JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.
Method Article
신경 전구체 이식은 보호 및 / 또는 척수 상해 (SCI)과 모터 신경 장애, amyotrophic 패스 경화증 (ALS)에 분실 / 역기능 자궁 phrenic 모터 뉴런을 교체 유망 전략이다. 우리는 ALS와 SCI의 쥐 모델에서 자궁 경부 척수 복부 혼까지 셀 전송을위한 프로토콜을 제공합니다.
phrenic 모터 신경 세포의 손실로 인해 호흡기 손상은 인간의 외상성 척수 손상의 큰 비율 (SCI) 가지 경우 1 쇠약 결과이며, 모터 신경 장애, amyotrophic 패스 경화증 (ALS) 2 환자에서 사망의 궁극적인 원인입니다.
ALS는 상부의 비교적 빠른 변성 낮은 모터 뉴런이 특징입니다 치명적인 신경 질환이다. 평균 2-5년에있는 질병에 궁극적으로 쓰러지는 환자 때문에 횡경막 3 phrenic 모터 신경 세포의 innnervation의 손실로 인해 호흡 마비의 진단에 따라. 10 % 가족성 양식의하는 동안 대부분의 경우는 산발하고 있습니다. 가족성 가지 경우 대략 20 %가 염색체 21 4 잘라내기 / Zn 초과 산화물 dismutase 1 (SOD1) 유전자의 다양한 돌연변이 포인트로 연결되어 있습니다. 돌연변이 인간 SOD1 유전자를 (G93A, G37R, G86R, G85R) 운반 유전자 변형 마우스 4,5와 쥐 6 생성하고, 모터 신경 세포의 손실을 다른 동물 모델의 존재에도 불구하고, 현재이 질병의 가장 높은 사용 모델 아르되었습니다 .
척수 손상 (SCI)는 부상 7 종류, 위치 및 심각도에 따라 다양한 기능과 실제 결과 외상에서 척수에 발생하는 조건의 이질적인 집합입니다. 그럼에도 불구하고, 인간의 SCI 케이스의 약 절반으로 인해 phrenic 모터 신경 세포 손실 및 bulbospinal의 호흡 axons 1 내림차순으로 부상을 쇠약하게 호흡 부전의 결과, 자궁 지역에 영향을 미칩니다. SCI의 동물 모델의 숫자는 가장 일반적으로 사용하고 임상 - 관련 타박상 8되는, 개발되었습니다.
신경 전구체 세포 (NPCs)의 다양한 클래스의 이식 때문에 분실 또는 역기능 CNS 세포 종류가 제공하는 neuroprotection를 교체하고, 유전자 요인을 제공할 수있는 능력의 ALS 및 SCI를 포함한 외상 CNS의 부상과 neurodegeneration의 치료를위한 유망한 치료 전략 관심 9.
ALS와 SCI 모두의 동물 모델 phrenic 모터 신경 세포 손실 및 결과의 호흡기 손상 10,11 포함하여이 질병의 많은 임상 - 관련 측면을 모델 수 있습니다. ALS와 SCI 이러한 동물 모델에서 호흡 기능에 NPC 기반 전략의 효능을 평가하기 위해서는 세포 개입은 특히 phrenic 모터 뉴런과 같은 therapeutically 관련 목표를 포함하는 지역으로 이동해야합니다. 우리는 이러한 SOD1 G93A 마우스 및 쥐뿐만 아니라 척수 부상 쥐 및 쥐 11으로 neurodegenerative 모델의 자궁 경부 척수 복부 회색 물질로 NPCs의 멀티 segmental, intraspinal 이식에 대한 자세한 프로토콜을 제공합니다.
방법
1. 셀 준비
예를 들어, 우리는 이것 때문에 세포 유형과 경험의 이식에 대한 glial 전구 세포에게 12 준비 절차를 설명합니다. 그러나, 중간 및 예를 들어, 트립신의 사용을 포함한 프로토콜의 세부 사항은, 이식에 사용되는 특정 세포 종류에 따라 달라집니다.
옵션 : 1.0 MG / DMEM/F12에 ML의 대두 트립신 억제제의 추가 5.0 mL/T-75 술병.
해밀턴 주사기 / 바늘이 튜브에 깊이 맞지 않을 수, 0.75 ML 튜브를 사용하지 마십시오. 여러 주사 가능성이 수술 세션 중에 만들어진, 그리고 하나는 세포 여러 번 같은 튜브를 방해하지 않도록하고자합니다. 필요 이상의 세포 현탁액의 적어도 50 % 이상 볼륨을 준비하려고합니다. 수술 세션을 통해 얼음에 세포 보관하십시오. 세포 이식 후 가장 큰 가능성을 보장하기 위해 셀 정지를 준비하는 4-5시간 이내에 이식 세포.
