td>
			<td>for catheters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>5 1/2&#34; straight forcep hemostat</td>
			<td>McKesson</td>
			<td>487377</td>
			<td>in situ bladder fixation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ACE 600 Sputter coater</td>
			<td>Leica</td>
			<td></td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>aluminum SEM stub</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>16111</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Calcium chloride</td>
			<td>EMS</td>
			<td>12340</td>
			<td>in situ bladder fixation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>conductive carbon adhesive tab&#160;</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>16084-1</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Conductive silver paint</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>16034</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CPD 300 Critical Point Drier</td>
			<td>Leica</td>
			<td></td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytofunnel metal clip</td>
			<td>Simport</td>
			<td>M964B</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ethanol</td>
			<td>EMS</td>
			<td>15050</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Glucose&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>G7528</td>
			<td>for NYCIII G. vaginalis growth media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>glutaraldehyde</td>
			<td>EMS</td>
			<td>16320</td>
			<td>in situ bladder fixation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hema 3 staining kit</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>23123869</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HEPES</td>
			<td>Cellgro&#160;</td>
			<td>25-060-Cl</td>
			<td>for NYCIII G. vaginalis growth media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>iridium</td>
			<td>Ted Pella</td>
			<td>91120</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>isofluorane</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>mouse anaesthesia</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>kanamycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11815024</td>
			<td>add to UPEC LB selective plates (50 ug/mL)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luria-Bertani agar</td>
			<td>BD</td>
			<td>DF0445174</td>
			<td>UPEC growth plates</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luria-Bertani broth</td>
			<td>BD</td>
			<td>DF0446173</td>
			<td>UPEC growth media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Merlin FE-SEM</td>
			<td>Zeiss</td>
			<td></td>
			<td>scanning electron microscope</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Milli-Q Water Purifier</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>IQ-7000</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>NaCl&#160;</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>S3014</td>
			<td>for NYCIII G. vaginalis growth media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Olympus Vanox AHBT3 microscope</td>
			<td>Olympus</td>
			<td></td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>osmium tetroxide</td>
			<td>EMS</td>
			<td>19170</td>
			<td>SEM sample processing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>paraformaldehyde</td>
			<td>EMS</td>
			<td>15710</td>
			<td>in situ bladder fixation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>polyethylene tubing</td>
			<td>Intramedic</td>
			<td>427401</td>
			<td>for catheters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Proteose Peptone #3&#160;</td>
			<td>Fisher&#160;</td>
			<td>DF-122-17-4</td>
			<td>for NYCIII G. vaginalis growth media</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTFE coated double edge razor blade</td>
			<td>EMS</td>
			<td>72000</td>
			<td>cutting bladders for SEM</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shandon Cytocentrifuge</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>A78300002</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shandon cytofunnel filter</td>
			<td>Simport</td>
			<td>M965FWDV</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shandon Double cytofunnel</td>
			<td>Simport</td>
			<td>M964-1D</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Shandon double cytoslides (coated)</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>5991055</td>
			<td>cytospun urinalysis</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>sodium cacodylate trihydrate</td>
			<td>EMS</td>
			<td>12310</td>
			<td>in situ bladder fixation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>spectrophotometer</td>
			<td>BioChrom</td>
			<td>80-3000-45</td>
			<td>measuring bacterial OD600</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>streptomycin</td>
			<td>Gibco</td>
			<td>11860038</td>
			<td>add to G. vaginalis NYCIII selective plates (1 mg/mL)</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>tuberculin slip tip syringe</td>
			<td>BD</td>
			<td>309659</td>
			<td>for catheters</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Yeast Extract&#160;</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>DF0127-17-9</td>
			<td>for NYCIII G. vaginalis growth media</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

recurrent escherichia coli urinary tract infection triggered by gardnerella vaginalis bladder exposure in mice

