저자는 공 초점 현미경 연구와 함께 그녀의 귀중한 도움 박사 에디스 수스 - 토비 감사합니다. 본 연구는 KAMEA 프로그램 (LD 및 AP)의 틀에서 이민 흡수의 교육부와 기획위원회 및 고등 교육에 대한위원회의 예산에 의해 지원되었다. 우리는 또한 감사 연구 레이디 데이비스 재단 포스트 박사 연구 활동에서 연구원 (OR)의 지원을 인정합니다.

이 프로토콜은 헬싱키 선언에 따라 로컬 인권위원회의 승인을, 모든 참가자는 동의서에 서명했다. 1. 호중구의 분리 및 문화에 Gφ 개발 참고 : 모든 단계가 바이오 안전 층류 후드에서 무균 조직 학년 lipopolysaccaride (LPS) - 무료 솔루션을 사용하여 수행해야합니다. 로스웰 공원 기념 연구소 (RPMI) -1640 매체에 항생제, 사이토 카인이나 성장 인자를 추가하지 마십시오. <ol><li> 멸균 두피 정맥 세트를 사용하여 젊은 건강한 성인에서 적어도 40 ml의에게 정맥 혈액을 얻습니다. 에틸렌 디아민 테트라 아세트산 K 3 염을 함유 vacutainer 튜브 (K 3 EDTA)에 혈액을 그리고 부드럽게 섞는다. 실온에서 혈액을 유지. </li><li> 1.119과 1.077 g / ㎖에서 polysucrose을 사용하여 두 단계 불연속 밀도 기울기에 의한 호중구를 분리합니다. 사용하기 전에 실온에 솔루션을 제공. 참고 : 원심 분리 동안, 적혈구세포 (적혈구)가 빠르게 polysucrose 및 퇴적물에 의해 집계됩니다. 호중구가 polysucrose -1,077 / 1119 인터페이스 (그림 2 참조)에서 바로 적혈구 위에서 발견되는 반면, 단핵 세포 (단핵구 / 림프구)가 상부 플라즈마 사이에 발견 / -1,077 인터페이스를 polysucrose. 이 방법은 동일인으로부터 단핵구 및 호중구의 동시 분리를 허용한다. </li></ol><img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig2.jpg" /> 그림 2 : 인간 전혈에서 호중구 격리입니다. 1.077 g에 Polysucrose은 / ㎖ 신중 불연속 구배를 형성 polysucrose - 1.119 g / ㎖의 상부에 적층된다. 희석 된 전혈이어서 polysucrose-1.077의 상부에 적층된다. 튜브없이 즉시 제동을 실온에서 30 분 동안 700 × g으로 원심 분리를 실시한다. 세 가지 밴드가 주목된다. (A) 단핵 세포, (B) 다형 핵 세포 (PMN),상기 튜브의 하단 및 (C), 적혈구 (RBC). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <ol style="margin-left: 40px;"><li> 50 ㎖의 멸균 폴리 프로필렌 원뿔 원심 분리기 튜브의 바닥에 12 ml의 polysucrose-1119을 추가합니다. </li><li> 조심스럽게 polysucrose -1119에 polysucrose-1077의 12 ml의 레이어. </li><li> 2 % 열 비활성화 우태 혈청 (HI-FCS)을 함유하는 이온없는 인산염 완충 식염수 24 mL의 혈액을 최종 부피 (PBS)로 12 ml의 전혈 - 10 희석. 조심스럽게 튜브의 상부 구배로 희석 된 전혈에 24 ml의 층을 포함한다. </li><li> 브레이크없이 - (24 ° C를 20) 실온에서 30 분 동안 700 XG에 원심 분리기. 참고 : 낮은 온도에서 원심 분리 세포 응집와 가난한 복구 될 수 있습니다. </li><li> 조심스럽게 원심 분리기에서 튜브를 제거 without은 그라데이션을 방해. 두 불투명 층이 관찰되어야한다 (A : 단핵 세포와 B : PMN,도 2에 도시). </li><li> 튜브는 &quot;단핵을&quot;표시에 대기음이 층에서 층 A. 전송 (또는 폐기) 위 0.5 cm 세포에 유체를 위로 버리고. </li><li> 대기음은 &quot;PMN&quot;이라는 관이 계층에서 세포를 전송 계층 B. 위의 0.5 cm에 남아있는 유체를 위로 버리고. </li><li> 풀 각이 그라데이션 튜브에서 PMN 및 PBS 30 ML의 최종 볼륨에 2 % HI-FCS를 포함 씻어. 200 XG에서 12 분 동안 원심 분리기 뜨는을 제거하고 폐기합니다. </li><li> 부드럽게 1 ㎖의 멸균 피펫 팁으로하고 인출하여 펠렛을 재현 탁 동안 적혈구 (RBC)를 오염 제거하려면, 저장성 0.2 % 냉담한 멸균 염화나트륨의 3 ㎖를 추가합니다. 30 초 동안 얼음에 보관하십시오. </li><li> 30 초 후, 튜브에 멸균 1.6 %의 냉담한 염화나트륨의 3 ㎖를 추가하여 등장을 복원 할 수 있습니다. </li><li> 등장 성 식염수의 6 ml의에, 6m를 추가미리 예열 (37 °에 C)의 리터 RPMI-1640 배지는 12 분 동안 250 XG에 2 % HI-FCS와 원심 분리기로 보충. 상층 액을 버린다. PMN 펠릿은 RBC 오염 청소해야합니다. 참고 : RBC에 의해 오염 된 경우, PMN 펠렛은 붉은 나타납니다. </li><li> 일부 오염 RBC가 남아있는 경우, 반복 9, 10 번 단계를 반복합니다. </li><li> 10 % HI-FCS로 보충 4 ml의 RPMI-1640 세포 펠렛을 재현 탁하고 트리 판 블루 배제함으로써 농도 및 생존력을 결정하는 세포를 카운트. </li><li> 1.25 농도 조정 - 1.5 × 10 6 PMN / ㎖ (실험 필요에 따라), 1.0 mL의 / 웰에서 24 웰 플레이트를 접시. 참고 : 월 Grunewald는-김사 염색하고 광학 현미경에 의해 평가로 과립구 인구에서 호중구의 순도는 항상 95 %를 초과했다. </li><li> 시딩 한 후, 세포에 배치 37 ° C에서 가습 5 % CO 2 배양기. </li><li> 부드럽게의 절반을 흡입하여 3 일마다 중간 교체배지 및 10 % HI-FCS로 보충 된 신선한 RPMI-1640 배지의 동일한 양을 첨가. HI-FCS에 사용 LPS 무료 솔루션 및 화합물과 낮은 LPS 수준 (0.05 NG / ㎖ 이하). 참고 : 문화 개발하는 Gφ가 단단히 또한 개발 세포를 씻어 수있는 배양 접시와 활발한 세척에 연결하지 않기 때문에 부드러운 매체 변화가 필수적이다. 혈액 기증자에 따라 PMN 배양 후 4 일 - Gφ의 모양은 3에서 눈에 띈다. Gφ 크기가 매우 큰 경우, 문화 칠일 - 여기에 설명 된 분석과 분석의 대부분은 6 사이에 수행됩니다. RPMI-1640 배지에서 10 ng의 / ㎖ LPS 배양 Gφ 발달에 영향을 미치지 않았다 - 하나의 첨가는 주목해야한다. (14) </li></ol> 2. 