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Method Article
이 프로토콜은 소생을 위해 흉부 압박이 필요하지 않은 질식 심정지의 고유한 마우스 모델을 보여줍니다. 이 모델은 심정지 및 소생술 중 뇌 생리학의 역학을 모니터링하고 이미징하는 데 유용합니다.
대부분의 심정지(CA) 생존자는 다양한 정도의 신경학적 결함을 경험합니다. CA로 인한 뇌 손상을 뒷받침하는 메커니즘을 이해하고 효과적인 치료법을 개발하기 위해서는 실험적 CA 연구가 필수적입니다. 이를 위해 몇 가지 마우스 CA 모델이 설정되었습니다. 이러한 모델의 대부분에서 마우스는 심폐 소생술(CPR)을 위한 흉부 압박을 수행하기 위해 앙와위 자세에 배치됩니다. 그러나 이 소생술 절차는 CA 및 소생술 중 뇌 생리학의 실시간 영상/모니터링을 어렵게 만듭니다. 이러한 중요한 지식을 얻기 위해, 본 프로토콜은 흉부 압박 CPR 단계를 필요로 하지 않는 마우스 질식 CA 모델을 제시한다. 이 모델을 사용하면 CA 이전 기준선에서 초기 CA 후 재관류까지 혈류, 혈관 구조, 전위 및 뇌 조직 산소의 동적 변화를 연구할 수 있습니다. 중요한 것은 이 모델이 늙은 쥐에 적용된다는 것입니다. 따라서 이 마우스 CA 모델은 CA가 뇌 생리학에 미치는 영향을 해독하는 데 중요한 도구가 될 것으로 기대됩니다.
심정지(CA)는 여전히 글로벌 공중보건 위기1. 미국에서만 매년 356,000건 이상의 병원 밖 CA 사례와 290,000건의 병원 내 CA 사례가 보고되고 있으며, 대부분의 CA 피해자는 60세 이상입니다. 특히, CA 후 신경학적 손상은 생존자들 사이에서 흔하며, 이는 CA 관리의 주요 과제입니다 2,3,4,5. CA 이후 뇌 병리학적 변화와 신경학적 결과에 미치는 영향을 이해하기 위해 다양한 신경생리학적 모니터링 및 뇌 조직 모니터링 기법이 환자 6,7,8,9,10,11,12에 적용되었다.
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여기에 설명된 모든 절차는 연구에서 동물의 관리 및 사용에 대한 NIH(National Institutes of Health) 지침에 따라 수행되었으며 프로토콜은 Duke Institute of Animal Care and Use Committee(IACUC)의 승인을 받았습니다. 본 연구에는 생후 8-10주 된 C57BL/6마리의 수컷 및 암컷 마우스가 사용되었습니다.
1. 수술 준비
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CA를 유도하기 위해, 마우스를 1.5% 이소플루란으로 마취하고 100% 질소로 환기시켰다. 이 상태는 45초 만에 심한 서맥으로 이어졌습니다(그림 1). 2분간의 무산소증 후 심박수가 급격히 감소하고(그림 2), 혈압이 20mmHg 미만으로 감소했으며, 뇌 혈류가 완전히 멈췄습니다(그림 1). 이소플루란이 꺼지자 체온이 더 이상 관리되지 않았고 .......
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실험적 CA 연구에서는 질식, 염화칼륨 주사 또는 전류 유래 심실세동을 사용하여 CA 16,17,18,19,20,21,22,23을 유도했습니다. 일반적으로 CPR은 이러한 CA 모델, 특히 마우스에서 소생술에 필요합니다. 우.......
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저자는 이해 상충이 없습니다.
저자들은 Kathy Gage의 편집 지원에 감사를 표합니다. 이 연구는 마취과(듀크 대학 의료 센터), 미국 심장 협회 보조금(18CSA34080277) 및 미국 국립보건원(NIH) 보조금(NS099590, HL157354, NS117973 및 NS127163)의 자금으로 지원되었습니다.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Adrenalin | Par Pharmaceutical | NDC 42023-159-01 | |
Alcohol swabs | BD | 326895 | |
Animal Bio Amp | ADInstruments | FE232 | |
BP transducer | ADInstruments | MLT0699 | |
Bridge Amp | ADInstruments | FE117 | |
Heparin sodium injection, USP | Fresenius Kabi | NDC 63323-540-05 | |
Isoflurane | Covetrus | NDC 11695-6777-2 | |
Laser Doppler perfusion monitor | Moor Instruments | moorVMS-LDF1 | |
Laser speckle imaging system | RWD | RFLSI III | |
Lubricant eye ointment | Bausch + Lomb | 339081 | |
Micro clip | Roboz | RS-5431 | |
Mouse rectal probe | Physitemp | RET-3 | |
Needle electrode | ADInstruments | MLA1213 | 29 Ga, 1.5 mm socket |
Nitrogen | Airgas | UN1066 | |
Optic plastic fibre | Moor Instruments | POF500 | |
Otoscope | Welchallyn | 728 | 2.5 mm Speculum |
Oxygen | Airgas | UN1072 | |
PE-10 tubing | BD | 427401 | Polyethylene tubing |
Povidone-iodine | CVS | 955338 | |
PowerLab 8/35 | ADInstruments | ||
Rimadyl (carprofen) | Zoetis | 6100701 | Injectable 50 mg/ml |
Small animal ventilator | Kent Scientific | RoVent Jr. | |
Temperature controller | Physitemp | TCAT-2DF | |
Triple antibioric & pain relief | CVS | NDC 59770-823-56 | |
Vaporizer | RWD | R583S | |
0.25% bupivacaine | Hospira | NDC 0409-1159-18 | |
0.9% sodium chroride | ICU Medical | NDC 0990-7983-03 | |
1 mL plastic syringe | BD | 309659 | |
4-0 silk suture | Look | SP116 | Black braided silk |
6-0 nylon suture | Ethilon | 1698G | |
8.4% sodium bicarbonate Inj., USP | Hospira | NDC 0409-6625-02 | |
20 G IV catheter | BD | 381534 | 20GA 1.6 IN |
30 G PrecisionGlide needle | BD | 305106 | 30 G X 1/2 |
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