파지 디스플레이를 사용하여 E3 리개아제용 유비퀴틴 변종 변종 변조기 개발

요약

유비퀴티뉴션은 번역 후 중요한 단백질이며, 이의 난독증은 수많은 인간 질환에 연루되어 있다. 이 프로토콜은 파지 디스플레이가 유비퀴티니션의 특이성, 효율성 및 패턴을 제어하는 E3 리개아의 활성을 결합하고 조절할 수 있는 새로운 유비퀴틴 변종을 분리하는 방법을 자세히 설명합니다.

초록

유비퀴틴은 유비퀴틴-프로테솜 시스템의 핵심 성분인 작은 8.6 kDa 단백질이다. 따라서, 그것은 높은 특이성 그러나 낮은 친화력을 가진 단백질의 다양한 배열에 결합할 수 있습니다. 파지 디스플레이를 통해 유비퀴틴 변이체(UbV)는 야생형 유비퀴틴에 비해 친화성을 개선하고 표적 단백질에 대한 결합 특이성을 유지하도록 설계할 수 있다. 파지 디스플레이는 파지미드 라이브러리를 활용하여 필라멘트 M13 박테리오파지의 pIII 코트 단백질(파지 표면에 외부적으로 표시되기 때문에 선택)이 UbV와 융합됩니다. 인간 야생형 유비퀴틴의 특정 잔류물은 부드럽고 무작위화되어(즉, 네이티브 야생형 서열에 대한 편견이 있음) UbV를 생성하여 단백질 형성의 해로운 변화를 피하도록 하는 동시에 표적 단백질과의 새로운 상호 작용을 촉진하는 데 필요한 다양성을 도입한다. 파지 표시 과정에서 이러한 UbV는 파지 코트 단백질에 표현되고 표시되며 관심있는 단백질에 대해 패닝됩니다. 대상 단백질과 유리한 결합 상호 작용을 나타내는 UbV는 유지되지만 가난한 바인더는 세척되어 라이브러리 풀에서 제거됩니다. UbV의 해당 파지미드를 포함하는 파지 입자에 부착된 유지 된 UbV는 다른 파지 디스플레이에서 동일한 표적 단백질에 대해 패닝 될 수 있도록 용출, 증폭 및 농축됩니다. 일반적으로 최대 5라운드의 파지 디스플레이가 수행되며, 이 동안 약하게 결합되는 UbV에 대해 강력한 선택 압력이 부과되어 선호도가 높은 파지 디스플레이가 집중되고 풍부해집니다. 궁극적으로, 그들의 야생형 대조제 보다는 표적 단백질에 대한 더 높은 특이성 및/또는 친화성을 입증하는 UbV는 격리되고 추가 실험을 통해 특징화될 수 있다.

서문

단백질-단백질 상호 작용의 분자 세부 사항을 이해하는 것은 생물학적 과정의 신호 변환 메커니즘, 특히 임상적으로 중요한 질병에 기여하는 신호를 파기하는 데 중요합니다. 최근 몇 년 동안 파지 디스플레이는 단백질/펩티드를 원하는 표적 단백질^에 훨씬 개선된 결합으로 분리하는 실용적이고 접근 가능한 방법으로 활용되어 ^{왔으며, 이는} 단백질 단백질 상호작용의 세포내 프로브로서 사용될 수 있다.

유비퀴티닝은 유비퀴틴(Ub)을 단백질 기판에 곱하게 결합하여 분해또는 세포 신호 변화를 중재하는 효소 활동(E1 활성화 효소 → E2 컨쥬게이팅 효소 → E3 리게아제)의 폭포입니다. 또한, deubiquitinases 단백질에서 유비퀴틴의 제거를 촉매. 따라서, 세포에서는, Ub 의존적인 단백질 단백질 상호 작용의 수천이 있습니다, 대다수는 크고 다양한 표면을 통해 약한 상호 작용을 허용하는 낮은 친화성 그러나 높은 특이성을 가진 일반적인 표면을 인식합니다.

