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요약

마이크로 X 선 컴퓨터 단층 촬영은 손상되지 않은 인간 표본에서 3 차원 정보를 얻는 데 효과적이지만 연조직 관찰에 는 성공이 제한적입니다. 인산조영제를 사용하면 이 문제를 해결할 수 있다. 우리는 인간의 섬세한 섬유 근육 조직 (안구 유지 인대)을 검사하기 위해이 조영제를 구현했습니다.

초록

수동 해부 및 조직학적 관찰은 인간의 조직을 조사하는 데 사용되는 일반적인 방법입니다. 그러나 수동 해부는 섬세한 구조를 손상시킬 수 있으며, 처리 및 조직학적 관찰은 단면 이미징을 통해 제한된 정보를 제공합니다. 마이크로 X 선 컴퓨터 단층 촬영 (microCT)은 표본을 손상시키지 않고 3 차원 정보를 얻는 효과적인 도구입니다. 그러나, 연조직 부분 분화에 있어 제한된 효율을 나타낸다. 인산화산(PTA)과 같은 조대비 증강제를 사용하면 연조직 대비를 개선하여 이 문제를 해결할 수 있습니다. 우리는 궤도 영역에서 섬세한 구조인 인간 구안성 유지 인대 (ORL)를 조사하기 위해 PTA와 마이크로 CT를 구현했습니다. 이 방법에서, 수확 된 표본은 포르말린에 고정되고, 직렬 에탄올 용액에서 탈수되고, PTA 용액으로 염색된다. 염색 후, 마이크로CT 스캐닝, 3D 재구성 및 분석이 수행됩니다. 피부, 인대 및 근육은이 방법을 사용하여 명확하게 시각화 할 수 있습니다. 시편 크기와 염색 기간은 이 방법의 필수 특징입니다. 적합한 시편 두께는 약 5-7mm였으며, 그 위에 는 공정이 느려졌고, 최적 지속 시간은 5-7일이었고, 그 아래 중앙 지역의 빈 구멍이 가끔 발생했습니다. 절단 시 작은 조각의 위치와 방향을 유지하려면 각 부품의 동일한 부위에 봉제하는 것이 좋습니다. 또한 각 조각을 올바르게 식별하려면 해부학 적 구조의 예비 분석이 필요합니다. 파라필름은 건조를 방지하는 데 사용할 수 있지만 시편 왜곡을 방지하기 위해 주의를 기울여야 합니다. 우리의 다방향 관측은 ORL이 이전에 보고된 바와 같이 실과 같은 섬유가 아닌 연속 플레이트의 다층 메쉬워크로 구성되어 있음을 보여주었습니다. 이 결과는 PTA를 가진 microCT 스캐닝이 인간 조직의 복잡한 구조물 내의 특정 구획을 검토하기 위해 유용하다는 것을 건의합니다. 그것은 암 조직의 분석에 도움이 될 수 있습니다., 신경 조직, 그리고 다양 한 장기, 심장과 간 같은.

서문

수동 해부 및 조직학적 관찰은 일반적으로 근육 및 결합 조직과 같은 인간 조직을 검사하는 데 사용됩니다. 그러나 수동 해부는 섬세한 구조를 쉽게 손상시킬 수 있으며 조직학적 관찰은 평평한 단면1,2에대한 제한된 정보를 제공합니다. 따라서 조직을 보다 정확하고 효율적으로 검사하기 위해 개선 된 방법이 필요합니다.

종래의 컴퓨터 단층 촬영(CT)은 일반적으로 임상 실습에 사용되지만 작은 구조2,3을구별하는 능력이 부족하다. 마이크로 X 선 CT (microCT)는 그들을 파괴하지 않고, 작은 구조의 3 차원 (3D) 정보를 얻기위한 효과적인 도구입니다. 그러나, microCT는 조밀한 조직만 명확하게 구상될 수 있기 때문에 한정된 적용이 있습니다; 연조직을 분화하는 데 사용할 수 없습니다. 이러한 한계를 극복하기 위해 염색제에 사용할 수 있다. 인산성산(PTA), 인산모질산 및 루골의 요오드와 같은 대조강화제는 스캐닝 시연조직대비비율을 향상시킨다4,5. 이러한 에이전트를 비교하는 여러 연구는 PTA가 좋은 성능을 발휘하고6,7,8을처리하기 쉽다는 것을 시사한다.