2. 수술하기 전에 준비
3. 수술 : 동물 준비 및 수술
동물 준비 :
수술 :
프로토콜의 여러 단계와 관련된 문제에 대한 문제 해결 팁
/ 가난한 세포 생존의 부족 : 이것은 가능성 사출과 관련된 기술적인 문제는 아니지만 아마도 및 / 또는 immunesuppression 처방로 주입되는 세포 유형의 속성 때문입니다. 이러한 문제는 경험적으로 세포 종류와 동물 모델을 특정 기준으로 평가해야합니다. 면역 - 결함 쥐, 마우스 모델 다수의 가용성또한 immunesuppression 문제를 우회하기 위해 사용할 수 있지만,이 동물은 또한 비용, 식민지를 유지 필요하고, 수술과 주택시 필요한 추가적인주의로 어려움을 제시한다.
기능성 적자는 다음과 수술을 관찰 : 우리의 경험에서 우리는 심지어 6 주사 사이트 (와 같은 forelimb 및 hindlimb 그립 강도와 신경 / 격막 물질 근육 액션 잠재력을 phrenic 같은 조치로 평가했을 때이 절차를 수행하는 기능 결손의 발생을 관찰하지 자궁 경부 척수의 2μL의 각). 조직 파괴는 관찰되지 않았습니다. 이러한 문제의 발생에 대한 가능성이있는 이유는 다음과 같습니다 (예 : # 5 코드를 곤란으로 경질를 깎다가 큰 볼륨 및 / 또는 휴대 전화 번호, 부적 절한 laminectomy에 의한 의도 손상, 진미의 부족을 주입, 제안된 바늘 게이지를 사용하지 포셉) 또는 척수 (무딘 바늘을 대체)로 해밀턴 바늘을 삽입하는 과정.
세포는 복부 회색 문제에서 찾을 수 없습니다 : 이것은 문제의 숫자로 인해 수 있습니다. 주사가 medially 또는 옆으로 대상을 그리워하는 경우 제대로 척수의 축으로 분사 시스템을 병렬 라인, 그리고 지느러미 rootlets의 항목에 단지 중간 바늘을 삽입해야합니다. 주사가 dorsally 또는 ventrally 대상을 그리워 경우, 바늘의 끝이 단지 간신히 척수의 지느러미 표면을 만져 때, 해당 베벨 (이상 베벨에 제안된 해밀턴 바늘을 사용하여 Z 축 독서를 제로로 확인 ) 타겟팅에 영향을 줄 수, 바늘을 삽입시 척수는 압축하지 않는 안심 정확히 micromanipulator를 사용하여 깊이를 측정 처리 및 제안 체중 범위 내에서 동물을 사용합니다. 당신은 일관되게 (histological 평가 및 후속 기술의 수정을 필요로하는) 위치에 세포를 주입 아르 적절 경우 기법을 조정합니다. 주사가 무작위로 사출 사이트의 모든에 흩어져있다면, 당신은 일관성을 개선하기 위해 연습해야합니다. 세포 바늘 트랙을 따라 척수의 지느러미 부분에 주로 위치하는 경향이 경우, 세포 주입 전후 이상 기다린 시간의 긴 기간 동안 실제 주사를 확장합니다.
4. 대표 결과 :
마우스 파생 glial 전구 세포가 성인 SOD1 G93A 쥐의 척수 수준 C4의 복부 나팔 소리로 (5 셀 / 사이트) 이식되었습니다. 마우스 파생 이식 세포는 마우스 특정 항체, M2와 탐지를 통해 호스트 쥐의 조직에서 구분할 수 있습니다. 이 이미지는 일개월 후 이식에서 M2 + 이식 파생 세포 (그림 12 참조)의 생존을 보여줍니다. 세포는 복부 회색 문제로 지역화된지만, 사출 사이트 medially 측면 복부 경적을 (대부분의 phrenic 모터 뉴런의 위치 : 점선으로 표시)보고 싶었어. 없음 낭종 형성은 50,000 전지가 당 사이트에 주입했을 때 볼 수 없으며, 아무런 행동 장애는 사출 과정에서 발생되지 않았습니다. 그러나, 세포의 훨씬 높은 숫자 (실제 숫자는 셀 유형에 따라 다릅니다하고, 체계적으로 평가해야합니다) 사출 사이트에서 손상과 바늘 트랙을 따라 결과 (그림 13를 참조하십시오 astrocyte 마커와 immunohistochemistry, GFAP)의 분사 .
그림 1. 피부의 초기 절개가. 가장 낮은 현미경의 배율에 (우리는 8 X의 배율을 사용), 중간선 절개를 만들기 위해 메스 블레이드를 사용합니다. (잘라 피부가 쉽게되는) 피부가 긴장을 다른 손으로 옆으로 피부를 당겨와 (표시된 견갑골에 두개골의 자료 (귀 뒤쪽의 수준)에서 절개를 (굵은 점선으로 표시) 확인 얇은 점선으로).
