Tomoauto 사용 : 프로토콜 높은 처리량 자동화 된 곳을 알아내는 - 전자 단층 촬영을 위해

요약

우리는 분자 기계 구조의 동일계에서 높은 해상도를 결정하기 위해 높은 처리량 극저온 전자 단층을 활용하는 방법에 대한 프로토콜을 제시한다. 프로토콜은 일반적인 병목 현상을 회피, 대용량의 데이터가 처리 될 수있게하고, 사용자가 중요한 생물학적 질문에 집중할 수 있도록 자원 중단 시간을 감소시킨다.

초록

Cryo-electron tomography (Cryo-ET) is a powerful three-dimensional (3-D) imaging technique for visualizing macromolecular complexes in their native context at a molecular level. The technique involves initially preserving the sample in its native state by rapidly freezing the specimen in vitreous ice, then collecting a series of micrographs from different angles at high magnification, and finally computationally reconstructing a 3-D density map. The frozen-hydrated specimen is extremely sensitive to the electron beam and so micrographs are collected at very low electron doses to limit the radiation damage. As a result, the raw cryo-tomogram has a very low signal to noise ratio characterized by an intrinsically noisy image. To better visualize subjects of interest, conventional imaging analysis and sub-tomogram averaging in which sub-tomograms of the subject are extracted from the initial tomogram and aligned and averaged are utilized to improve both contrast and resolution. Large datasets of tilt-series are essential to understanding and resolving the complexes at different states, conditions, or mutations as well as obtaining a large enough collection of sub-tomograms for averaging and classification. Collecting and processing this data can be a major obstacle preventing further analysis. Here we describe a high-throughput cryo-ET protocol based on a computer-controlled 300kV cryo-electron microscope, a direct detection device (DDD) camera and a highly effective, semi-automated image-processing pipeline software wrapper library tomoauto developed in-house. This protocol has been effectively utilized to visualize the intact type III secretion system (T3SS) in Shigella flexneri minicells. It can be applicable to any project suitable for cryo-ET.

서문

유형 III 분비 시스템 (T3SS)는 많은 그람 음성 병원균에 필수적인 독성 결정이다. 또한 바늘 ​​착체라고도 injectisome은 진핵 숙주 세포를 ^{1, 2로} 박테리아에서 이펙터 단백질의 직접적인 전좌 필요한 중앙 T3SS 기계이다. injectisome가 외 바늘 기저 체 및 세포질 착체를 포함라고도 정렬 복잡한 ³ 등. 이전의 연구는 중요한 기초 체 단백질 ^{(4, 5)의} 원자 구조와 함께, 살모넬라 및 시겔로부터 정제 injectisomes의 3 차원 구조를 해명했다. 살모넬라, 시겔 라 (Shigella), 및 예 르시 니아에서 injectisomes의 동일계 구조 최근-ET 크라이 ^(6)에 의해 드러난 ^7. 그러나, 이펙터 선택 및 니들 어셈블리에 필수적인 세포질 단지는, 그 구조에 가시화되지 않았습니다.

곳을 알아내는 - 동부 MOS입니다(원위치) 네이티브 휴대 맥락 나노 해상도 기계 분자 이미징에 적합한 기술을 t. 그럼에도 불구하고, 극저온 동부에 의해 달성 해상도는 시편의 두께에 의해 제한된다. 단점을 극복하기 위해, 우리는 유 전적으로 크라이 동부 충분히 얇은 minicells을 생산하기 위해 수정 된 악성 시겔 flexneri 변형에 그대로 injectisomes 군데. 극저온 ET의 또 다른 한계는 매우 신속하게 샘플 고해상도 정보를 파괴 전자빔에 의한 조사에 시료의 감도이다. 적합한 투여 량은 전체 기울기 계 사이에 분산 될 수 있도록 그 결과, 매우 낮은 투여 량은 개개의 틸트 - 이미지에 사용된다. 이것은 매우 어려운 단층 소음의 다량에서 피사체의 구조적 특징을 구별 할 수있게하고 cryo-에 의해 달성 될 수있는 해상도를 제한 최종 재구성 된 신호 대 잡음비 (SNR)를 낮춘다 동부. Conventi이러한 푸리에 리얼 공간 필터로서뿐만 아니라, 다운 샘플링 ONAL 화상 처리는 콘트라스트를 높이기 위해 사용하지만, 고해상도 많은 정보를 필터링을 희생 할 수있다. 최근에는, 서브 - 단층 평균화 가능 크게 SNR을 증가시키고 서브 - 나노 미터 수준 ^{(8, 9)에} 어떤 경우에는 이후에 최종 해상도로했다. 착물의보다 상세한 분석이 가능해진다 계산적 함유 서브 단층 촬영 수천 추출하여 정렬하고 하위 단층 촬영을 평균 원래 단층 촬영 및 관심 분야는 높은 SNR 및 높은 해상도와 현장 복잡한 구조에서 결정합니다. 이러한 방법은 거대 분자 어셈블리와 네이티브 휴대 문맥에서의 동적 배좌에 더욱 통찰력을 제공하는 유전자 접근법과 통합 될 수있다.