Ernst et al.은 여전히 높은 선택성을 유지하면서 관심있는 단백질에 대한 결합 친화성을 향상시킬 수 있는지 확인하기 위해 Ub의 알려진 결합 영역으로 돌연변이를 도입^{했습니다5}. 알려진 Ub-protein 상호 작용을 중재하는 Ub 표면의 위치에서 돌연변이가 있는 100억 개 이상의 (7.5 x ¹⁰¹⁰) Ub 변이체(UbV)의 결합 라이브러리가 개발되었습니다. 이 라이브러리는 다양한 UbV에 융합된 M13 박테리오파지 pIII 코트 단백질을 표현하는 파지미드로 구성되었습니다. 따라서, 개별 UbV는 발현 시 코트 단백질을 통해 파지 표면에 표시될 수 있다. 선택 과정에서, 대상 단백질과 상당한 결합 상호 작용을 가진 UbV를 표시하는 파지는 파지 디스플레이의 후속 라운드에서 유지되고 풍부하게 되는 반면, 대상 단백질에 제대로 결합되지 않는 UbV를 표시하는 파지는 파지 풀에서 세척되고 제거됩니다. 유지된 파지 입자는 표시된 UbV에 해당하는 파지미드를 함유하고 있어 한 번 격리된 후 시퀀싱되고 더 많은 특징을 가할 수 있습니다.

이 단백질 엔지니어링 전략을 사용하여, UbV 억제제는 인간 deubiquitinases5 및 바이러스 성 proteases6를 위해 개발되었습니다. 중요한 것은, 우리는 E2 결합 사이트를 납치하고 HECT 도메인7에 Ub 결합 외사이트를 차지하는 UbV를 활성화하여 인간 HECT 가족 E3 리그효소에 대한 억제 UbV를 생성^했습니다7. 또한 E2 결합 부위를 대상으로 단황 링 패밀리 E3s를 억제하고 UbV 이압을 유도하여 동종 형 링 E3s8을 활성화할 수 있습니다. 다중 서브유닛 링 E3의 경우, UbV는 링 하위 유닛(예: APC/C 복합체⁹)을 타겟팅하거나 복잡한 형성(예: SCF E3s10)을 방해하여 억제를 달성할 수 있다. UbV는 UB-proteasome 시스템(UPS)에서 단백질-단백질 상호 작용을 체계적으로 심문하여 UPS 효소의 생화학 적 메커니즘을 더 잘 해독하고 치료 개입을 위한 기능적 부위를 식별하고 검증할 수 있도록 활용할 수 있습니다.

다음 프로토콜은 이전에 생성된 파지를 사용하여 관심 있는 단백질을 타겟팅하는 방법과 연속적인 파지 디스플레이를 통해 대상 단백질과 상호 작용하는 UbV 바인더를 풍부하게 하는 방법을 설명합니다.