공 초점 레이저 주사 현미경 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 갓 격리 된 호중구에서 cytospins (16)을 준비하고, 칠일 개발 Gφ의 문화(섹션 1에서 제조). 참고 : 부드럽게, 다양한 분석을위한 접시에 Gφ의 농도를 증가 매체의 절반을 제거하려면. Gφ 가벼운 현미경 매체를 검사하여 제거 매체에서 검출되지 않았는지 확인합니다. 그런 다음, 집중적으로 가볍게 부착 Gφ을 제거하기 위해 나머지 매체를 피펫. 200 × g으로 10 분간 원심 분리하여 배지를, 100에 펠렛을 재현 탁 - 120 μL 매체. <ol><li> 각 슬라이드에 대한 세포를 포함하는 매체의 120 μL - 100을 사용합니다. 각각의 치료에서 중복 또는 세중의 슬라이드를 준비합니다. 84 X g에서 7 분 동안 스핀. </li></ol></li><li> 스펀 세포 건조 화학 후드 하에서 10 분 동안 실온에서 4 % 파라 포름 알데히드로 세포를 고정한다. PBS로 세척 배 (~ 세척 당 몇 초 동안 100 μL). 세포 염색의 경우, 10 분 동안 실온에서 0.5 % 트리톤 X-100의 PBS로 세포를 Permeabilize 하시려면하고 PBS로 5 배 씻는다. 참고 : 모든 단계에서 적절한 버퍼 / 솔루션 volu를 사용나 슬라이드의 셀의 주변부를 커버한다. 셀 경계를 결정하는 소수성 장벽 펜을 사용합니다. 주의 : 파라 포름 알데히드는 독성이있다. 피부와 눈에 접촉을 피할 것. 적절한 개인 보호 장비를 착용하십시오. </li><li> RPMI-1640 배지에서 10 % 정상 염소 혈청으로 차단 셀 4 ºC에서 40 분 동안 실온에서 밤새 배양한다. PBS로 세척. </li><li> (100) 희석 (~ 100 μL) : 단일 항체 (AB) 또는 1에서 마우스와 토끼 일차 항체 (ABS)의 조합으로 품어. 4 ° C에서 - (20 시간 18) 밤새 품어. 참고 : 여기에, 마우스 모노클로 날 애비 포함 : 안티 CD14, 항 CD63, 안티 CD66b, 안티 CD1c, 안티 CD15, 및 안티 시토크롬 B-245 경쇄 (p22- phox 식별). 토끼 폴리 클로 날 복근 포함 : 안티 CD68, 항 CD36, 안티 LC3B, 안티 - 마이 엘 로퍼 옥시 다제, 항 호중구 엘라 스타 제 (NE), 및 안티 Nox2 /가 gp91- phox의 복근을. 아이소 타입 컨트롤은 정제 된 마우스의 IgG1 및 IgG2, 토끼 IgG에 포함되어 있습니다. 위해 준비 할제조자의 지시에 따른 복근 E는 셀의 주변을 덮도록 적절한 양 (약 100 μL)을 사용한다. </li><li> 세포를 씻고 1/400 이차 항체 CY2-CF (488A) 공역 계 염소 항 - 토끼 IgG를 (녹색)과 함께 품어 / 또는 Cy5에 (CF 647) 공역 계 염소 항 - 마우스 IgG (40) 실온에서 (적색) 분. 참고 : 제조업체의 지침에 따라 복근을 희석하고 준비합니다. </li><li> 세척 후, 즉시 커버 슬립을 배치, 핵 염색 4 &#39;, 6-diamidino-2-페닐 인돌 (DAPI)를 포함, 매체를 장착 한 방울과 함께 슬라이드를 탑재합니다. </li><li> 형광 현미경 및 계획 아포 40X 침지 오일 대물를 이용한 공 초점 레이저 스캐닝 시스템에 의해 슬라이드를 분석한다. 슬라이드의 준비 후 30 분 시간 2 내에서 분석을 수행하거나 밤새 4 ° C에서 보관하십시오. <ol><li> 셀 영역 및 이미징 소프트웨어 (예를 들어 이미지 J)를 사용하여 형광 강도를 계산한다. 공동 현지화, ...로서하십시오은 Manders 중복 계수 (MOC) (17)를 사용하여 소프트웨어에 의해 ntify. 주 : MOC 만 세포는&gt; 0.6이 상당한 공동 지역화 셀들로 고려 될 수있다. </li></ol></li></ol> 내피 세포의 맞은 편에 PMN 3. 윤회 : 거 식세포에서 IL-8의 효과 (Gφ) 형성 참고 : 사용 24 잘 투과 세포 배양은 세포 윤회 분석을 위해 삽입합니다. <ol style="margin-left: 40px;"><li> 코트 50 ㎍ / ml의 농도에서 150 μL의 피브로넥틴과 인서트의 상부 챔버, 및 실온에서 30 분 동안 유지한다. </li><li> 다락방에 추가 5 × 10 4 EA.hy926 내피 세포 / 웰, 공식화 둘 베코의 변형 이글의 중간 (전체 성장 매체)의 150 μL에 재현 탁. 참고 : 내피 단일 층이 합류 사용하기 전에 있는지 확인하십시오. </li><li> 하부 챔버에, 전체 성장 매체의 700 μL를 추가합니다. </li><li> 투과성 배치세포 배양은 5 % CO 2에서 37 ° C에서 클러스터 트레이와 문화 2 일 동안 EA.hy926 내피 세포에 삽입합니다. 주 : (1 절에 설명 된대로) 병행, 두 번째 날에 신선한 PMN을 준비합니다. </li><li> 이일 후, 인서트의 하부 및 상부 챔버에 매체를 교체한다. <ol><li> 하부 챔버에 50 나노 미터 / ㎖의 최종 농도로 10 % FCS-IH 및 인터루킨 (IL) -6으로 보충 된 RPMI-1640 배지를 추가한다. 낮은 챔버를 제어하는 ​​IL-8을 추가하지 마십시오. </li><li> 각각의 상부 챔버에, 10 % IH-FCS로 보충 된 RPMI-1640 배지 100 ㎕에 10 6 신선한 PMN을 추가합니다. </li></ol></li><li> 90 분 동안 5 % CO 2에서 37 ° C에서 클러스터 트레이 인큐베이션. </li><li> 90 분 인큐베이션 한 후, 별도의 상부 셀과 하부 챔버를 분리하고 각 모집단을 계산. 전체 세포의 비율로 각 챔버에서 발현하는 세포는 덧붙였다. 참고 : 조심스럽게 상단 chamb에서 세포를 제거어 내피 세포를 제거 방지하고 멸균 튜브에 전송하기 위해 부드럽게 피펫 팅에 의해. 피펫 및 제 멸균 튜브에 500 μL 및 전송과 하부 챔버를 세정하여 하부 챔버에서 세포를 제거합니다. </li><li> transmigrating (하부 챔버) 및 비 이주 (상부 챔버) PMN 분수와 문화 성장 인자없이 7 일간 각각의 여러 우물에서 수영장 10 6 세포 단계에 지정된대로 14-16 (1 절). </li><li> 슬라이드 (16)에 세포를 스핀과 2 절에 설명 된대로 공 초점 현미경에 의해 각각의 배양 조건에서 개발 된 세포를 분석 할 수 있습니다. </li></ol>

