JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.
Method Article
관상 혈관의 시각화는 심장 혈관 질병의 우리의 이해를 증진하기 위해 중요합니다. 여기에서 우리는 마이크로 계산된 Tomography (μCT) 이미징을위한 준비, radiopaque 실리콘 고무 (Microfil)로 murine 관상 vasculature을 perfusing위한 방법을 설명합니다.
vasculature의 시각화는 여러 질병 상태를 이해를 위해 점점 더 중요 해지고 있습니다. 여러 기법 이미징 vasculature을 위해 존재하지만, 몇몇 작은 혈관의 1,2를 포함 해상도로 확대하면서 전체적으로 혈관 네트워크를 시각화 할 수 있습니다. 또한 많은 혈관 주조 기법 예제 3-5의 자세한 분석을 방지, 주변 조직을 파괴. 이러한 문제를 circumvents 한 가지 방법은 마이크로 계산된 Tomography (μCT)입니다. μCT 영상은 해상도 <10 미크론에서 스캔 혈관 네트워크의 3 차원 reconstructions를 생산 할 수 있으며 (예 : 조직학 및 morphometry) 후속 분석을 위해 그대로 6-11을 조직을 떠날 수 있습니다. 그러나 전직 생체내 μCT 방법에 의한 이미징 혈관 혈관이 radiopaque 화합물로 가득해야합니다. 따라서 μCT 이미징 제작한 vasculature의 정확한 표현이 조건으로하고있다혈관의 신뢰성과 완벽한 충전. 이 프로토콜에서는 μCT 이미징을위한 준비 마우스 관상 동맥 혈관을 작성을위한 기법을 설명합니다.
두 predominate 기술은 관상 vasculature 가득 채우는 것은 존재 : Langendorff 재관류 시스템을 통해 15-17 cannulation과 역행 대동맥의 관류 (또는 대동맥 아치 해제 지점) 12-14, 또는 전직 생체내 통해 생체내 인치 여기에서 우리는 특별히 모든 선박에 대해 작성하도록 설계되었습니다 생체내의 대동맥 cannulation 방법에 대해 설명합니다. 우리 모두는 모세 혈관뿐만 아니라, 혈관 네트워크의 동맥과 정맥의 양쪽 모두를 채우기 위해 작은 혈관을 통해 perfuse 수 Microfil라는 낮은 점도의 radiopaque 화합물을 사용합니다. 혈관이 압력 관류 시스템을 사용하여 버퍼로 perfused 후 Microfil으로 가득합니다. 그 Microfil가 작은 높은 저항 혈관을 채우고 확보하기 위해 대규모 지점 emanatin ligatecoronaries로 Microfil을 산란 대동맥에서 g. 일단 충전 일부 표본 Microfil을 짜면 심장 조직의 탄성 특성을 방지하기 위해, 완료 즉시 충전 후 접근이 주요 혈관 출구 포인트를 ligate. 따라서, 우리의 기술은 완전한 관상 혈관 네트워크의 시각화을 사용, 충전 대리인의 완전한 충전과 최대 보존에 최적화되어 있습니다 - 동맥, 모세 혈관과 정맥이 비슷하다.
1. 시작하기 전에 준비
2. 가슴을 노출하고 대동맥을 cannulating
3. 관류 및 Microfil 분사
4. 대표 결과
효과적 Microfil 의해 perfused되는 선박은 선박에 걸쳐 지속 깨지지 Microfil (그림 3A)를해야합니다. 관상 혈관의 작성의 범위는 눈으로에서 재판받을 수 있으며, 정맥은 epicardially 18에 위치하고 있으며, 쉽게 (그림 3A, 화살촉) 관찰 수 있으며, 동맥,이것은 18보다 intramyocardial있는 심장의 표면 (그림 3A, 화살표)를 통해도 볼 수 있습니다. 심장 조직은 모세 혈관의 매우 높은 밀도를 가지고로서 모세관 충전은 또한 분명하다, 따라서, 언제 모세 혈관 채우기는 심장 조직 Microfil의 색상 (그림 3A, 별표)로 플러시됩니다. 따라서 작성하는 데 실패하는 혈관 네트워크는 Microfil의 부족 (그림 3B, C)로 인해 눈에 띄게 될 것이다.
