경고 설치류에 Transcranial 전기 두뇌 자극

요약

이 프로토콜 영구 epicranial 전극 소켓 설치류에 이식된 가슴 전극에 대 한 수술 설정을 설명합니다. 두 번째 전극 소켓에 두어서 transcranial 전기 두뇌 자극의 종류 그대로 두개골을 통해 경고 동물에서 모터 시스템에 전달할 수 있습니다.

초록

Transcranial 전기 두뇌 자극은 대뇌 피 질의 흥분 및 인간과 설치류에 소성 변조 수 있습니다. 인 간에 있는 자극의 가장 일반적인 형태는 transcranial 직류 자극 (tDCS)입니다. 덜 자주 transcranial 교류 전류 자극 (공군) 또는 transcranial 랜덤 잡음 자극 (tRNS), 공군이 미리 정의 된 주파수 범위 내에서 임의로 적용 하는 전기 전류를 사용 하 여 특정 형태의 사용 됩니다. 실험 및 임상 목적을 위해 둘 다 인간, 비 침 투 적인 전기적 뇌 자극 연구의 증가 기본, 기계, 안전 연구 동물에 대 한 요구는 굴복 했다. 이 문서에서는 경고 설치류에 모터 시스템을 대상으로 그대로 두개골을 통해 transcranial 전기 두뇌 자극 (tES)에 대 한 모델을 설명 합니다. 프로토콜 가슴에 이식된 카운터 전극과 함께 영구 epicranial 전극 소켓의 외과 설정에 대 한 단계별 지침을 제공 합니다. Epicranial 소켓에 자극 전극을 두어서, 다른 전기 자극 종류, tDCS, 공군, 그리고 인간, tRNS 비교를 전달할 수 있습니다. 또한, tES 경고 설치류에 대 한 실제적인 단계 소개 된다. 적용 된 전류 밀도, 자극 기간, 및 자극 유형 실험 필요에 따라 선택할 수 있습니다. 안전 및 내성 양상 주의 장점과 단점이이 설정의 설명 되어 있습니다.

서문

두뇌 기능을 공부 하 고 동작을 수정 (tES) 뇌를 전기 전류의 transcranial 관리 수십 년 동안 사용 되었습니다. 더 최근에, 적용 직접 전류, 또는 자주 noninvasively 그대로 두개골을 통해 교류 전류 (공군, tRNS)를 사용 하 여 두 개 이상의 전극 (anode(s) 및 cathode(s)) 과학 및 임상 관심 받고 있다. 특히, tDCS 건강 한 과목과 정신병 질환을 가진 환자에서 33,200 이상의 세션에서 사용 되 고 나왔다는 안전 하 고 쉽게, 오래 지속 가능한 치료 잠재력과 비용 효과적인 머리 맡 응용 프로그램 행동 효과¹. 이 명확 하 게 증가 필요 및 안전 측면을 포함 하 여 기계 론 적인 연구에 과학적 관심을 얻지 못했다. 이 기사에서는 가장 일반적으로 사용 되 형태의 자극, tDCS에.

종에 걸쳐 tDCS 대뇌 피 질의 흥분 및 시 냅 스가 소성을 조절 한다. 쥐와 고양이^2,3,4, 자발적인 신경 발사 속도의 극성 종속 변경 또는 변경으로 인간 및 쥐 (모터 갖는 잠재력 (MEP) 진폭에 흥분 변경 보고 모두 cathodal tDCS 후 anodal 및 감소 후 증가: 인간^5,6; 마우스⁷)입니다. Anodal DC 모터 외피의 시 냅 스 효능 증가 또는 hippocampal synapses 생체 외에서 몇 시간 동안 자극 또는 긴 장기 potentiation (LTP) 때 특정 약한 시 냅 스 입력 또는 소성 하기 전에 주어진 공동 적용 자극^8,9,10,,1112유도 에 따라, 모터 또는 인지 훈련 성공에 자극의 혜택은 종종 공개만 경우 tDCS 공급 되는 공동 훈련^8,13,,1415. 이러한 이전 결과 주로 뉴런의 기능에 기인, 하는 동안 비 신경 세포 (명과) 또한 tDCS의 기능성 효과에 기여할 수 있습니다 주목 해야한다. 예를 들어, astrocytic 세포내 칼슘 수준 경고 마우스¹⁶anodal tDCS 동안 증가. 마찬가지로, neurodegeneration에 대 한 임계값 아래 전류 밀도에서 anodal tDCS microglia¹⁷의 복용량 의존 활성화를 유도 한다. 그러나, tDCS로 신경 명과 상호 변조 특정 조사 더 필요합니다.

