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요약

혜성 분석 결과 단일과 이중 가닥 DNA를 포함 하 여 DNA 손상 나누기를 검색 하는 효율적인 방법입니다. 알칼리와 중립 혜성 분석 실험 화학 요법의 치료 효과 평가 하기 위해 암 세포의 DNA 손상을 측정을 설명 합니다.

초록

DNA 손상의 수명 동안은 각 셀에 대 한 일반적인 현상이 며 genomic DNA의 화학 구조에의 한 변경으로 정의 됩니다. 암 치료, 라디오-및 화학 요법 같은 엄청난 양의 추가 DNA 손상, 세포 주기 검거와 apoptosis 제한 암 진행을 이끌어 소개. 실험적인 암 치료 기간 동안 DNA 손상의 정량적 평가 차적인 에이전트의 효율성을 정당화 하기 위해 중요 한 단계입니다. 이 연구에서 우리는 단일 셀 전기 이동 법 분석 결과, 일컬어 혜성 분석 결과, 단일 계량 수 있는에 집중 하 고 이중 가닥 DNA 생체 외에서휴식. 혜성 분석 결과 DNA 손상 부 량 효율적이 고, 실행 하기 쉬운 낮은 시간/예산 요구 및 높은 재현성. 여기, 우리 U251 glioma 셀에 olaparib/temozolomide 조합 치료의 차적인 효과 평가 하 여 전 임상 연구에 대 한 혜성 분석 결과의 유틸리티를 강조 표시 합니다.

서문

혜성 분석 결과 처음 개발 되었다 Ostling와 요한슨에 의해 1984 년에 DNA의 마이그레이션 중립 조건1아래 핵에서 조각으로. 기술은 나중 싱 외., 보여주는 알칼리 상태를 실질적으로 특이성 및 재현성 분석 결과2의 증가 의해 개발 되었다. 그 이후, 중립 혜성 분석 결과 주로 데 반면에 알칼리 성 혜성 분석 결과 DNA 손상, 싱글 등의 작은 금액에 대 한 더 민감한 이중 가닥 DNA 틈, 알칼리 정한 사이트, DNA-DNA 이중 가닥 DNA 틈, 검색 또는 DNA-단백질 cross-linking 그리고 DNA 단일 가닥 나누기 불완전 절단과 관련 된 사이트3,4복구. 두 분석 된 DNA의 시각화를 허용 하 고 양적 DNA 손상을 평가 하는 간단한 방법을 제공. 혜성 분석 결과 생체 외에서 그리고 vivo에서 유전 독성 연구를 위한 중요 한 방법으로 간주 되 고 초기 약물 후보 선택, 환경 모니터링, 인간의 biomonitoring 다른 연구 분야에 적용 됩니다. 그리고 기본 DNA 손상에 연구 하 고5를 복구.

분석 결과의 원리가 이다 전기 분야에서 조각난된 DNA는 핵양체 몸에서 (일컬어 "혜성 머리") 마이그레이션합니다와 agarose 젤 (일컬어 "혜성 꼬리")에서 DNA 얼룩을 형성. 뉴클레오티드 얼룩과 DNA 손상의 범위 "혜성"이 단일 셀 전기 이동 법에 의해 형성을 분석 하 여 측정할 수 있습니다. 꼬리 순간의 계산 더 비교 다른 실험적인 그룹 간의 DNA 손상 시킬 수 있습니다. DNA 손상 탐지의 전통적인 방법에 비해, 혜성 분석 결과 이며 직접, 민감한, 저렴 한, 상대적으로 간단한.

