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기능 - 스페이서 - 지질 (FSL) 구조는 살아있는 세포와 virions의 표면 특성은 활력의 손실없이 수정할 수 있도록. 방법은 세포 / virion 및 자발하고 안정적인 표면 설립 발생과 FSL 구조 솔루션의 단순한 접촉을 필요로합니다.
수정 / 생물 학적 표면을 시각화하고 체외에서 범위 및 생체내 환경에서 수정된 세포 / virion을 연구하는 기능은 특정 분자 또는 전체 개체의 기능에 대한 통찰력을 확보하는 것이 필수적입니다. 생물 학적 표면 수정 연구는 일반적으로 유기체의 유전자 공학이나 세포 표면에 화학 1,2 moieties의 공유 결합 첨부 제한됩니다. 그러나 이러한 전통적인 기술은 화학 reactants에 세포를 노출하거나, 그들은 중요한 조작 그들이 성가신 만들고, 원하는 결과를 달성하기 위해 필요하고, 그들은 또한 실수로 수정된 세포의 생존 / 기능에 영향을 미칠 수 있습니다. harmlessly 세포의 표면을 수정하는 간단한 방법이 필요합니다.
최근에 새로운 기술, KODE 기술은 세 가지 요소로 구성된 새로운 구조의 다양한 발표했다 : 기능성 머리 그룹 (F), 스페이서 (S)과 지질 꼬리 (L)을하고 함수 스페이서 - 지질 또는 FSL로 알려져 있습니다 constructs3. 스페이서 (S)는 물에 dispersible있는 구조를 제공하기 위해 선택되어, 아직 자발적으로 그리고 안정 막에 통합됩니다.
FSL은 (F) 지금까지 혈액형 관련 determinants, sialic 지방산, hyaluronan 다당류, fluorophores, 비오틴, radiolabels 및 펩티드 3-12의 범위를 포함 saccharides의 범위를 포함 기능 moieties을 구축. FSL 구조는 세포 접착 / 상호 작용 / 분리 / 고정을 수정 품질 제어 시스템 및 진단 패널을 만들 수정 배아, 마리의 정자 수야, zebrafish, 상피 / 자궁 내막 세포, 적혈구, 그리고 virions에 사용하고, 체외에서에 대한되었습니다 전지 / virions 3-12의 생체내 이미징.
세포 / virions을 수정하는 과정은 일반적인 매우 간단합니다. 가장 일반적인 절차는 FSL은 37 1-2시간에 대한 구조 ° 4-10 C를위한 솔루션으로 세포의 배양 (지질 무료 미디어)입니다. 부화 동안 FSL은 세포막에 통합 자발적 구성하고, 프로세스가 완료됩니다. 워싱은 선택 사항입니다. virions는 kodevirions 10아르 동안 FSL 구조에 의해 수정된 세포는 kodecytes 6-9로 알려져 있습니다.
직접 혼합 및 kodecytes / kodevirions가 실험 동물 모델 7,8,10에 사용 되었기 때문입니다 FSL은 구조. 모든 kodecytes / kodevirions은 F 잔기 7,8,10,11의 새로운 기능을 확보하면서 자신의 정상적인 활력과 기능을 유지하기 위해 나타납니다.
biocompatible 미디어, 세포 점막에 자발적인 설립하고, 명백한 낮은 독성에 dispersibility의 조합, FSL은 세포 virions 연구에 대한 가치있는 연구 도구를 구성합니다.
다음 프로토콜은 생물 세포막에 FSL 구조의 삽입 (그림 1)에 대한 일반적인 절차를 설명합니다. 단순화하기 위해 프로토콜은 100 % 농도에있어 세포 (kodecytes)을 참조합니다. 그러나, 장기 세포가 virions (kodevirions) 또는 유기체 또는 세포 구조와 희석제 그들의 농도와 호환하는 것은 중요하지 않습니다, 그것은 테스트, 컨트롤 및 실험 사이에 항상 일관성이 제공됩니다. 적혈구와 포장 세포 볼륨은 일반적으로 80 %지만, virions, 배아 및 기타 세포와 함께 일반적으로 1 % 미만이다. 방법은 매우 강력하고 그 변화의 모든 사용하는 경우 수정 세포막을 생산되지만, 상세 검색은 특정 응용 프로그램에 필요한 수정의 정도를 최적화하고 표준화해야합니다.