찍은 함께, 동물 연구는 명확 하 게 흥분 및 소성 tDCS의 modulatory 효력의 우리의 이해를 고급. 그러나, 거기에 "역 변환 격차" 관찰 천천히 달리 인간의 tDCS 연구의 간행물에 있는 지 수 증가 및 생체 외에서 그리고 vivo에서에서 tES의 기본 메커니즘의 수사에 약간 증가 동물 모델. 또한, 설치류 tES 모델 높은 가변성 (까지 경 피에서 epicranial 자극), 연구 실험실에서 수행 됩니다 그리고 보고 자극 절차는 종종 방해는 comparability 완전히 투명 하 고 replicability 기초 연구 데이터 결과의 해석의.

여기, 우리가 자세하게에서 transcranial 두뇌 자극 설정 기본 모터 피 질, 변화를 최소화 하면서 인간의 tDCS 조건에 번역을 허용 하 고 수 없이 반복 된 자극을 대상으로 외과 구현 설명 동작을 방해. 후속 tES 경고 쥐에 대 한 단계별 프로토콜 제공 됩니다. TES 경고 설치류에서의 안전한 응용 프로그램의 방법론 및 개념적 측면을 설명 합니다.

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프로토콜

동물을 포함 하는 연구에 대 한 관련 (국가별) 승인 실험을 시작 하기 전에 얻을 수 있어야 합니다. 여기에서 보고 된 모든 동물 실험은 EU 지침 2010/63/EU, 업데이트 독일 동물 보호 법률에 따라 수행 됩니다 (" Tierschutzgesetz ") 2013 년 7 월, 8 월 2013의 업데이트 독일 동물 연구 규정. 지방 자치 단체에 의해 동물 프로토콜 승인 " 위원회는 지역 위원회의 프라이 부르 크의 동물 실험에 대 한 " 및 " 대학 의료 센터 Freiburg의 동물 실험에 대 한 위원회 ".

1. 계측의 준비와 수술에 대 한 자료

1. 그림 1에 나열 된 항목 사용할 수 있는 이미 배치 된 수술에 대 한 있는지 확인 하십시오.
2. 얇은 사각형 백 금 접시를 준비 (예: m m 6 m m x 0.15 m m x 10), 피하는 가슴에 배치 하는 카운터 전극 역할을 것입니다 그리고 격판덮개의 2 개의 반대 모서리에 2 개의 작은 구멍을 펀치.
3. 솔더는 리드 프리 주석-솔더 백 금 판 (구멍) 없이 모서리 중 하나를 사용 하 여 ~ 10 cm의 길이 가진 절연된 케이블.
4. 격리에 대 한 납땜 조인트에 조직-아크릴 접착제의 작은 방울을 적용.