일반적으로 수십 또는 서브 - 단층 촬영 천 수백 고 판정하기 위해 평균화 될 필요현장에서 -resolution 구조. 틸트 시리즈의 충분한 수의 인수는 서브 단층 촬영이 많은 빠르게 병목 현상이 생산하는 데 필요한. 그 결과 틸트 시리즈는 종종 재건하기 전에 정렬로 기울기 시리즈를 가지고 해결해야 빔에 의한 변화, 무대 반발뿐만 아니라, 확대, 회전 및 기울이기 결함에 의해 영향을 받는다. 틸트 시리즈는 일반적으로 또 다른 병목 현상을 일으키는 원인이 전통적으로 수동 기울기 시리즈의 검사를 통해 선택 추적 금 기준 마커,에 의해 정렬됩니다. 많은 소프트웨어 패키지 ^{(11), (12),} 틸트 계 정렬 및 재구성 ^{(13) (14)와} 서브 - 단층은 ^{평균 15-18} 컴퓨터 제어 전자 현미경 ^(10)을 통해 자동 기울기 계 획득을 위해 개발되어왔다. 이러한 패키지는 극저온 ET의 흐름에서 개별 작업을 처리, 그것은 SYSTEMA에 프로세스에 높은 레벨의 추상화를 구축하는 것이 바람직하게학적으로 하나의 파이프 라인으로 전체 체계를 간소화. 따라서 집중적으로 각 성분의 전체 구성을 유지하면서 간단한 사용자 조작을 허용 하나 반 자동화 기기에이 패키지의 번호를 정리하기위한 "tomoauto"소프트웨어 래퍼 라이브러리를 개발했다. 도서관은 온라인 원격 소스 코드 저장소 (http://github.com/DustinMorado/tomoauto)에 의해 오픈 소스, 잘 문서화 지속적으로 개발 및 사용을위한 자유롭게 사용할 수, 맞춤형 개발 또는 추가 통합이다.

이 높은 처리량 크라이 동부 파이프 라인 (S)에 그대로 injectisomes을 시각화하기 위해 이용되고있다 flexneri minicells. 1,917 단층 촬영의 총 서브 단층 ^(19)을 평균함으로써 결정 세포질 정렬 플랫폼을 포함한 컴퓨터 본래의 동일계 구조 고해상도을 드러내는,이 방법을 사용하여 생성 하였다. 함께 야생 타입 및 m-의 분자 모델링utant 기계는, 우리의 높은 처리량 파이프 라인은 네이티브 휴대 컨텍스트 손상 injectisome의 구조와 기능을 이해하기위한 새로운 수단을 제공한다.