프로토콜

1. 시약 준비

1. PBS (인산염 완충식식염수): 10x PBS 용액 50mL을 450mL초퓨어 _H2O로 혼합하여 여과하여 살균하고 4°C 또는 실온(~20-25°C)에 보관하십시오.
2. 10% BSA (소 혈청 알부민): 천천히 초퓨어 _H2O의 7 mL에 BSA의 1 g을 추가하고 완전히 용해 될 때까지 혼합 (덩어리 없음). 최종 부피가 10mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려보아 보입니다. 여과에 의해 살균하고 4 °C에 보관하십시오.
3. PB 버퍼(PBS는 1% BSA로 보충됨): BSA 5g을 초퓨어 _H2O 400mL에 천천히 추가하고 PBS 50mL를 완전히 용해할 때까지 섞습니다(덩어리 없음). 최종 볼륨이 500mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려보아 보입니다. 여과에 의해 살균하고 4 °C에 보관하십시오.
4. PBT 버퍼(PBS는 1% BSA 및 0.05% Tween 20으로 보충됨): BSA 5g을 초순수 _H2O 400mL에 천천히 추가하고 PBS50mL을 완전히 용해할 때까지 혼합합니다(덩어리 없음). 250 μL의 Tween 20을 추가합니다. 최종 볼륨이 500mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려보아 보입니다. 여과에 의해 살균하고 4 °C에 보관하십시오.
5. PT 버퍼(PBS+0.05% Tween 20): 1mL의 Tween 20을 PBS 400mL로 혼합합니다. 최종 부피가 여과에 의해 살균될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려4°C 또는 실온(~20-25°C)에 보관하십시오.
6. 2YT 국물: 트립톤 16g, 효모 추출물 10g, NaCl 5 g ~ 800mL초퓨어 _H2O를 넣고 완전히 용해될 때까지 섞습니다(덩어리 없음). 최종 부피가 1L. 소독하여 멸균될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려서 실온(~20-25°C)에 보관하십시오.
7. LB/탄수화물 플레이트: 12.5g의 미리 만들어진 LB 혼합물과 7.5 g의 한고를 H2O400mL에 추가합니다. 최종 부피가 500mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려서 오토클레이빙으로 멸균합니다. 한천이 완전히 용해되어 60°C 이하로 식을 때까지 기다립니다. 100 mg mL 카베니실린의 500 μL을 넣고 잘 섞어서 접시에 붓습니다. 4 °C에 보관하십시오.
8. LB/tet 플레이트: 12.5g의 미리 만들어진 LB 혼합물과 7.5 g의 초순수 _H2O를 400mL에 추가합니다. 최종 부피가 500mL가 될 때까지 초순수 _H2O를 얹고 오토클레이브로 멸균합니다. 한천이 완전히 용해되어 60°C 이하로 식을 때까지 기다립니다. 10 mg mL 테트라사이클린의 500 μL을 넣고 잘 섞어서 접시에 붓습니다. 4 °C에 보관하십시오.
9. 20% PEG(폴리에틸렌 글리콜)/2.5M NaCl: PEG-8000 5g과 36.5g의 NaCl을 200mL에 초순수 _H2O. 완전히 용해될 때까지 섞어줍니다.
   참고: 시간이 걸릴 수 있습니다. 난방이 도움이 될 수 있습니다. 최종 볼륨이 250mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려보있습니다. 여과 또는 오토클레이브로 살균하십시오.
10. 0.1 M HCl: 1M HCl의 20mL를 180mL초퓨어 _H2O로 혼합하여 여과하여 살균하고 실온(~20-25°C)에서 보관하십시오.
11. 1 M Tris (pH 11.0): 6.1 g의 Tris 베이스를 초퓨어 _H2O의 40mL에 추가합니다. 최종 볼륨이 50mL가 될 때까지 초순수 _H2O로 위로 올려보있습니다. 여과에 의해 살균하고 실온 (~20-25°C)에서 보관하십시오.
12. 100 mg/mL (1000x) 카베니실린: 카베니실린 디나트륨 소금 2 g을 초퓨어 _H2O의 20mL에 추가합니다. 여과에 의해 살균하고 -20 °C에 보관하십시오.
13. 50 mg /mL (1000x) 카나마이신: 완전히 용해 될 때까지 20 mL의 카나마이신 황산염 1 g을 추가합니다. 여과에 의해 살균하고 -20 °C에 보관하십시오.
14. 10 mg/mL (1000x) 테트라사이클린: 테트라사이클린 염산염 0.2g을 70% 에탄올의 20mL에 추가합니다. 완전히 녹을 때까지 섞습니다. 여과에 의해 살균하고 -20 °C에 보관하십시오.

2. 단백질 제제

1. μM에서 표적 단백질 육수의 농도를 결정한다. 단백질 농도를 평가하는 가장 편리한 방법은 280 nm에서 단백질 육수의 흡광도를 측정하는 것입니다. 농도가 mg/mL로 알려진 경우, 표적 단백질의 분자량을 사용하여 μM으로 변환한다. 관심 있는 단백질에 따라 다양한 방법을 사용할 수 있습니다. 자세한 내용은 토론 섹션을 참조하십시오.
   참고: 단백질이 잘리거나(특정 단백질 도메인/모티프) 태그가 지정된 경우 mg/mL에서 μM으로 변환할 때 분자량의 이러한 변화를 설명해야 합니다.
2. "라운드 1", "라운드 2/3", "라운드 4/5"라고 표시된 미세 원심 분리튜브 3개.
   1. 800 μL PBS에서 1 μM로 희석하는 데 필요한 단백질의 양을 계산하고 PBS를 추가하지 않고 튜브에이 볼륨을 알리쿼트합니다.
      참고: 사용 가능한 표적 단백질의 양이 낮으면 농도를 0.25 μM로 낮출 수 있습니다.