1. FSL의 준비 구성
참고 :
2. 세포막에 FSL 건설 (들)의 삽입
참고 :
3. 처리 및 시각화
참고 :
4. 대표 결과 :
표 2. 세 가지 FSL - A (트라이) 레드 셀 kodecytes 대표 serological 반응 단클론 항 - A의 dilutions에 대한 테스트. 그룹 O 붉은 세포의 동일한 볼륨 incubated FSL - A (트라이)의 50 μm의 솔루션은 단클론 항 - A의 1:512 희석에 의해 감지 수있는 강력한 항원 양성 세포를 생산. 5 - 10 배 낮은 FSL - A가 (트라이) 솔루션은 적은 혈액형 항원 표현과 kodecytes을 생산.
그림 1. FSL 구조 개요. 꽃 FSL 구성 요소와 마찬가지로 세 가지 주요 구성 요소로 구성되어 있습니다. FSL 구조의 경우 기능적 머리 (F)는 서로 다른 생물 학적 기능 그룹의 다양한, 멀리 멤브레인에서 F의 간격을 유도 물 dispersibility를 개선하고 혈청 반응하도록 설계 스페이서 (S), 수 diacyl 지질 허용하면서 구조가 저절로 표면에 통합합니다. (I) 혈액형 GB 3 (또는 P K)와 FSL - GB3는 에피토프의 Galα4Galβ4Glcβ을 trisaccharide. (II) FSL - A (트라이) 혈액형 trisaccharide 에피토프 GalNAcα3 (Fucα2) Galβ와 함께. (III) FSL - 플루오레신. (IV) 단일 비오틴의 F의 잔기와 FSL - 비오틴. 구조 IV의 공백이 carboxymethylglycine - adipate 기반하는 동안 I - III의 구조의 기능 그룹 dioleoylphosphatidylethanolamine의 활성화 adipate 유도체 (마약)에 복합 있습니다.
그림 2. FSL - 플루오레신는 murine 배아를 표시. 모든 이미지는 조나 pellucida (ZP)는 (예 : FSL 구조 안에 배아를 레이블 ZP 통과) 손상되었을 때 라벨이 붙지만 사는 배아들 중입니다. 이미지 I - IV는 FSL - 플루오레신과 산성 tyrodes 포스트 라벨 자신의 ZP에서 발표 ZP없이 배아들 중입니다. 동일한 얼룩에 관계없이 배아는 FSL은 ZP 그대로 또는 ZP 무료로 수정된 여부에 발생합니다. 배아는 직접이 2 시간 37 혈청 무료 세포 배양 매체 ° C의 방법으로, FSL - 플루오레신으로 표시 씻은 후 형광 현미경 아래에서 볼 수 있습니다. (I) ZP 무료로 두 개의 세포 murine 배아는 또한 고전적인 강렬한 북극 신체 얼룩을 보여주는. (II - III) ZP 무료 안경 셀 및 8 셀 murine 배아, 아웃하는 세포의 모두보기 그림자 염색법초점 IDE 현미경의 비행기. (IV) ZP 무료 16 세포 murine 배아. 배아와 조나 모두 표시 아르 (V) ZP 그대로 murine blastocyst의 배아 (D4 - D5).
그림 3. FSL - 플루오레신 및 zebrafish 14. (I) Microangiography는 52 HPF 시간 (게시물 수정) zebrafish의 유충에 직접 FSL - 플루오레신과 순환에 주입. zebrafish의 vasculature이 물들어있다. (II) FSL - 플루오레신 불일치 Zebrafish의 신장 조직 세포 (ZK kodecytes)가 예 생체내을 만든 52 HPF받는 Zebrafish의 순환에 마이크로 주입. ZK의 kodecytes의 생체내 관측에의 이미지로 2 시간 이후 주사에게되었다 시간 경과 현미경과 형광 아래 vasculature. 그림은 큰 천천히 이동하거나 고정되어 셀 (오렌지 화살표로 표시)와 빠르게 움직이는 세포 (- 녹색 화살표로 표시 움직임으로 인해 흐릿한 이미지)와 하나의 비디오 프레임입니다. 라벨은 행동과 biodistribution ZK의 kodecytes의 생체내 관찰에서 실시간으로 허용합니다. (III) FSL - 플루오레신의 사정 이해는 최대 5 일 동안 미디어를 포함하는 FSL - 플루오레신에 zebrafish 배아를 immersing로 달성했습니다. 워싱이 더 FSL 구조를 (최소한 6시간이 필요하지만, 몇 일 수있다)가 포함된없는 미디어로 배아를 전송하여 달성되었다. 인접 형광 이미지 (IIIb)에 해당하는 FSL - 플루오레신 취급 zebrafish의 (IIIa) 명시야 현미경. fluoresence은 우선적으로 창자에 위치했다. 아무 얼룩은 치료 제어 배아 (아이바 및 IVb)에서 관찰되지 않았습니다.