尿路原性 大腸 菌(UPEC)によって引き起こされる再発性尿路感染症(rUTI)は一般的であり、費用がかかる。雄および雌マウスにおけるUTIのモデルを説明する以前の記事は、尿および組織における細菌接種および列挙の手順を例示してきた。C57BL/6マウスにおける初期膀胱感染の間、UPECは、UPEC細菌尿症のクリアランス後に持続する膀胱上皮細胞内に潜伏リザーバを確立する。このモデルは、これらの研究に基づいて、潜伏膀胱貯留層内からのUPECの出現によって引き起こされるrUTIを調べる。泌尿生殖器細菌 ガードネレラ膣炎 は、特にUTIに関連する膣嚥下障害の文脈で、女性の泌尿生殖路に頻繁に存在するため、このモデルでrUTIのトリガーとして使用されます。さらに、膀胱組織の走査型電子顕微鏡(SEM)分析に続くin situ膀胱固定のための方法も記載されており、膀胱を含む他の研究への応用の可能性を秘めている。

接種後、UPEC力価は尿中で検出可能である(図2B)。カナマイシンを含む選択培地に尿サンプルをプレートしないと、尿を汚染する内因性マウス微生物叢の過剰増殖が生じる可能性があります。UPEC細菌尿症のレベルは、1日目に高くなる可能性が高く、最初の1週間に増加してから、後の時点で減少する可能性があります(図2C)。マウスの約65〜80%は、尿中に検出可能なUPECを28dpiずつ有さない(図2C、緑色の円)。これらのマウスは、モデルの後続のステップで使用することができる。細菌尿症のままのマウス(図2C、赤い楕円)は、実験から排除されるべきである。
12時間(図3A)または1wk間隔(図3B)で2回の連続したG.膣炎曝露は、細胞内貯留層からのUPECの出現をもたらし、再発性細菌尿症を引き起こす。UPEC細菌尿症のレベル(Mann-Whitney試験)およびUPEC rUTIを示すマウスの割合(フィッシャーの正確検定)は、PBS対照群と比較してG.膣炎に曝露されたマウスにおいて有意に高い。尿細胞診解析は、UPEC出現を示したG.膣炎ばく露マウスから尿中のPMNを検出する(図3C)。1 wk間隔で2回のばく露を行ったモデルでは、膀胱組織中のUPEC力価は、G. 膣炎ばく露マウスではPBSと比較して低くなっている(図3D)が、おそらく貯水池からのUPECの出現とその後のクリアランスによるものである。
SEMによるin situ固定膀胱組織の可視化は、PBSのみに曝露された対照マウスにおいて膀胱表面を覆う大きな表在傘尿路上皮細胞を明らかにする(図4A)。尿路剥離は、表在性傘細胞の喪失によって証明され、 G.膣 炎に曝露されたマウスにおいて、より小さな根底にある移行上皮細胞を明らかにする(図4B)。細胞内貯留層の確立中のUPEC接種後早期に、UPECは尿路上皮上および剥離細胞からフィラメンテーションで見える(図4C)。