3. 선발 1라운드 준비

1. 선택 의 두 라운드에 대한 파지 입력을 배양하기위한 종자 문화를 준비합니다.
   1. 잘 분리 된 대장균 콜로니 와 2YT / tet의 5 mL을 접종하고 200 rpm 궤도 흔들림과 37 ° C에서 하룻밤 배양.
2. 선택의 첫 번째 라운드에 대한 접시를 코팅합니다.
   1. 적절한 양의 PBS 및 알리쿼트 100 μL의 "라운드 1" 튜브에서 표적 단백질을 96웰 결합 플레이트(즉, 대상 플레이트)의 8개의 우물로 희석시 희석합니다.
      참고: 파지 디스플레이는 플레이트 모서리에 우물을 코팅하여 단일 플레이트에서 동시에 4개의 서로 다른 단백질을 위해 수행할 수 있습니다.
   2. 선택적 제어: 표적 단백질이 GST 또는 MBP(말토스 결합 단백질)와 같이 태그가 지정되면, 적절한 에피토프 태그를 포함하는 1 μM 용액의 100 μL을 가진 또 다른 96웰 결합 판에 8개의 우물을 코팅합니다. 이 태그에 바인딩 하는 원치 않는 파지를 제거 하는 데 사용 됩니다.이 태그에 바인딩 하는 비구체적으로 사용 됩니다.
   3. 200 rpm 궤도 흔들림으로 4 °C에서 하룻밤 동안 플레이트를 흔들어줍니다.

4. 1라운드 선택

1. 2라운드 입력을 준비합니다.
   1. 3.1 단계에서 종자 배양의 200 μL을 가진 2YT/tet의 30mL 접종.
   2. 박테리아가 중간 로그 단계 (_OD600 0.6 - 0.8)에 될 때까지 200 rpm 궤도 흔들림으로 37 °C에서 배양하십시오. 이 소요 약 3 시간.
2. 블록 대상 플레이트.
   1. 플레이트에서 코팅 용액을 제거하거나 제어 판이 만들어진 경우 싱크대 위로 반전하고 흔들어 두 플레이트를 제거합니다. 종이 타월에 두드려 말리십시오.
   2. 코팅된 각 버퍼에 300μL의 PB 버퍼를 추가합니다.
   3. 4.2.1 단계와 같이 PB 버퍼를 제거하고 PB 버퍼의 200 μL을 추가합니다.
   4. 실온(~20-25°C)에서 300rpm 궤도 흔들림으로 1h로 배양한다.
3. 파지 라이브러리를 준비합니다.
   1. 파지 라이브러리를 얼음 위에 해동하고 PBS의 도서관 다양성을 100배로 희석시킵니다. 예를 들어 라이브러리 다이버시티가 1 x ¹⁰¹⁰이고 라이브러리 농도가 1 x 1013인 경우 농도가 1 x ¹⁰¹²되도록 라이브러리를 희석합니다. 여기에 사용되는 라이브러리의 경우, PBS의 9mL와 라이브러리의 1mL을 결합하여 PBS에서 10 배 희석.
      참고: 라이브러리 를 만드는 동안 라이브러리 의 다양성을 결정해야 하며 그렇지 않으면 쉽게 평가할 수 없습니다. 라이브러리 농도는 중간 로그 단계(_OD600 0.6 - 0.8)에서 대장균 세포를 접종하고 LB/탄수화물에 도금하여 결정될 수 있다.
   2. PEG/NaCl의 1/5 볼륨을 추가합니다. 예를 들어 이전에 희석된 라이브러리의 10mL에 대해 PEG/NaCl 2mL를 추가합니다.
   3. 30 분 동안 얼음에 배양.
   4. 원심분리기는 4°C에서 30분 동안 11,000 x g 로, 2분 동안 상류체를 폐기하고, 나머지 상체를 끌어내리는 데 2분 동안 최신분리기를 버린다.
      참고: 같은 위치에 펠릿을 유지하는 첫 번째와 같은 방향으로 튜브를 두 번째로 같은 방향으로 로터에 넣어, 따라서 쉽게 볼 수 있도록.
   5. 단백질 당 PBT의 1 mL에서 파지 펠릿을 부드럽게 다시 중단합니다. 4개의 단백질을 위해, PBT의 4 mL에서 펠릿을 재중단합니다.
      참고 : 펠릿을 만지지 말고 기포를 도입하지 마십시오.
4. 대상 단백질(들)에 파지를 표시합니다.
   1. 선택적 제어: 컨트롤 플레이트에 잘 코팅된 각 파지 라이브러리에 100 μL을 추가합니다. 실온(~20-25°C)에서 300rpm 궤도 흔들림으로 1h에 대해 배양하고 제어판에서 대상 플레이트로 라이브러리를 전송한다. 4.4.2 단계를 건너뜁니다.
   2. 4.2.1 단계와 같이 대상 플레이트에서 PB 버퍼를 제거하고 파지 라이브러리의 100 μL을 잘 코팅한 각 에 추가합니다.
   3. 실온(~20-25°C)에서 300rpm 궤도 흔들림으로 1h로 배양한다.
5. 엘루테 라운드 1 파지.
   1. 파지 라이브러리를 제거하고 PT 버퍼로 코팅 된 우물을 네 번 씻으십하십시오. 접시를 반전하고 마지막 방울을 제거하기 위해 종이 타월을 누릅니다.
      참고: 여러 표적 단백질이 한 접시에 코팅되어 있는 경우 우물 간의 모든 후속 솔루션의 흐름을 최소화하십시오.
   2. 코팅된 각 웰에 0.1 M HCl의 100 μL을 추가하고 실온에서 300 rpm 궤도 흔들림으로 5분 동안 배양합니다.
   3. 1M Tris-HCl(pH 11)의 12.5 μL을 각 코팅웰에 추가하여 pH를 중화한다.
   4. 모든 8 개의 우물에서 eluted 파지를 단일 1.5 mL 마이크로 센트 심분리기 튜브로 당기십시오. 파이펫은 전송 하는 동안 위아래로 파이펫 용액 균질 하 게 하 고 우물에서 모든 액체를 흡인.
   5. 풀이 된 용출 된 파지에 10 %의 BSA를 추가하여 최종 농도를 1 %로 추가합니다. 950 μL의 일반적인 라운드 1 용출 부피의 경우 10 % BSA의 95 μL을 추가하십시오. 4 °C에 보관하십시오. 이것은 라운드 1 출력입니다.