Microfil의 소수성 자연이 그 자체로 계약 가득한 혈관 내에서 "휴식"을 일으키는 원인이되므로 Microfil (그림 3B 관련 별표)에 불연속은 종종 나타납니다. 혈관 내의 압력이 심장에서 혈관 출구 포인트의 타이 오프 적정을 통해 유지하는 경우이 "휴식"이 감소될 수있다. 다른 불연속은 microfil 내의 기포로 인해 발생할 수 있습니다. 재관류 AP에서 전환할 때 공기의 도입을 방지하기 위해 angiocatheter이 완전히 물에 빠져들되어 있는지 확인 Microfil 주사기로 paratus. 공기 방울이 도입되면, 그것은 종종 거품이 관상 동맥 혈관의 통해 밀고 나가는 때까지 Microfil 재관류를 계속하여 간단하게 제거할 수 있습니다.
혈관 침대 부분 (그림 3B, 화살표)가 차단되는 경우 혈관 네트워크는 완전히 채울 수 없습니다. 헤파린은 혈전의 형성을 억제하지만, 가끔 막혀 여전히 이전 절차, 기타 알려지지 않은 요인으로 인해를 시작으로 불완전하게 헤파린 재관류로 인해 발생할 수 있습니다. 차단이 발생하면 혈관 채우기를 완료하기 위해 차단을 dislodging위한 방법은, 우리의 지식,이 없습니다. 너무 작은 압력 Microfil 모든 혈관 침대와 모세관 네트워크 (그림 3C)에 강제되지 않습니다 충전 중에 사용하는 경우 불완전한 충전도 발생할 수 있습니다. 반대로, 너무 많은 압력은 모세 혈관은 (그림 3D) 주변 조직에 Microfil을 터뜨릴하고 extravasate시킬 수 있습니다.
files/ftp_upload/3740/3740fig1.jpg "고도 ="그림 1 "/>
1 그림. Microfil 재관류 제도의 개요. () 대동맥과 PVC는 다이어프램의 약 수준에서 잘라 있습니다. (B) 오름차순 대동맥은 angiocatheter로 cannulated있다. (D) 대동맥 아치 오프 세 가지 주요 지점은 출혈도 잡았하는 동안 (C) Vasodilation 버퍼는 압력 재관류 장치 (사진에 없음)에 의한 혈관,를 통해 perfused됩니다. 모두 앞쪽에 베나의 Cavas은 출혈도 잡았하는 동안 (E) 4% PFA는 coronaries 통해 perfused됩니다. 그것은 PVC에서 종료 관찰되기 전까지 (F) 주사기를 사용하여 Microfil는 coronaries 통해 perfused됩니다.
그림 2. 관류 장치가. 두 Erlenmeyer의 flasks, Vasodilation 버퍼 또는 4퍼센트 PFA 하나 가득 각각은 입사하고 sidearms에 연결된 튜브를 통해 압력됩니다. 시스템의 펌핑 매뉴얼을 통해 가압전구 및 압력 게이지는 모니터링 및 압력의 유지를 허용하도록 flasks 중 하나에 연결됩니다. 작은 튜브가 고무 stoppers 통해 아래 각 플라스크에 액체로 확대. 압력이 작은 튜브 밖으로 각 플라스크에서 sidearms 펌프 유체으로 들어갔다. 튜브 그러면 한 번에 하나의 플라스크에서 흘러 유체 있습니다 꼭지에 병합.
그림 3. Microfilled 하트를 드셔보세요. () 잘 채워진다 선박은 (있는 경우) Microfil에서 봐야을 몇 가지게 될 것이며, 심장 조직이 채워진 모세관 (별표 및 C 비교)에 의한 Microfil의 물들어 색이 될 것입니다. 두 동맥 (화살표 - 왼쪽 앞부분 내림차순 동맥)과 정맥 (화살촉 - 왼쪽 관상 정맥)은 심장 표면을 통해 볼 수 있습니다. (B) 완전한 마이크를 방해 일부 선박의 microfil에서 봐야 (별표)뿐만 아니라 막혀있는 마음침투력을 rofil. 차단된 혈관은 혈액이 재관류 과정에서 밖으로 플러시되지 않았습니다으로, 빨강 (화살표) 남아 있습니다. 불완전하게 가득 차 있었다 혈관과 (C) 심장. 조직은 Microfil가 모세 혈관으로 침투하지 않은 나타내는 Microfil의 노란 색깔에 찍은되지 않았습니다납니다. (D) 마음이 어디 Microfil가 주변 조직 (화살표)으로 누출 원인, 채우는 동안 모세관 파열.
