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Method Article
이 새로운 방법은 하나의 성인 마우스 motoneuron과 근육 섬유에 의해 생성 된 힘의 측정의 동시 세포 녹음을 할 수 있습니다. 정상과 유전자 변형 동물의 모터 장치의 전기 및 기계적 성질의 결합 조사 신경 근육 시스템의 연구를위한 돌파구이다.
가 (1) 쉽게 식별 할 목표를 (근육 섬유)를 갖는와하는 것은 따라서 매우 잘 알려진 기능을 갖는 고유의 특성을 가진 중추 신경계의 신경 세포이기 때문에 척추 motoneuron 긴 신경 기능을 연구하기위한 좋은 모델 시스템 왔습니다 (근육 수축을 조절하는), (2) 많은 척추와 내림차순 네트워크의 수렴 대상 "최종 공통 경로"의 따라서 이름 존재하며, (3)이 가능 날카로운 세포 전극과 함께 침투 할 수있는 대형 소마를 갖는 . 또한, 생체에서 공부했을 때, 그것은 동시에 motoneurons과 근육 목표에 의해 개발 된 힘의 전기 활동을 기록 할 수 있습니다. 생체에 motoneurons의 세포 녹음을 수행하는 것은 동시에 공부 할 수있는 독특한 위치에 experimentalist 넣어, "모터 유닛"(motoneuron, 그 축삭에 지정된 이름의 모든 격실, 그리고가 1 innervates 근육 섬유) : motoneuron에 impinging 입력은 motoneuron의 electrophysiological 속성 및 motoneurons의 생리적 기능에서 이러한 특성의 영향은 그 모터 장치에 의해 발생 된 힘을 즉. 준비가 마비 될 수 있으며 따라서 세포 내 기록에 대한 기계적 안정성이 감소되기 때문에 그러나,이 방법은 매우 어려운 것입니다. 따라서, 실험의이 종류는 고양이와 쥐의 달성되었습니다. 이 정상과 유전자 변형 생쥐에서 유사한 실험을 수행 할 수 있었던 경우에는 척추 모터 시스템의 연구는 강력한 도약을 수 있습니다.
기술적 인 이유로, 마우스의 척수 네트워크의 연구는 대부분 motoneurons과 척추 네트워크 유치 체외 준비에 신생아로 제한되었습니다 motoneurons는 목표에서 분리하고, 슬라이스, 미주리에서 공부했을 때 아르toneurons들은 입력의 대부분에서 구분됩니다. 최근까지 몇 그룹은 우리가 성인 마우스에 생체에 5,6를 motoneurons 매우 안정적인 레코딩을 얻을 수 새로운 준비를 출판 저희 팀을 포함, 생체 2-4 motoneurons의 세포 레코딩을 수행하기 위해 관리했습니다. 그러나, 이러한 녹음 즉, 이러한 motoneurons의 힘 출력을 기록 할 수있는 가능성이없는, 마비 동물에서 얻은되었습니다. 여기 우리가 motoneurons의 electrophysiological 속성 및 모터 유닛에 의해 개발 된 힘의 동시 녹음을 얻을 수있었습니다있는이 원래 준비의 확장을 제시한다. 그것은 우리가 자신의 힘 프로필에 따라 motoneurons의 다른 유형을 식별함으로써 자신의 기능을 공개 할 수 있으므로 이것은 중요한 성과입니다. 유전자 모델은 척추 segmental 회로 7-9 방해가, 또는 인간의 disea를 reproducting와 커플 링SE 10,11, 우리는이 기술이 척추 모터 시스템의 연구를위한 필수 도구가 될 것으로 기대합니다.
1. 단계 하나
사전 마취 약물 : 마취의 유도 전에 10-15 분, 각각 타액의 분비 및 부종을 방지하기 위해 아트로핀 (0.20 밀리그램 / kg)와 methylprenidsolone (0.05 MG) 하위 cutaneously를 삽입.
2. 2 단계
마취의 유도 : pentobarbital 나트륨 (70 밀리그램 / kg) 또는 케타민 / xylazine (10 MG / kg, 각각 100 밀리그램 / kg 이상) 간 peritoneally의 혼합물을 주입. 마우스가 더 발가락 핀치 반사를 얻을 수 없습니다 때까지 아래 가자. 마취가 너무 빛이 발생하는 경우 복용량의 1 / 4 보충.
3. 세 번째 단계
* 참고 사항 :이 수술은 터미널 절차입니다.
마취의 수술 비행기에 도달 할 때 발생하기 쉬운 위치에 제기 따뜻한 담요 위에 마우스를 전송합니다.