2. 수술에 대 한 설치류의 준비

1. 쥐 연구 번호를 할당 하 고 준비 된 수술에이 카드
2. 는 설치류 무게 고 수술 카드에 무게 합니다. (예, 케 타 민 100 mg/kg 체중 플러스 쥐에 대 한 xylazine 70 밀리 그램/kg 체중) 주입 마 취약의 복용량을 계산.
마 취약의 계산된 금액의 복 (i.p.) 주입 마 취
3. 유발.
   참고: 흡입 마 취를 대신 사용 하는 경우 (예: isoflurane), 1-2 L/min 산소에서 ~ 4%의 지속적인 흐름 유도 실에서 쥐를 놓습니다.
4. 검사 깊이 시작 5 분 발가락 핀치 반사에 의해 마 취의 포스트 주입. 발가락 핀치 반사 여전히 있으면 도달 연장 30%의 초기 복용량의를 주입 하 여 마 취의 심화.
   1. 마 취의 초기 복용량의 30%를 주입 해야 실험에서 시간 언제 든 지 발가락 핀치 반사 반환,.
   2. 흡입 마 취를 사용 하 여 유도 챔버에 설치류의 자세 반사의 손실에 대 한 모양과 발가락 핀치 반사의 부족에 의해 마 취의 깊이 확인. 반사 신경은 여전히 존재 하 고, 마 취 약 실에 있는 기간을 확장 합니다. 모든 실험에 걸쳐 ~1-1.5% isoflurane의 유지 관리 농도 도달할 때까지 isoflurane 마 취의 깊이 비율을 적응.
   3. 감소 호흡 하 고 헐 떡이 고의 주파수 발생 때 설치류 차릴 발가락 핀치 반사 또는 자발적인 운동 비율; 낮은, 흡입 마 취의 비율을 증가.
5. 최대한 빨리 반사는 결 석, 설치류 실험실 벤치에 두거나 손에 잡고.
   참고: 흡입 마 취를 사용할 경우는 분무기에 연결 된 노즐을 사용 하 여 (지금 2-3%) 간의 지속적인된 감소 isoflurane 흐름 제공.
6. 쥐에 머리를 제거 ' s 머리 면도 지역 귀 귀와 깎기로 귀 뒤에 그냥 rostral 눈높이 사이. 다음은 clavicles까지 칼에서 앞 발 사이의 영역을 면도 하 여 가슴에 머리를 제거.
   참고: 면도 질 때 긴장 아래 피부 유지.
7. 커버 각 막을 보호 하기 위해 눈 연 고의 하락을 가진 쥐의 눈.
8. 표시 쥐 ' 할당 된 연구 번호에 따라 s 귀.
   참고: 학문의 길이 따라 꼬리 마크 충분 한 수 있습니다, 그렇지 않으면 earmarking 표준화 하는 것이 좋습니다.

3. 수술: 가슴 전극 이식

참고: 카운터 전극 외부 조끼와 함께 면도 가슴에 배치 되 면이 단계를 건너뛸 수 있습니다.