<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61967/61967fig02.jpg"> 図2.フェーズ1(貯水池形成)中の尿中のUPEC力価のモニタリング。 (A)コロニー形成単位(CFU)めっきの概略図。(B)LB+カナマイシンの尿中のUPEC力価の代表的な画像。黒丸は、CFU/mLを計算するためにカウントする必要がある尿サンプルスポットを示します。(C)C57BL/6マウスにおけるUPEC細菌尿症の経時変化。各線は個々のマウスを表し、UPEC尿力価を経時的にたどります。点線は検出限界(1000CFU/mL)を示す。赤い楕円は、UPEC細菌尿症の解決に失敗した4匹のマウス(20匹中)を示し、したがって G.膣炎誘発rUTIモデルには使用されないであろう。逆に、緑色の円は、UPEC細菌尿症を解消し、その後の段階に進んだマウスを示す。(D)パネルC.イエロー、検出可能なCFUのグラフを生成するために使用されるデータのテーブル。緑、CFUなし。(E)UPEC CFUが尿中で検出されなくなった時点に基づく曝露群へのマウスの無作為化(「解決日」)。パネル D の左側の列のマウス番号は、パネル E で指定したマウス番号と同じです。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61967/61967fig02large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61967/61967fig03.jpg"> 図3. G. 膣炎は UPEC rUTI をトリガーします。 12時間(A)または1wk(B)の間隔でPBS(円)または G.膣 炎(Gvag;正方形)への2つの連続した尿路曝露後の尿中のUPEC力価。各シンボルは個々のマウスを表します。2回目のばく露後1〜3 dの間に各マウスから検出された最も高いCFU/mL UPECがプロットされます。検出可能な細菌尿症を有さないマウスは、検出限界(点線)でプロットされる。(c)UPEC(矢じり)および多形核(PMN)細胞(矢印)を示す尿細胞診解析。スケールバー = 20 μm。(d)1wk間隔で与えられた2つの連続した尿路曝露に続いて3dを採取した膀胱組織におけるUPEC力価。各シンボルは異なるマウスを表し、ゼロは検出限界(点線)にプロットされます。A、B、およびDでは、ボックスは中央値がマークされ、最小から最大までのひげが付いた第1および第3四分位数にあり、Mann-Whitney U検定* P <0.05;** P < 0.01; P < 0.0001. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61967/61967fig03large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/61967/61967fig04.jpg"> 図4.その場で固定された膀胱のSEM分析。 膀胱を、PBS(A)または G.膣 炎(C)に2回(12時間間隔)曝露してから3時間後にマウスから採取した。点線は単一の尿上皮細胞を示しており、大きな表在細胞が剥離して根底にある移行上皮を明らかにしているため、 G.膣に露出した膀胱では小さくなっています。(b)UPECによる初期接種後6時間後に採取した膀胱、モデルのフェーズ1の間、尿路上皮剥離および細胞外UPECを示す。(d)膀胱表面に存在する不溶性脂肪滴の例。スケールバーは、メイン画像で20μm、インセットで2μmです。 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/61967/61967fig04large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するには、ここをクリックしてください。</a>

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Recurrent Escherichia coli Urinary Tract Infection Triggered by Gardnerella vaginalis Bladder Exposure in Mice

尿路病原性 大腸菌 (UPEC)経尿道接種のマウスモデルにより、潜伏細胞内膀胱リザーバを確立し、その後の再発性UPEC UTIを誘導するための G.膣への膀胱 曝露が実証される。また、細菌の列挙、尿細胞診、および走査型電子顕微鏡のためのin situ膀胱固定および処理も実証されている。

マウスにおけるガードネレラ膣膀胱曝露によって引き起こされる再発性大腸菌尿路感染症

Recurrent urinary tract infections (rUTI) caused by uropathogenic Escherichia coli (UPEC) are common and costly. Previous articles describing models of ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Recurrent Escherichia coli Urinary Tract Infection Triggered by Gardnerella vaginalis Bladder Exposure in Mice

5.7K ビュー.  Washington University School of Medicine in Saint Louis. 尿路病原性 大腸菌 (UPEC)経尿道接種のマウスモデルにより、潜伏細胞内膀胱リザーバを確立し、その後の再発性UPEC UTIを誘導するための G.膣への膀胱 曝露が実証される。また、細菌の列挙、尿細胞診、および走査型電子顕微鏡のためのin situ膀胱固定および処理も実証されている。

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Transurethral Induction of Mouse Urinary Tract Infection

Uropathogenic bacterial strains of interest are grown on agar. Generally, uropathogenic E. coli (UPEC) and other strains can be grown overnight on Luria-Bertani (LB) agar at 37&deg;C in ambient air. UPEC strains grow as yellowish-white translucent colonies on LB agar. Following confirmation of appropriate colony morphology, single colonies are then picked to be cultured in broth. LB broth can be used for most uropathogenic bacterial strains. Two serial, overnight LB broth cultures can be employed to enhance expression of type I pili, a well-defined virulence factor for uropathogenic bacteria. Broth cultures are diluted to the desired concentration in phosphate buffered saline (PBS). Eight to 12 week old female mice are placed under isoflurane anesthesia and transurethrally inoculated with bacteria using polyethylene tubing-covered 30 gauge syringes. Typical inocula, which must be empirically determined for each bacterial/mouse strain combination, are 106 to 108 cfu per mouse in 10 to 50 microliters of PBS. After the desired infection period (one day to several weeks), urine samples and the bladder and both kidneys are harvested. Each organ is minced, placed in PBS, and homogenized in a Blue Bullet homogenizer. Urine and tissue homogenates are serially diluted in PBS and cultured on appropriate agar. The following day, colony forming units are counted.