프로토콜

1. Minicell 준비

1. S.을 만들려면 flexneri minicells는 구조적으로 스펙 티노 마이신 내성 플라스미드 5 μL electrocompetent 스트렙토 마이신 내성 혈청 형 5A (M90T-SM) 전기에 의해 세포로 낮은 복사본에서 대장균 세포 분열 유전자 ftsQ, ftsA 및 ftsZ을 표현 플라스미드 pBS58, 1 μl를 변환 1mm 큐벳에 5 밀리 2.5 kV의에.
2. 1.5 ml의 극저온 마이크로 튜브 15 % 글리세롤에서 -80 ° C에서 보관 minicell 샘플. 사용하기 위해, 4 ml의 세포를 피펫 팁을 사용하여 unthawed 마이크로 튜브에서 세포의 약 5 μl를 긁어 일시 중지 준비가되면 스펙 티노 마이신과 트립신 간장 국물 / ㎖ 농도 100 μg의 추가. 37 ° C에서 O / N 성장.
3. 피펫 다시 100 μg의 / ml의 농도에 추가 스펙 티노 마이신 1.2 (200)에 ㎖의 트립신 간장 국물의 문화 2 ㎖. 늦은 로그 상에 37 ℃에서 성장한다.
4. minicells, 원심 분리 농축5 분 1,000 XG에 1.3에서 문화 200 ㎖. 조심스럽게 10 분 동안 20,000 XG에 새로운 원심 분리 튜브에서 원심 분리로 상청액 분획을 붓는다. 조심스럽게 부어과 상청액 분획을 폐기하고, 부드럽게 피펫 팁을 이용하여 잔여 액체로 펠릿을 혼합하여 1.5 ml의 마이크로 원심 튜브에 펠릿의 혼합물을 약 100 μl를 옮긴다.

2. EM 그리드 준비

1. 유리 슬라이드에 R2 / 2 구멍 투성이의 탄소 필름 200 메쉬 구리 그리드 탄소 측면을 놓습니다.
   주 : R2 / 2의 200 메시 그리드는 여전히 표본을지지하고 카메라의 분야에서 탄소막의 에지를 배치하는 동안 하나의 그리드 사각형은 취득하기 위해서 설정 될 수 틸트 계의 수를 최대화하도록 선택된다 원하는 배율로. 미세한 메쉬 그리드 및 R1.2 같은 작은 구멍 투성이 탄소막 / 1.3 400 메쉬 높은 배율에서 영상화 시료에 사용될 수있다; 같은 R3.5으로 더 큰 구멍 투성이의 탄소 필름 / 1 200 메쉬 사용 할 수 있습니다샘플 D는 낮은 배율에서 영상화 또는 현미경은 R1과 같은 큰 간격 탄소 에지 구멍 투성이 탄소막 없어야한다면 / 4 200 메쉬 관심 영역으로 스테이지를 정렬로부터 지역을 보호 돕기 위해 사용될 수있다 과다 노출 루틴을 집중하고 추적한다.
2. 글로우 방전 장치의 플랫폼에서 슬라이드를 놓습니다.
   주 : 우리는 양극과 플랫폼이 진공 데시 케이 터로 가공되었고, 고주파 발생기에 의해 구동되는 내부 소자를 사용한다. 진공을 생성 한 후, 글로우 방전 그리드 1 분간 프로브에 양극과 전원에 고주파 발생기 프로브를 부착. 필요한 시간은 그리드 분 몇 초에 이르기까지 다양 글로우 방전합니다. 글로우 방전 시간을 가변하는 시료 농도없이 유리체 얼음 건조 나타나는 격자의 문제를 진단하는데 사용될 수있다.
3. 집게 세트와 그리드를 제거하고 집게가 탄성 B와 닫힌 된 자물쇠과.
4. 1.4에서 제조 된 minicells와 microcentrifuge 관에 10 나노 콜로이드 금 용액 100 μl를 추가하고 부드럽게 손가락으로 튜브를 쓸어 넘겨 섞는다. 2.2 제조 그리드 혼합물의 새로운 피펫 장소 4 μL와.
   주 : 콜로이드 금 크기와 치료의 다양한 가능 금의 크기는, 획득 된 확대 크기로 처리 될 현미경의 화소 사이즈 주어진보다 5 화소 인 것을주의해야한다 모호한 기능에 너무 크게되지 않는 반면 관심.
5. 플 런지 동결 장치를 준비; 액체 질소와 외부 냉동 컨테이너를 작성 후 액체 에탄과 내부 챔버를 입력합니다. 플런저로드에 그리드와 집게를 부착하고 상승 된 위치로 플런저로드를 잠급니다.
   주 : ²⁰ Iancu ^등을 상업적 런지 냉동 장치의 사용을 설명하기위한 프로토콜..
6. 신중 t하는 ​​여과지를 터치함으로써 그리드를 가릴그는 즉시 그리드를 동결, 플런저로드를 해제, 그리드 및 필터 종이 분리하여 정지 필터 종이에 심지 사이의 메 니스 커스 (meniscus)까지의 샘플 놓습니다. 조심스럽게 플런저로드에서 집게를 제거하고 그리드 홀더에 그리드를 배치합니다.
7. 액체 질소로 적재 영역과 흡수 펌프 용기를 충전함으로써 크라이 EM 전송 스테이션을 준비한다. 적재 영역은 그리드 홀더 적재 영역에서 현미경 시편 카트리지가 액체 질소 온도 장소되면.
8. 조심스럽게 이전 Polara 현미경 이상 모델에 C 스타일의 클립 링에 작은 나사 잠금 고리 중 하나 인 잠금 링을 제거; 집게를 사용하여 카트리지에 EM 그리드를 배치하고 부드럽게 그리드를 고정하는 카트리지에 다시 잠금 고리를 다시 연결합니다.
9. 현미경에서 여러 시편 홀더를 제거하고 전송 스테이션에 연결합니다. 카트리지 집게를 사용하여 표본 홀더에 카트리지를 배치적재 영역에서 홀더를 후퇴하고 현미경으로 다시 여러 시험편 홀더를 전송 거라고.
   참고 :. 첸 등 ²¹ 2.1-2.9을 자세히 설명하는 시각적 프로토콜을 참조하십시오.