1. 장소 설치류 (가슴)에 발생 하기 쉬운 작업 테이블.
   참고: 흡입 마 취의 경우 계속 쥐 ' s 주 둥이 마 취 노즐, 더 1.5-2 %isoflurane 농도 감소에 배치.
2. 소독 살 균 스프레이 함께 또는 살 균 에이전트 (예를 들어, 에탄올 70%)에 흠뻑 젖 고 공기가 건조 하 게 면봉으로 면도 두 피. 두 번 반복.
3. 중간 귀 수준 rostral 눈높이에서 한 줄에 메스로 피부를 잘라.
   참고:이 머리의 상단을 향해 이식된 가슴 전극에서 연결 케이블의 터널링에 대 한 허용 하 고도 DCS 전극 소켓 배치에 대 한 원하는 컷.
4. 가슴 노출 부정사 위치에 쥐를 돌립니다.
5. 단계 3.2에에서 설명 된 대로 가슴의 피부를 소독.
6. 오른쪽 가슴의 옆 피부 조직 집게와 함께 상승 하 고 오른쪽 겨드랑이에서 중간 약 0.5 c m의 작은 위는 buttonhole를 잘라. 다음은 위 두개골 방향에 똑바로 화살 컷 확인.
7. 들은 왼쪽된 주요 가슴 근육에서 피부를 분리 하 여 피하 주머니를 형성 합니다. 이렇게 반복적으로 작은 위를 열어 (또는 염 분 젖은 면봉).
8. 케이블 경로 후 두의 왼쪽 목 homeostatic 집게를 사용 하 여 표면 근 막 관통 하 여 가슴 주머니에 종료를 따라 열린된 머리 피부에서에서 터널의 오른쪽 면에 동물을 차례.
9. 신중 하 게 날카로운 전선 이탈을 허용 하지 않고 백 금 전극에 부착 된 전극 케이블의 끝을 잡으려고 homeostatic 집게를 엽니다. 전극 입력 설치류 왼쪽된 hindlimb 향해 납땜 포인트 지향 주머니까지 터널을 통해 케이블을 당겨. 설치류는 경향이 위치로 다시 설정.
10. 코너 구멍 (4-5 노트는 안정성에 대 한 것이 좋습니다)를 반대 하는 2에 백 금 판 가슴 근 막에 살 균 합성 꼰된 비 흡수 봉합으로 해결.
11. 마찬가지로 느슨한 매듭, 조직 터널의 입구의 앞에 약간의 루프를 형성 하 여 근 막에 케이블을 연결.
12. 컷 (동일한 봉합 재료는 전극 및 케이블 사용할 수 있습니다)의 크기에 따라 3-4 피부 봉합 피부 닫습니다.

