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요약

마우스 모델의 눈물에서 RNA 및 단백질 바이오마커를 식별하는 것은 다양한 질병의 조기 진단에 큰 가능성을 제공합니다. 이 원고는 mRNA의 효능과 효율성을 최적화하고 마우스 눈물에서 단백질을 분리하기 위한 포괄적인 프로토콜을 제공합니다.

초록

눈물막은 안구 표면뿐만 아니라 다른 조직과 장기에서도 병리학 관련 분자 변화를 반영할 수 있는 매우 역동적인 생체 유체입니다. 이 생체 유체의 분자 분석은 질병을 진단 또는 모니터링하고, 의학적 치료 효능을 평가하고, 가능한 바이오마커를 식별하는 비침습적 방법을 제공합니다. 시료의 양이 제한되어 있기 때문에 눈물 시료를 채취하려면 높은 품질과 최대 효율성을 보장하기 위해 특정 기술과 적절한 도구가 필요합니다. 인간을 대상으로 한 연구에서 다양한 눈물 채취 방법이 설명되었습니다. 이 기사에서는 실험 동물 모델, 특히 마우스에서 눈물 관련 단백질 정보를 추출하기 위해 특별히 맞춤화된 최적화된 프로토콜에 대한 포괄적인 설명을 제공합니다. 이 방법에는 2개월 된 마우스의 눈물 생성에 대한 약리학적 자극, Schirmer 스트립을 사용한 샘플 수집, 표준 절차, SDS-PAGE, qPCR 및 디지털 PCR(dPCR)을 통한 프로토콜의 효능 및 효율성 평가가 포함됩니다. 이 프로토콜은 다양한 실험 패러다임에서 눈물 단백질 시그니처 연구에 쉽게 적용할 수 있습니다. 동물 모델을 위한 저렴하고 표준화되고 최적화된 눈물 샘플링 프로토콜을 수립함으로써 인간과 동물 연구 간의 격차를 해소하고 중개 연구를 촉진하며 안구 및 전신 질환 연구 분야의 발전을 가속화하는 것이 목표였습니다.

서문

눈물은 혈장 초여과물로 간주되며, 혈장 혈청과 뇌척수액이 공유하는 생체 분자에서 상당한 중복이 있기 때문에 혈장 혈청과 뇌척수액 사이의 중간 유체로 설명되기도 합니다1. 인간의 눈물에는 단백질, 눈물 지질, 대사 산물 및 전해질이 포함되어 있는 것으로 보고되었습니다2. 최근에는 mRNA, miRNA 및 세포외 소포체와 같은 다른 생체 분자도 확인되었습니다 3,4,5,6,7.

인간의 경우 기저 눈물은 3 개의 층으로 구성된 눈물막에 위치하고 있습니다 : 외부 지질층은 눈물 표면을 매끄럽게 유지하여 우리가 그것을 통해 볼 수 있도록하고 눈물 증발을 방지합니다. 눈을 촉촉하게 유지하고, 박테리아를 격퇴하고, 각막을 보호하고, 눈물막의 90%를 구성하는 중간 수성층. 마지막으로 점액층(mucin-layer)은 각막과 접촉하여 눈물이 눈에 부착될 수 있도록 하는 고분자량 단백질군의 일종이다8. 안구 표면을 가로지르는 눈물 분포는 눈물샘에서 분비되는 것으로 시작됩니다. 그런 다음 이 액체는 누관을 통해 안내되어 눈 표면을 통과하여 배액 채널로 흐릅니다. 눈을 깜빡일 때마다 눈물이 눈 전체에 고르게 분산되어 촉촉한 상태를 유지할 수 있다9.