방사선 치료와 chemotherapies 단일 가닥을 생성 하 여 암 치료에 대 한 일반적인 전략은와 이중 가닥 DNA는 염색체6에 나누기. DNA 복구 억제제의 최근 발전 조합 화학요법에 의해 더 효과적인 차적인 효과 허용 하 고 따라서 잠재적으로 빈 혈, 감염, 골 수 억제7, 같은 조직의 부작용을 감소 8.이 연구에서 우리는 많은 (ADP-ribose) (PARP) 억제제, olaparib (Ola)9의 조사 했다. PARP 풍부한 핵 단백질 이며 많은 (ADP-ribose) 폴리머10을 형성 하 여 DNA 기본 절단 복구에 대 한 책임입니다. Temozolomide (TMZ)는 구두로 사용 가능한 alkylating 에이전트 이며 glioma 환자 치료를 위해 널리 이용 되는. DNA 손상 척도를 혜성 분석 결과 사용 하 여 우리는 olaparib/temozolomide 조합 치료 glioma, 치료 하는 효과적인 전략을 제안 glioma 세포에서 DNA 손상 향상 결합 olaparib temozolomide 깊이 설명 temozolomide 혼자11와 비교.

프로토콜

1. 시 약 준비

  1. 1 x PBS
    1. 900 mL dH 2 O 100 mL 10 x PBS를 희석 하 고 pH 미터를 사용 하 여 7.4에 pH를 조정. 실내 온도에 상점.
  2. 세포 솔루션 (LS)
    1. 2.5 M NaCl, 100 m m disodium EDTA, 10 mM Tris 자료, 및 900 mL dH 2 O 200 m m NaOH 준비, 그것은 일반적으로 완전 해산을 혼합 수 있도록 약 20 분 걸립니다. 10 pH 미터를 사용 하 여 pH를 조정 합니다. 추가 1% 나트륨 lauryl sarcosinate 및 1% 트라이 톤 X-100 1000 mL를 최종 볼륨을 조정. 사용 하기 전에 적어도 30 분 동안 4 ° C에 쿨.
  3. 알칼리 성 전기 이동 법 솔루션 (AES), pH > 13
    1. 200 m m NaOH와 1 m m disodium EDTA 800 mL dH 2 O. 조정 산도 준비 하 고 pH는 > 13. 1000 mL를 최종 볼륨을 조정 합니다. 사용 하기 전에 신선한 확인 하 고 사용 하기 전에 적어도 30 분 동안 4 ° C에 냉각.
  4. 중립 전기 sollution (NES)
    1. 빙 초 산 100 mM Tris 기지와 300 mM 아세트산 나트륨 1000 mL dH 2 O. 조절 pH 9.0 혼합 하 여 준비 1000 mL 중립 전기 이동 법 버퍼. 사용 하기 전에 적어도 30 분 동안 4 ° C에 쿨.
  5. DNA 강수량 솔루션 (DPS)
    1. 10 mL 7.5 M 암모늄 아세테이트 주식의 준비. DNA 강수량 솔루션 50 ml, 6.7 mL 7.5 M 염화 아세테이트 43.3 mL 95% 에탄올 혼합. 실내 온도에 상점.
  6. 얼룩 솔루션
    1. 추가 1 µ L 10000 녹색 형광 핵 산 얼룩 (예를 들어, SYBR 녹색) 30 mL 트리 스-EDTA 버퍼 (10 mM Tris HCl, 1 m m disodium EDTA, pH 7.4)에 게 x 4 ° C. 보호에서 빛.
  7. 1% 낮은 녹는 agarose
    1. 1% 낮은 녹는 포인트 agarose (1 g 100 mL dH 2 O) 전자 레인지에 녹여. 모든 15-20 s는 agarose는 완전히 녹은 것을 확인 하는 agarose를 소용돌이 친다. 사용 하기 전에 적어도 20 분 동안 37 ° C 물 목욕에는 agarose를 놓습니다.
  8. 미리 따뜻한 피 펫 팁
    1. P200 피 펫 팁의 좁은 끝 3 mm와 37 ° C에서 따뜻한 agarose를 pipetting 전에 잘라.