This video will demonstrate methods to transurethrally induce mouse urinary tract infections and quantify the extent of resulting infections.

マウス尿路感染症の経尿道的誘導

Uropathogenic bacterial strains of interest are grown on agar. Generally, uropathogenic E. coli (UPEC) and other strains can be grown overnight on ...

免疫・感染学

Following Cell-fate in E. coli After Infection by Phage Lambda

The system comprising bacteriophage (phage) lambda and the bacterium E. coli has long served as a paradigm for cell-fate determination1,2. Following the simultaneous infection of the cell by a number of phages, one of two pathways is chosen: lytic (virulent) or lysogenic (dormant)3,4. We recently developed a method for fluorescently labeling individual phages, and were able to examine the post-infection decision in real-time under the microscope, at the level of individual phages and cells5. Here, we describe the full procedure for performing the infection experiments described in our earlier work5. This includes the creation of fluorescent phages, infection of the cells, imaging under the microscope and data analysis. The fluorescent phage is a "hybrid", co-expressing wild- type and YFP-fusion versions of the capsid gpD protein. A crude phage lysate is first obtained by inducing a lysogen of the gpD-EYFP (Enhanced Yellow Fluorescent Protein) phage, harboring a plasmid expressing wild type gpD. A series of purification steps are then performed, followed by DAPI-labeling and imaging under the microscope. This is done in order to verify the uniformity, DNA packaging efficiency, fluorescence signal and structural stability of the phage stock. The initial adsorption of phages to bacteria is performed on ice, then followed by a short incubation at 35&deg;C to trigger viral DNA injection6. The phage/bacteria mixture is then moved to the surface of a thin nutrient agar slab, covered with a coverslip and imaged under an epifluorescence microscope. The post-infection process is followed for 4 hr, at 10 min interval. Multiple stage positions are tracked such that ~100 cell infections can be traced in a single experiment. At each position and time point, images are acquired in the phase-contrast and red and green fluorescent channels. The phase-contrast image is used later for automated cell recognition while the fluorescent channels are used to characterize the infection outcome: production of new fluorescent phages (green) followed by cell lysis, or expression of lysogeny factors (red) followed by resumed cell growth and division. The acquired time-lapse movies are processed using a combination of manual and automated methods. Data analysis results in the identification of infection parameters for each infection event (e.g. number and positions of infecting phages) as well as infection outcome (lysis/lysogeny). Additional parameters can be extracted if desired.

Following Cell-fate in E. coli After Infection by Phage Lambda

This article describes the procedure for preparing a fluorescently-labeled version of bacteriophage lambda, infection of E. coli bacteria, following the infection outcome under the microscope, and analysis of infection results.

細胞運命を以下に<em&gt; E大腸菌の</emラムダファージによる感染後&gt;

The system comprising bacteriophage (phage) lambda and the bacterium E. coli has long served as a paradigm for cell-fate determination1,2. Following the ...

Recurrent Herpetic Stromal Keratitis in Mice, a Model for Studying Human HSK

Herpetic eye disease, termed herpetic stromal keratitis (HSK), is a potentially blinding infection of the cornea that results in over 300,000 clinical visits each year for treatment. Between 1 and 2 percent of those patients with clinical disease will experience loss of vision of the infected cornea. The vast majority of these cases are the result of reactivation of a latent infection by herpes simplex type I virus and not due to acute disease. Interestingly, the acute infection is the model most often used to study this disease. However, it was felt that a recurrent model of HSK would be more reflective of what occurs during clinical disease. The recurrent animal models for HSK have employed both rabbits and mice. The advantage of rabbits is that they experience reactivation from latency absent any known stimulus. That said, it is difficult to explore the role that many immunological factors play in recurrent HSK because the rabbit model does not have the immunological and genetic resources that the mouse has. We chose to use the mouse model for recurrent HSK because it has the advantage of there being many resources available and also we know when reactivation will occur because reactivation is induced by exposure to UV-B light. Thus far, this model has allowed those laboratories using it to define several immunological factors that are important to this disease. It has also allowed us to test both therapeutic and vaccine efficacy.