눈물막은 안구 표면뿐만 아니라 다른 조직과 장기에서도 발생하는 분자 변화를 반영할 수 있는 매우 역동적인 생체 유체입니다. 이 생체 유체의 차등 발현 분석은 인간 질병에서 바이오마커를 발견하기 위한 유망한 접근 방식을 나타냅니다10,11. 다양한 병리학에서 조기 진단을 위한 바이오마커의 원천으로 눈물막을 활용하는 것은 비침습적 수집 방법의 존재에 의해 크게 촉진되었습니다. 인간 및 동물 병원에서 눈물을 채취하는 가장 일반적인 방법은 모세관 작용의 원리에 따라 작동하는 막 기반 지지체(Schirmer's strip)와 관련이 있으며, 이는 눈물의 물이 피험자의 하부 결막낭에 배치된 종이 테스트 스트립 또는 모세관의 길이를 따라 이동할 수 있도록 합니다 12,13,14. 이 방법을 통해 소량의 시료를 얻는 내재적 한계에도 불구하고, 다양한 민감한 기술을 사용한 눈물 조성의 생화학적 분석은 잠재적인 생체지표 분자의 식별을 용이하게 했습니다11,15. 인간 환자에서 Schirmer 스트립 및 모세혈관의 눈물 단백질 용리를 최적화하고 평가하기 위한 프로토콜은 잘 문서화되어 있습니다16,17. 그러나 실험 동물 모델에서 눈물과 관련된 분자 정보를 추출하도록 특별히 설계된 최적화된 프로토콜에 대한 완전한 설명은 제공되지만 드뭅니다. 눈물샘(18)의 직접적인 자극을 통한 눈물 유도와 같은 기존의 방법은, 더 큰 부피의 수집을 허용하면서도, 침습적이며 동물에게 불편을 야기할 수 있다. 안구 표면에서 눈물을 수집하는 것과 같은 비침습적 방법은 DNA와 miRNA를 분리하는 방법으로 설명되었습니다19,21.

이 프로토콜은 마우스의 눈물을 수집하고 처리하기 위한 비용 효율적이고 최적화된 방법을 확립하는 것을 목표로 합니다. 이 방법은 SDS-PAGE, qPCR 및 dPCR과 같은 기술을 통해 분자 분석에 적합한 충분한 눈물 부피를 얻으면서 비침습성을 우선시합니다. 추출된 단백질 및 mRNA 함량 정보는 기존 질병 실험 모델에서 잠재적인 바이오마커를 식별하는 데 활용될 수 있습니다.

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프로토콜

여기에 설명된 모든 절차는 Cinvestav의 동물 윤리 위원회(CICUAL, # 0354/23)의 승인을 받았습니다. 실험용 동물은 저널의 동물 사용 지침과 ARVO(Association for Research in Vision and Ophthalmology)의 안과 및 시력 연구에서의 동물 사용에 대한 성명서에 따라 엄격하게 처리 및 취급되었습니다. 시술 전후의 안구 건강은 안구 분비물, 눈꺼풀 부종, 안구 이상 및 행동 변화를 평가하여 평가되었습니다.

1. 동물 및 시약 준비

  1. 절차를 위해 복제당 3마리의 2개월 된 C57BL/6 수컷 마우스를 사용하며 시작 체중은 ~25g입니다(그림 1). 각 마우스를 개별적으로 처리하고 가열 패드에 올려 따뜻함을 유지합니다.
  2. 눈물 분비를 유도하기 위해 멸균수를 사용하여 20mg/mL의 필로카르핀 원액을 준비합니다.
  3. Schirmer의 테스트 스트립을 5mm 길이로 자르고 노치에서 각 스트립을 90° 각도로 구부립니다.
  4. 프로테아제 억제제와 함께 250μL의 멸균수를 준비합니다(제조업체 지침에 따라 50mL당 1정).

2. 눈물 생성 자극 및 수집

  1. 적절한 치료 복용량을 계산하기 위해 각 마우스의 무게를 개별적으로 측정합니다.
  2. 눈물 생성을 자극하려면 6mm 인슐린 주사기로 복강 내 30mg/kg의 필로카르핀을 투여합니다(그림 1B). 약물 주입 후 2분이 지나면 효과가 나타날 때까지 기다립니다.
    참고: 자극을 받지 않은 동물의 데이터는 눈물액의 가용성이 제한되어 있기 때문에 얻을 수 없습니다.
  3. 핀셋으로 각 Schirmer 스트립 조각의 끝을 아래 눈꺼풀 중앙에 놓고 찢어짐이 스트립 한계에 도달할 때까지 제자리에 유지하여 눈물을 수집합니다(그림 1C). 그런 다음 스트립을 교체하십시오. 채취를 위해 스트립 사이에 2분 간격으로 각 눈에 2개의 Schirmer 스트립을 순차적으로 배치합니다. 눈물 채취 과정에는 마우스당 10분 동안 약 4개의 스트립 조각이 필요합니다.
  4. 구성 요소의 성능 저하를 방지하기 위해 Schirmer 스트립 조각을 멸균 튜브에 넣고 얼음 위에 놓습니다. 수집이 완료되는 즉시 찢어짐 처리를 시작합니다.