5. 후속 선발 준비

1. 3.1 단계에서와 같이 다음 선발 라운드에 대한 파지 입력을 배양하기 위한 종자 문화를 준비한다.
2. 아래와 같이 3.2단계와 같이 3라운드 선발플레이트를 코팅합니다.
   1. 96웰 결합 플레이트에 단백질 당 4개의 우물만 코팅합니다. 적절한 라운드에 "라운드 2/3" 또는 "라운드 4/5" 튜브의 내용의 절반을 사용합니다. 단백질이 용액에서 정착되는 것을 피하기 위해 필요에 따라 이러한 튜브의 내용을 희석시하십시오.
3. 다음 선발 라운드에 대한 파지 입력을 준비합니다.
   1. 4.5.5 단계에서 4.1 단계에서 미드 로그 상 셀의 3mL을 접종하는 단계4.5.5에서 1라운드 출력의 절반을 사용합니다. 일반적인 1라운드 출력의 경우 출력의 500 μL로 접종합니다.
   2. 37°C에서 30분 동안 200rpm 궤도 흔들림으로 배양합니다.
   3. M13K07 도우미 파지를 1 x ¹⁰¹⁰ PFU/mL의 최종 농도에 추가합니다.
   4. 200 rpm 궤도 흔들림과 1 h에 대한 37 °C에서 인큐베이션.
   5. 문화의 전체 3mL를 2YT/탄수화물/칸의 30mL로 전송합니다. 200 rpm 궤도 흔들림과 함께 37 °C에서 하룻밤 성장.
   6. 다음 날, 배양기를 50mL 원심분리기 튜브및 원심분리기로 11,000 x g 에서 4°C에서 10분 동안 전달하여 세포를 침전시한다.
   7. 새로운 50mL 원심분리기 튜브에 상퍼를 넣고 8mL의 PEG/NaCl과 혼합하여 10분 동안 얼음에 배양합니다.
   8. 원심분리기는 4°C에서 10분 동안 11,000 x g 에서, 상류체를 폐기하고, 원심분리기를 다시 2분 동안 폐기한다.
      참고: 같은 위치에 펠릿을 유지하는 첫 번째와 같은 방향으로 튜브를 두 번째로 같은 방향으로 로터에 넣어, 따라서 쉽게 볼 수 있도록.
   9. 완전히 균일하고 덩어리가 보이지 않도록 PBT의 800 μL에서 파지 펠릿을 다시 중단합니다.
   10. 파지 용액을 1.5mL 마이크로센심심분리기 튜브 및 원심분리기16,200 x g 에서 4°C에서 4분 동안 펠릿 이물질을 전달합니다.
   11. 새로운 미세 원심 분리기 튜브로 상체를 전송합니다. 다음 선발 라운드의 입력입니다.
4. 선택 사항: 입력 및 출력 솔루션을 Titer.
   1. 대장균 종자 배양500 μL을 사용하여 2YT/tet의 5mL을 접종하고 박테리아가 중간 로그 단계에 될 때까지 200 rpm 궤도 흔들림이 있는 37°C에서 배양한다(_OD600 0.6 - 0.8). 이 소요 약 1 시간.
   2. PBS에서 파지 입력/출력 솔루션을 ^10-3 - ^10-5 로 희석하고 각 희석의 10 μL을 배양 셀의 90 μL에 추가합니다.
      참고: 파지 시간이 지남에 따라 튜브에 흡착하고 변환이 거짓 네거티브를 생성할 수 있기 때문에 희석 된 파지 솔루션을 즉시 사용하십시오.
   3. 200 rpm 궤도 흔들림으로 20 분 동안 37 °C에서 배양하십시오.
   4. 별도의 LB/탄수화물 플레이트에 5 μL 플레이트.
      참고: 도금된 양은 이전 결과/개인 선호도에 따라 변동이 있습니다.