4. 수술: Epicranial tES 소켓의 배치

1. 장소 정위 적 프레임에서 동물.
   참고: 발가락 핀치 반사와 호흡 패턴을 조정 하는 ~1.5-1 %의 유지 보수 isoflurane 흐름에 마 취약의 농도 낮추면 흡입 마 취를 사용 하 여,.
2. 단계 3.2에에서 설명 된 대로 면도 두 피 소독.
3. 중간 귀 수준 rostral 눈높이에서 한 줄에 메스로 피부를 잘라.
   참고: 경우 가슴 전극 placement 수행한, 4.2와 4.3 단계를 이미 수행한.
4. 긁어 메스와 철저 하 게 면과 두개골에 (결합 조직)에서 목화와 함께 닦아가 바꿉니다. 불독 클램프와 컷의 4 모서리에 결합 조직 흥분 하 고 그들을 넓히려 수술 필드 옆으로 걸어.
5. 적용 0.9% 식 염 수를 면봉으로 조직과 뼈 표면 청소. 다음 3% H ₂ O ₂와 뼈 표면 청소. 조직와의 접촉을 피하십시오. 이로써 뼈를 더 철저 하 게 청소 하 고 뼈에서 작은 출혈이 중지 됩니다. 또한,는 오차 표시 된다. 적당 한 압력을 적용 하는 면봉으로 이러한 오차를 제거.
   참고:과 오차의 제거는 접착과 뼈에 붙어 tES 소켓의 내 구성을 증가 합니다.
   1. 거침 없는 출혈의 경우 뼈 드릴을 사용 하 고 뼈에 약간의 압력으로 1-3 s 터치. 이 기계적인 절차 대부분의 경우에 중지 됩니다 상당한 난방 없이 출혈. 결코 electrocautery 뼈;에 사용 심지어 간단한 응용 프로그램 뇌 조직 손상 귀 착될 것 이다 (electrocautery 전적으로 사용 해야 상처 조직 출혈).
6. 고정 나사 설정 준수 향상 됩니다, 드릴 비트 피팅 나사 크기 선택. 미리 손 드릴으로 드릴링에 의해 그리고 뼈 드릴으로 약간의 수직 압력 응용 프로그램에 의해 두 개의 버 구멍 두 개의 서로 다른 뼈 접시에 놓습니다. 전극에 속이 고 다는 것을 방해 수도 tES 소켓의 원하는 위치에 가까운 근접을 피하십시오 (예를 들어, 왼쪽된 기본 모터 피 질 tES에 대 한 선택 바로 정면 및 후부 정수 리 나사 위치).
7. 이식된 카운터 전극의 경우 터널링된 케이블의 미래 고정을 위한 바로 후부 정수 리 뼈에 있는 제 3의 구멍을 규 석.
8. 버 구멍에 플라스틱 나사를 배치 하 고 첫 번째 마찰 느낌까지 나사. 다음 3 개의 추가 180 ° 스크류 회전을 수행 합니다. 집게는 스크류의 안정성에 대 한 확인 하 고 하나 더 설정 하지 꽉 충분히 추가.
   참고: 성인 쥐에 대 한 이렇게 하면 나사에의 경 막 외 배치 경질 또는 (나사 스레드 설계, 회전 수 다를 수 있습니다)에 따라 뇌 손상 없이. 스테인레스 스틸 나사를 사용 하 여 또한 실현 되어야, 이후 neurodegeneration 임계값 이상 DC 전류 밀도, 에서도 나사 배치 않았다 교란 하지 병 변 위치 또는 나사 아래 정도.
9. 차례 납땜 및 대략 5 분에 대 한 전 열 케이블 occipitally 오른쪽 정수 리 나사 주위 조직 터널 종료 바람 그리고 잘라, 감기 뒤에 약 1 c m 케이블을 떠나. 조심 스럽게 메스와 케이블의 끝에 절연 스트립.
10. Cyanoacrylic 접착제와 나사를 뼈 호흡이 케이블을 수정.
11. 커넥터 및 카운터 전극 케이블의 맨 와이어 리드 프리 주석-솔더의 작은 금액을 적용 하 고 짧게 함께 주석 땜 납이 녹아 때까지 납땜 끝을만 지는 동안 두 사전 납땜된 부분을 누르면 모두 연결 (약 2-3 s). 즉시 후속 조직 손상이와 케이블의 과도 한 금속 난방을 피하기 위해 납땜 팁 제거.
12. 구부러진, 톱니 모양의 팁 집게와 사용자 정의 만든된 tES 전극 소켓 ( 그림 1B, 빨간색에서)을 선택 하 고 소켓의 아래쪽 가장자리에 cyanoacrylic 접착제의 얇은 층을 적용. 모터 피 질와 4 m m 직경 소켓을 사용 하 여 배치, 2mm 앞쪽은 bregma에서 2mm 측면에서 중반 소켓 포인터를 놓습니다. 이 위치에 대 한 소켓의 내부 중간 국경 화살 봉합에 끝나야 하 고 꼬리 테두리 bregma의 높이에서 종료 해야 합니다. 간단히 (대부분 cyanoacrylic 접착제 강화 압력에 의해) 뼈에 소켓을 누릅니다.
    참고: 소켓 배치 쉽게 수 있습니다 소켓 위에 직접 광원을 배치.
13. 소켓의 영역 내에서 뼈가 접착제의 무료 (접착제는 반사 때문에 빛으로 확인) 확인 하십시오. 접착제의 경우 유출, 소켓 제거, 메스와 접착제를 긁 고 단계를 반복 4.12.
14. 소켓 장소에서 이며 미래의 자극 지역 접착제, 무료 후 먼저이 위치에서 현재의 전철 이어질 수 있는 액체 다리를 피하기 위해 cyanoacrylic 접착제의 작은 방울으로 인접 조직에 소켓의 측면 테두리 인감. 그것은 자극 영역으로 흐름 수 있습니다 너무 많은 접착제는 적용 되지 않습니다 (이 경우 단계로 돌아가서 4.12).
    참고: 중요 한 자극의 감소 수 있습니다 극적으로 전류 밀도 증가 접착제의 무료 자극 지역 유지 (A/m ²).
15. Cyanoacrylic 접착제로 모든 나사 커버.
16. 믹스 2 분 치과 아크릴 작은 실리콘 튜브 또는 유리에 시멘트. 최대한 빨리 그것은 된다 점성, 뼈에 소켓의 나머지 테두리를 봉인 하기 위해 치과 주걱으로 그것을 적용 합니다. 자극 영역으로 치과 아크릴 시멘트의 어떤 흐름 방지.
17. 마침내 커버 전체 두개골, 나사, 카운터 전극 케이블 및 소켓 최대 ⅓ 치과 아크릴 시멘트와 소켓의. 시멘트가 올바른 점도: 만약 너무 유체 흐름 것입니다 주변 조직;으로 너무 열심히 하는 경우 그것은 균등 하 게 배포 어렵다.
18. 모든 뼈를 보호 하 고 시멘트 경화 불독 클램프를 제거, 봉합이 필요 하지 않습니다 있도록에 피부는 그냥 내장 시멘트를 터치 한다. (초기 컷 선택 너무 오래 되었고 결합 조직, 근육이 보이는 경우 적용 한 봉합 단계 3.12에에서 설명 된 대로).
19. 컷된 피부의 테두리 면봉으로 요오드의 한 레이어를 적용 하 고 carprofen (5 mg/kg 체중의 0.9% 식 염 수 통증 치료 및 유체 교체에 대 한 5-7.5 mL에 용 해)을 피하 주사.
    참고: 흡입 마 취를 사용 하는 경우 그것을 해제 지금.
20. 놓고 쥐 마 취에서 회복에 대 한 지구 온난화 상자에서 설치류는 깨어 고 자세 안정성 복원.
    참고: 확인 하십시오 동물 ' s 무게 개발, 상처는 기관에 따라 매일 주, 및 일반적인 복지 기준 ' s 추천.