심장 조직은 매우 높은 신진 대사 수요를 가지고 있으며, 따라서 관상 vasculature에 의해 전달되는 혈액의 영양분과 산소의 지속적인 공급이 필요합니다. 선박 협착과 막힘으로 인해 관상 동맥 기능을 감소 관상 혈관, 환자는 조직 hypoxia와 국소 빈혈을 초래할, 그리고 심근 경색과 심장 근육에 치유할 수없는 손상에 대한 위험에 영향을받는 환자를 넣을 수 있습니다. 이러한 혈관의 질병 상태에 대한...
마우스는, 워싱턴 대학의 기관 동물 케어 및 사용위원회에 의해 건강의 미국 국립 연구소 (NIH 발행 번호 85-23으로 출판 실험실 동물의 관리 및 이용 안내에 따라 승인된 방법으로 처리되었습니다 ) 1996 개정.
우리는 프로토콜 박사 마이클 Simon 씨의, 닥터 킵의 Hauch, 그리고 일반적인 토론을위한 그들의 실험실의 두 구성원들의 초기 실험 용 박사 켈리 스티븐스 감사드립니다.
이 작품은 NIH 보조금 HL087513 및 P01 HL094374에 의해 지원입니다.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
시약의 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 댓글 |
한 ML의 주사기 | Becton 디킨슨 | BD-309602 | |
영구적으로 연결된 29G ½ '바늘과 1/2cc 인슐린 주사기 | Becton 디킨슨 | BD-309306 | |
2 "X 2"거즈 패드 | Med101store.com | SKU 2,208 | |
24G 잡았다 "Angiocath IV 카테터 | Becton 디킨슨 | BD-381112 | |
26G ½ "게이지 바늘 | 여윈 "> Becton 디킨슨 | BD-305111 | |
아데노신 | 시그마 | A9251 | 1g / Vasodilation 버퍼를위한 PBS에서 L (Papaverine 포함) |
각도 Graefe의 집게 | 파인 과학 도구 | 11052-10 | |
면과 스쳐 applicators : 6 "이외의 멸균 | 추기경 건강 | C15055-006 | |
곡선 외과 가위 | 파인 과학 도구 | 14085-09 | |
해부 입체경 및 광원 | 니콘 | NA | NA |
해부 트레이, 11.5 X 7.5 인치 | 콜 - Parmer | 요 - 10915-12 | 마우스를 아래로 달아 위해 타르로 가득 |
파인 곡선 집게 | Aesculap | FD281R | 게 2 |
헤파린 5000 U / ML 주식 | APP 제약 LLC | NDC 63323-047-10 | 물에 1:100 희석 |
KCl | 어부 | P217 | H2O의 포화 용액 |
Ketamin (Ketaset), 100 밀리그램 / ML 주식 | 포트 닷지, 오버랜드 파크, 캔사스, 미국 | NDC 0856-2013-01 | 0.9 % s에 Xylazine과 함께, 130 밀리그램 / kg 체중으로 혼합일직선으로하다 |
Microfil | 흐름 테크 | MV-122 (노랑). 기타 색 옵션도 사용할 수 있습니다. | 경화 요원의 부피에 의해 10 %, 중량으로 1:1 섞는다. 그것이 잘 혼합한지 단지 분사하고, 소용돌이 전에 준비 |
비 멸균 봉합해 : 6 대 0으로 꼰 명주실 | 하버드 장치 | 723,287 | |
Papaverine | 미국 리젠트 주식 회사 | NDC 0517-4010-01 | 4mg / Vasodilation 버퍼를위한 PBS에서 L (아데노신 포함) |
Paraformaldehyde | 시그마 | P6148 | 4 % 용액의 준비 |
관류 장치 | 그림 2 참조 | ||
봄 가위 | 파인 과학 도구 | 15018-10 | |
Xylazine (Anased), 20 밀리그램 / GL 주식 | 로이드 실험실 | 나다 # 139-236 | 0.9 %의 식염수에 Ketamin과 8.8 밀리그램 / kg 체중으로 혼합 |
JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기
허가 살펴보기This article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유