virions 10 VSV 및 H1N1의 그림 4. FSL - 플루오레신 라벨. (I) 소낭성의 구염 바이러스 (VSV)가 직접 37 10 μg / ML 2 H에 대한 FSL - 플루오레신으로 표시했습니다 ° C, 4 % paraformaldehyde 후 유동세포계측법로 고정하여 따라갔다. VSV kodevirion 게시물 FSL 라벨링에 대한 정화가 필요 없었습니다. (II) 인간의 A / 푸에르 Rico/8/1934 (H1N1)에 감염된 돼지 고환 세포의 유동세포계측법는 FSL - 플루오레신을 사용하여 레이블 kodevirions. 감염되지 않은 세포가 검은 라인으로 볼 수있는 반면 형광 셀 (빨간색 선)의 ST 전지 결과 H1N1 kodevirion의 융합.
그림 5. 표시된 아비딘 7,8 통해 FSL - 비오틴 표시 전지 및 그 이후의 시각화. 모든 세포 먼저, 37 1 H ° C에 대한 FSL - 비오틴으로 표시 다음 아비딘 표시 형광단, 형광 현미경을위한 마운트 세탁 및 젖은 채 반응 세탁했다. (I)는 murine 배아 blastocyst의 공촛점 이미지를 편집한 것들이야. 위의 이미지에서 배 (胚) (II) 중앙 공촛점 조각. (III) 운동성이있는 인간 마리의 정자 수야 라이브 - 흐리게 그들의 운동의 결과로 발생합니다. (IV) 고정 (4 % paraformaldehyde 포스트 삽입) 인간 마리의 정자 수야. (V) 인간 적혈구. (VI) 고정 (4 % paraformaldehyde의 사전 삽입) RL95 자궁 내막 암종 인간. (VII) 떼어낸 RL95 자궁 내막 암종 인간의 세포 라인. (VIII) 비오틴 RBC는 (VIIIb)는 현장에있는 두 kodecytes을 식별, 형광 아래의 조회와 동일한 입력란이있는 동안 2 시간 (VIIIa) 가벼운 현미경 아래에서 볼 수있는 필드를 나타내는와 kodecytes의 정맥 주입을 게시 찍은 혈액 샘플에서 관찰 kodecytes - -보기. 레이블이 지정되지 않은 세포에 kodecytes의 비율을 계산하는 것은 생존의 지표로 사용할 수 있습니다. (IX) 인간 자궁 내막 비오틴의 kodecytes가 avidinylated 구슬에 바인딩하여 시각 살고 있습니다.
그림 6. serologic 프로파일에 대한 혈액 그룹 마커를 추가 FSL - 탄수화물. (I) 인간의 붉은 세포 Galili의 kodecytes는 FSL - Galili 일련의 농도 (500 μg / ML)로 만든 인간 혈청 dilutions에 대해 테스트되었습니다. 인간의 붉은 세포가 자연스럽게 xenoantigen Galili의 항원과 함께 발생하지 않습니다. 이러한 kodecytes는 혈청에서 항체의 양적 수준을 사용할 수 있습니다. 이 예제에서는 기증자는 1시 32분의 방지 Galili titre을 가지고 결정했다. (II) 항체를 감지하는 FSL의 감소 수준 ( "항원 titres"), 최적의 항원 수준 kodecytes를 작성하여 (르이 예제의) 확인할 수 있습니다. 세포는 항체 수준이 특정 titre을 초과하면 긍정적인 결과만을 제공하기 위해 만들 수 있습니다. 긍정적인 결과를 제공하는 데 필요한 FSL의 항원의 수준은 항체의 품질과 레벨이 감지되는에 따라 달라집니다. 탄수화물의 항원에 대한, 100 μg / ML의 FSL 솔루션은 일반적으로 강한 긍정적인 반응하게됩니다. (III) 인간 집단 O 붉은 세포는 개미의 특정 수준을 가지고 수정된igen는 (kodecytes 표준화), 그리고 정확하고 reproducibly 인간 혈청에 반대를 quantitate하는 데 사용됩니다. 이 예제에서는 안티 - A 그룹 O 혈청 검사에서 titre가 1시 32분이고 kodecytes이 기증자 자신의 붉은 세포에서 준비되었다. (IV) 혈액형은 A와 동시에 하나의 그룹 O 붉은 세포 샘플에 삽입 B 항원이 약한 B 약한 kodecytes를 생성하는 데 사용됩니다. 이러한 kodecytes은 ABO 품질 관리 목적으로 사용할 수 있습니다. 이 결과는 백신 및 안티 - B 시약에 대한 테스트 및 약한 반응을 예상 제공하는 특별히 공식화 약한 B 약한 kodecyte의 분석을 보여줍니다.