5. Transcranial 전기 자극 절차

참고: 마 취 tES 효과 영향을, 가능 하면 경고 설치류에 자극을 수행 것이 좋습니다. 쥐 실험을 시작 하기 전에 최소 5 일 (머리와 가슴 상처의 치유)에 대 한 복구를 허용 합니다. 실험에서 수행할 수 있습니다 이전 시간 포인트 수술 후 가슴의 상처는 대부분 과민성; 외부 카운터 전극, 조끼와 함께 고정을 사용 하는 경우 하지만 동물 전극 조끼에 몇 일 동안 익혀 진다 될 필요가 있고 행동 작업 방해가 발생할 수 있습니다.

1. TES 전극 소켓 0.9% 식 염 수와 절반를 기포 제거.
2. 수앞 cathodal tDCS 세션 항상 염소, 확인 하 고 (와 같은 빛나는 은색 표면), 필요한 경우 다시 Ag/AgCl 전극 인터네셔널. Anodal tDCS 세션 전에 자극 동안 좋은 전도도 수 있도록 샌드 페이퍼와 이전 stimulations에서 가능한 초과 AgCl 예금을 제거. ( 그림 1B, 회색 조각) tES 전극 나사 모자 나사.
   주의: 다시 cathodal tDCS 세션 사이의 전극 인터네셔널를 지도할 것 이다 자극 동안 수돗물의 고갈 및 독성 구축 전기 화학 반응에 의해. 이 조직의 손상을 유발 한다. 단일 세션 내에서 다시 염소 자극 기간 20 분 보다 짧은 경우 필요 하지 않습니다
3. 머리에 2 명의 커넥터에 케이블을 연결 (anodal 자극에 대 한 anodal 케이블 연결 된 커넥터 나사 모자 cathodal 자극을 위해에 그것은 반대).
   참고: 외부 배치 카운터 전극에 사용 하 여, 커버 전도성 젤와 설치류에 카운터 전극 ' s 가슴. 이것은 전극은 미리 설치류 자극 동안 입을 수 있는 작은 설치류 조끼에 고정 하는 경우 가장 쉬운.
4. 으로 실험, 케이블 쥐 운동 무료 있도록 케이지 위에 회전에 연결 장소.
5. 는 자극 설정 (자극 강도, 기간, 시간 아래로 램프) 자극 매개 변수를 조정 하는 고.
6. 종료 안전 및 단선 경보 상용 자극 장치를 사용 하지 않을 때 일정 전류 흐름 확인 회로에 미터를 포함.
   참고:이 설정 자극 적용할 수 있는 성능 또는 행동 작업 훈련 동안.
7. 자극 동안 긴장의 표시 또는 설치류의 불편에 대 한 확인 하십시오.
8. 자극 끝 후 케이블을 분리, 나사 머리에 전극 cap 및 청소 하 고 면봉으로 소켓을 건조. 가정 환경에 쥐를 반환 하거나 원하는 경우 행동 절차 진행.