2. 혜성 슬라이드 준비

  1. 코팅 슬라이드
    1. 는 agarose는 완전히 녹은 때까지 또는 2-3 분 동안 전자 레인지에 녹여 1 %agarose (1 g 100 mL dH 2 O). 유리 현미경 슬라이드는 agarose 찍어와 보풀 지우기를 사용 하 여 슬라이드의 한 면을 닦아 내십시오.
    2. 누워 건조 또는 빠른 건조를 위해 50 ° C에가 열 하는 평평한 표면에 슬라이드; 건조 후 투명 agarose 필름을 형성 한다. 사용 하기 전에 37 ° C에 코팅된 슬라이드 배치.
  2. 단일 셀 정지의 준비
    1. 문화와 치료 glioma 셀
      1. DMEM 햄 F-12 매체 10 보충에 U251 MG 셀 문화 %FBS, 100 U/mL 페니실린, 및 37 & #에서 10 µ g/mL 스 176; 5% CO 2와 C.
      2. 3 분, 1 mL의 트립 신을 사용 하 여 셀을 소화 하 고 중화 FBS와 DMEM 햄 F-12 매체를 사용 하 여 트립 신. 수집 15 mL 튜브에 4 분에 대 한 300 x g에서 회전, 매체, 발음 및 1 x PBS에서 2 x 10 5 셀/mL에서 셀 중단.
        참고: 셀 샘플 분석 결과 시작 하기 전에 바로 준비 해야 하 고 모든 샘플에서에서 DNA 손상을 방지 하기 위해 어두운 또는 흐리게 환경에서 처리 되어야 합니다.
      3. 결합 세포 현 탁 액 비율 (37 ° C)에서 1% 녹은 낮은 융 점 agarose 1:10 (v/v), 아래로, pipetting으로 부드럽게 혼합 하 고 즉시 슬라이드에 30 µ L 플라스틱. 사용의 측면에 얇은 층의 형성을 위해 agarose/셀 혼합 확산 피 펫 팁.
      4. 10 분 30 분 하 고 시간을 증가 향상 높은 습도 환경에서 샘플의 준수 어둠 속에서 4 ° C에서 플랫 슬라이드 장소.
      5. 담가 하룻밤 1 h에 대 한 어둠 속에서 4 ° c LS 슬라이드.

3. 단일 셀 전기

  1. 알칼리 (3.2 단계)를 진행 또는 중립 (단계 3.3) 혜성 시험
  2. 알칼리 혜성 분석 결과 대 한
    1. 부드럽게 LS에서 슬라이드를 제거, 배수 초과 버퍼, 그리고 부드럽게 4에서 1 h 동안 AES에 젖어 ° C DNA 해제 수 있도록입니다. 어둠 속에서 슬라이드를 계속.
    2. 전기 슬라이드 트레이에 추가 미리 냉장된 AES (이 전기 단위의 크기에 따라 달라 집니다) 슬라이드 위에 0.5 c m를 초과 하지 않는, 내부 슬라이드와 모자와 함께 커버. 전원 공급 전압 1 V/cm (전극 사이의 길이)을 설정 하 고 4 시 30 분에 대 한 실행 ° c.
    3. 슬라이드에서 드레인 과잉 전기 솔루션입니다. DH 2 O 각 실 온에서 5 분에 두 번 슬라이드를 담가 부드럽게.
    4. 부드럽게 슬라이드 실 온에서 5 분 동안 70% 에탄올에 젖어. 4 단계를 수행 하십시오.
  3. 중립 혜성 분석 결과 대 한
    1. 부드럽게 LS에서 슬라이드를 제거 초과 버퍼, 배수와 부드럽게 4 시 30 분에 대 한 NES에 젖어 ° C. 계속 어둠 속에서 슬라이드.
    2. 전기 이동 법 슬라이드 트레이에서
    3. 추가 미리 냉장된 중립 전기 이동 법 버퍼 (이 전기 단위의 크기에 따라 달라 집니다) 슬라이드 위에 0.5 c m를 초과 하지 않는, 내부 슬라이드와 모자와 함께 커버. 전원 공급 전압 1 V/cm (전극 사이의 길이)을 설정 하 고 4에서 45 분 동안 실행 ° c.
    4. 드레인 슬라이드에서 초과 버퍼입니다. 실 온에서 30 분에 대 한 DPS에서 슬라이드를 담가 부드럽게.
    5. 부드럽게 실 온에서 30 분 동안 70% 에탄올에 슬라이드를 담가. 4 단계를 수행 하십시오.