4. 4 단계
사지 주변에 고정하고 작업 표면의 네 모서리에 고정 봉합과 장소에 마우스를 고정합니다.
5. 5 단계
마우스 코어 온도를 모니터링하기 위해 온도 프로브를 삽입합니다. 36 ° C와 38 ° C. 사이의 핵심 온도를 유지하기 위해 가열 담요 / 램프 전력을 조정
6. 기관 절개술 및 인공 환기
7. 정맥 선의 위치
8. 니들과 봉합사로 목 피부를 닫고 쉽상 위치에 마우스로 돌아 가기
9. 뒷다리 - 사지 근육과 신경의 해부
10. Laminectomy
11. 아킬레스의 힘줄의 해부
12. 단계 천
삼두근의 Surae 신경을 자극최대 트 진폭이 관찰 될 때까지 낮은 주파수 (<1 Hz에서)에서 증가 강도의 50 μsec 사각형 펄스를 사용합니다. 천천히 트 진폭이 최대에 도달 할 때까지 트 응답의 진폭을 모니터링하는 동안 근육을 향상시킬 수있는 힘 변환기를 이동합니다.
13. Motoneurons의 세포 레코딩
에이 시점에서, 표준 electrophysiological 기술은 세포 내 전극을 준비 척수에 신경에 침투 motoneuron로 식별하는 데 사용됩니다.
14. 안락사 절차
실험의 끝에서 동물은 pentobarbital의 과다 복용 목 베기 다음 (210 밀리그램 / kg IV)에 의해 euthanized 있습니다.
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그림 1은 침투 후 삼두근의 Surae 그룹에서 motoneuron를 식별하는 방법을 보여줍니다. 낮은 자극 강도에서 만 monosynaptic EPSP는 (그림 1A) 관찰 할 수 있습니다. 높은 강도에서 EPSP는 "orthodromic '스파이크를 (그림 1B) 게재 할 수있을만큼 큰 수 있습니다. 더 높은 자극 강도에서 모든 - 또는 - 없음 antidromic 스파이크는 monosynaptic EPSP (그림 1C)보다 짧은 ?...
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여기에 설명 된 준비가 성인 마우스, 허리 motoneuron과 축삭에 의해 innervated 근육 섬유에 의해 생성 된 힘의 측정을 동시에 세포 내 기록에서 허용하는 첫 번째입니다.
때문에 동물의 작은 크기이 준비에 필요한 수술 기술 얻기 위해 도전 할 수 있습니다. 이러한 기술을 마스터하고 나면 단, 전체 수술은 세 시간 수행 할 수 있으며, 동물 레코딩을위한 수술 절차의 종료 후 7 더 ?...
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관심 없음 충돌이 선언 없습니다.
이 작품은 Fondation 뿌린 라 공들인 Médicale (FRM), ALS 연구 (ALS 협회), NIH NINDS 교부금 NS05462와 NS034382, 그리고 ANR 부여 HyperMND에 대한 밀튼 Safenowitz 박사 동지의 재정 지원 덕분에 가능했다되었습니다.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
시약의 이름 | 회사 | 카탈로그 번호 | 코멘트 (선택 사항) |
아트로핀 황산 | Aguettant | ||
Methylprenidsolone | 화이자 | Solu - Medrol | |
나트륨 pentobarbitone | 사노피 - Aventis | Pentobarbital | |
케타민 | |||
Xylazine | |||
포도당 | |||
혈장 증량제 | 로저 Bellon | Plasmagel | |
무딘 가위 | FST | 14079-10 | |
무딘 고급 가위 | FST | 15025-10 | |
Vannas 봄 가위 | FST | 15002-08 | |
좋은 포셉 톱니 모양의 | FST | 11370-32 | |
좋은 포셉 톱니 모양의 | FST | 11370-31 | |
커닝햄 척수 어댑터 | Stoelting (주) | ||
편의점 - 캐스트 밀봉 | WPI | # 편의점 - CAST | |
송풍기 | CWE 주식회사 | SAR-830/AP | |
Capnograph | CWE 주식회사 | μcapstar | |
난방 담요 | 하버드 장치 | 507221F | |
세포 증폭기 | 축삭 Instrume국세청 | 2B를 Axoclamp | |
피펫 풀러 | 셔터 악기 | P-97 | |
KCl | 시그마 - 알드리치 | P9333-500G |
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A correction was made to Simultaneous Intracellular Recording of a Lumbar Motoneuron and the Force Produced by its Motor Unit in the Adult Mouse In vivo. There was an error in the name of one author, Marin Manuel. The author's name has been corrected to:
Marin Manuel
instead of:
Manuel Marin
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