Most studies of herpetic corneal disease use a primary infection model. However, primary infection with HSV-1 does not typically lead to human disease. Here we describe a recurrent model of herpetic corneal disease, which more closely mimics human disease.

マウスにおける再発性ヘルペス性間質性角膜炎、人間のHSKを研究するためのモデル

Herpetic eye disease, termed herpetic stromal keratitis (HSK), is a potentially blinding infection of the cornea that results in over 300,000 clinical ...

Non-Invasive Model of Neuropathogenic Escherichia coli Infection in the Neonatal Rat

Investigation of the interactions between animal host and bacterial pathogen is only meaningful if the infection model employed replicates the principal features of the natural infection. This protocol describes procedures for the establishment and evaluation of systemic infection due to neuropathogenic Escherichia coli K1 in the neonatal rat. Colonization of the gastrointestinal tract leads to dissemination of the pathogen along the gut-lymph-blood-brain course of infection and the model displays strong age dependency. A strain of E. coli O18:K1 with enhanced virulence for the neonatal rat produces exceptionally high rates of colonization, translocation to the blood compartment and invasion of the meninges following transit through the choroid plexus. As in the human host, penetration of the central nervous system is accompanied by local inflammation and an invariably lethal outcome. The model is of proven utility for studies of the mechanism of pathogenesis, for evaluation of therapeutic interventions and for assessment of bacterial virulence.

Non-Invasive Model of Neuropathogenic Escherichia coli Infection in the Neonatal Rat

Here, a procedure is described for the establishment of systemic infection in the neonatal rat with cultures of Escherichia coli K1. This non-invasive procedure permits colonization of the gastrointestinal tract, translocation of the pathogen to the systemic circulation, and invasion of the central nervous system at the choroid plexus.

神経病原の非侵襲的モデル<em&gt;エシェリヒア·コリ</em&gt;新生ラットにおける感染

Investigation of the interactions between animal host and bacterial pathogen is only meaningful if the infection model employed replicates the principal ...

One-step Negative Chromatographic Purification of Helicobacter pylori Neutrophil-activating Protein Overexpressed in Escherichia coli in Batch Mode

Helicobacter pylori neutrophil-activating protein (HP-NAP) is a major virulence factor of Helicobacter pylori (H. pylori). It plays a critical role in H. pylori-induced gastric inflammation by activating several innate leukocytes including neutrophils, monocytes, and mast cells. The immunogenic and immunomodulatory properties of HP-NAP make it a potential diagnostic and vaccine candidate for H. pylori and a new drug candidate for cancer therapy. In order to obtain substantial quantities of purified HP-NAP used for its clinical applications, an efficient method to purify this protein with high yield and purity needs to be established.
In this protocol, we have described a method for one-step negative chromatographic purification of recombinant HP-NAP overexpressed in Escherichia coli (E. coli) by using diethylaminoethyl (DEAE) ion-exchange resins (e.g., Sephadex) in batch mode. Recombinant HP-NAP constitutes nearly 70% of the total protein in E. coli and is almost fully recovered in the soluble fraction upon cell lysis at pH 9.0. Under the optimal condition at pH 8.0, the majority of HP-NAP is recovered in the unbound fraction while the endogenous proteins from E. coli are efficiently removed by the resin.
This purification method using negative mode batch chromatography with DEAE ion-exchange resins yields functional HP-NAP from E. coli in its native form with high yield and purity. The purified HP-NAP could be further utilized for the prevention, treatment, and prognosis of H. pylori-associated diseases as well as cancer therapy.

One-step Negative Chromatographic Purification of Helicobacter pylori Neutrophil-activating Protein Overexpressed in Escherichia coli in Batch Mode

A high yield method for one-step negative purification of recombinant Helicobacter pylori neutrophil-activating protein (HP-NAP) overexpressed in Escherichia coli by using diethylaminoethyl resins in batch mode is described. HP-NAP purified by this method is beneficial for the development of vaccines, drugs, or diagnostics for H. pylori-associated diseases.

ワンステップの負のクロマトグラフィー精製<em&gt;ヘリコバクター・ピロリ</emで過剰発現&gt;好中球活性化タンパク質<em&gt;エシェリヒア・コリ</em&gt;バッチモードでの

Helicobacter pylori neutrophil-activating protein (HP-NAP) is a major virulence factor of Helicobacter pylori (H. pylori). It plays a critical role in H. ...