3. 높은 처리량 자동 기울기 시리즈 컬렉션

1. 낮은 배율지도의 컬렉션
   1. SerialEM ^(10)의 '네비게이터'메뉴에서 '열기'를 클릭하여 새 탐색기 창을 엽니 다 (http://bio3d.colorado.edu/SerialEM)
   2. 허용 이미징 조건을 포함 그리드 사각형 찾기 (즉, 얇은 얼음, 아니 오염, 관심의 대상이) 낮은 배율에서 형광 스크린을 사용하여 (~ 2,300X minicell 표본에 대한).
      참고 : [선택 :.이 단계는 전체 그리드를 montaging에 의해 SerialEM으로 자동화 할 수 있습니다, 그러나 그것은 단순히 수동으로 몇 지역을 선택 빠를 수 있습니다]
   3. 다음 조정 50 °에 시편 홀더를 기울여 eucentric 높이로 단계를 조정XY 스테이지의 번역까지 Z-높이 기울어 기울지보기간에 최소이다.
   4. 그리드 광장의 중심으로 이동하고 현재 단계의 위치를​​ 저장하기 위해 탐색기 창에서 '추가 단계 순위'버튼을 클릭합니다.
   5. 모두 허용 그리드 사각형 무대 위치가 저장 될 때까지 위의 단계 3.1.1-4를 계속합니다.
   6. '파일'메뉴에서 '새 몽타주'를 클릭하여 새 몽타주 MRC 파일을 엽니 다. 열어 몽타주 설정 대화 상자에서 전체 그리드 광장 (표준 200 메쉬 그리드에 대한 예를 들어, 10 × 10)을 취득한다 X와 Y의 조각의 수를 선택합니다. '대신 이미지 쉬프트의 스테이지를 이동'및 라디오 버튼 '조각 정렬하는 데 사용되는 상관 관계 건너 뛰기'를 8 등 높은 비닝 (binning)을 사용하여 선택합니다.
   7. 네비게이터 창에서 첫 번째 단계 위치를 클릭하고는 '획득'확인란을 선택하여 얻을 수 설정. 탐색기 창에서 각 단계의 위치에 대해이 작업을 반복합니다.
   8. 네비게이터는 '네비게이터'메뉴에서 '포인트에서 획득'를 클릭하여 대화 상자를 획득 엽니 다. '획득 맵 이미지'와 '거친 eucentricity'확인란을 선택하고 다른 모든 확인란이 체크되어 있는지 확인하십시오. 각 단계의 위치에서 몽타주를 수집하기 위해 '진행'을 클릭합니다.
2. 틸트 - 시리즈 수집
   1. 네비게이터 창에서 획득 한지도 중 하나를 선택하고 '로드 맵'버튼을 클릭합니다.
   2. 네비게이터 창에서 틸트 - 시리즈를 취득하는지도에있는 버튼 '점 추가'를 선택 점을 클릭합니다. 그런 다음 버튼 '포인트 추가 중지'를 클릭합니다. 수집 된 각 맵에 대해 반복합니다.
   3. 카메라 메뉴에서 '매개 변수'를 선택하고 초점, 시험 및 기록 모드에 대한 매개 변수를 정의합니다. [선택 :. 데이터가 기록 모드에 대한 매개 변수를 지정할 수 있습니다 투여 량 - 분획]
   4. 탐색기 창에서 지점을 선택하고 '틸트 - 시리즈를 확인9; 상자를 선택합니다. 매개 변수를 선택 열리는 틸트 - 시리즈 설정 대화 창에서 틸트 시리즈 수집을 위해 원하는. 탐색기 창에서 선택된 지점의 나머지 부분에 대한 반복하지만,지도를 선택하지 마십시오.
   5. 탐색기 메뉴에서 다시 '지점에서 취득'을 선택합니다. 네비게이터 대화 선택 '항목을 다시 정렬', 자동 초점 '과'거친 eucentricity 취득 '예비 작업 등을하고'틸트 시리즈를 취득 '기본​​ 작업으로, 선택'할 때 모든 열을 닫습니다 '끝에 닫기 열 밸브 점으로 수집되었다. 틸트 - 시리즈를 진행하면 각 맵의 각 지점에서 수집됩니다.