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저자는 공개 아무것도 없어.

거 식세포 (Gφ)는 이러한 CD66b / CD15 / CD63 / MPO / NE와 같은 근본적이고 구체적인 호중구 마커를 발현하는 호중구 유래 세포의 새로 정의 된 모집단 있습니다. 호중구 식세포 유래의이 유형은 이전 문헌에 기재되지 않았다. 짧은 수명이며, 세포 자멸사를 받아야 호중구와는 달리, Gφ는 넥신 - V-음과 확장 수명을 표시합니다. 그러나, 호중구처럼 Gφ은 입자를 내면화하고 그 입자와 PMA에 대한 응답으로 NADPH 산화 효소에 의존 ROS를 생산하고 있습니다. 그러나, 그들의 능력은 ROS가 Gφ의 고유 한 기능입니다 생산 결과적으로 OxLDL을 내면화하고 있습니다. (14) 다수의 인자 배양 그들의 발전에 영향을 나타내었다. 성장 배지의 외부 사이토킨 또는 성장 인자의 부족이 중요하다 (구체적으로는 GM-CSF / IL-4). 그러나, IL-8으로 호중구의 이동은 dev에 그들 사이의 차별 요인을 입증Gφ에 눈 맞아 달아과 그렇지 않은 사람들. 그들의 억제 Gφ 형성 (그림 1)을 방지하기 때문에 또한, 세포 사멸 호중구에서 발생하는 파편의 국제화, 자식 작용 단백질 (LC3B) 및 기능 NADPH 산화 효소의 발현은 모두 자신의 발전을위한 필수적 것으로 나타났다. 명백하게, 호중구에서 발생하는 이러한 거대 세포의 발달은 단핵구 / 대 식세포 리니지 것을 특징 거대 세포 형성 다르다. 호중구 Gφ 여기에 세포 잔재를 덮어에 의해, autophagocytosis를 통해 개발 기술 된 반면, 다양한 만성 염증성 질환, 20, 21과 관련된 후자의 형태로 멀티 핵 거대 세포는 대부분 모노 핵 남아 자신의 개발을 통해, 14 (드물게 그러나, 때로는 두 번째 핵)이 관찰 될 수있다. 또한, 제어 장치의 개수가 호중구 원점을 설정한다 : (1) expre특정 neutropilic 마커의 ssion과 수지상 및 단핵구 혈통 마커의 부재, 단핵구 (2) 자신의 방해 개발 / PMN 공동 문화, (3) 라이브 세포 이미징 및 시간에 의해 입증 식세포 (에서 문화 운동의 서로 다른 패턴 -lapse 현미경) 플라스틱 요리와 순수한 CD15 + / CD14에서 (5) 자신의 개발, 14 (4) 자신의 빛을 준수 - PMN 유동 세포 계측법에 의해 인수했다. 시험관 식별 된 기능 중 일부는 우리에게 생체 내에서 잠재적 기능에 대한 단서를 제공 할 수 있습니다. 선천성 면역 신호 전달 경로와 규제 상호 작용을 통해 염증 감소에 기여 자식 작용 단백질 22 - - 예를 들어, Gφ의 능력 호중구 과립 이물질 큰 액포의 존재 및 발현 LC3B 대량 소비 모두 지원 소거 능력. 이와 같이이러한 연구 결과는 또한 Gφ가 Mφ / DC 시스템이 부족하거나 압도 염증 부위에서 작동 할 수 있음을 나타냅니다, 따라서 염증의 해결에 기여한다. 이 개념은 혼합 단핵구 / 호중구 배양 Gφ 개발을 방해한다는 사실에 의해지지 될 수있다. (14) 또한, Gφ는, oxLDL 포착 수용체 (CD36, CD68)을 표현 oxLDL을 내면화하고, 응답으로 ROS를 생산, 그들이 염증을 해결하기 위해 동맥 경화 과정에 관여하는 것을 나타낼 수있다 주어진. Gφ는 IL-8으로 마이그레이션 호중구와 IL-8은 급성 염증 부위에 호중구 모집을 나타냅니다으로 내피 단일 층에서 호중구 &#39;윤회에서 개발 때문에이 연구 결과는 또한 항 염증 기능을 지원할 수있다. 반대로, 특정 염증성 질환에서 Gφ의 성능 기준에 기여하므로, 과립제 성분 및 ROS를 배출 할 수 있도록 수도일관된 염증과 조직 손상. (20) 그러나, 전체, 그들의 autophagic 능력 Gφ 가능성이 염증 반응을 감소보다는 그것을 영속에 참여하고 있음을 나타냅니다. 흥미롭게도 우리는 최근에 인간의 동맥 경화성 플라크의 Gφ의 존재를 확인했다. (준비). 그러나 질문의 ​​큰 숫자는 풀어 될 남아있다. 예를 들어, Gφ의 프로 또는 항 염증은? 시험 관내 또는 생체 내에서 자신의 형성과 기능을 결정하는 요소는 무엇인가? Gφ에 자신의 개발을 촉진 자신의 전구 세포가 특정되는 호중구 하위 집단인가? 그들은 특정 병리하고있는 관련 있는가? 종합적으로, 그 기원과 잠재적 기능에 대한 흥미로운 질문 포즈. 프로토콜 내에서 그러나 중요한 단계와 함정 염두에 보관해야합니다. Gφ의 난의 개발에서 중요한 단계들 사이토 카인, 성장 인자 또는 항생제의 중간없는에서 순수 호중구를 배양. 또 다른 중요한 단계는 Gφ가 오염 단핵 세포에서 개발하는 것을 배제하고 Gφ의 호중구 출처를 확인하는 것입니다. 마커 - 따라서, 불연속 구배에 의한 혈액 분리 한 후, 호중구 더 과립구 게이팅 및 CD15 + / CD14를 사용하여 유동 세포 계측법에 의해 정화의 추가 단계를 하였다. 현상 Gφ 추가의 정제 공정이 실시되지 않은 것과는 다르지 않았다 분리 유동 세포 계측법에 의해 정제 된 호중구로부터 획득. 따라서, 대부분의 실험으로 인해 추가적인 세포 손실로 정제 단계 유세포없이 수행 하였다. 참고로, 일부 드문 경우에 일부 호산구는 문화에 주목했다. 이들의 크기는 배양 기간 동안 변화가 없었다. 우리는 또한주의해야 그 방법의 숫자가 있지만인간의 혈액에서 호중구의 분리, 여기에 설명 된 방법은 우리가 사용하는 유일한 방법이며, 따라서 우리는 호중구 분리 가능한 다른 방법에 의해 Gφ 개발을 비교할 수 없습니다. Gφ 조사에서 가장 큰 함정은 다양한 생화학 적 분석에 적합한 순수 Gφ 인구의 충분한 숫자를 얻기 위해 무능력의 결과. 그것은 우리의 실험이 실시 된 조건에서 기본적으로 불가능하다. 첫째, Gφ의 수율이 낮다. 200 Gφ 혈액 기증자에 따라 문화 7 일 후에 개발 - 1.0 × 10 (6)에서 PMN 약 100 시드. 둘째, 접시 나머지 호중구 파편 문화 현상 Gφ을 분리 순간 기본적으로 곤란하다. 이러한 제한은 사실상 불가능 생화학 적 또는 분자 생물학적 방법에 의해 세포들을 분석 하였다. 따라서,이 프로토콜은 광을 이용하여 Gφ 식별 및 기능을 설명하기에 집중및 공 초점 현미경. 문화 Gφ에 호중구에서 이들의 형태 학적 변화는 라이브 세포 이미징 및 시간 경과 현미경으로 이어졌습니다. 14 분명히, 더 큰 혈액 볼륨을 얻을 낮은 수율을 생화학 적 또는 분자 생물학 방법을 구현하고 극복하기 위해와 접시에 호중구 &#39;파편에서 가능한 Gφ 분리에 필요할 수 있습니다. 요약하면, 우리는 최근 배양 처음 호중구 기원 장수 식세포의 서브 모집단을 Gφ의 발전을 설명 하였다. 위에서 언급 한 두 가지 제한 사항을 극복한다하더라도 따라서,이 배양 Gφ를 얻을 현재 사용할 수있는 유일한 방법이다합니다 (Gφ의 낮은 수율은 배양 얻어진 배양에서 호중구 파편 현상 Gφ를 분리 할 수 ​​없다는 요리). 그럼에도 불구하고,이 프로토콜에 제시된 자신의 준비와 식별, 된 essentia입니다더 Gφ의 잠재적 의미와 기능을 조사하기 위해, 염증 반응 및 호중구 생물학 및 소성에 관심이 과학자 리터.