3. 단백질 분리

  1. 앞서 표시된 대로 프로테아제 억제제와 원심분리기를 사용하여 20μL의 멸균수가 들어 있는 600μL 미세 원심분리기 튜브에 스트립 단편을 넣고 4°C에서 600 x g에서 1시간 동안 떨어뜨립니다(그림 1D).
  2. 샘플이 들어있는 600μL 튜브 끝에 7.5cm 스테인리스 스틸 주입기 바늘을 사용하여 구멍을 뚫습니다(그림 1E). 그런 다음 이 구멍이 뚫린 튜브를 멸균된 새 1.5mL 튜브로 옮기고 이전에 보고된대로 17과 같이 4°C에서 10분 동안 12,000 x g에서 샘플을 원심분리하여 희석된 눈물의 부피를 회수합니다. 눈물막의 부피(상층액)는 튜브의 바닥에 있습니다.
  3. 모든 샘플에서 회수된 상층액을 결합하여 단백질 풀을 만듭니다. 이 실험에서는 약 200μL의 총 부피를 얻었습니다.
    알림: 찢어짐 생성은 1시간 이상 지속될 수 있습니다. 이 기간 동안에도 눈물이 고일 수 있습니다.
  4. Bradford 표준 방법22를 사용하여 눈물 풀의 총 단백질 함량을 정량화합니다.

4. SDS-PAGE 분석

  1. 단백질 샘플을 99°C에서 4분 동안 가열하여 단백질을 변성시킵니다. 구성 요소를 혼합하기 위해 샘플을 잠시 소용돌이칩니다.
  2. 각 샘플에서 정량화된 단백질 함량 30μg을 10% SDS-PAGE 겔(표 1)에 로드하고 표준 방법23을 사용하여 90V에서 2시간 동안 샘플을 실행합니다.
  3. 전기영동 후 겔을 염색 용액(표 1)으로 덮고 30분 동안 배양하여 단백질을 염색합니다.
  4. 배경이 투명해지고 단백질 띠가 보일 때까지 탈색 용액으로 젤을 여러 번 헹굽니다.
  5. 겔 문서화 시스템으로 이미지를 획득합니다.