구안성 옹대(ORL)는 궤도 주위의 섬세한 구조이며, 이는 종래의 관측 시 쉽게 손상될 수 있다9. PTA를 조영제로 사용하여 microCT를 사용하여 이 구조에 대한 3D 정보를 검사하고 성공적으로 검색했습니다. 이 방법은 적절한 수정과 함께 심장과 간과 같은 다른 인간 조직에 대한 연구에 적용 할 수 있습니다10,11,12.

프로토콜

이 연구에서 활용된 모든 시신은 연세대학교 의과대학의 외과해부학교육센터에 합법적으로 기증되었습니다.

1. 샘플 획득

  1. 시더에 색연필로 절개선을 그려 시료 수확을 위한 절단 영역을 표시합니다. 그려진 절개선이 내측 캔따라서, 측면 캔투스로, 아래 눈꺼풀의 우수한 테두리보다 우월하고, 궤도 테두리에서 선 아래 1cm까지 열등하게 확장되는지 확인합니다.
    참고: 마이크로 CT 장비의 최대 스캔 크기를 기준으로 샘플 크기를 고려하십시오(장비에서 최대 개체 치수가 7 × 7cm인 이미지를 획득할 수 있음). 여기서, 샘플은 폭 약 1cm, 길이 3 cm, 및 1.25 g의 무게를 ORL 부위로부터 수확하였다.
  2. 절개 선 다음에 면도날로 얼굴 조직을 잘라냅니다. 칼날 끝이 뼈에 닿도록 절단이 깊지 않은지 확인합니다. 견본은 피부, 피하 조직, 근육, 지방 및 periosteum를 포함해야 합니다.
  3. 샘플을 즉시 10% 포르말린에 고정하고 실온에서 5-7일 동안 보존합니다(그림1A).
    참고: 방부처리된 시체와 신선한 시신을 모두 이 연구에 사용할 수 있습니다. 그러나 시체에 대한 고정 솔루션은 생물학적 실험에 사용되는 용액과 약간 다를 수 있습니다. 따라서 방부 처리된 시체에서 샘플을 얻은 후에도 10% 포르말린으로 샘플을 다시 고정하는 것이 좋습니다.

2. 염색 준비

  1. 고정 한 후, 3 개 (두께 5-7mm)로 샘플을 슬라이스. 이 과정에서 각 조각의 위치와 방향을 잃지 마십시오.
    참고: 당사가 사용하는 microCT 스캐너는 최대 7cm³ 크기를 커버할 수 있지만 너무 두껍다면 PTA 솔루션이 시료를 성공적으로 관통할 수 없습니다.
  2. 샘플의 방향을 나중에 확인할 수 있도록 바늘과 검은 실을 사용하여 각 조각의 상각면을 바느질합니다.
  3. 샘플을 30%, 50%, 70% 에탄올 용액으로 1일 동안 탈수합니다.
  4. 샘플을 얼룩이 될 때까지 70% 에탄올에 놓습니다.

3. PTA 준비

  1. 마이크로CT 스캐닝이 예약되기 1주일 전에 PTA 염색 과정을 시작합니다.
  2. 70% 에탄올 용액 210mL를 준비하고 2.1 g의 PTA 전력을 추가합니다. 55-60 rpm에서 셰이커를 사용하여 잘 섞으세요.
    참고 : PTA 용액의 농도는 에탄올에서 1 %여야합니다.
  3. 슬라이스한 조각마다 70mL 플라스틱 용기 3개가 준비됩니다. PTA 용액으로 용기를 채웁니다. 시편을 용기에 담그고 셰이커에 넣어 효과적으로 침투합니다. 샘플을 5~7일 동안 그대로 둡니다(그림1B).
  4. 염색이 완료되면 샘플을 70% 에탄올에 저장하여 스캔을 준비합니다.
    참고: 염색된 샘플은 몇 달 동안 유지 관리할 수 있지만, 완전한 염색을 보장하기 위해 가능한 한 빨리 샘플을 스캔하는 것이 좋습니다.