다형 핵 호중구 (PMN)는 세포 독성 분자의 다양한 제조하여 병원체 침입을 우선적으로 보호로서, 혈중 백혈구의 가장 큰 집단을 구성한다. 전통적인보기는 긴 병원균과 유해 입자의 간극에 감염과 지원을 방지하기 위해 급성 염증 사이트에 도착 최초로 순환 혈액, 짧은 살았 전문 식세포,의를하고있다. 하나는 비 활성화 된 상태에서, 호중구 세포 사멸에 구조적으로 노력하고 있습니다. 염증 부위에 혈액에서 마이그레이션 할 때, 중성 백혈구는 염증을 해결하기 위해 정품 인증을받을. 이들은 탐식 및 호중구 엘라 스타 제 (NE)와 강력한 살균 활성을 카 텝신 같은 세포 독성 분자 등의 활성 산소 종 (ROS), 용균 효소들의 어레이를 생성함으로써, 미생물이 침입 죽인다. 트랩 병원균을 위해, 호중구는 세포 외 트랩 (그물을 해제) 항균 펩티드 및 다양한 용균 효소를 함유하는 핵 염색질 스레드를 구성한다. 그러나, 호중구에서 이러한 세포 독성 분자의 제어되지 않은 버전은 또한 염증 반응을 영속과 주변 조직의 손상을 야기 할 수 있음. 2 따라서, 대 식세포에 의한 세포 사멸 호중구의 효과적인 틈새 (Mφ)와 수지상 세포 (DC)는 염증을 해결하기 위해 매우 중요합니다. 3, 4, 5, 6 그러나 최근 몇 년 동안, 그것은 호중구가 매우 누구의 기능까지 식균 작용과 병원균을 죽이는 넘어 다양한 세포 것을 점점 더 분명되고있다. 프라이밍 또는 활성화가 진행함으로써 6, 7, 호중구 가소성 점차 주목 받고있다. 예를 들면, 마이코 박테리아 도전 호중구 나타났다면역 조절 반응의 존재를 제안, 인터루킨 (IL) -10을 분비와 염증 반응을 제어 할 수 있습니다. 8 포스트 유사 분열 호중구 Mφ 유사 세포 또는 분해함으로써 사이토 카인과 성장 인자, 9, 10로 처리시 항원 단편 제시 선천적 적응성을 통합에 중요한 역할을 제공함으로써 DC 유사 세포로 - 분화 트랜스 나타났다 응답. 도 3은, 성장 인자에 의해 6 활성화는 염증 부위에 이물질이 간극 염증의 해상도, 3, 9 Mφ / DC 통관 시스템 11 불충분하거나 압도 특히 12 용이하여 사멸 호중구 또는 세포 파편의 말림을 촉진 잠재적 인 &#39;자율 규제&#39;를 제안하는 것은 재를 도움염증 반응을 해결한다. 이것은, 이후 아폽토시스 세포 독성 화합물의 세포 외 방출을 억제하고, 따라서 주변 조직에 손상을 방지 할 수 규제 자기 죽음의 한 형태이다. 6 장기간 생존 호중구 활성화의 또 다른 특징이며, 예컨대 과립구 콜로니 자극 인자 (G-CSF), 과립구 - 대 식세포 콜로니 자극 인자 (GM-CSF), 인터페론과 같은 염증성 사이토 카인 (각종 숙주 유래 인자로 처리함으로써 입증되었다 IFN) -γ, 종양 괴사 인자 (TNF) -α 및 / 또는 병원체 유래의 제품, 즉, 호중구 생존 반응을 조절할 수 있도록. 도 6은 실제로 호중구 생존율은 가소성을위한 필수 조건이며 탐식을 수행하는 능력과 관련이 있었다. 도 6에서, (13) 따라서, 또한 의존적이다 표현형 및 기능의 변화와 연관 나타났다호중구 수명 연장에 관여하는 새로운 단백질의 합성을 유도하여 상향 조절 된 유전자 발현 및 감소 세포 사멸에 DED. (10) 수명이 짧고 구성 적 문화에서 세포 자멸사를 받아야하거나 수명을 연장 한 상기 사이토 카인 / 성장 인자 활성화 된 호중구, 호중구는 달리, 우리는 최근 장기간의 표준 문화에 자발적으로 개발 호중구의 새, 작은 모집단을 확인했다 외부 사이토 카인 또는 성장 인자를 첨가하지 않고 갓 고립 된 인간 혈액 호중구에서 조건. (14) 문헌에서 이전에 설명하지 않은이 호중구 유래 세포,라고 한 거 식세포 (Gφ). Gφ 문화의 수명을 연장 한 그들은 완전히 5-7일에서 개발하고, 독특한 형태 학적 특징, 표현형의 발현과 기능을 특징으로한다. 그들은 크게 autophago로 인해 확대된다액포 죽은 호중구 잔재의 cytosis 및 포함 phagolysosomes. Gφ 특정 호중구 과립 마커를 표현 - 차별화 (CD) (66B)의 클러스터는 분홍 - 보라색의 과립 마커 - CD63 및 마이 엘 로퍼 옥시 다제 (MPO) 및 CD11b를, NE, CD15, 같은 추가 호중구 마커를 NADPH 산화 효소 서브 유닛 gp91- phox 및 p22- phox, 그리고 자식 작용 마커 -LC3BII. 14, 15 기능적으로, 그들은 적극적으로 라텍스 구슬과 자이 모산 입자 최대 가지고 가고, 자이 모산 및 포르 12 미리 스테이트 (13) - 아세테이트 (PMA) 자극에 반응하여 ROS를 생성합니다. 흥미롭게도, 신선한 호중구는 달리, Gφ도 집중적으로 스 캐빈 저 수용체 CD68 및 CD36 표현, 감기는 저밀도 지단백 (oxLDL)를 산화 및 oxLDL 자극에 반응하여 ROS를 생성합니다. 또한, Gφ는 단핵구 혈통 마커 CD14, CD16 및 CD163 또는 수지상 마커 CD1c 및 CD141없는 상태입니다. 또한, PHAgocytosis와 자식 작용 가능성 기능 NADPH 산화 효소는 개발을위한 전제 조건이다. 이 식균 작용 억제제의 cytochalsin의 B, 때문에, 자식 작용 억제제 3- 메틸 아데닌 (3-MA)과 bafilomycin (BafA1)와 NADPH 산화 효소 억제제 - 디 페닐 렌 요오드 (DPI)는 - 자신의 발전을 방지. 또한, 지속적인 저산소증에 호중구 적응은 분명 단핵구 / 호중구의 공동 문화뿐만 아니라 자신의 발전을 방해 간헐적 저산소증에 노출했다 반면. 14, 15 문화에서 그들의 제안 된 개발 본 논문에서는 그림 1 국지적 인 프로토콜에 도시는 단계별에게에서 Gφ의 준비를 설명 갓 인간의 혈액 호중구, 자신의 개발, 식별 및 몇 가지 기본적인 특성을 순환입니다. 이 프로토콜은 추가 조사를하고 폭 넓은 스펙트럼을 나타 내기 위해 사용될 수의 역할이 새롭게 설명과 흥미로운 호중구 유래 위해 Gφ하는 characteriz하기자신의 중요성과 잠재적 기능을 전자. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig1.jpg" /> 그림 1 : 7 일 호중구 문화에 거대한 세포 개발의 도식 표현. 염증 부위에서 자식 작용 메커니즘을 트리거 핵 파편, 과립 (녹색과 빨간색 점)을 포함하는 조각 및 기타 세포 내 성분 (1) 호중구가 사멸 세포의 죽음을 받아야하고, (2) 분리 막 둘러싸여 것이 좋습니다. 기능 NADPH의 oxidase.They을 유지하는 것은 다양한 호중구 CD66b + / CD63 특징으로하는 동안 (3) 거 식세포 (Gφ), 세포 사멸 기관 및 호중구 파편을 내재화하여 사이토 카인이나 성장 인자없는 장기간의 호중구 문화 발전 + / MPO + / CD15 + / CD11b를 + / NE 마커, 과립 세포 파편 및 캐빈 수용체 CD36 및 CD68을 둘러싸는 큰 phagosomes. 기가 바이트1; 다양한 입자와 산화 LDL을 내면화 할 수있는 대부분의 단핵 세포, 그리고 ROS를 생성합니다. Gφ을 채우는 공포의 멤브레인은 자식 작용과 거대한 식세포 형성 사이의 엄격한 연결을 제안, (진한 파란색으로 표시) LC3B, autophagosomal 막의 마커를 포함한다. Gφ는 GM-CSF / IL-4를 포함하는 배지에서 개발하지 않습니다. 또한, 예 NADPH 산화 효소 억제제 억제제 - 디 페닐 요오도 늄 (DPI)는 자식 작용 억제제 3- 메틸 아데닌 (3-MA) ​​및 bafilomycin (BafA1) 및 포식 작용 억제제 사이토의 B (. 사이토 B)는 그 형성을 폐지. (4) 생체 내에서 잠재적 인 Gφ 기능 항 또는 프로 염증과 동맥 경화 과정에 참여를 (이 그림은 우리의 연구 결과 14, 15을 기반으로하고 B로 첨부 편집에서 수정 포함 할 수있다erton 20). <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