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결과

신뢰할 수 있는 반복된 tES 경고 설치류에 대 한 설정의 기술된 구현 기계 실험, 복용량 응답 학문 또는 실험 행동 작업 등으로 쉽게 통합 수 있습니다. 날짜 하려면, (비 침 투) tES를 사용 하 여 동물 연구에서 데이터의 comparability 방해 실험실 사이 tES 자극 설정의 다양성에 의해과 자극 매개 변수 (예를 들어, 다양 한 전류 밀도에서 적용 차이 의해 엄청난 높은 수준 인...

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토론

이 프로토콜 일반적인 재료와 경고 설치류에 후속 자극 뿐만 아니라 영구 tES 설정의 외과 실현을 위한 절차 단계에 설명합니다. 몇 가지 방법론적 측면 (안전성 및 내성의 tES, 결과 매개 변수) 뿐만 아니라, 개념적 측면 (comparability 인간의 조건, 특정 뇌에 자극의 기대 효과와 tES 실험 쥐의 준비 하는 동안 고려 되어야 하는 지역) 필요. 방법론 관점에서 이식된 가슴 카운터 전극으로 두개골 tES 소켓?...

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자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Softasept N	B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Deutschland	3887138	antiseptic agent
Ethanol 70 %	Carl Roth GmbH & Co. KG, Karlsruhe, Deutschland	T913.1
arched tip forceps	FST Fine science tools, Heidelberg, Deutschland	11071-10
Iris Forceps, 10cm, Straight, Serrated	World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA	15914
Scalpel Handle #3, 13cm	World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA	500236
Standard Scalpel Blade #10	World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA	500239
Zelletten cellulose swabs	Lohmann und Rauscher, Neuwied, Deutschland	13349	5 x 4 cm
Isoflurane	AbbVie Deutschland GmbH & Co	N01AB06
Iris Scissors, 11.5cm, Straight	World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA	501758	small scissors
cotton swab/cotton buds	Carl Roth GmbH & Co. KG, Karlsruhe, Deutschland	EH12.1	Rotilabo
Kelly Hemostatic Forceps, 14cm, Straight	World Precision Instruments, Inc, Sarasota, FL, USA, Inc, Sarasota, FL, USA	501241	surgical clamp
electrode plate (platinum)	custom made	Wissenschaftliche Werkstatt Neurozentrum Uniklinik Freiburg, Deutschland	10x6 mm, 0.15 mm thickness
insulated copper strands (~1 mm diameter)	Reichelt elektronik GmbH & Co. KG, Sande, Germany	LITZE BL	electrode cable
Weller EC 2002 M soldering station	Weller Tools GmbH, Besigheim, Germany	EC2002M1D
Iso-Core EL 0,5 mm	FELDER GMBH Löttechnik, Oberhausen, Deutschland	20970510	lead free solder
MERSILENE Polyester Fiber Suture	Johnson & Johnson Medical GmbH, Ethicon Deutschland, Norderstedt, Germany	R871H	nonabsorbable braided suture, 4-0
Histoacryl	B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Deutschland	9381104	cyanoacrylate
Ketamin 10%	Medistar GmbH, Germany	n/a	anesthetics
Rompun 2% (Xylazine)	Bayer GmbH, Germany	n/a	anesthetics