4. 마이크로CT 스캐닝

  1. 건조를 방지하기 위해 파라필름으로 시료를 감쌉니다. 변형으로 이어질 수 있기 때문에 샘플을 너무 단단히 감싸지 마십시오.
  2. 스캐너를 열고 샘플을 트레이에 놓습니다(그림2).
  3. 스캐닝 파라미터를 다음과 같이 설정합니다: 소스 전압(kV) = 70, 소스 전류(μA) = 114, Al 필터 = 0.5 mm, 이미지 픽셀 크기 (μm²) = 20, 픽셀 = 2240 × 2240, 노출 (ms) = 500, 회전 단계 (deg) = 0.3.
    참고: 사용된 샘플 및/또는 스캐너에 따라 매개 변수가 수정될 수 있습니다.
  4. 스캔을 시작합니다.
    참고: 스캔은 스캐너의 의도된 해상도와 속도에 따라 30~60분이 소요됩니다.

5. 데이터의 재구성 및 최적화

  1. 재구성 소프트웨어를 실행합니다. 작업 메뉴에서 데이터 집합 열기를 선택하여 스캔한 파일을 시작합니다.
  2. 재구성 창에서 설정 탭을 선택합니다. 다음과 같이 매개변수를 설정합니다: 링 아티팩트 감소 = 7, 빔 경화 보정(%) = 40.
    참고: 샘플에 따라 매개 변수를 수정할 수 있습니다.
  3. 시작 탭에서 시작을 선택하여 재구성을 시작합니다. 최종 데이터는 지정된 폴더에 저장됩니다.
  4. 파일 크기 조정 소프트웨어를 실행합니다. 재구성된 파일을 시작하려면 소스 데이터 집합을 선택합니다.
  5. 대상 데이터 세트 탭에서 jpg를 선택합니다.
  6. 보간 없음(빠없음)의 품질 옵션을 사용 하 고 크기 조정 옵션 1/2를 선택 합니다.
  7. 이미지 압축 탭에서 슬라이드 막대를 100(최고)으로 조정합니다.
    참고: 크기 조정 옵션은 3D 렌더링 시 컴퓨터 속도가 느려지는 것을 방지하는 것입니다. 그러나 광범위하게 크기를 조정하면 해상도가 낮아질 수 있습니다. 더 나은 처리와 함께 허용 가능한 해상도를 위해 절반으로 크기를 조정하는 것이 좋습니다.

6. 3D 재구성

  1. 3D 볼륨 렌더링 소프트웨어를 실행합니다.
  2. 작업 > 볼륨 데이터를 로드하여 데이터 집합을 시작합니다.
  3. 전송 기능 편집기 탭에서 히스토그램의 모양 전달 기능을 수정하여 밝기와 대비 수준을 조정합니다.
  4. 옵션 > 조명을선택합니다.
  5. 그림자 및 표면 조명 아이콘을 선택합니다. 이러한 효과는 사실적인 모델링 톤을 제공합니다.
  6. (클릭및 드래그),회전(마우스 오른쪽 버튼 클릭 및 드래그),및 확대 또는 축소(스크롤)에서모델을 이동하여 가장 적합한 보기를 찾습니다.
  7. 평면을슬라이드(시프트 + 클릭 및 내부 방향으로 드래그)를 클릭하여 단면 이미지를표시합니다(그림 3).
  8. 조명 아이콘을 켭니다. 조명 표시 막대를 조정하고 보기에 가장 적합한 조명을 찾습니다. 그런 다음 아이콘을 끄고 조명 탭을 닫습니다.
  9. 옵션 > 표시 > 클리핑 상자를 선택하여 최종 이미지의 상자를 숨깁니다.
  10. 작업 > 이미지를 저장하려면 이미지 저장을 선택합니다.

결과

ORL의 상세한 재구성은 PTA 제제를 가진 마이크로CT에 의해 달성되었다(그림4). 진피와 회막 사이에 비스듬히 연장되는 인대 섬유근육 구조는 뚜렷하게 관찰되었다(도4A). 관상 뷰(그림 4B)에서섬유의 양과 복잡성이 측면으로 증가했습니다. 수평뷰(도4C)에서,아버화된 형성을 가진 정교한 메쉬워크가 관찰되었다...

토론

우리는 인간 연조직의 검사에서 PTA 준비와 마이크로CT를 구현했습니다. 간단히 말해서, 시편은 며칠 동안 포르말린에서 수확되고 고정되고, 그 다음에 직렬 에탄올 용액에서 탈수됩니다. 포르말린 고정 직후 PTA 용액에 시료를 배치하면 급속한 탈수로 인한 일부 조직 균열이 발생할 수 있습니다. 따라서 PTA 염색 전에 직렬 탈수가 필요합니다. 다음으로, 샘플은 약 1주일 동안 PTA 용액을 사용하여 염?...