4. 혜성 슬라이드 얼룩

  1. 어둠 속에서 10-15 분 동안 37 ° C에서 슬라이드 건조.
  2. 장소 50-100 µ L 녹색 형광 핵 산 각에 솔루션 얼룩 말린 agarose 및 어둠 속에서 실 온에서 15 분 동안 얼룩.
  3. DH 2 O에서에서 간단히 슬라이드를 헹 구 고 완전히 어둠 속에서 37 ° C에서 건조. 이미지 수집 및 분석 진행.

5. 이미지 수집 및 분석

참고: 시각화와 DNA 나누기의 정량화는 기반 epifluorescence 현미경 검사 법 및 혜성 분석 소프트웨어 (재료의 표 참조) 12 .

  1. 슬라이드 홀더를 가진 현미경에 슬라이드를 놓습니다. Agarose 젤 대물 렌즈에 직면 하 고 있는지 확인 합니다. 무작위로 10 배 대물 렌즈와 형광 현미경을 사용 하 여 스테인드 혜성 슬라이드에서 이미지를 캡처하십시오. 가장자리 및 어떤 공기 방울 주변 지역.
  2. 확인 각 혜성 꼬리 수평으로 배포 됩니다. 혜성 머리 왼쪽과 오른쪽에서 꼬리에서 발생 합니다.
  3. 어두운 배경에 밝은 DNA 얼룩과 이진 TIF 형식에 각 그림을 저장합니다. 소프트웨어를 사용 하 여 이미지 로드는 " 파일 분석을 선택 " 도구 모음의 왼쪽에 있는 버튼. 이미지 보기 창 ( 그림 1)를 표시 합니다.
  4. 측정 프레임 화면에 그릴 하 고 셀의 혜성에 그것의 크기를 조정 합니다. 클릭에 " 조정 " 머리, 혜성, 그리고 이미지를 따라 꼬리의 임계값 설정 버튼을 클릭에 " 측정을 시작 " 단추 ( 그림 1).
  5. 프레임을 사용 하 여 셀을 선택 하 고 마우스로 클릭 하 여 측정을 활성화는 " 시험의 혜성 " 버튼, 강도 이미지에 나타난다는 " 프로필 " 선택한 측정 매개 변수 창. 클릭 하 여 결과 저장할 수 있는 " 결과 저장 " 단추 ( 그림 1).
    참고: 소프트웨어 혜성 꼬리, 꼬리 DNA, 꼬리 순간 (TM)와 올리브 꼬리 순간 (OTM)의 비율의 길이 포함 하 여 매개 변수를 계산 합니다. 꼬리 순간 다음과 같이 수식으로 계산 된다:
    figure-protocol-5171
    figure-protocol-5245
  6. 50 셀 분석 치료 당.

결과

현재 프로토콜 혜성 분석 결과 실행 및 데이터 분석 (그림 1)에 대 한 단계별 워크플로 설명합니다. 알칼리와 중립 혜성 분석 실험 결과 나타났다 U251 세포 독 소 루비 취급 (1 µ M, 20 h)의 혜성 꼬리 더 오래 되었고 더 높은 DNA 강도, 화학 요법 (그림 2)으로 조각난된 DNA의 상당한 축적을 제안 했다.

토론

혜성 분석 결과 세포 수준에서 단일 및 이중 가닥 DNA 나누기를 측정 하는 효율적인 도구 이다. 분석 결과 연구에 관한 genotoxicity 및 biomonitoring13, 기본 병 변, DNA crosslinks, 약물 개발 및 알칼리 민감한 사이트에서까지 "황금 표준"으로 널리 적용 되었습니다. 현재 연구에서 우리가 알칼리와 중립 혜성 분석 실험에 대 한 두 가지 단계별 프로토콜 각각 보였다. 결합 하 여 단일 셀 전기 ...