Urinary Tract Infection in a Small Animal Model: Transurethral Catheterization of Male and Female Mice

Urinary tract infections (UTI) are extremely common worldwide, incurring significant morbidity and healthcare-associated expenses. Small animal models, which accurately reflect disease establishment and progression, permit dissection of host-pathogen interactions and generation of immunity to infection. In mice, intravesical instillation of uropathogenic E. coli, the causative agent in more than 85% of community acquired UTI, recapitulates many of the stages of infection observed in humans. Until recently, however, UTI could only be modeled in female animals. This limitation has hindered the study of sex-related differences in UTI, as well as other bladder pathologies, such as cancer. Here, we describe a method to instill male mice that allows direct comparison between female and male animals and provide a detailed protocol to assess bladder tissue by flow cytometry as a means to better understand host responses to infection. Together, these approaches will aid in the identification of host factors that contribute to sex biases observed in UTI and other bladder-associated diseases.

The established model of transurethral catheterization of mice allows the study of bladder pathologies, including urinary tract infection, but can only be performed in females. A new model of male transurethral instillation, presented here, will enable research in an area marked by strong clinical and epidemiological differences between the sexes.

小動物モデルにおける尿路感染症: 雌雄マウスの尿道カテーテル

Urinary tract infections (UTI) are extremely common worldwide, incurring significant morbidity and healthcare-associated expenses. Small animal models, ...

Detection of Enterohemorrhagic Escherichia Coli Colonization in Murine Host by Non-invasive In Vivo Bioluminescence System

Enterohemorrhagic E. coli (EHEC) O157:H7, which is a foodborne pathogen that causesdiarrhea, hemorrhagic colitis (HS), and hemolytic uremic syndrome (HUS), colonize to the intestinal tract of humans. To study the detailed mechanism of EHEC colonization in vivo, it is essential to have animal models to monitor and quantify EHEC colonization. We demonstrate here a mouse-EHEC colonization model by transforming the bioluminescent expressing plasmid to EHEC to monitor and quantify EHEC colonization in living hosts. Animals inoculated with bioluminescence-labeled EHEC show intense bioluminescent signals in mice by detection with a non-invasive in vivo imaging system. After 1 and 2 days post infection, bioluminescent signals could still be detected in infected animals, which suggests that EHEC colonize in hosts for at least 2 days. We also demonstrate that these bioluminescent EHEC locate to mouse intestine, specifically in the cecum and colon, from ex vivo images. This mouse-EHEC colonization model may serve as a tool to advance the current knowledge of the EHEC colonization mechanism.

Detection of Enterohemorrhagic Escherichia Coli Colonization in Murine Host by Non-invasive In Vivo Bioluminescence System

A detailed protocol of a mouse model for enterohemorrhagic E. coli (EHEC) colonization by using bioluminescence-labeled bacteria is presented. The detection of these bioluminescent bacteria by a non-invasive in vivo imaging system in live animals can advance our current understanding of EHEC colonization.

非侵襲体内生物発光システムによってマウスのホストである腸管出血性大腸菌の植民地化の検出

Enterohemorrhagic E. coli (EHEC) O157:H7, which is a foodborne pathogen that causesdiarrhea, hemorrhagic colitis (HS), and hemolytic uremic syndrome ...

Overexpression and Purification of Human Cis-prenyltransferase in Escherichia coli

Prenyltransferases (PT) are a group of enzymes that catalyze chain elongation of allylic diphosphate using isopentenyl diphosphate (IPP) via multiple condensation reactions. DHDDS (dehydrodolichyl diphosphate synthase) is a eukaryotic long-chain cis-PT (forming cis double bonds from the condensation reaction) that catalyzes chain elongation of farnesyl diphosphate (FPP, an allylic diphosphate) via multiple condensations with isopentenyl diphosphate (IPP). DHDDS is of biomedical importance, as a non-conservative mutation (K42E) in the enzyme results in retinitis pigmentosa, ultimately leading to blindness. Therefore, the present protocol was developed in order to acquire large quantities of purified DHDDS, suitable for mechanistic studies. Here, the usage of protein fusion, optimized culture conditions and codon-optimization were used to allow the overexpression and purification of functionally active human DHDDS in E. coli. The described protocol is simple, cost-effective and time sparing. The homology of cis-PT among different species suggests that this protocol may be applied for other eukaryotic cis-PT as well, such as those involved in natural rubber synthesis.