그림 2. 외과 분야의 노출. 외과 노출 직사각형 모양 / 평방해야합니다. 이 형상은 4 견인기를 사용하여 네 모서리 방향으로 주위의 근육을 당겨 얻을 수 있습니다. 견인기를 안전하고 적절하게 필드를 열어 유지하기 위해 외과 보드 견인기에 연결된 테이프 문자열입니다.
그림 2 삽입. 외과 분야 노출 견인기. 견인기는 척수와 수술을 수행하기 위해 적절한 공간의 명확한 가시성을 모두 수술 현장을 만들기 위해 근육을 뒤로 물러나게하는 데 사용됩니다. 견인기은 원하는 모양과 크기로 튼튼한 클립을 형성하여 만들 수 있습니다. 수술 전에 견인기를 압력솥. 견인기로 문자열을 묶어.
그림3. paraspinal 근육의 척추. 다음 제거, rongeur와 척추의 철저하게 세척 등의 표면. 개인 얇은 판은뿐만 아니라 척추 측면에서 입력 지느러미 rootlets로 볼 수 있습니다.
그림 4. Laminectomy가. 척수 수준 C5에서 laminectomy를 시작합니다. 쥐 이빨 포셉과 근육 overlying 수준의 C2를 개최하여 보안 척추. rongeur과 : 전체 얇은 판을 (중간선 부근 잡고 그림 참조) 잡아. 위치 rongeur 있도록 도구는 척추 축을 완전히 직각이다. 천천히 얇은 판을 부술. 이 척추 조직에 손상을 일으킬 수 있으므로, 척수로 내려와서하지 마십시오. 크러시 부드럽게 뼈가 이상의 깨진 조각을 가져옵니다. 하나는 쉽게 제거하는 끌어낼 수 있도록 Rongeur이 기사를 부술해야합니다. 뼈 조각이 아직 laminae 나머지에 첨부되어있는 경우이 척수 출혈과 부상을 입을 수 있으므로, 예인선하지 않습니다. Rongeur이 깨끗하고 선명합니다.
그림 5. 척수 조직 아래의 laminectomy의 노출. C4 - C6 척수를 모두 노출 laminectomy를 확장합니다. 3 레벨 이상의 척추 뼈 1 지속적인 개방을합니다. 이 출혈의 원인이되므로 너무 멀리 옆으로 laminectomy을 연장하지 마십시오. 복부 경적을 타겟으로하기 위해 사출 사이트는 상대적으로 중간이기 때문에 그것은 척추 뼈의 전체 측면 범위 laminectomy을 확장하는 필요이다.
그림 6. 척수의 지느러미 표면의 높은 배율. 저명한 지느러미 혈관은 척수의 중간선을 실행하고 볼 수 있습니다. 이 혈관 패턴은 대부분의 경우에서 관찰되지만, 일부 동물은 혈관의 비 중간선 궤도를 표시합니다. 지느러미 rootlets은 척수의 지느러미 표면의 측면 측면에서 볼 수 있습니다. 척수를 overlying 경질에 비해,이 신경이 헷갈리는 모양이 있습니다.
그림 7. 사출 설치. 적절히 원하는 해부 지역을 대상으로 척추 축을과 주사기 / 주사 바늘을 병렬로 정렬. 바늘은 수술 범위 머리를 범프하지 않는 (외과 테이블에 비해 약 80도) 충분히 직각지만, 척수 등의 표면을 향해 가능한 (왼쪽 패널)만큼 가까운 90도. 낮은 분사 팁의를 사용하고 있습니다 현미경 (오른쪽 패널). 부드럽게 바늘의 끝에와 척수의 표면을 만지지. 약간 바늘로 코드를 놓으면 되죠. 척수가 정상 평면 상태로 될 때까지 주사를 철회. Z는 = 0.0이 micromanipulator에있는 지도자를 사용하여 본 위치를 기록합니다.
그림 8. 지느러미 rootlets (점선으로 표시)의 항목 영역에 단지 중간 척수 사출 목표 바늘 높은 확대.
그림 9. 척수의 다이어그램 방법에 관심 해부 지역을 대상으로 복부 경적, 지느러미 rootlets의 항목 영역에 단지 중간 척추 축에 절개 경질 병렬을 대상으로 시도.. 이것은 하나가 복부 경적을 대상으로 수 있습니다. (동물의 연령과 성별에 훨씬 깊이에 차이를 만들지 않습니다) 성인 쥐에서 복부 경적을 대상으로 1.5 mm의 깊이 감소 바늘. 성인 생쥐의 복부 경적을 대상으로 0.75 mm의 깊이 감소 바늘. 물론, 깊이 및 수평 위치는 관심의 특정 지역에 따라 달라집니다.