공개

저자는 공개 할 것이 없다.

감사의 말

이 연구는 연세대학교 의과대학 교수연구보조금(2018-0099)의 지원을 받았습니다. 저자는 연세대학교 의과대학에 시신을 아낌없이 기부해주신 분들께 감사드립니다. 김준호 씨와 방종호 교수님의 기술지원에 감사드립니다(연세대학교 의과대학 외과해부학교육센터 직원). 우리는 또한 이 연구에 사용된 고품질 microCT 스캐닝 시스템에 대한 Genoss Co., Ltd.에 감사드립니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
12 Tungsto(VI)phosphoric acid n-hydrate
Phosphotungstic acid
Junsei84220-0410PTA powder
CTvoxBrukerver 2.73D recon software
NreconBrukerver 1.7.0.4Reconstruction software
SkyscanBruker1173MicroCT scanner
TconvBrukerver 2.0File resizing software

참고문헌

  1. Nierenberger, M., Remond, Y., Ahzi, S., Choquet, P. Assessing the three-dimensional collagen network in soft tissues using contrast agents and high resolution micro-CT: Application to porcine iliac veins. Comptes Rendus Biologies. 338 (7), 425-433 (2015).
  2. Vymazalová, K., Vargová, L., Zikmund, T., Kaiser, J. The possibilities of studying human embryos and foetuses using micro-CT: a technical note. Anatomical Science International. 92 (2), 299-303 (2017).
  3. Tesařová, M., et al. Use of micro computed-tomography and 3D printing for reverse engineering of mouse embryo nasal capsule. Journal of Instrumentation. 11 (3), 1-11 (2016).
  4. Nemetschek, T., Riedl, H., Jonak, R. Topochemistry of the binding of phosphotungstic acid to collagen. Journal of Molecular Biology. 133 (1), 67-83 (1979).
  5. Rao, R. N., Fallman, P. M., Falls, D. G., Meloan, S. N. A comparative study of PAS-phosphotungstic acid-Diamine Supra Blue FGL and immunological reactions for type I collagen. Histochemistry. 91 (4), 283-289 (1989).
  6. Metscher, B. D. MicroCT for comparative morphology: simple staining methods allow high-contrast 3D imaging of diverse non-mineralized animal tissues. BMC Physiology. 9 (11), (2009).
  7. Metscher, B. D. MicroCT for Developmental Biology: A Versatile Tool for High-Contrast 3D Imaging at Histological Resolutions. Developmental Dynamics. 238 (3), 632-640 (2009).
  8. Nieminen, H. J., et al. Determining collagen distribution in articular cartilage using contrastenhanced micro-computed tomography. Osteoarthritis Cartilage. 23 (9), 1613-1621 (2015).
  9. Kwon, O. J., Kwon, H., Choi, Y., Cho, T., Yang, H. Three-dimensional structure of the orbicularis retaining ligament: an anatomical study using micro computed tomography. Scientific Reports. 8 (1), 17042 (2018).
  10. Dullin, C., et al. μCT of ex-vivo stained mouse hearts and embryos enables a precise match between 3D virtual histology, classical histology and immunochemistry. PLoS One. 12 (2), e0170597 (2017).
  11. Zikmund, T., et al. High-contrast differentiation resolution 3D imaging of rodent brain by X-ray computed microtomography. Journal of Instrumentation. 13 (2), 1-12 (2018).
  12. Anderson, R., Maga, A. M. A novel procedure for rapid imaging of adult mouse brains with MicroCT using iodine-based contrast. PLoS One. 10 (11), e0142974 (2015).
  13. Nieminen, H. J., et al. 3D histopathological grading of osteochondral tissue using contrast-enhanced micro-computed tomography. Osteoarthritis Cartilage. 26 (8), 1118-1126 (2018).
  14. Greef, D. D., Buytaert, J. A. N., Aerts, J. R. M., Hoorebeke, L. V., Dierick, M., Dirckx, J. Details of Human Middle Ear Morphology Based on Micro-CT Imaging of Phosphotungstic Acid Stained Samples. Journal of Morphology. 276 (9), 1025-1046 (2015).
  15. Sutter, S., et al. Contrast-Enhanced Microtomographic Characterisation of Vessels in Native Bone and Engineered Vascularised Grafts Using Ink-Gelatin Perfusion and Phosphotungstic Acid. Contrast Media & Molecular Imaging. 2017, (2017).

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