6. 후속 선발 라운드

1. 아래와 같은 3단계와 4단계에서 수행된 준비와 함께 모든 후속 라운드를 수행합니다.
   1. 이전 라운드에서 생성된 입력을 라이브러리 대신 파지 소스로 사용합니다. 이전 라운드에서 획득한 파지 입력의 100 μL을 목표로 단백질 당 4개의 우물을 코팅합니다. 남은 파지 입력을 4°C에 저장합니다.
   2. 각 라운드마다 4.5.1의 세탁 단계를 더욱 엄격하게 만듭니다. 1라운드는 4번, 2라운드는 6번, 3라운드는 8회, 4라운드와 5라운드모두 10번세탁이 필요합니다.
   3. 후속 라운드가 8개가 아닌 4개의 우물만 코팅하기 때문에 1라운드에서 사용되는 것과 비교하여 일부 볼륨을 줄입니다. 예를 들어, 단계 4.5.5만 45 μL 의 10% BSA는 파지 출력에 첨가되고, 파지 출력의 단지 250 μL만 을 사용하여 세포를 접종한다.

7. 포스트 선택 처리 및 파지 격리

1. 4라운드와 5라운드용 입력 및 출력 솔루션을 티터로 합니다.
   1. 5.4 단계에서 아직 완료되지 않은 경우 동일한 단계를 수행하여 4라운드와 5개의 파지 출력을 수행하여 몇 플레이트에 걸쳐 30-300개의 콜로니 범위를 이상적으로 생성합니다.
2. 문화와 분리 파지.
   1. 알리쿼트 450 μL 2YT/탄수화물/M13K07은 96개의 미니 튜브 배양 박스의 모든 튜브에 들어갑니다.
   2. 7.1 단계에서 각 튜브를 접종하는 플레이트중 하나에서 잘 분리된 식민지를 선택합니다.
      참고: 4라운드 출력과 하단 5회 출력에 상자의 위쪽 절반을 사용합니다.
   3. 200 rpm 궤도 흔들림과 37 °C에서 하룻밤 배양.
   4. 원심분리기는 4°C에서 10분 동안 1,200 x g 에서 원심분리기.
   5. 셀 펠릿을 방해하지 않고 새로운 96 미니 튜브 배양 상자에 가능한 한 많은 상체를 전송하고 이전 하나를 폐기. 4 °C에 보관하십시오.
   6. 새 상자에서 각 튜브에서 모든 우물에서 50% 글리세롤의 100 μL을 포함하는 96개의 잘 결합되지 않는 플레이트로 100 μL을 전송합니다. 잘 섞어서 -80°C에서 백업 스톡으로 보관하십시오.