공개

저자는 공개 없다.

감사의 말

이 연구는 NIH, NCI, CCR의 교내 연구 프로그램에 의해 지원 되었다. 모든 저자는 NIH, NCI, 및 CCR에서 교내 연구 보조금을 받았다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
Reagents
10x PBS(Ca++, Mg++ free)TEKnovaP0196
NaClSigmaS5886
EDTATEKnovaE0308
Trizma baseSigmaT1503
NaOHSigma72068
Sodium lauryl sarcosinateSigmaL7414
Triton X-100Sigma93443
Sodium acetateSigma32318
Glacial acetic acidSigma695092
Ammonium acetateSigmaA1542
SYBR GreenInvitrogenS33102
Low melting point agaroseInvitrogen16520
AgaroseInvitrogen16500
95% ethanolWARNER-GRAHAM#64-17-5
TrypsinGIBICO25300-054
NameCompanyCatalog NumberComments
Consumables
Glass tissue slidesELECTRON MICROSCOPY SCIENCES63422-11
KimwipesKIMberly-Clark
1.5 mL Microcentrifuge TubesDENVILLE
Pipette TipsSHARP
NameCompanyCatalog NumberComments
Equipments
MicrowaveAvanti
WaterbathPRECISION
Horizontal electrophoresis chamberTREVIGENCometassay ES II
Power supplyBio-Rad
IncubatorQuincy LabModel 12-140E
Fluorescent microscopeZeissLSM700
MicropipettorEppendorf

참고문헌

  1. Ostling, O., Johanson, K. J. Microelectrophoretic study of radiation-induced DNA damages in individual mammalian cells. Biochem Biophys Res Commun. 123 (1), 291-298 (1984).
  2. Singh, N. P., McCoy, M. T., Tice, R. R., Schneider, E. L. A simple technique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells. Exp Cell Res. 175 (1), 184-191 (1988).
  3. Tice, R. R., et al. Single cell gel/comet assay: guidelines for in vitro and in vivo genetic toxicology testing. Environ Mol Mutagen. 35 (3), 206-221 (2000).
  4. Shah, A. J., Lakkad, B. C., Rao, M. V. Genotoxicity in lead treated human lymphocytes evaluated by micronucleus and comet assays. Indian J Exp Biol. 54 (8), 502-508 (2016).
  5. Azqueta, A., Collins, A. R. The essential comet assay: a comprehensive guide to measuring DNA damage and repair. Arch Toxicol. 87 (6), 949-968 (2013).
  6. Goldstein, M., Kastan, M. B. The DNA damage response: implications for tumor responses to radiation and chemotherapy. Annu Rev Med. 66, 129-143 (2015).
  7. Gavande, N. S., et al. DNA repair targeted therapy: The past or future of cancer treatment?. Pharmacol Ther. 160, 65-83 (2016).
  8. Torgovnick, A., Schumacher, B. DNA repair mechanisms in cancer development and therapy. Front Genet. 6, 157 (2015).
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  10. Brown, J. S., O'Carrigan, B., Jackson, S. P., Yap, T. A. Targeting DNA Repair in Cancer: Beyond PARP Inhibitors. Cancer Discov. 7 (1), 20-37 (2017).
  11. Lu, Y., et al. Chemosensitivity of IDH1-Mutated Gliomas Due to an Impairment in PARP1-Mediated DNA Repair. Cancer Res. 77 (7), 1709-1718 (2017).
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  13. Valverde, M., Rojas, E. Environmental and occupational biomonitoring using the Comet assay. Mutat Res. 681 (1), 93-109 (2009).
  14. Collins, A. R. The comet assay for DNA damage and repair: principles, applications, and limitations. Mol Biotechnol. 26 (3), 249-261 (2004).
  15. Karbaschi, M., Cooke, M. S. Novel method for the high-throughput processing of slides for the comet assay. Sci Rep. 4, 7200 (2014).

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