Overexpression and Purification of Human Cis-prenyltransferase in Escherichia coli

A simple protocol for overexpression and purification of codon-optimized, human cis-prenyltransferase, under non-denaturing conditions, from Escherichia coli, is described, along with an enzymatic activity assay. This protocol can be generalized for production of other cis- prenyltransferase proteins in quantity and quality suitable for mechanistic studies.

ヒトの過剰発現と精製<em&gt;シス</em&gt; - プレニルトランスフェラーゼ<em&gt;大腸菌</em

Prenyltransferases (PT) are a group of enzymes that catalyze chain elongation of allylic diphosphate using isopentenyl diphosphate (IPP) via multiple ...

A Facile Protocol to Generate Site-Specifically Acetylated Proteins in Escherichia Coli

Post-translational modifications that occur at specific positions of proteins have been shown to play important roles in a variety of cellular processes. Among them, reversible lysine acetylation is one of the most widely distributed in all domains of life. Although numerous mass spectrometry-based acetylome studies have been performed, further characterization of these putative acetylation targets has been limited. One possible reason is that it is difficult to generate purely acetylated proteins at desired positions by most classic biochemical approaches. To overcome this challenge, the genetic code expansion technique has been applied to use the pair of an engineered pyrrolysyl-tRNA synthetase variant, and its cognate tRNA from Methanosarcinaceae species, to direct the cotranslational incorporation of acetyllysine at the specific site in the protein of interest. After first application in the study of histone acetylation, this approach has facilitated acetylation studies on a variety of proteins. In this work, we demonstrated a facile protocol to produce site-specifically acetylated proteins by using the model bacterium Escherichia coli as the host. Malate dehydrogenase was used as a demonstration example in this work.

A Facile Protocol to Generate Site-Specifically Acetylated Proteins in Escherichia Coli

Genetic code expansion serves as a powerful tool to study a wide range of biological processes, including protein acetylation. Here we demonstrate a facile protocol to exploit this technique for generating homogeneously acetylated proteins at specific sites in Escherichia coli cells.

大腸菌Site-Specifically アセチル化蛋白質を生成する安易なプロトコル

Post-translational modifications that occur at specific positions of proteins have been shown to play important roles in a variety of cellular processes. ...

Using Enhanced Green Fluorescence Protein-expressing Escherichia Coli to Assess Mouse Peritoneal Macrophage Phagocytosis

This manuscript describes a simple and reproducible method to perform a phagocytosis assay. The first part of this method involves building a pET-SUMO-EGFP vector (SUMO = small ubiquitin-like modifier) and expressing enhanced green fluorescence protein (EGFP) in Escherichia coli (BL21DE). EGFP-expressing E. coli is coincubated with macrophages for 1 h at 37 &#176;C; the negative control group is incubated on ice for the same amount of time. Then, the macrophages are ready for assessment. The advantages of this technique include its simple and straightforward steps, and phagocytosis can be measured by both flow cytometer and fluorescence microscope. The EGFP-expressing E. coli are stable and display a strong fluorescence signal even after the macrophages are fixed with paraformaldehyde. This method is not only suitable for the assessment of macrophage cell lines or primary macrophages in vitro but also suitable for the evaluation of granulocyte and monocyte phagocytosis in peripheral blood mononuclear cells. The results show that the phagocytic capability of peritoneal macrophages from young (eight-week-old) mice is higher than that of macrophages from aged (16-month-old) mice. In summary, this method measures macrophage phagocytosis and is suitable for studying the innate immune system function.

Using Enhanced Green Fluorescence Protein-expressing Escherichia Coli to Assess Mouse Peritoneal Macrophage Phagocytosis

Here, we present a protocol to assess mouse peritoneal macrophage phagocytosis using enhanced green fluorescence protein-expressing Escherichia coli.