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Resumo

Este vídeo mostra como induzir hipofisite auto-imunes em camundongos SJL e como avaliar sua gravidade pela histopatologia.

Resumo

Hipofisite auto-imune pode ser reproduzida experimentalmente pela injeção de proteínas pituitária misturado com adjuvante em camundongos suscetíveis 1. Modelos de ratos nos permitem estudar a forma como se desenrolam as doenças, muitas vezes fornecendo uma boa réplica dos mesmos processos que ocorrem nos seres humanos. Para algumas doenças auto-imunes, como diabetes tipo 1A, existem modelos (o mouse NOD) que, espontaneamente, desenvolver uma doença semelhante à contraparte humana. Para muitas outras doenças auto-imunes, no entanto, o modelo precisa ser induzida experimentalmente. Uma abordagem comum a este respeito é injetar o mouse com um antígeno dominante derivado do órgão em estudo. Por exemplo, os investigadores interessados ​​em tireoidite auto-imune injetar camundongos com tireoglobulina 2, e os interessados ​​em miastenia gravis injetá-las com o receptor de acetilcolina 3. Se o autoantígeno para uma determinada doença auto-imune não é conhecido, os investigadores injetar um extrato de proteína bruta do órgão alvo da reação auto-imune. Para hipofisite auto-imunes, a auto-antígeno patogênicos (s) continuam a ser identificados 4, e, assim, uma preparação de proteína bruta pituitária é usado. Neste artigo de vídeo demonstramos como induzir hipofisite auto-imune experimental em camundongos SJL.

Protocolo

Protocolo Experimental

Uma vez que o imunógeno pituitária está preparada (ver artigo companheiro), é administrado por via subcutânea em camundongos SJL (The Jackson Laboratories, estoque 000.686). Uma segunda injeção idêntico é repetido sete dias depois. Ratos são então usados ​​para coletar in vivo e post-mortem resultados.

Etapa 1. A injecção subcutânea de imunógeno em camundongos SJL pituitária

Ratos são os primeiros anestesiados pela injeção de 0,5 ml de 20 mg / ml 2,2,2 tribromoetanol (Avertin, TCI América, T-1420) por via intraperitoneal. Camundongos são injetados por via subcutânea com 100 l da emulsão pituitária que, conforme indicado no companheiro JOVE 2181 artigo, contém 1 mg de extrato de pituitária e 0,25 mg de adjuvante de Freund completo. A emulsão é injetado na região dorsal posterior da perna esquerda ((50 mL) e na região inguinal direita (50 mL). A emulsão pituitária é injetado novamente no dia 7 para os sites oposto (50 ul na região dorsal perna direita traseiras e 50 ul na região inguinal esquerda). Camundongos são monitorados diariamente durante os primeiros 3 dias e depois semanalmente até o dia do sacrifício, que normalmente é 28 dias após a primeira imunização.

Etapa 2. Coleção de resultados no vivo: ensaios de Sangue

O tecido mais utilizado para avaliar os resultados experimentais, enquanto os ratos ainda estão vivos é sangue. O sangue é rotineiramente elaborado 14 dias após a primeira imunização para medir os níveis séricos de anticorpos pituitária ou outros marcadores como as citocinas e quimiocinas.

O sangue é coletado de ratos vivem como se segue. Ratos são realizadas de forma segura pela nuca do pescoço e parte de trás do maxilar está localizado. Uma vez que a parte de trás do maxilar está localizado, 4 mm são lancetas usadas para perfurar o feixe vascular submandibular. Após coletar o sangue, a pressão sobre o lugar sobre a área usando um algodão embebido em álcool para evitar um hematoma. Sangue coletado é centrifugado a 2.000 g por 20 minutos, e armazenadas a -80 ° C até sua utilização.

Etapa 3. Coleção de post-mortem resultados: Pituitária histopatologia

Ratos são tipicamente sacrificado 28 dias após a primeira imunização. A característica fundamental necessário para estabelecer o diagnóstico de HAE é a infiltração da glândula pituitária por hematopoiéticas células mononucleares.