4. 높은 처리량 자동 기울기 시리즈 처리 및 재건 Tomoauto 사용

1. 용량 - 분획 데이터 빔에 의한 모션의 보정 [선택 사항]
   참고 : Tomoauto는 MOTIONCORR ²² (http://cryoem.ucsf.edu/software/driftcorr.ht를 사용㎖) 용량 분획 현미경 사진에서 빔 유도 동작을 제거합니다. NOTIONCORR ^(16)이 시스템에 설치되어 있어야합니다.
   1. 명령을 실행 터미널에서 원래의 기울기 시리즈, 현재 작업 디렉토리에 SerialEM ^(10)의 출력 로그 및 개별 용량 분별 이미지 모두와 함께 :
      dose_fractioned_to_stack
      처리 할 수있는 틸트 시리즈의 이름입니다.
2. 틸트 - 시리즈의 정렬 및 재건
   참고 : 기본적으로는 틸트 Tomoauto 계 자동화 기점 모델 생성, 정렬, 콘트라스트 전송 기능 (CTF), CTF 정정 ^(23)의 판정 처리 (http://bio3d.colorado.edu/imod/) IMOD ^(13)을 사용하고 재건. 또한 사용자는 자동 기점 모델 생성, CTF에 대한 (IMOD에 포함) RAPTOR ^(24)를 사용하는 tomoauto의 옵션이 있습니다FIND4 ²⁵ (http://grigoriefflab.janelia.org/ctf) CTF을 결정하고, tomo3d ²⁶ (https://sites.google.com/site/3demimageprocessing/tomo3d) 재건 또는 소프트웨어 패키지의 조합에 의한에 구성. 각각의 패키지로 제공이 구성뿐만 아니라, 매개 변수는 로컬 구성 파일은 또한 특정 시료에 사용 세부 파라미터 수집하기 위해 생성 될 수 있지만 가장 일반적으로 실험실에서 사용 된 값에 맞게 편집 할 수있는 전역 구성 파일에서 처리 설정 또는 개별 틸트 시리즈. 사용하고자하는 모든 패키지는 시스템에 설치되어 있어야합니다.
   1. 현재 작업 디렉토리의 기울기 시리즈로, 터미널에서 명령을 실행
      tomoauto --CTF --mode = 정렬
      처리 할 수있는 틸트 시리즈 및 는 diame입니다나노 미터의 기준 마커의 터. 이 명령은 정렬과 자동 기울기 시리즈의 CTF을 추정됩니다. 이 명령 --CTF 옵션을 제거하여 CTF 처리를 건너 뛸 수있다.
   2. 배향 처리에있어서 임의의 에러를 시각적으로 두드러진 경사 배향 계를 조사하고 명령을 실행함으로써 추정 CTF 검사 :
      3dmod <파일 이름> .ali
      submfg <파일 이름> _ctfplotter.com
      각각, 여기서 <파일 이름> 접미사없이 기울기 시리즈의 이름입니다. 또한 얼라인먼트 품질 통계치 정량적 인 배향에 의해 생성 평균 예측 오차를 표시 tomoauto 명령의 출력을 확인.
   3. 허용 정렬 주어진 명령을 실행하여 처리를 진행합니다 :
      tomoau에 --CTF --mode = 재구성
      4.2.1에서와 같은 사용자와 대체. 이 명령은, CTF를 해결 기울기 시리즈에서 기준 마커를 지우고 재건을 계산합니다. 다시 CTF 처리는 4.2.1에서와 같이 건너 뛸 수 있습니다.
   4. [선택] 육안 검사 단계를 건너 뛰고 완전히 처리 및 복원 명령을 실행 자동화하는
      tomoauto --CTF
   5. [선택] 로컬 구성 파일을 생성하는 방법에 대한 tomoauto 문서를 참조하십시오, 특정 로컬 구성을 사용하여 다음 명령을 실행합니다
      tomoauto [옵션] -L
      여기서 는 지역의 conf의 이름입니다프린터의 구성 파일.