FSL 구조와 수정 세포 virions은 매우 단순하고 강력한 기법 3-11입니다. 설명하고 FSL은 수정되지 않은 세포에서 수정된 세포와 virions을 구축 구분하기 위해, 그들은 각각 kodecytes와 kodevirions 60-10을 칭했다 있지만, 도입 기능 그룹들은 막에 존재하는 표시 수있는 경우. kodecytes가 FSL 구조의 서로 다른 농도로 만든 경우, 그들은, 예를 들어 15 μg / ML kodecytes, 또는 하나 이상의 FSL은 다음 사용하는 경우 결합된 용어 그들을 만드는 데 사용 FSL 구축 솔루션의 농도에 의해 참조될 수 A + 비오틴 kodecytes 7,8 예를 들어. 다른 세포 설명에있는 세포 유형을 포함하여 비교하는 경우 권장합니다, 예를 들어 붉은 세포 비오틴의 kodecytes이나 자궁 내막 비오틴의 kodecytes 7,8.
삽입의 과정 (서로 다른 속도로 불구하고) 매우 강력하고 삽입 있지만 것은 4 넓은 온도 범위에서 발생합니다 - 37 ° C와 시간 분 이내에 연락 시간, 온도, FSL 농도 (중 재현할 삽입 엄격한 통제를 얻기 위해 ) 희석액 제제를 포함하고, 낮은 정도의 세포 농도가 필요합니다. 지금까지, 모든 FSL 구조가 동일한 기술 4-11하여 세포를 수정하는 데 사용할 수 있지만 그것은 특정 조건이 세포 / 수정할 수로 virions의 작업 흐름 및 / 또는 최적의 처리 요구 사항에 더 유리한 것으로 예상된다 . 원하는 효과를 얻을 수있는 정확한 FSL 농도는 사용자 4에 의해 결정되어야합니다. 결과 FSL 수정된 세포를 만들 / virions는 일반적으로 생물 학적 또는 분석 시스템 4-11에서 수정되지 않은 셀 / virion 같은 방식으로 사용할 수 있습니다. FSL 구조 때 지질 솔루션 7,8 접촉 천천히 수정 표면에서 elute, 아니면 적극적으로 세포 11 시까지 소비로, 이러한 문제는 시간의 기간 동안 얻은 신호 또는 활동의 수준과 관련하여 고려되어야합니다. 삽입은 정착액은 지질 - eluting 용제를 포함하지 않고 기능 그룹 정착액과 호환되는 이후 Kodecytes (예 : 글루 타 알데히드 / 포르말린) 해결할 수 있습니다. 또는 고정 세포 FSL 구성 요소와 수정할 수 있습니다.
셀 및 virion 표면의 수정 이외에 FSL 구조는 순환 세포의 생체내 수정 7 일으키는 실험 동물의 순환에 직접 주입 수 있으며 바이러스 12, 독소, 12 항체 7 억제합니다. FLS 구조는 liposomes을 장식하는 데 사용되었습니다 그들이 고정 종이 표면 13로 인쇄할 수 있으며, 다음 진단 assays에서 사용할 수 있습니다.
쉽게 FSL 구조의 증가 범위 살 세포를 수정하는 기능은 유용한 연구와 세포 표면 생물학 연구를위한 개발 도구로 증명한다.
데보라 A. 공백과 스티븐 M. 헨리는 KODE 생명 공학의 직원과 주주 아르 KODE 기술의 특허 소유자 제한. 댄 베쓰이 비디오 문서의 생산을 후원했다 시그마 - 알드리치의 직원입니다.
저자는 비디오를 발표를위한 시그마 - 알드리치에서 댄 베스 감사합니다. 우리는 또한 돈 브랜치, Evgenii Cherny, 스콧 Chesla, 엘리자베스 Hadac, 아만다 해리슨, 데이 미언 힛코트, 애니카 Hult, 추안 - 칭 LAN, 수잔나 매킨토시, Sarvani Komarraju, 엘레나 Korchagina, 캐롤라인 올리버 마틴 올슨, 스티븐 파커, 이고르 Rodinov을 감사 그 결과 설계, FSL 구조의 합성 및 생물 학적 활동을 결정하기 위해 공헌 알렉산더 Tuzikov하고, 엘리너 윌리엄스.
1. 상용 FSL의 구조는이 문서에서 설명하는 표.
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