그림 10. 외과 사이트의 폐쇄. 봉합사는 4-0 봉합사로 한 번에 세 overlying의 근육 레이어를 마감했다. 주동이의 - 꼬리 축 3 위치에서 근육을 봉합해.
그림 11. 피부 Stapling. 스테플 피부는 9.0 mm의 상처 클립 마감했다. 전체의 상처 치유하기 전에 스테이플을 당기는 동물을 방지하기 위해 바늘 홀더와 스테이플를 조이십시오. 떨어져 우주 스테이플은 약 0.5 mm.
그림 12. 자궁 경부 복부 경적에 glial progenitors의 이식. 50000 마우스 파생 glial 전구 세포는 SOD1 G93A 쥐의 척수 수준 C4의 복부 나팔 소리로 이식되었다. M2 + 마우스 유래 이식 세포가 일개월 후 이식에서 살아남았습니다. 세포는 복부 회색 문제로 지역화된지만, 사출 사이트 medially 측면 복부 경적을 (표시된 놓친점선으로).
그림 13. 신경 전구체 세포의 높은 숫자의 조직 손상이 다음과 같은 이식. 전지의 훨씬 높은 숫자 (실제 숫자는 셀 유형에 따라 다릅니다하고, 체계적으로 평가해야합니다) 사출 사이트에서 손상과 바늘 트랙을 따라 결과의 사출.
SOD1 G93A 마우스 및 쥐, 연령 및 그룹 내에서 동물을 섹스와 일치하고, 다른 그룹에 동일한 쓰레기 내에 동물을 배포합니다. 관련된 연구 그것은 질병 프로세스가 남성과 여성 사이에 다를 수 있기 때문에 ALS와 SCI 모델 모두에 대해 동일한 성별의 모든 동물을 사용하는 것이 바람직하지만, 그것은 또한 가능한 섹스 특정 효과를 감지하는 두 남녀의 충분한 동물을 가지고하는 것이 유용할 수 ...
관심 없음 충돌 선언하지 않습니다.
나는 감사의 말씀을 전합니다 : Lepore의 모든 구성원, Maragakis 및 도움이 토론 Rothstein 연구소, 미국과 자금에 대한 크랙 H. Neilsen 재단의 굳는 베테랑.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
시약의 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | |
HBSS | Gibco | 14,170 | |
0.05 %의 트립신 | Gibco | 25,300 | |
대두 트립신 억제제 (선택 사항) | 시그마 | T - 6522 | |
Acepromazine의 maleate (0.7 밀리그램 / kg) | Fermenta 동물 건강 | ||
케타민을 (95 MG / kg) | 포트 닷지 동물 건강 | ||
Xylazine (10 MG / kg) | 바이엘 | ||
# 11 깃털 외과 블레이드 | 전자 현미경 과학 | 72044-11 | |
면과 밀고 applicators (6 인치) | 어부 | 23-400-101 | |
쥐 - 톱니 포셉 | 파인 과학 도구 | 쥐 : 11023-15; 마우스 : 11042-08 | |
중간 크기의 스프링 가위 | 파인 과학 도구 | 15012-12 | |
미니 스프링 가위 | 파인 과학 도구 | 15000-10 | |
Rongeur | 파인 과학 도구 | 쥐 : 16121-14; 마우스 : 16221-14 | |
Microknife | 파인 과학 도구 | 10056-12 | |
니들 홀더 | 파인 과학 도구 | 12502-14 | |
봉합 : 4-0 | Vicryl | S - 183 | |
스테이플 : 9mm | Autoclip | 427631 | |
스테플러 : 9mm (목표 # 203-1000) | 세계 정밀 계측기 | 5,000,344 | |
온수 펌프 (T / 펌프) | Gaymar | P / N 07999-000 | |
시클 로스 포린 A : 250.0 mg/5.0 ML의 ampules | 노바티스 / Sandimmune | NDC 0078-0109-01 | |
FK - 506 | LC 연구소 | F - 4900 | |
Rapamycin | LC 연구소 | R - 5000 | |
주사기 | 세계 정밀 계측기 | UMP2 | |
마이크로 네 Microsyringe 펌프 컨트롤러 | 세계 정밀 계측기 | UMC4 | |
Micromanipulator | 세계 정밀 계측기 | 연 - R | |
10.0 μL 해밀턴 주사기 | 해밀턴 | 80,030 | |
해밀턴 바늘 : 33 게이지, 45 ° 베벨, 1 인치 | 해밀턴 | 7803-05 | |
유리 20.0 μL microcapillary pipettes (선택 사항) | 킴블 | 71900-20 |
JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기
허가 살펴보기This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유