5. 하위 단층 평균화

참고 : ^15은 (http://www.electrontomography.org/) 서브 단층 평균화 실험을 처리하기 위해, 그러나 프로토콜 설명 I3 패키지를 사용하는 대부분의 사용 가능한 서브 - 단층 평균화 소프트웨어 packages16to 프로세스 서브 단층 평균화 실험에 일반적으로 적용 그러나 대부분의 프로토콜은 사용 가능한 서브 단층 평균화 된 소프트웨어 패키지에 일반적으로 적용되는 ^{16 ~ 18} 기재.

1. 현재 작업 디렉토리에 복원 된 단층 촬영으로 명령을 실행하여 입자 따기위한 단층 촬영을 엽니 다
   tomopick <파일 이름> .rec
   여기서 <파일 이름> 4.2.2과 같다. injectisome을 선택하고 tomogra의 조각을 통해 서민 위쪽 및 아래쪽 화살표 키를 사용하여 먼저 기초 신체 후 바늘 끝을 클릭 마우스 왼쪽 버튼을 사용하여 열리는 창에서엠. 이러한 방식으로 모든 볼 injectisomes을 선택합니다. 이 구조의 장축을 정의뿐만 아니라 세 개의 오일러의 두 구조의 배향을 나타내는 각도 추정 텍스트 파일의 좌표를 저장한다.
2. 계산적 추출 명령을 실행하여 정의 장축의 중앙에 중심을 단층 400 ³ 복셀 큐브 :
   클립 크기 조정 -cx -cy -cz -ix 400 -iy 400 -iz 400
   <파일 이름> .rec <파일 이름> _001.mrc
   여기서 , , 구조의 중간 좌표는과 <파일 이름> 4.2.2과 같다. 추출 된 입방체의 크기는 사용 된 구조와 배율에 따라 다양해야하고, 충분히이 샘플 (400) ³ 인 관심 복셀 구조를 묶 할만큼 충분히 커야한다.
3. 다운 샘플 (BIN) 명령을 실행함으로써, 초기 배향을위한 연산 시간을 줄이기 위해 4 배수로 서브 단층 :
   binvol -b 4 <파일 이름> _001.mrc <파일 이름> _001.bin4.mrc
   여기서 <파일 이름> 5.2과 같다.
4. 결정된 오일러 서브 단층 촬영 각도에 적용하고 명령을 실행하여 초기 템플릿을 생성하기 위해 세계 평균을 계산한다.
   I3totsum.sh
5. 정렬하고 세포질 영역의 이진 분류 마스크를 사용하여 다운 샘플링 하위 단층 촬영을 분류합니다. 단층의 특성 누락 쐐기 아티팩트를 최소화하기 위해 푸리에 공간에서 서브 단층 평균을 수행합니다. 4 데이터를 비닝를 들어, SAMPFACT = "4 4 4"를 이용하시기 바랍니다.
   i3mramsacls.sh
6. 5.5 단계를 반복하여 서브 두 단층 촬영 (SAMPFACT = 배만큼 다운 샘플링# 34 2 2 2 ")과 다시 한번 원래 데이터 (SAMPFACT ="1 1 1 ").
   i3mramsacls.sh

