시작하려면 원심분리를 통해 약물 처리된 PBMC를 수확하고 PCR 플레이트에서 세포 용해물을 수집합니다. 플레이트를 원심분리하여 바닥의 용해물을 수집합니다. 다음으로, thermocycler를 사용하여 mRNA 변성을 수행합니다.
그런 다음 각 웰에 6마이크로리터의 역전사 효소 반응 혼합물을 추가하여 총 부피 12마이크로리터를 얻습니다. 오염을 방지하고 증발을 방지하기 위해 플레이트를 밀봉하십시오. 플레이트를 잠깐 소용돌이친 후 원심분리합니다.
플레이트를 thermocycler에 놓고 역전사 반응 프로그램을 시작합니다. 역전사 후 PCR 플레이트를 원심분리하고 15마이크로리터의 사전 증폭 혼합물을 각 웰에 추가하고 밀봉합니다. 밀봉된 플레이트를 thermocycler에 놓고 사전 증폭 반응을 시작합니다.
cDNA를 세척하기 위해 각 웰에 자기 정제 비드를 추가하고 실온에서 5분 동안 배양합니다. PCR 플레이트를 마그네틱 랙에 5분 동안 또는 비드가 분리될 때까지 놓습니다. 그런 다음 상층액을 조심스럽게 제거하십시오.
마그네틱 랙에 플레이트를 유지하면서 갓 준비한 100 % 에탄올 80 마이크로 리터를 부드럽게 도입하여 비드를 정화합니다. 30초 배양 후 피펫을 사용하여 상층액을 제거합니다. 마그네틱 랙에서 5분 동안 또는 에탄올이 완전히 증발하고 비드가 더 이상 반짝이지 않을 때까지 비드를 자연 건조시킵니다.
마그네틱 랙에서 플레이트를 제거한 후 20마이크로리터의 뉴클레아제가 없는 물에 비드를 다시 현탁합니다. 비드가 분리될 때까지 마그네틱 랙에 플레이트를 재배치합니다. 용출액을 cDNA 품질 관리 및 태깅을 위해 준비된 새로운 PCR 플레이트로 옮깁니다.
태그 지정의 경우, 각 반응에 대해 3 마이크로 리터의 태그 혼합물을 새 PCR 플레이트에 첨가합니다. 모든 반응에 1마이크로리터의 cDNA를 첨가하십시오. 태그 부착 반응을 즉시 시작하십시오.
그런 다음 각 반응에 1마이크로리터의 중화된 태그 완충액을 첨가하여 반응을 중화시킵니다. 농축 PCR의 경우 각 반응에 9마이크로리터의 농축 PCR 혼합물을 첨가하여 총 부피 14마이크로리터를 달성합니다. 농축 PCR 프로그램을 시작합니다.