<table><tbody><tr><td>Sterile scalp vein set (21GX3/4)&amp;nbsp;</td><td>Bio Diagnostics Ltd.</td><td># 20080312</td><td>A strile needle for venipancture</td></tr><tr><td>VACUETTE HOLDEX Single-Use Holder PP</td><td>Greiner Bio-One</td><td># 450263</td><td>For securing during venipuncture&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>VACUETTE Tube K3E K3EDTA (16 x 100/9 mL)</td><td>Greiner Bio-One</td><td># 455036</td><td>Sterile tube for blood collection</td></tr><tr><td>Nunclon MultiDish (24 well x 1 ml)</td><td>Thermo Scientific</td><td># 142475</td><td></td></tr><tr><td>Polypropylene conical centrifuge tube (50 ml)</td><td>Greiner Bio-One</td><td># E14103PJ</td><td></td></tr><tr><td>Transwell-24 well (transmigration assay)</td><td>Corning</td><td># CA-3415</td><td>Polycarbonate membrane, 6.5 mm diameter, 3 &amp;mu;m pores)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>RPMI-1640 medium</td><td>BioIndustries</td><td># 01-100-1A</td><td>Do not add antibiotics&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>EA.hy926 (ATCC CRL2922)&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>BioIndustries</td><td># CRL-2922</td><td></td></tr><tr><td>ATCC-formulated Dulbecco&amp;rsquo;s&amp;nbsp; Modified Eagle&amp;rsquo;s Medium</td><td>BioIndustries</td><td># 302002</td><td>complete growth medium</td></tr><tr><td>Polysucrose - Histopaque1119</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># 1119-1</td><td>Tissue culture grade</td></tr><tr><td>Polysucrose - Histopaque1077</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># 1077-1</td><td>Tissue culture grade&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Phosphate buffered saline (PBS) - ion free</td><td>BioIndustries</td><td># 02-023-1A</td><td>Cell biology and molecular biology grade</td></tr><tr><td>Heat inactivated Fetal calf serum (HI-FCS)</td><td>BioIndustries</td><td># 04-121-1B</td><td>Cell biology grade or tissue culture grade, low LPS</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td># S3014</td><td>Molecular biology grade, suitable for cell culture</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde, 16%</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td># 15710</td><td>Cell bology grade or tissue culture grade (only 16% PFA)</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># 9002-93-1</td><td>Molecular biology grade&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Normal Goat Serum</td><td>BioIndustries</td><td># 04-009-1</td><td>Cell biology and molecular biology grade</td></tr><tr><td>Trypan blue</td><td>BioIndustries</td><td># 031021B</td><td>Tissue culture grade&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>May-Gr&amp;uuml;nwald</td><td>Sigma-Aldrich</td><td># MG500</td><td>Cell biology grade-(procedure No GS-10)</td></tr><tr><td>Giemsa stain Kit</td><td>Sigma</td><td># 48900</td><td>Cell biololgy grade-(procedure No GS-10)</td></tr><tr><td>Fibronectin</td><td>BioIndustries</td><td># 03090105</td><td></td></tr><tr><td>Human Interleukin-8 (CXCL8)</td><td>PeproTech</td><td># 200-08-5</td><td></td></tr><tr><td>Anti-CD14 (clone 5A3B11B5)</td><td>Santa Cruz Biotechnologies</td><td># sc-58951</td><td>Mouse IgG2b; expressed by&amp;nbsp; monocytes</td></tr><tr><td>Anti-CD63 (clone MX-49.129.5)</td><td>Santa Cruz Biotechnologies</td><td># sc-5275</td><td>Mouse IgG1; expressed by neutrophils</td></tr><tr><td>Anti-CD66b (clone 80H3)</td><td>AbD Serotec</td><td># MCA216</td><td>Mouse IgG1; expressed by neutrophils</td></tr><tr><td>Anti-CD1c (BDCA-1) (clone AD5-8E7)</td><td>MACS Miltenyi Biotec</td><td># 130-090-695</td><td>Mouse IgG2a; expressed by&amp;nbsp; dendritic cells</td></tr><tr><td>Anti-CD15 (clone MY-1)</td><td>Abcam</td><td># ab754</td><td>Mouse IgM; expressed by neutrophils</td></tr><tr><td>Anti-Cytochrome b-245 Light Chain (p22-phox) (clone 44.1)</td><td>BioLegend</td><td># 650001</td><td>Mouse IgG2a; to recognize neutrophil NADPH oxidase complex</td></tr><tr><td>Anti-CD68</td><td>Protein Tech</td><td># 16192-1-AP</td><td>Rabbit IgG; to recognize oxLDL scavenger receptor&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Anti-LC3B</td><td>Sigma</td><td># L7543</td><td>Rabbit IgG&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Anti-Myeloperoxidase</td><td>Abcam</td><td># ab45977</td><td>Rabbit IgG</td></tr><tr><td>Anti-Neutrophil elastase</td><td>Calbiochem</td><td># 481001</td><td>Rabbit IgG&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Anti-NOX2 (gp91-phox)</td><td>Abcam</td><td># ab131083</td><td>Rabbit IgG</td></tr><tr><td>Anti-CD36 (SR-B3)</td><td>Novus Biologicals</td><td># NB400-144</td><td>Rabbit IgG</td></tr><tr><td>Purified Mouse IgG1, &amp;kappa; Isotype Control (clone MG1-45)</td><td>BioLegend</td><td># 401401</td><td>Antibody used as isotype control</td></tr><tr><td>Purified Mouse IgG2a, &amp;kappa; Isotype Control (clone MOPC-173)</td><td>BioLegend</td><td># 400263</td><td>Antibody used as isotype control</td></tr><tr><td>Normal rabbit IgG</td><td>Santa Cruz Biotechnologies</td><td># sc-2027</td><td>Antibody used as isotype control</td></tr><tr><td>CF488A Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)</td><td>Biotium&amp;nbsp;</td><td># 20012</td><td>Anti-Rabbit IgG with the green fluorescent dye CF488A</td></tr><tr><td>CF647 Goat Anti-Rabbit IgG (H+L)</td><td>Biotium&amp;nbsp;</td><td># 20043</td><td>Anti-Rabbit IgG with the red fluorescent dye CF647</td></tr><tr><td>CF488A Goat Anti-Mouse IgG (H+L)</td><td>Biotium&amp;nbsp;</td><td># 20010</td><td>Anti-Mouse IgG with the green fluorescent dye CF488A</td></tr><tr><td>CF647 Goat Anti-Mouse IgG (H+L)</td><td>Biotium&amp;nbsp;</td><td># 20040</td><td>Anti-Mouse IgG with the red fluorescent dye CF647</td></tr><tr><td>Fluorescent Mounting Medium with DAPI</td><td>Vectashield H-1000; Vector Lab Inc.</td><td># E19-18</td><td>Nuclear staining</td></tr><tr><td>Confocal laser scanning microscope (LSM 700)&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Carl Zeiss</td><td>Ser.# 3523000380</td><td>Plan Apo 40X immersion oil objective&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Zeiss CLSM software (ZEN 2010)</td><td>Carl Zeiss MicroImaging GmbH</td><td>version 6.0</td><td>For colocalization analysis</td></tr><tr><td>ImageJ software</td><td>Wayne Rasband, NIH, USA</td><td>version 1.49k</td><td>For determination of cell&amp;nbsp; areas and fluorescence intensity</td></tr><tr><td>Light microscope (Axiovert 25)</td><td>Carl Zeiss</td><td>Ser.# 201060153</td><td>Examination of cells in culture</td></tr><tr><td>Centrifuge (Megafuge 1.0 R)</td><td>Heraeus Instruments</td><td># D-37520</td><td>Cells separation from blood; cytospins preparation</td></tr><tr><td>Inverted fluorescent microscope (Zeiss Axio Observer Z.1)</td><td>Carl Zeiss</td><td>Ser.# 3834001470</td><td>Demonstration of giant phagocytes development</td></tr><tr><td>Temperature-controlled incubation system (Cube&amp;amp;Box)</td><td>Life Imaging Services</td><td></td><td>Temperature control system for microscopes</td></tr><tr><td>High&amp;nbsp;resolution digital CCD camera (AxioCam HRm)</td><td>Carl Zeiss</td><td>Ser.# 117090279</td><td>For capturing high-contrast&amp;nbsp; image data from an examined cell objects</td></tr><tr><td>Hydrophobic barrier pen (Elite PAP Pen)</td><td>Diagnostic Biosystems</td><td># K039</td><td>For defining cell perimeter for immunoflourescence staining</td></tr></tbody></table>

development and identification of a novel subpopulation of human neutrophil-derived giant phagocytes in vitro

호중구 (PMN)는 가장 병원균 미생물 침입에 대해 자신의 식세포 기능 알려져있다. 그들은 백혈구 사이와 구조적으로 세포 사멸하기 위해 최선을 다하고 있습니다 그들의 비 활성화 된 상태에서 짧은 반감기를 가지고있다. 염증을 해결하는 염증 부위로 보충하면, 이들은 강력한 항균 죽이는 세포 독성 분자의 배열을 생성한다. 이러한 강력한 세포 독성 분자가 제어되지 않는 방식으로 발표 될 때 그러나, 그들은 주변 조직에 손상을 줄 수 있습니다. 그러나 최근 몇 년 동안, 호중구 다양성은 점점 소성 및 면역 기능을 보여줌으로써, 입증된다. 최근 예컨대 과립구 콜로니 자극 인자 (GM-CSF)와 같은 사이토 카인 / 성장 인자를 첨가하지 않고 표준 배양 조건에서 자연적 발전 새로운 호중구 유래 모집단 / 인터루킨 (IL)을 -4 확인했다. 호중구 나머지 자신의 탐식 능력은 크게 자신의 증가에 기여대단히 크기; 따라서 그들이라고 한 거 식세포 (Gφ). 호중구는 달리, Gφ은 오랫동안 문화에 살고있다. 그들은 차별화 (CD) 호중구 마커 CD66b / CD63 / CD15 / CD11b를 / 마이 엘 로퍼 옥시 다제 (MPO) / 호중구 엘라 스타 제 (NE)의 클러스터를 표현하고, / CD16 / CD163 및 수지상 CD1c / CD141 마커 단핵구 혈통 마커 CD14없는입니다 . 또한 라텍스와 자이 모산을-차지, 그리고 옵 소닌 - 자이 모산와 PMA로 자극에 산화 버스트에 의해 반응한다. Gφ 또한 캐빈은 CD68 / CD36 수용체 표현하고, 호중구는 달리, 산화 - 저밀도 지단백 (oxLDL)를 내면화. 또한, 신선한 호중구 또는 단핵구 배양 달리, 이들은 증가 된 활성 산소 종 (ROS)에 의해 생산 oxLDL 흡수에 반응한다. 또한 이러한 식세포는 자식 작용의 활성화를 나타내는 미세 소관 - 관련 단백질 1 빛 체인 3B (LC3B) 코팅 액포가 포함되어 있습니다. 특정 억제제를 사용하는 것은 그 식세포와 자식 작용 모두 prerequisi 것을 분명종속 ROS 산화 효소들이 개발 가능성이 NADPH에 대한 TES. 우리는 여기에서 배양 긴 수명, 호중구 유래 식세포 세포들이 식별 및 현재 알려진 특성의 새로운 모집단의 제조 방법을 설명한다. 이 프로토콜은 획득 더욱 그 의미와 기능을 조사하기 위해 Gφ의 특성에 필수적이다.