결과

minicells S의 샘플 flexneri 수집 및 그림 2에 설명 된 파이프 라인을 다음 tomoauto 사용하여 회로도 그림 1에서 보여로 처리했다. 틸트 시리즈는 낮은 배율 몽타주 맵에 사용자가 지정한 지점에서 높은 처리량 틸트 계 취득 가능 SerialEM ⁽¹⁰⁾ (도 3)를 사용하여 수집 하였다. 현미경은 빔 유도 모션 ²² ...

토론

여기에 기술 된 고 처리량 방법이 1,917 크라이 틸트 계를 처리하고 그대로 S. 4,500 이상의 서브 단층 촬영을 생성 할 수있었습니다 flexneri ¹⁹ injectisome. 수집 된 데이터는 복잡한 정렬 세포질을 포함하여 현장 injectisome에서의 세부 특성화되었다. 방법은 또한 injectisome의 정렬 플랫폼의 구성을 명료하게 도왔다 추정의 단백질 성분의 특정 결실, 여러 돌연변이 세포를 ...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Glycerol	Sigma-Aldrich	G9012
Tyrptic Soy Broth	Sigma-Aldrich	22092
Spectinomycin	Sigma-Aldrich	S0692
Electroporation Apparatus	Bio-rad	165-2100
1 mm Cuvette	BTX	45-0124
1.5 ml Cryogenic Tube	Thermoscientific	5000-1020
1.5 ml Microcentrifuge Tube	Sigma-Aldrich	Z336769
Holey Carbon Grids	Quantifoil (Electron Microscopy Sciences)	Q2100CR2	R2/2 200 Cu
Glow Discharge Device	In-House		Commercial Alternative Available
Vacuum Desiccator	Sigma-Aldrich	Z119016	Used in In-House Glow Discharge Device
High-Frequency Generator	Electro-Technic Products	BD-10A	Used in In-House Glow Discharge Device.  CAUTION: This device generates high voltages.
Centrifuge
Forceps	Dumont (Electron Microscopy Sciences)	72705-D	Style 5 Anti-magnetic
Colliodal Gold	Aurion		BSA 10nm
Filter Paper	Whatman		#2
Ethane	Matheson Tri-Gas	UN1035
Nitrogen	Matheson Tri-Gas	UN1977
Plunger Device	In-House		Commercial Alternative Available
Cryogenic Grid Storage Box	Electron Microscopy Sciences	71166-30
Transmission Electron Microscope	FEI		Tecnai Polara F30 (300 KeV)
Direct Detection Device Camera	Gatan		K2 Summit
Tomogram Acquisiton Software	SerialEM		http://bio3d.colorado.eud/SerialEM Alternatives: UCSF Tomography, Leginon, FEI Batch Tomography
Beam-induced Motion Correction Software	MOTIONCORR		http://cryoem.ucsf.edu/software/driftcorr.html Requires >2GB Nvidia GPU
Tilt-Series Alignment Software	IMOD		http://bio3d.colorado.edu/IMOD Alternatives: XMIPP, Protomo
Automatic Fiducial Marker Modelling Software	IMOD		Alternatives: RAPTOR (Included in IMOD0 (Usable in tomoauto)
CTF Determination Software	IMOD		Alternatives: CTFFIND http://grigoriefflab.janelia.org/ctf (Usable in tomoauto)
Tilt-Series Reconstruction Software	tomo3d		https://sites.google.com/site/3demimageprocessing/tomo3d Alternatives: IMOD, XMIPP http://xmipp.cnb.csic.es , Protomo
Tilt-Series Automated Processing Software	tomoauto		https://github.com/DustinMorado/tomoauto
Particle Picking Software	i3		http://www.electrontomography.org Alternatives: IMOD
Subvolume Averaging Software	i3		Alternatives: PEET http://bio3d.colorado.edu/PEET, Dynamo https://dynamo.bioz.unibas.ch , PyTom http://pytom.org