Os ratos são sacrificados, colocando-os em uma câmara de plástico selado que é perfundido com CO 2. Camundongos são mantidos na câmara para um total de 8 minutos. Após a eutanásia, a glândula pituitária é coletado como descrito no artigo do companheiro. A glândula pituitária doente aparece inchada e mais firmemente aderente à dura-máter ao redor. Pinças afiadas são usadas para soltar as meninges ao redor da hipófise. Uma vez que o move livremente pituitária no osso esfenóide, uma extremidade da glândula pituitária é apreendido com uma pinça e da glândula pituitária é cuidadosamente levantada. A glândula é então colocada em um tubo de microcentrífuga contendo 5 fixador de Beckstead. A glândula pituitária é fixo durante a noite, embrulhado em papel de lente, e colocado em uma fita cassete. As glândulas são então processadas utilizando o protocolo a seguir:

Número da Estação Reagente Tempo em minutos Temperatura (Celsius)
1 Álcool a 70% 5 25
2 Álcool a 70% 15 25
3 Álcool a 95% 15 25
4 Álcool a 95% 15 25
5 Álcool 100% 15 25
6 Álcool 100% 7,5 25
7 Álcool 100% 7,5 25
8 xileno 20 25
9 xileno 20 25
10 xileno 20 25
11 parafina 30 58
12 parafina 5 58
13 parafina 5 58

Após o processamento, as glândulas pituitárias são embebidos em parafina, e pelo menos cinco seções não consecutivas (5 m de espessura) são cortadas a partir de cada glândula. Após a secção, as glândulas são corados com hematoxilina e eosina, e analisadas para quantificar a infiltração mononuclear. A seção com a infiltração mais grave é selecionado para marcar. A gravidade é marcado por base uma estimativa subjetiva do grau de substituição hipófise anterior ou destruição por células do sistema imunológico: grau 0, nenhuma doença; grau 1, 2% -20% envolvimento; grau 2, 20% -30%; grau 3, 30% -50%; grau 4, 50% -90%; grau 5, mais de 90%. Todas as seções são marcados por dois indivíduos cegos para a fonte das seções.

Discussão

Quatro técnicas têm sido relatadas para induzir hipofisite em animais experimentais. A técnica descrita neste artigo, que é a injeção de proteínas pituitária misturado com adjuvante Freund s, é o mais antigo, que remonta a 1967 6, e foi melhorado mais recentemente 1. Outras técnicas são a injeção de glicoproteínas do vírus da rubéola solúveis em 1992 7, a injeção estereotáxica de um adenovírus diretamente na glândula pituitária, em 2002 8, eo transplante...

Divulgações

Não há conflitos de interesse declarados.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pelo NIH conceder DK080351 para PC, e por uma oferta generosa do Terry e família Kristine Gore.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
SJL mice (The Jackson Laboratories)stock 000686
2,2,2-Tribrom–thanol (Avertin)TCI AmericaT-1420
Beckstead’s fixative

Referências

  1. Tzou, S. C., Lupi, I., Landek, M., Gutenberg, A., Tzou, Y. M., Kimura, H., Pinna, G., Rose, N. R., Caturegli, P. Autoimmune Hypophysitis of SJL mice: Clinical Insights from a New Animal Model. Endocrinology. , (2008).
  2. Twarog, F. J., Rose, N. R. The production of thyroid autoantibodies in mice. J Immunol. 101, 242-2450 (1968).
  3. Patrick, J., Lindstrom, J. Autoimmune response to acetylcholine receptor. Science. 180, 871-872 (1973).
  4. Caturegli, P. Autoimmune hypophysitis: an underestimated disease in search of its autoantigen(s). J Clin Endocrinol Metab. 92, 2038-2040 (2007).
  5. Beckstead, J. H. A simple technique for preservation of fixation-sensitive antigens in paraffin-embedded tissues: addendum. J Histochem Cytochem. 43, 345-345 (1995).
  6. Levine, S. Allergic adenophypophysitis: new experimental disease of the pituitary gland. Science. 158, 1190-1191 (1967).
  7. Yoon, J. W., Choi, D. S., Liang, H. C., Baek, H. S., Ko, I. Y., Jun, H. S., Gillam, S. Induction of an organ-specific autoimmune disease, lymphocytic hypophysitis, in hamsters by recombinant rubella virus glycoprotein and prevention of disease by neonatal thymectomy. Journal of Virology. 66, 1210-1214 (1992).
  8. Davis, J. R., McMahon, R. F., Lowenstein, P. R., Castro, M. G., Lincoln, G. A., McNeilly, A. S. Adenovirus-mediated gene transfer in the ovine pituitary gland is associated with hypophysitis. J Endocrinol. 173, 265-271 (2002).
  9. Rotondo, F., Quintanar-Stephano, A., Asa, S. L., Lombardero, M., Berczi, I., Scheithauer, B. W., Horvath, E., Kovacs, K. Adenohypophysitis in rat pituitary allografts. Int J Exp Pathol. , (2010).

Reimpressões e Permissões

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