5. qPCR 및 디지털 PCR을 위한 mRNA 분리

  1. 20μL의 멸균수가 들어 있는 600μL 미세 원심분리기 튜브에 스트립을 넣습니다. 샘플이 들어있는 튜브의 끝에 구멍을 뚫고 멸균된 새로운 1.5mL 튜브에 넣고 이전에 human tears3에서 보고된 대로 4°C에서 2,000 x g에서 20분 동안 원심분리합니다(그림 1E-H).
  2. 모든 샘플에서 풀을 만듭니다. 이 실험에서 회수된 부피는 각 마우스에 대해 약 22μL의 상층액, 즉 총 부피의 66μL였습니다. 생체 분자 분해를 방지하기 위해 튜브를 드라이 아이스 위에 놓습니다.
  3. 페놀 및 구아니디늄 이소티오시아네이트(상업적으로 획득)의 단상 용액 200μL를 추가하고 피펫팅으로 균질화합니다. 실온에서 5분 동안 그대로 두십시오. 이 단계에서 샘플은 -20°C에서 몇 주 동안 또는 -70°C에서 몇 달 동안 보관할 수 있습니다.
  4. 클로로포름 40μL를 넣고 15초 동안 소용돌이에서 섞습니다. 실온에서 2분 동안 그대로 두십시오. 10,000 x g 에서 4°C에서 15분 동안 원심분리합니다.
  5. 수성상(간기를 취하지 않고)을 새 1.5mL 튜브로 조심스럽게 옮깁니다.
  6. 0.5μL의 글리코겐(0.05μg/μL)을 100μL의 이소프로판올에 넣고 피펫팅으로 혼합합니다. 글리코겐은 RNA와 함께 침전되며 후속 단계를 방해하지 않습니다.
  7. -20 °C에서 10분 동안 그대로 두십시오. 10,000 x g 에서 4 °C에서 10분 동안 원심분리합니다. 상층액을 빠르게 디캔팅합니다.
  8. 200μL의 차가운 75% 에탄올을 첨가하고 볼텍싱으로 RNA 펠릿을 재현탁시킵니다. 8,000 x g 에서 4 °C에서 5분 동안 원심분리기.
  9. 에탄올을 디캔팅합니다. 튜브를 뒤집지 않고 20-30분 동안 자연 건조시키십시오. RNase가 없는 물 20μL를 넣고 재현탁합니다.
  10. RNA의 순도를 평가하기 위해 260 nm 및 280 nm에서 마이크로볼륨 분광 광도계에서 광학 밀도를 판독합니다. 샘플은 얼음 위에 있어야 합니다.
    참고: 리보솜 밴드 28S 및 18S는 샘플의 특성으로 인해 아가로스 겔을 사용하여 관찰할 수 없습니다. miRNA 또는 mRNA와 같은 다른 RNA의 존재는 이전에 표시된 바와 같이 바이오분석기를 사용하여 분석할 수 있습니다18.
  11. 제조업체의 프로토콜에 따라 상용 키트를 사용하여 눈물 RNA에서 cDNA를 합성합니다.
    1. 10 ng-5000 ng 범위의 입력 RNA로 시작하십시오. 사용된 키트에 따라 1μL의 Oligo(dT) 및 최대 12μL의 RNase-free 물과 혼합합니다. 500 x g 에서 30초 동안 회전시키고 65°C에서 5분 동안 배양합니다.
    2. 혼합 튜브에 4μL의 5x 반응 완충액, 1μL의 RNase 억제제, 2μL의 dNTP 혼합물 및 1μL의 역전사 효소를 추가합니다.
    3. 튜브를 500 x g 에서 30초 동안 돌려 혼합물을 아래로 당깁니다. 그런 다음 42°C에서 60분 동안 튜브를 배양합니다. 튜브를 70°C에서 10분 동안 배양하여 반응을 마칩니다.
  12. 눈물 내 mRNA 농도가 낮기 때문에 qPCR24에는 희석되지 않은 cDNA를 사용하는 것이 권장됩니다. 이 실험을 위해 150ng의 cDNA가 사용되었습니다. DNMT3a 프라이머를 사용하여 qPCR을 수행합니다.
    앞으로: GCCGAATTGTGTCTTGGTGGATGACA, 역방향: CCTGGTGGAATGCACTGCAGAAGGA 및 GAPDH 프라이머:
    앞으로: ACTGGCATGGCCTTCCGTGTTCTTA, 역방향: TCAGTGTAGCCCAAGATGCCCTTC 제조업체 및 장비 절차의 지침을 따릅니다.
    1. qPCR 주기의 경우 다음 프로그램을 사용하십시오: 초기 변성: 10분 동안 95°C, 95°C - 15초, 60°C- 30초 및 72°C-30초의 45주기 후 72°C에서 5분 동안 최종 확장으로 끝납니다.
    2. 용융 곡선 분석을 수행하여 반응에서 프라이머 이량체 또는 비특이적 앰플리콘의 존재를 평가합니다. 온도 램프는 50°C에서 시작하여 최종 99°C까지 진행되었으며, 첫 번째 단계의 경우 초기 유지는 90초, 각 단계 사이에는 5초의 유지가 있었습니다.
    3. dPCR25의 경우 연속 희석을 수행하여 관심 mRNA를 검출하는 데 필요한 cDNA의 양을 최적화합니다. 이 실험에서는 뉴클레아제가 없는 물에 희석된 cDNA를 150ng, 75ng, 37.5ng 및 18.75ng로 사용합니다. 앞서 언급한 DNMT3a 용 프라이머를 사용하였다. dPCR 주기를 위해, 뒤에 오는 프로그램을 사용하십시오: 처음 변성: 95 °C 2 분 동안 95 °C와 60 °C- 30 초의 40 주기에 뒤행됩니다.

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결과

이 논문에 설명된 프로토콜은 대부분의 분자 생물학 실험실에서 일반적으로 사용할 수 있는 기술을 사용하여 눈물액에서 분자 정보를 얻는 쉽고 저렴한 방법을 제공합니다. 또한 효소 활성 검출을 위한 ELISA와 같은 고감도 기술을 사용하여 프로토콜을 확장할 수 있습니다.

이러한 절차 후 총 단백질 수율은 약 3-4 μg/μL였습니다. 총 단백질 추출물에 대한 Coomassie-stained SDS 페이?...

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토론

눈물액은 쉽게 접근할 수 있으며, 눈물의 바이오마커 측정은 다양한 인간 질병의 조기 진단을 위한 성공적인 보완 기술로 사용될 수 있습니다27. 실험 동물 모델에서 눈물 조성에 대한 생화학적 분석은 이러한 접근 방식을 보완하고 질병의 분자적 기초를 이해하는 데 상당한 진전을 약속하지만, 사용 가능한 데이터와 프로토콜이 부족하여 이를 개발하게 되었습니다. 이 보고서에...

