외상성 뇌 손상의 유도에 대한 제어 피질 영향의 뮤린 모델

요약

여기에서 우리는 열린 머리 통제된 피질 충격을 통해 뮤린 외상성 뇌 손상의 유도를 위한 프로토콜을 기술합니다.

초록

질병 통제 및 상해 예방 센터는 거의 2백만명의 사람들이 미국에서 매년 외상성 뇌 손상 (TBI)를 지속한다는 것을 추정합니다. 사실, TBI는 모든 부상 관련 사망률의 3 분의 1 이상에 기여 요인입니다. 그럼에도 불구하고, TBI의 병리생리학의 근본적인 세포 와 분자 기계장치는 제대로 이해됩니다. 따라서, 인간 환자에서 TBI와 관련된 상해 기전을 복제할 수 있는 TBI의 전임상 모델은 중요한 연구가 필요하다. TBI의 제어 된 피질 충격 (CCI) 모델은 기계적 장치를 사용하여 노출된 피질에 직접 영향을 미칩니다. 어떤 모델도 인간 환자에서 TBI의 이질적인 상해 패턴 및 이질적인 특성을 완전히 재현할 수는 없지만, CCI는 임상적으로 적용 가능한 광범위한 TBI를 유도할 수 있다. 또한 CCI는 쉽게 표준화되어 조사자가 실험 뿐만 아니라 조사 그룹 전체에서 결과를 비교할 수 있습니다. 다음 프로토콜은 TBI의 뮤린 모델에서 시판되는 충격 장치를 가진 가혹한 CCI를 적용하는 상세한 기술이다.

서문

질병 통제 및 상해 예방 센터는 대략 2백만명의 미국인이 외상성 뇌손상 (TBI)를 매년 1,^2를지탱한다는 것을 추정합니다. 실제로, TBI는 가혹한^TBI3,4,5를살아남기 위하여 매년 $800억 및 1인당 거의 $4백만에 가까운 헬스케어 비용으로 미국에 있는 모든 상해 관련 죽음의 30% 이상에 기여합니다. TBI의 영향은 행동, 인지 및 운동 장애의 교활한 개시와 생존자에 의해 고통 받는 중요한 장기 신경 인지 및 신경 정신병 합병증에 의해 강조된다 만성 외상성 뇌병증 (CTE) ^{6개 , 7명 , 8개 , 9개 , 10}. 심지어 임상 증상을 초래하지 않는 그 영향 - 이러한 비임상 뇌진탕 이벤트 -장기 신경 기능 장애로 이어질 수^{있습니다 11,12}.

TBI의 연구를 위한 동물 모형은 1800년대 후반^13년부터채택되었습니다. 1980년대에는 TBI 모델링을 목적으로 공압 충격기가 개발되었습니다. 이 방법은 이제 제어 된 피질 충격 (CCI) 14라고합니다. CCI의 제어 및 재현성은 설치류^15에사용하기 위한 모델을 적응시키기 위해 연구원을 지도했습니다. 우리의 실험실은 상업적으로 이용 가능한 충격기 및 전자 작동 장치^16,17를통해 TBI를 유도하기 위하여 이 모형을 이용합니다. 이 모델은 사용되는 생체 역학 적 파라미터에 따라 임상적으로 적용 가능한 광범위한 TBI 상태를 제조 할 수 있습니다. 우리의 실험실에서 유도 된 심각한 부상 후 TBI 뇌의 조직 학적 평가는 상당한 측삭 피질 과 해마 손실뿐만 아니라 반대 측 부종과 왜곡을 보여줍니다. 추가적으로, CCI는 행동 측정제^18에의해 측정된 것과 같이 모터 및 인식 기능에 있는 일관된 손상을 일으킵니다. CCI에 대한 제한사항에는 개두술의 필요성과 임팩터 및 작동 장치를 획득하는 비용이 포함됩니다.

TBI의 몇몇 추가 모델이 존재하고 측면 유체 타악기 모델, 중량 감소 모델 및 폭발 상해 모델^19,20,21을포함하는 문헌에 잘 확립되어 있다. 이들 모델들 각각은 그들의 뚜렷한 장점을 가지고 있지만 그들의 주요 단점은 혼합 된 부상, 높은 사망률 및 표준화의 부족, 각각^22. 또한 이러한 모델 중 어느 것도 CCI의 정확성, 정밀도 및 재현성을 제공하지 않습니다. CCI 모델은 생체 역학 적 파라미터 입력을 작동 장치로 조정함으로써 조사자가 뇌에 적용 된 부상의 크기, 부상 깊이 및 운동 에너지를 정밀하게 제어 할 수 있습니다. 이것은 조사자에게 두뇌의 특정 지역에 TBI의 전체 스펙트럼을 적용하는 기능을 줍니다. 그것은 또한 실험에서 실험에 가장 큰 재현성을 허용합니다.