결과

파지 디스플레이에서 생성된 바인더는 여러 가지 방법으로 검증 및 분석할 수 있습니다. 파지미드 라이브러리의 다양한 인서트 측면에 있는 프라이머로 파지를 시퀀싱하는 것이 좋습니다. 이상적인 파지 디스플레이 실험은 여러 시퀀스에 대한 명확한 편향을 표시합니다(그림 1). 다른 시퀀스도 존재하지만 수가 낮을수록 배경 소음으로 더 많이 나타납니다. 제공된 예에서는...

토론

2.1 단계 (단백질 제제)에서 언급했듯이, 다양한 방법으로 단백질 농도를 평가할 수 있으며, 각 방법은 파지 디스플레이에 사용되는 특정 표적 단백질에 기초하여 독특한 이점과 단점을 가질 것이다. 인기 있는 메서드에 대 한 자세한 설명 및 프로토콜의 소스는 이전에 제공 되었습니다¹¹.

후속 라운드에 대한 입력으로 파지 디스플레이의 이전 라운드에 의해 ?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
Axygen Mini Tube System (0.65 mL, sterile, 96/Rack, 10 Racks/pack)	Fisher Scientific	14-222-198	Culturing phage outputs after phage display.
BD Difco Dehydrated Culture Media: LB Broth, Miller (Luria-Bertani)	Fisher Scientific	DF0446-17-3	Preparing plates for titering.
Bovine Serum Albumin (BSA), Fraction V	BioShop Canada	ALB001	Buffer component.
Carbenicillin disodium salt 89.0-100.5% anhydrous	Millipore-Sigma	C1389-5G	Culturing phagemid-infected cells.
Compact Digital Microplate Shaker	Fisher Scientific	11-676-337	Shaking plates during incubation with the phage library.
Corning Microplate Aluminum Sealing Tape	Fisher Scientific	07-200-684	Sealing phage glycerol stocks.
Dehydrated Agar	Fisher Scientific	DF0140-01-0	Preparing plates for titering.
DS-11 Spectrophotometer/Fluorometer	DeNovix	DS-11 FX+	Protein concentration measurement.
Greiner Bio-One CellStar 96-Well, Non-Treated, U-Shaped-Bottom Microplate	Fisher Scientific	7000133	Storing phage glycerol stocks.
Hydrochloric Acid	Fisher Scientific	A144-500	Phage elution.
Invitrogen One Shot OmniMAX 2 T1R Chemically Competent E. coli	Fisher Scientific	C854003	Bacterial strain for phage infection.
Kanamycin Sulfate	Fisher Scientific	AAJ1792406	Culturing M13K07 helper phage-infected cells.
M13KO7 Helper Phage	New England Biolabs	N0315S	Permit phagemid packing and secretion.
MaxQ 4000 Benchtop Orbital Shaker	Fisher Scientific	11-676-076	Bacterial cell culture.
Nunc MaxiSorp 96 well microplate, flat bottom	Life Technologies	44-2404-21	Immobilizing proteins.
Phosphate Buffered Saline (PBS) 10X Solution	Fisher Scientific	BP3994	Buffer component/phage resuspension medium.
Polyester Films for ELISA and Incubation	VWR	60941-120	Covering the microplates during incubation.
Polyethylene Glycol 8000 (PEG)	Fisher Scientific	BP233-1	Phage precipitation.
Sodium chloride	Millipore-Sigma	S3014	Phage precipitation.
Sterile Plastic Culture Tubes: Translucent Polypropylene	Fisher Scientific	14-956-1D	Culturing phage inputs.
Tetracycline Hydrochloride	Fisher Scientific	BP912-100	Culturing E. coli OmniMax cells.
Tris Base	Fisher Scientific	BP1525	Neutralizing eluted phage solution.
Tryptone Powder	Fisher Scientific	BP1421-2	Cell growth media component.
Tween 20	Fisher Scientific	BP337500	Buffer component.
Yeast Extract	Fisher Scientific	BP1422-2	Cell growth media component.