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공개

저자는 이해 상충이 없음을 선언합니다.

감사의 말

이 연구는 VELUX STIFTUNG [프로젝트 1852]의 지원을 받아 M.L.에 지원되었으며, CONAHCYT에서 M.B.(836810), E.J.M.C.(802436) 및 A.M.F(CVU 1317418)에 대학원 펠로우십 보조금을 지원했습니다. 활발한 토론에 기여해 주신 연구소, Centro de Investigación sobre el Envejecimiento 및 Departamento de Farmacobiología (Cinvestav)의 모든 구성원에게 진심으로 감사드립니다.

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자료

NameCompanyCatalog NumberComments
2-mercaptoethanolGibco1985023
2x Laemmli bufferBio-Rad16-0737
Acetic AcidQuimica Meyer64-19-7
AcrylamideSigma-AldrichA4058
Bradford ReagentSigma-AldrichB6916
ChloroformSigma-Aldrich1003045143
Coomassie Blue R 250US Biological6104-59-2
EthanolQuimica Rique64-17-5
GeneRuler 1kb plus DNA LadderThermofisher scientificSM1331
GlycerolUS BiologicalG8145
GlycineSANTA CRUZSC- 29096
GlycogenRoche10901393001
HClQuimica Rique7647-01-0
Isopropyl alcoholQuimica Rique67-63-0
MethanolQuimica Meyer67-56-1
Micro tubes 1.5 mlAxygenMCT-150-C
Micro tubes 600 µlAxygenMCT-060-C
NaClSigma-AldrichS3014
PCR tubes & stripsNovasbioPCR 0104
PilocarpineSigma-AldrichP6503-10g
Protease inhibitorRoche11873580001
QIAcuity EvaGreen PCR Kit (5mL)Qiagen250112
QIAcuity Nanoplate 26k 24-well (10)Qiagen250001
Real qPlus 2x Master Mix GreenAmpliqonA323402
RevertAid First Strad cDNA Synthesis KitThermofisher scientificK1622
Schirmer's test stripsLaboratorio SantgarSANT1553
SDSSigma-AldrichL3771
TEMEDSigma aldrich102560430
TRI reagentSigma-AldrichT9424-200MLmonophasic solution of phenol and guanidinium isothiocyanate
TrisUS BiologicalT8650
Tris baseChem Cruzsc-3715A