프로토콜

모든 절차는 노스 웨스턴 대학 기관 동물 관리 및 사용위원회에 의해 승인되었다. C57BL/6 마우스는 잭슨 연구소에서 구입하고 노스 웨스턴 대학 (시카고, 일리노이)의 비교 의학 센터의 장벽 시설에 보관 그룹. 모든 동물은 음식과 물에 무료로 액세스 할 수있는 12/12 시간 빛 / 어두운 주기에 보관되었습니다.

1. 마취 유도

1. 케타민 (125 mg /kg)과 자일라진 (10 mg / kg)으로 마우스를 심상 으로 주입하여 마취시다.

2. 15분마다 활력 징후 모니터링

1. 온도, 호흡률 및 피부 색을 모니터링합니다. 마우스는 터치에 따뜻하게 느껴야한다. 피부는 분홍색과 잘 정중해 져야합니다. 호흡속도는 분당 50-70회 호흡이어야 합니다.

3. 수술 전 절차

1. 부상 유도 전날모든 마우스의 무게를 측정합니다.
2. 각 실험 대상에 대한 오토클레이브로 수술 기구 한 세트를 살균하십시오. 사용하기 전에 충격 장치를 소독하십시오.
3. 전기 가열 패드 위에 깨끗한 케이지를 "낮게" 설정하여 회수 케이지를 준비하고 마우스가 한 번 외래된 열에서 멀어지도록 배치합니다.
4. 멸균 된 층류 후드 내에 수술실을 설치하십시오.
   1. 스테레오택스식 작동 프레임을 배치합니다.
   2. 충격 장치를 스테레오탁스 프레임에 부착합니다.
   3. 속도 및 거주 시간에 대해 원하는 생체 역학 파라미터로 작동 장치를 설정합니다.
      참고 : 이 프로토콜에서 심각한 뇌 손상은 2.5 m /s의 속도와 0.1 s의 거주 시간을 설정 한 5mm 직경 의 craniectomy를 통해 3mm 직경 충격 팁을 활용하는 설명된다. 광범위한 생체역학적 파라미터가 TBI의 전체 스펙트럼을 유도하는데 사용될 수 있다.
5. 새로운 개인 보호 장비와 멸균 장갑을 착용하십시오.
6. 전기 클리퍼를 사용하여 수술 부위에서 모피를 면도하십시오.
7. 각막 손상과 건조를 방지하기 위해 마우스의 눈에 보호 옵티마이트 연고를 적용하십시오.
8. 마우스를 수술실에 놓습니다.
9. 알코올과 교대로 요오드 기반 수술 스크럽으로 피부를 세 번 준비하십시오.

4. 통제된 피질 충격의 응용

1. 두개골을 노출 하는 메스와 중간 선에 두 피를 절개 1 cm.
2. 소형 이어 바 사이에 양측 측두골격을 고정하고 절개 클램프 내에서 절개를 잠그어 마우스 헤드에 안정적인 3포인트 홀드를 만들어 입체 적 작동 프레임 내에 마우스를 배치합니다.
3. 두피가 두개골 절제술 중에 드릴 비트와 접촉하지 않도록 지혈 또는 잠금 집약으로 수술 부위에서 두피를 철회하십시오.
4. 노출된 두개골의 시상 및 관상 봉합사를 식별합니다.
   참고 : 이 프로토콜은 시상 봉합사의 2mm 왼쪽 두개골 절제술과 관상 봉합사에 2mm 로스트랄을 중심으로합니다.
5. 트레핀 드릴 비트가있는 드릴을 사용하여 두개골 절제술을 수행하십시오.
   1. 두개골 절제술을 수행하려면 먼저 최대 속도로 드릴을 활성화 한 다음 두개골에 수직인 트레핀 드릴 비트를 두개골 절제술 부위에 적용하십시오.
   2. 두개골에 접촉하면 드릴에 부드럽고 균일한 압력을 가하십시오. 드릴이 두개골을 관통하면 약간의 "포기"가 느껴집니다. 기본 경막을 관통하지 마십시오.
      참고 :이 프로토콜은 5mm 트레핀 드릴 비트를 사용하여 두개골 절제술을 수행합니다.
6. 집게와 작은 게이지 피하 바늘을 사용하여 뼈 플랩을 제거하고 기본 경막 미을 을 완전히 노출시하십시오.
7. 임팩터 팁을 작동 필드로 회전시키고 노출된 경막미와 접촉할 때까지 낮춥습니다. 일단 접촉이 이루어지면 기기의 접촉 센서는 외과 의사에게 접촉이 이루어졌다는 것을 알리기 위해 가청 톤을 만듭니다. 그러면 변형 깊이가 설정된 영점을 표시합니다.
   참고: 이 프로토콜은 3mm 충격 팁을 사용하여 심각한 부상을 발생시합니다. 1mm의 작은 팁은 더 많은 지역화 된 부상을 적용하는 데 사용할 수 있습니다.
8. 충격 팁을 철회하고 스테레오탁스 프레임의 임팩터 위치를 낮춤으로써 원하는 충격 깊이를 설정합니다.
   참고: 이 프로토콜에서는 변형 깊이를 2mm로 설정하여 심각한 부상을 설명합니다.
9. 작동 장치에 임팩터를 활성화하여 부상을 적용합니다.
10. 충격 장치를 필드에서 회전시키고 스테레오탁스 프레임에서 동물을 제거합니다.