문화 호중구 Autophagocytosis 개발 호중구 autophagocytosis와 문화 7 일 이내 Gφ에 자신의 개발도 3 및도 4에 도시되어있다. 일 4 - 7, 크기는 15 크게 확대했고 autophagosytosis 후 90 분 일찍로 분명했다 공동 배양 형광 막 얼룩 (PKH-26, 빨간색, PKH-67, 녹색)과 호중구를. 이러한 호중구 모집단에 대한 대조군으로서 14 약간 호중구 배양은 GM-CSF / IL-4로 처리 하였다. 전술 한 바와 같이 문화 14 일 - 사이토 카인 처리 된 세포는 7 내에서 크기가 증가했다. (18, 19) 그러나이 Gφ보다 작았 이전에 나보고 세포질 돌기 세포 (그림 5) DC-등을 닮은했다<html> Y OEHLER 등. (19) 또한, GM-CSF / IL-4 처리 된 세포는 15 명확 아니라 형태학 잠재적 기능 차이를 보여주는 음성이었다 또는 저 CD66b 발현했다. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig3.jpg" /> 그림 3 : 문화의 개발 거 식세포 (Gφ)에 Autophagocytosis. 갓 고립 된 정제 된 호중구는 PKH-67 (녹색) 또는 제로 시간에 PKH-26 (적색) 막 형광 염료, 다음 공동 배양으로 표시하고 7 일까지 추적 관찰 하였다. 세포를 유리 슬라이드 상에 방사 된 핵은 DAPI로 염색하고, 샘플은 공 초점 현미경으로 분석 하였다. Autophagocytosis 이미 공동 문화의 90 분 후 눈에 띈다. 노란색과 오렌지에 빨간색과 녹색의 병합 개발 Gφ에 명확하게 알 수있다.파일 / ftp_upload / 54826 / 54826fig3large.jpg &quot;대상 =&quot;_ 빈 &quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig4.jpg" /> 그림 4 : 문화에서 거 식세포 (Gφ)의 개발. 갓 고립 된 정제 된 호중구는 문화 7 일까지 추적 관찰 하였다. 세포 Grunewald는 월 - 김사 염색 지정된 시간 간격으로 유리 슬라이드 상에 방사하고, 명 시야 현미경으로 분석 하였다. 몇 호산구와 개인은 비교를 위해 제시된다. 호산구의 크기가 문화를 그대로 유지합니다. 배율 100X 오일. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig5.jpg" /> 그림 5 : 문화에서 호중구 처리 된 거 식세포 (G의 φ)와 GM-CSF / IL의 개발 사이의 비교. (A) 월 그룬 왈드 - 김사 염색 호중구 (Gφ)없이 배양 7 일 동안 GM-CSF와 / IL-4. 샘플을 명 시야 현미경으로 분석 하였다. 확대, X40. 하지만 GM-CSF / IL-4는 널리 세포질 돌기로 보충 매체와 문화에 개발 된 세포 Gφ보다 작습니다. (B) 갓 절연 호중구 PKH-26 (적색) 염료로 표지 배양 사이토킨 배지에서 7 일간 또는 GM-CSF / IL-4로 보충 된 배지에서 PKH-67 (녹색) 염료로 표지 및 배양 하였다 7 일. 한 비와 공 배양 2 시간 동안 : 그 후, 발전 전지는 1로 혼합 하였다. 세포는 고정 및 공 초점 MICR로 분석 하였다oscopy. 이 그림은 참조에서 수정되었습니다. 15 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 더 Gφ 개발의 과정을 조사하기 위해, 자신의 형태 학적 변화는 시간 경과 현미경으로 관찰 하였다. 비디오-1 (일 4 일 3) 및 비디오-2 (일 ~ 5 일 4) 정제 호중구 문화에서 자신의 발전을 보여줍니다. 이 Gφ 비 부착 또는 제한된 운동 능력 가볍게 부착 적극적으로 호중구의 잔해와 파편을 둘러싼 섭취한다. 비디오 3에서 단핵구 유래 Mφ 및 Gφ의 이동이 혼합 단핵구 / 호중구 배양과 비교된다. Mφ 적극적으로 (왼쪽, 레이블이없는 세포)를 크롤링합니다. Gφ (오른쪽), 밝은 PKH-26 표지 세포이다. 비디오 1 : - 시간 경과 현미경에 의해 4 일 3 정화 PMN 문화에서 거 식세포의 개발을 보여줍니다. 호중구는 반전 동력 형광 현미경으로 구성되어 시간 경과 microscopy.The 시간 경과 현미경 시스템에 의해 4 일까지 3 일에서 문화의 업을 따라 무대 인큐베이터에 고해상도 B / W CCD 카메라,되었다. 시간 경과의 이미지 캡처 인수는 매 10 분을 촬영했다. 원래 참조 (14)에 게시 된 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54826/Video-1.mpg" target="_blank">이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54826/54826mov2.jpg" /> 비디오 2 : - 티 5 일에 4 정제 된 PMN 문화에서 거 식세포의 개발 시연나 경과 현미경. 호중구는-따라 최대 시간 경과 현미경에 의한 일 5 일 4에서 문화에 있었다. 타임 랩스 현미경 시스템은 스테이지 배양기 상에 반전 동력 형광 현미경으로 구성되고, 높은 해상도 B / W의 CCD 카메라이다. 시간 경과의 이미지 캡처 인수는 매 10 분을 촬영했다. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54826/Video-2.mp4" target="_blank">이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/54826/54826mov3.jpg" /> 비디오-3 : 거 대 식세포 및 공동 문화에서 개발 식세포. 공동 문화 단핵구 / 호중구는-따라 최대 시간 경과 현미경에 의한 일 5 일 4에서했다. 단핵구 유래 대 식세포 (왼쪽); 밝은 (PKH-26 스테인드 셀) 호중구 유래 거 식세포 (오른쪽). 비디오의 시간 경과 현미경 시스템은 역 동력 형광 MICR로 구성되어있다oscope, 무대 인큐베이터에 고해상도의 b / W CCD 카메라. 시간 경과의 이미지 캡처 인수는 매 10 분을 촬영했다. 원래 참조 (14)에 게시 된 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54826/Video-3.mp4" target="_blank">이 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 거 식세포의 마커의 발현 Gφ의 호중구 기원은 다음과 호중구 마커 CD66b / CD63 / MPO / NE / CD15 (그림 6)의 긍정적 인 표현에 의해 확인되었다. Gφ는 NADPH 산화 효소의 oxLDL 포착 수용체 발현 - CD68 및 CD36을, 그리고 자식 작용 마커의 존재를 입증 (LC3BII 15 웨스턴 블로 팅에 의해 식별) LC3B 코팅 공포 집계를 포함. 그러나 그들은 단핵구 혈통 (CD14, CD16 및 CD163) 및 dendrit에 대한 음성이었다Gφ가 오염 단핵 세포에서 발생하지 않았 음을 시사 IC에서 세포 (CD1c 및 CD141) 마커. <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig6.jpg" /> 그림 6 : 문화의 7 일 후 거 식세포 (Gφ)에서 호중구, 단핵구 및 수지상 세포에 대한 다양한 마커의 발현. 호중구 특정 과립 마커 CD66b의 azurophil 과립 마커 CD63 및 MPO, 호중구 엘라 스타 제와 CD15의 긍정적 인 표현. 수지상 CD1c 및 CD141 마커와 단핵구 혈통 마커 CD14, CD16 및 CD163에 대한 부정적인 표현. 또한, Gφ은 자식 작용 마커 LC3B 표현의 스 캐빈 저 수용체 CD68 및 CD36와 NADPH 산화 효소 서브 유닛 gp91-phox / P22-phox 소단위. 핵은 DAPI로 염색하고, 샘플은 공 초점 현미경으로 분석 하였다. 이 그림은 참고 문헌에서 수정되었습니다. (14) </suP&gt; 15 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> Gφ의 기능 - NADPH 산화 효소 활성화, ROS 생산 및 탐식 : 라텍스 구슬의 식균 작용 및 옵 소닌 자이 모산은 Gφ에 분명했다. Gφ 또한 기초 ROS (도 7a)를 생성하고, 산화 버스트 (그림 7B-D)에 의해 자이 모산 및 PMA 자극에 반응했다. 그러나, 단핵구 또는 호중구는 달리, Gφ는 oxLDL 자극에 반응 또한 ROS 생성 및 오일 레드 O (그림 7B, F)에 의해 염색 하였다. 노트의 NADPH 산화 효소 억제제와 신선한 호중구의 치료 중 - DPI뿐만 아니라 ROS 생산뿐만 아니라, 페이지를 억제ROS 신호가 Gφ 형성에 필수적임을 시사 문화 revented Gφ 형성. 14 15 <img alt="그림 7" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig7.jpg" /> 그림 7 : 산화 버스트, 탐식,과 거 식세포에 의해 oxLDL 통풍 관 (Gφ). (A) 바살 ROS 생산 Gφ의 리소좀에서 명백하다. 산화 LDL (oxLDL)에 응답 (B) ROS 생산, PMA와 자이 모산 (자이 모산 입자를 명확하게 설명되어 있습니다). 없이 PMA (슬라이드 흠,하지만 삽입 월 그룬 왈드 - 김사 염색된다)과 호흡 버스트 활동을 보여주는 Gφ에서 (C) Nitroblue 테트라 졸륨 (NBT) 테스트. (D) NBT 검사와 월 Grunewald는-김사는 NADPH 산화 효소와 활성 산소를 억제 PMA와 PMA / DPI와 Gφ 스테인드. L의 (E) 탐식PKH-26 (적색) 염색 된 세포의 ATEX와의 IgG-옵 소닌 자이 모산. 치료 및 oxLDL에서 (F) 오일 레드 O 염색은 Gφ 치료. 이 그림은 참고 문헌에서 수정되었습니다. 14, 15 <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig7large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 내피 세포의 맞은 편에 PMN의 윤회 잠재적 인 호중구에게 Gφ로 발전 할 수있는 하위 집단을 확인하기 위해, 내피 세포 단층을 통해 호중구의 이동 (그림 8A)를 측정 하였다. 90 분 후, 호중구 62.3 ± 12.2 %의 하부 구획에서 IL-8을 향해 내피 세포 transmigrated. 참고로, 비 마이그레이션 호중구 분획에서 개발 된 세포 반면 호중구의 transmigrated 인구에서만 개발 CD66b / CD15 / LC3B에 대한 긍정적 인 Gφ는 호중구 마커 크기가 작고 음성 인 CD66b / CD15 (그림 8B, 8C) . <img alt="그림 8" src="/files/ftp_upload/54826/54826fig8.jpg" /> 그림 8 : 거 식세포 (Gφ) 형성에 내피 세포를 통해 IL-8 종속 PMN 윤회의 효과. (A) IL-8 향해 내피 세포 단층되는 EC ()에 걸쳐 호중구 윤회 분석을 예시하는 방식. 이 분석은 급성 염증 부위에 호중구 모집의 모델로 간주 될 수 있습니다. (3 프로토콜에 지정된) 세포 이동 분석에서 - (C B), (B) transmigrating 비 마이그레이션 (C)의 호중구 FRACTIONS는 (프로토콜 1과) 성장 인자없이 이레 동안 배양 하였다. 이어서, 세포를 유리 슬라이드 상에 스핀 및 공 초점 현미경으로 분석 하였다. 고정 세포는 CD66b (적색), LC3B (녹색) 및 CD15 (빨간색)에 대한 염색 하였다. 핵은 DAPI (파란색)으로 염색 하였다. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54826/54826fig8large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a>