참고문헌

  1. Ravishankar, P., Daily, A. Tears as the next diagnostic biofluid: A comparative study between ocular fluid and blood. Appl Sci. 12 (6), 2884(2022).
  2. Masoudi, S. Biochemistry of human tear film: A review. Exp Eye Res. 220, 109101(2022).
  3. Dara, M., et al. Novel RNA extraction method from human tears. Mol Biol Res Commun. 11 (4), 167-172 (2022).
  4. Amorim, M., et al. Putative biomarkers in tears for diabetic retinopathy diagnosis. Front Med (Lausanne). 9, 873483(2022).
  5. Arslan, M. A., et al. Expanded biochemical analyses of human tear fluid: Polyvalent faces of the Schirmer strip. Exp Eye Res. 237, 109679(2023).
  6. Liu, R., et al. Analysis of th17-associated cytokines and clinical correlations in patients with dry eye disease. PloS one. 12 (4), e0173301(2017).
  7. Cross, T., et al. Rna profiles of tear fluid extracellular vesicles in patients with dry eye-related symptoms. Int J Mol Sci. 24 (20), 15390(2023).
  8. Paranjpe, V., Phung, L., Galor, A. The tear film: Anatomy and physiology. Ocular Fluid Dyn: Anat, Physiol, Imaging Tech, and Math Model. , 329-345 (2019).
  9. Jung, J. H., et al. Proteomic analysis of human lacrimal and tear fluid in dry eye disease. Sci Rep. 7 (1), 13363(2017).
  10. Di Zazzo, A., Micera, A., De Piano, M., Cortes, M., Bonini, S. Tears and ocular surface disorders: Usefulness of biomarkers. J Cell Physiol. 234 (7), 9982-9993 (2019).
  11. Von Thun Und Hohenstein-Blaul, N., Funke, S., Grus, F. H. Tears as a source of biomarkers for ocular and systemic diseases. Exp Eye Res. 117, 126-137 (2013).
  12. Pieczynski, J., Szulc, U., Harazna, J., Szulc, A., Kiewisz, J. Tear fluid collection methods: Review of current techniques. Eur J Ophthalmol. 31 (5), 2245-2251 (2021).
  13. Shiraki, T., Shigeta, M., Tahara, N., Furukawa, H., Ohtsuka, H. A tear production assessment by using Schirmer tear test strips in mice, rats and dogs. Animal Eye Res. 24 (1-2), 1-5 (2005).
  14. Zhao, J., Nagasaki, T. Lacrimal gland as the major source of mouse tear factors that are cytotoxic to corneal keratocytes. Exp Eye Res. 77 (3), 297-304 (2003).
  15. Khanna, R. K., et al. Metabolomics and lipidomics approaches in human tears: A systematic review. Surv Ophthalmol. 67 (4), 1229-1243 (2022).
  16. Bachhuber, F., Huss, A., Senel, M., Tumani, H. Diagnostic biomarkers in tear fluid: From sampling to preanalytical processing. Sci Rep. 11 (1), 10064(2021).
  17. Koduri, M. A., et al. Optimization and evaluation of tear protein elution from Schirmer's strips in dry eye disease. Indian J Ophthalmol. 71 (4), 1413-1419 (2023).
  18. Kakan, S. S., et al. Tear miRNAs identified in a murine model of sjogren's syndrome as potential diagnostic biomarkers and indicators of disease mechanism. Front Immunol. 13, 833254(2022).
  19. Moore, M., Ma, T., Yang, B., Verkman, A. Tear secretion by lacrimal glands in transgenic mice lacking water channels aqp1, aqp3, aqp4 and aqp5. Exp Eye Res. 70 (5), 557-562 (2000).
  20. Balafas, E., et al. A noninvasive ocular (tear) sampling method for genetic ascertainment of transgenic mice and research ethics innovation. OMICS. 23 (6), 312-317 (2019).
  21. Nakagawa, A., Nakajima, T., Azuma, M. Tear miRNA expression analysis reveals mir-203 as a potential regulator of corneal epithelial cells. BMC Ophthalmol. 21 (1), 377(2021).
  22. Bradford, M. M. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem. 72, 248-254 (1976).
  23. Sambrook, J., Fritsch, E. F., Maniatis, T. Molecular cloning: A laboratory manual. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. (1989).
  24. RealQPlus2x Master Mix Green without ROX. Ampliqon. , Available from: https://ampliqon.com/en/pcr-enzymes/pcr-enzymes/real-time-pcr/realq-plus-2x-master-mix-green (2023).
  25. Qiagen. Quick-Start Protocol QIAcuity EG PCR Kit. Qiagen. , (2023).
  26. Anier, K., Malinovskaja, K., Aonurm-Helm, A., Zharkovsky, A., Kalda, A. DNA methylation regulates cocaine-induced behavioral sensitization in mice. Neuropsychopharmacology. 35 (12), 2450-2461 (2010).
  27. Hagan, S., Martin, E., Enriquez-De-Salamanca, A. Tear fluid biomarkers in ocular and systemic disease: Potential use for predictive, preventive, and personalized medicine. EPMA J. 7 (1), 15(2016).
  28. Gasparini, M. S., et al. Identification of sars-cov-2 on the ocular surface in a cohort of covid-19 patients from Brazil. Exp Biol Med. 246 (23), Maywood. 2495-2501 (2021).
  29. Sebbag, L., Harrington, D. M., Mochel, J. P. Tear fluid collection in dogs and cats using ophthalmic sponges. Vet Ophthalmol. 21, 249-254 (2018).
  30. Abusharha, A. A., et al. Analysis of basal and reflex human tear osmolarity in normal subjects: assessment of tear osmolarity. Ther Adv Ophthal. 10, 2515841418794886(2018).
  31. Fullard, R. J., Snyder, C. Protein levels in nonstimulated and stimulated tears of normal human subjects. Inves Opht Vis Sci. 31 (6), 1119-1126 (1990).
  32. Longwell, A., Birss, S., Keller, N., Moore, D. Effect of topically applied pilocarpine on tear film pH. J Pharm Sci. 65 (11), 1654-1657 (1976).
  33. Dartt, D. A. Neural regulation of lacrimal gland secretory processes: relevance in dry eye diseases. Prog Ret Eye Res. 28 (3), 155-177 (2009).

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