5. 외과 부위 폐쇄

1. 멸균 면 팁 어플리케이터의 직접적인 압력으로 두개골과 부상당한 피질 표면에서 출혈을 제어합니다.
2. 멸균 면 팁 어플리케이터로 두개골을 말립니다.
3. 시판되는 외과 용 접착제 또는 모노 필라멘트 봉합사를 사용하여 두개골 을 통해 두피를 닫습니다.
   참고 :이 프로토콜에서 수의 외과 접착제는 두피를 닫는 데 사용됩니다. 뼈 플랩은 교체되지 않고 폐기됩니다.

6. 수술 후 관리 및 모니터링

1. 수술 후 진통 을 관리 (예를 들어, 지속적인 된 릴리스 buprenorphine 0.1-0.5 mg/kg 관리 피하 제공 72 지속적인된 진 통의 시간).
2. 동물을 깨끗한 미리 따뜻하게 한 케이지에 측면 방수 복구 위치에 놓습니다.
3. 깨어 있고 이동 될 때까지 동물을 관찰 한 다음 각 마우스를 홈 케이지로 되돌려 놓습니다.
4. 음식과 물에 무료로 접근할 수 있습니다. 일반적인 음식과 물 섭취는 일반적으로 상해 후에 1 2 시간 안에 재개됩니다.
5. 실험 기간 내내 3일마다 체중을 측정합니다.

결과

임팩터는 입체 프레임에 직접 장착되어 충격 지점, 깊이 및 침투 지점을 제어하기 위해 최대 10 μm 해상도를 허용합니다. 채택된 전자기력은 1.5-6m/s에 이르는 충격 속도를 부여할 수 있습니다. 이를 통해 임상적으로 관련된 TBI의 전체 범위에 걸쳐 비교할 수 없는 정밀도와 재현성을 제공합니다. 조사관은 임팩트 터 크기, 충격 속도 및 충격 깊이와 같은 부상 매개 변수를 변경하여 원하는 부상 정도?...

토론

안정적이고 일관된 부상을 적용하는 데 중요한 몇 가지 단계가 있습니다. 첫째, 마우스는 두개골 절제술의 성능 동안 아무 움직임을 보장 수술 마취의 깊은 평면에 도달해야합니다. 수많은 마취 식이요법이 설치류에 있는 전신 마취를 유도하기 위하여 이용될 수 있는 동안, 흡입 마취와 같은 호흡 불경기를 유도하는 마취제는 가혹한 TBI와 결합될 때 호흡 정지귀착될 수 있습니다. 이 프로토콜은 ?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
AnaSed Injection Xylazine Sterile Solution	LLOYD, Inc.	5939911020
Buprenorphine SR Lab 0.5mg/mL	Zoopharm-Wildlife Pharmaceuticals USA	BSRLAB0.5-182012
High Speed Rotary Micromotor KiT0	Foredom Electric Company	K.1070
Imapact one for Stereotaxix CCI	Leica Biosystems Nussloch GmbH	39463920
Ketathesia Ketamine HCl Injection USP	Henry Schein, Inc	56344
Mouse Specific Stereotaxic Base	Leica Biosystems Nussloch GmbH	39462980
Trephines for Micro Drill	Fine Science Tools, Inc	18004-50