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Development and Identification of a Novel Subpopulation of Human Neutrophil-derived Giant Phagocytes In Vitro

우리는 여기서 획득 및 호중구 유래 거 식세포의 새로운 특징 모집단을 식별하는 방법을 설명합니다. 이 세포는 신선한 인간의 혈액 호중구에서 문화를 개발하고, 식균 작용, 자식 작용, 상당히 큰 크기, 확장 된 수명을 특징으로한다. 이 방법은 또한 독특한 호중구 유래 모집단을 조사하기 위해 필수적이다.

인간 호중구 유래 거 식세포의 소설 모집단의 개발 및 식별<em&gt; 체외</em

Neutrophils (PMN) are best known for their phagocytic functions against invading pathogens and microorganisms. They have the shortest half-life amongst ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Development and Identification of a Novel Subpopulation of Human Neutrophil-derived Giant Phagocytes In Vitro

15.1K 조회수.  Technion-Israel Insitute of Technology.  우리는 여기서 획득 및 호중구 유래 거 식세포의 새로운 특징 모집단을 식별하는 방법을 설명합니다. 이 세포는 신선한 인간의 혈액 호중구에서 문화를 개발하고, 식균 작용, 자식 작용, 상당히 큰 크기, 확장 된 수명을 특징으로한다. 이 방법은 또한 독특한 호중구 유래 모집단을 조사하기 위해 필수적이다. 

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Direct Observation of Phagocytosis and NET-formation by Neutrophils in Infected Lungs using 2-photon Microscopy

After the gastrointestinal tract, the lung is the second largest surface for interaction between the vertebrate body and the 
environment. Here, an effective gas exchange must be maintained, while at the same time avoiding infection by the multiple pathogens that are inhaled 
during normal breathing. To achieve this, a superb set of defense strategies combining humoral and cellular immune mechanisms exists. One of the most 
effective measures for acute defense of the lung is the recruitment of neutrophils, which either phagocytose the inhaled pathogens or kill them by 
releasing cytotoxic chemicals. A recent addition to the arsenal of neutrophils is their explosive release of extracellular DNA-NETs by which bacteria 
or fungi can be caught or inactivated even after the NET releasing cells have died. We present here a method that allows one to directly observe neutrophils, 
migrating within a recently infected lung, phagocytosing fungal pathogens as well as visualize the extensive NETs that they have produced throughout the 
infected tissue. The method describes the preparation of thick viable lung slices 7 hours after intratracheal infection of mice with conidia of the mold 
Aspergillus fumigatus and their examination by multicolor time-lapse 2-photon microscopy. This approach allows one to directly investigate antifungal 
defense in native lung tissue and thus opens a new avenue for the detailed investigation of pulmonary immunity.

We show, how to use 2-photon microscopy for the observation of the dynamics of neutrophil granulocytes in infected lungs while they phagocytose pathogens or produce neutrophil extracellular traps (NETs).

2 광자 현미경을 사용하여 감염된 폐의 Neutrophils에 의해 Phagocytosis와 NET - 형성의 직접 관측

After the gastrointestinal tract, the lung is the second largest surface for interaction between the vertebrate body and the 
environment. Here, an ...

연구

면역학 및 감염병학

Isolation and Characterization of Neutrophils with Anti-Tumor Properties

Neutrophils, the most abundant of all white blood cells in the human circulation, play an important role in the host defense against invading microorganisms. In addition, neutrophils play a central role in the immune surveillance of tumor cells. They have the ability to recognize tumor cells and induce tumor cell death either through a cell contact-dependent mechanism involving hydrogen peroxide or through antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity (ADCC). Neutrophils with anti-tumor activity can be isolated from peripheral blood of cancer patients and of tumor-bearing mice. These neutrophils are termed tumor-entrained neutrophils (TEN) to distinguish them from neutrophils of healthy subjects or na&#239;ve mice that show no significant tumor cytotoxic activity. Compared with other white blood cells, neutrophils show different buoyancy making it feasible to obtain a &#62; 98% pure neutrophil population when subjected to a density gradient. However, in addition to the normal high-density neutrophil population (HDN), in cancer patients, in tumor-bearing mice, as well as under chronic inflammatory conditions, distinct low-density neutrophil populations (LDN) appear in the circulation. LDN co-purify with the mononuclear fraction and can be separated from mononuclear cells using either positive or negative selection strategies. Once the purity of the isolated neutrophils is determined by flow cytometry, they can be used for in vitro and in vivo functional assays. We describe techniques for monitoring the anti-tumor activity of neutrophils, their ability to migrate and to produce reactive oxygen species, as well as monitoring their phagocytic capacity ex vivo. We further describe techniques to label the neutrophils for in vivo tracking, and to determine their anti-metastatic capacity in vivo. All these techniques are essential for understanding how to obtain and characterize neutrophils with anti-tumor function.

Neutrophils play an important role not only in host defense against invading microorganisms, but are also involved in the immune surveillance of tumor cells. Here, we describe techniques related to the isolation of neutrophils with anti-tumor properties and methods for monitoring anti-tumor neutrophil function in vitro and in vivo.

항 종양 특성을 가진 분리 및 호중구의 특성

Neutrophils, the most abundant of all white blood cells in the human circulation, play an important role in the host defense against invading ...

Neutrophil Isolation and Analysis to Determine their Role in Lymphoma Cell Sensitivity to Therapeutic Agents

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of inflammation. They are key players in the innate immune system and play major roles in cancer biology. Neutrophils have been proposed as key mediators of malignant transformation, tumor progression, angiogenesis and in the modulation of the antitumor immunity; through their release of soluble factors or their interaction with tumor cells. To characterize the specific functions of neutrophils, a fast and reliable method is coveted for in vitro isolation of neutrophils from human blood. Here, a density gradient separation method is demonstrated to isolate neutrophils as well as mononuclear cells from the blood. The procedure consists of layering the density gradient solution such as Ficoll carefully above the diluted blood obtained from patients diagnosed with chronic lymphocytic leukemia (CLL), followed by centrifugation, isolation of mononuclear layer, separation of neutrophils from RBCsby dextran then lysis of residual erythrocytes. This method has been shown to isolate neutrophils &#8805; 90 % pure. To mimic the tumor microenvironment, 3-dimensional (3D) experiments were performed using basement membrane matrix such as Matrigel. Given the short half-life of neutrophils in vitro, 3D experiments with fresh human neutrophils cannot be performed. For this reason promyelocytic HL60 cells are differentiated along the granulocytic pathway using the differentiation inducers dimethyl sulfoxide (DMSO) and retinoic acid (RA). The aim of our experiments is to study the role of neutrophils on the sensitivity of lymphoma cells to anti-lymphoma agents. However these methods can be generalized to study the interactions of neutrophils or neutrophil-like cells with a large range of cell types in different situations.

Neutrophils are the most abundant type of white blood cells. The isolation of neutrophils from human blood by density gradient separation method and the differentiation of human promyelocytic (HL60) cells along the granulocytic pathway are described here; to test their role on sensitivity of lymphoma cells to anti-lymphoma agents.

호중구의 분리 및 분석 치료제에 림프종 세포 감도에서 자신의 역할을 확인하는 방법

Neutrophils are the most abundant (40% to 75%) type of white blood cells and among the first inflammatory cells to migrate towards the site of ...

Imaging the Neutrophil Phagosome and Cytoplasm Using a Ratiometric pH Indicator

Neutrophils are crucial to host innate defense and, consequently, constitute an important area of medical research. The phagosome, the intracellular compartment where the killing and digestion of engulfed particles take place, is the main arena for neutrophil pathogen killing that requires tight regulation. Phagosomal pH is one aspect that is carefully controlled, in turn regulating antimicrobial protease activity. Many fluorescent pH-sensitive dyes have been used to visualize the phagosomal environment. S-1 has several advantages over other pH-sensitive dyes, including its dual emission spectra, its resistance to photo-bleaching, and its high pKa. Using this method, we have demonstrated that the neutrophil phagosome is unusually alkaline in comparison to other phagocytes. By using different biochemical conjugations of the dye, the phagosome can be delineated from the cytoplasm so that changes in the size and shape of the phagosome can be assessed. This allows for further monitoring of ionic movement.

This manuscript describes a simple method to measure the phagosomal pH and area as well as the cytoplasmic pH of human and mouse neutrophils using the ratiometric indicator seminaphthorhodafluor (SNARF)-1, or S-1. This is achieved using live-cell confocal fluorescence microscopy and image analysis.

호중구 Phagosome 이미징 및 세포질은 비례의 pH 표시기를 사용하여

Neutrophils are crucial to host innate defense and, consequently, constitute an important area of medical research. The phagosome, the intracellular ...

Bioparticle Microarrays for Chemotactic and Molecular Analysis of Human Neutrophil Swarming in vitro

Neutrophil swarming is a cooperative process by which neutrophils seal off a site of infection and promote tissue reorganization. Swarming has classically been studied in vivo in animal models showing characteristic patterns of cell migration. However, in vivo models have several limitations, including intercellular mediators that are difficult to access and analyze, as well as the inability to directly analyze human neutrophils. Because of these limitations, there is a need for an in vitro platform that studies swarming with human neutrophils and provides easy access to the molecular signals generated during swarming. Here, a multistep microstamping process is used to generate a bioparticle microarray that stimulates swarming by mimicking an in vivo infection. The bioparticle microarray induces neutrophils to swarm in a controlled and stable manner. On the microarray, neutrophils increase in speed and form stable swarms around bioparticle clusters. Additionally, supernatant generated by the neutrophils was analyzed and 16 proteins were discovered to have been differentially expressed over the course of swarming. This in vitro swarming platform facilitates direct analysis of neutrophil migration and protein release in a reproducible, spatially controlled manner.

This protocol generates bioparticle microarrays that provide spatially controlled neutrophil swarming. It provides easy access to the mediators that neutrophils release during migration and allows for quantitative imaging analysis.

생체 외에서 인간 호중구 떼의 화학 및 분자 분석을 위한 생체 입자 미세어레이

Neutrophil swarming is a cooperative process by which neutrophils seal off a site of infection and promote tissue reorganization. Swarming has classically ...

생체공학

In Vitro Canine Neutrophil Extracellular Trap Formation: Dynamic and Quantitative Analysis by Fluorescence Microscopy

In response to invading pathogens, neutrophils release neutrophil extracellular traps (NETs), which are extracellular networks of DNA decorated with histones and antimicrobial proteins. Excessive NET formation (NETosis) and citH3 release during sepsis is associated with multiple organ dysfunction and mortality in mice and humans but its implications in dogs are unknown. Herein, we describe a technique to isolate canine neutrophils from whole blood for observation and quantification of NETosis. Leukocyte-rich plasma, generated by dextran sedimentation, is separated by commercially available density gradient separation media and granulocytes collected for cell count and viability testing. To observe real-time NETosis in live neutrophils, cell permeant and cell impermeant fluorescent nucleic acid stains are added to neutrophils activated either by lipopolysaccharide (LPS) or phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA). Changes in nuclear morphology and NET formation are observed over time by fluorescence microscopy. In vitro NETosis is further characterized by co-colocalization of cell-free DNA (cfDNA), myeloperoxidase (MPO) and citrullinated histone H3 (citH3) using a modified double-immunolabelling protocol. To objectively quantify NET formation and citH3 expression using fluorescence microscopy, NETs and citH3-positive cells are quantified in a blinded manner using available software. This technique is a specific assay to evaluate the in vitro capacity of canine neutrophils to undergo NETosis.

In Vitro Canine Neutrophil Extracellular Trap Formation: Dynamic and Quantitative Analysis by Fluorescence Microscopy

We describe methods to isolate canine neutrophils from whole blood and visualize NET formation in live neutrophils using fluorescence microscopy. Also described are protocols to quantify NET formation and citrullinated histone H3 (citH3) expression using immunofluorescence microscopy.

생체 외에서 형광 현미경 검사 법에 의해 개 호 중구 Extracellular 함정 형성: 역동적이 고 양적 분석

In response to invading pathogens, neutrophils release neutrophil extracellular traps (NETs), which are extracellular networks of DNA decorated with ...

Dual-Dye Live Cell Analysis를 사용한 NET 형성 정량화

Real-Time High Throughput Technique to Quantify Neutrophil Extracellular Traps Formation in Human Neutrophils

Neutrophils are myeloid-lineage cells that form a crucial part of the innate immune system. The past decade has revealed additional key roles that neutrophils play in the pathogenesis of cancer, autoimmune diseases, and various acute and chronic inflammatory conditions by contributing to the initiation and perpetuation of immune dysregulation through multiple mechanisms, including the formation of neutrophil extracellular traps (NETs), which are structures crucial in antimicrobial defense. Limitations in techniques to quantify NET formation in an unbiased, reproducible, and efficient way have restricted our ability to further understand the role of neutrophils in health and diseases. We describe an automated, real-time, high-throughput method to quantify neutrophils undergoing NET formation using a live cell imaging platform coupled with a membrane permeability-dependent dual-dye approach using two different DNA dyes to image intracellular and extracellular DNA. This methodology is able to help assess neutrophil physiology and test molecules that can target NET formation.

저자 스포트라이트: Quantifying Neutrophil Extracellular Traps in Disease and Drug Screening Using Dual-Color Live-Cell Imaging(이중 색상 생세포 이미징을 사용한 질병 및 약물 스크리닝에서 호중구 세포외 트랩 정량화)

We present an automated high-throughput method to quantify neutrophil extracellular traps (NETs) utilizing the live cell analysis system, coupled with a membrane permeability-dependent dual-dye approach.

인간 호중구에서 호중구 세포외 트랩 형성을 정량화하기 위한 실시간 고처리량 기법

Neutrophils are myeloid-lineage cells that form a crucial part of the innate immune system. The past decade has revealed additional key roles that ...

다양한 신호전달 경로를 스크리닝하기 위한 호중구 기능 분석

A Set of Screening Techniques for a Quick Overview of the Neutrophil Function

Neutrophils are known as one of the first lines of defense in the innate immune response and can perform many particular cellular functions, such as chemotaxis, reverse migration, phagocytosis, degranulation of cytotoxic enzymes and metabolites, and release of DNA as neutrophil extracellular traps (NETs). Neutrophils not only have tightly regulated signaling themselves, but also participate in the regulation of other components of the immune system. As fresh neutrophils are terminally differentiated, short-lived, and highly variable among individuals, it is important to make the most of the collected samples. Researchers often need to perform screening assays to assess an overview of the many neutrophil functions that may be affected by specific conditions under evaluation. A set of tests following a single isolation process of normal density neutrophils was developed to address this need, seeking a balance between speed, comprehensiveness, cost, and accuracy. The results can be used to reason and guide in-depth follow-up studies. This procedure can be carried out in an average time of 4 h and includes the evaluation of cell viability, reactive oxygen species (ROS) production, real-time migration, and phagocytosis of yeast on glass slides, leaving enough cells for more detailed approaches like omics studies. Moreover, the procedure includes a way to easily observe a preliminary suggestion of NETs after fast panoptic staining observed by light microscopy, with a lack of specific markers, albeit enough to indicate if further efforts in that way would be worthwhile. The diversity of functions tested combines common points among tests, reducing the analysis time and expenses. The procedure was named NeutroFun Screen, and although having&#160;limitations, it balances the aforementioned factors. Furthermore, the aim of this work is not a definite test set, but rather a guideline that can easily be adjusted to each lab&#39;s resources and demands.

저자 스포트라이트: NeutroFun Screen Protocol을 사용한 호중구 기능 평가의 속도, 비용 및 정확성 균형 맞추기 

This protocol features a set of neutrophil functional assays to be used as a screening method to cover functions from different signaling pathways. The protocol includes an initial and simple evaluation of cell viability, purity, reactive oxygen species production, real-time migration, phagocytosis, and a preliminary suggestion of neutrophil extracellular traps.

호중구 기능에 대한 간략한 개요를 위한 일련의 스크리닝 기법

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