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Neste Artigo

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  • Reimpressões e Permissões

Resumo

O dry-terra Barnes labirinto é amplamente utilizado para medir a capacidade de navegação espacial em resposta a estímulos aversivos levemente. Nos dias consecutivos, o desempenho (por exemplo, a latência para localizar gaiola escape) de indivíduos do grupo controle melhora, indicativo de aprendizagem normal e memória. As diferenças entre ratos e camundongos exigem aparelhos e metodologia mudanças que estão detalhadas aqui.

Resumo

Aprendizagem espacial ea memória de roedores de laboratório é frequentemente avaliada por meio de capacidade de navegação em labirintos, o mais popular dos quais são o (Barnes) labirintos de água e em terra seca. Melhor desempenho mais sessões ou julgamentos é pensado para refletir o aprendizado ea memória da localização gaiola fuga / plataforma. Considerado menos estressante do que labirintos de água, o labirinto Barnes é um projeto relativamente simples de uma plataforma superior circular com vários furos igualmente espaçados em torno da borda do perímetro. Todos com exceção de um dos buracos são falsos de fundo ou cego fim, enquanto uma leva a uma gaiola de fuga. Um suave estímulo negativo (por exemplo, lâmpada de tecto brilhantes) proporcionar motivação para localizar a gaiola fuga. A latência para localizar a gaiola de escape pode ser medido durante a sessão, no entanto, os pontos de extremidade adicionais requerem tipicamente de gravação de vídeo. A partir dessas gravações de vídeo, o uso de software de monitoramento automatizado pode gerar uma variedade de pontos de extremidade que são semelhantes aos produzidos em labirintos de água (por exemplo, </ Em> distância percorrida, velocidade / velocidade, o tempo gasto no quadrante correto, o tempo gasto em movimento / repouso, e confirmação de latência). Tipo de estratégia de busca (ou seja, aleatória, serial, ou direta) pode ser classificado como bem. Construção de labirinto e de teste podem diferir Barnes metodologias para pequenos roedores, tais como ratos, e grandes roedores, tais como ratos. Por exemplo, enquanto pistas extra-labirinto são eficazes para os ratos, roedores selvagens menores podem necessitar de estímulos intra-labirinto com uma barreira visual em torno do labirinto. Estímulos apropriados devem ser identificados que motivar o roedor para localizar a gaiola fuga. Ambos Barnes e labirintos de água pode ser demorado como 4-7 ensaios do teste são tipicamente necessários para detectar a aprendizagem e da memória (por exemplo, um desempenho melhorado latências mais curtos ou comprimentos de percurso para localizar a plataforma de escape ou da gaiola) e / ou diferenças entre os grupos experimentais. Mesmo assim, o labirinto Barnes é uma avaliação de comportamento amplamente utilizado medir habilidades de navegação espacial eseu potencial perturbação por genéticas, manipulações neurocomportamentais, ou exposição a drogas / tóxico.

Introdução

Aprendizagem espacial ea memória em roedores de laboratório foi avaliada pela primeira vez com ratos privados de alimentos, que navegou um labirinto de becos para localizar um reforço alimentar 1. Várias décadas depois, um sistema de memória de referência espacial foi proposta 2. Em contraste com a memória de trabalho, que se refere à memória dentro de uma sessão de teste ou julgamento, memória de referência refere-se a memória através de sessões de testes ou ensaios e está mais intimamente relacionada com a memória de longo prazo.

Vários tipos de labirintos foram desenvolvidos como avaliações não invasivas desta aprendizagem dependente do hipocampo e memória espacial em pequenas e grandes roedores (eg labirinto aquático, múltiplos T-labirinto, radial braço labirinto e labirintos dry-terra) 3-6. Aqui, vamos nos concentrar na plataforma circular ou Barnes labirinto, descrita pela primeira vez em 1979 pelo Dr. Carol Barnes 7. Este labirinto foi usado para testar a aprendizagem espacial e a memória de navegação em uma vasta gama de modelos de roedores, incluindo ratos (RaTTU norvegicus), camundongos (Mus musculus), veados camundongos (Peromyscus maniculatus bairdii), ratos Califórnia (Peromyscus californicus) e roedores hystricomorph (por exemplo, degus [Octodon degus]) 8-13. Outras espécies avaliadas usando o labirinto Barnes incluem baratas americanas (Periplaneta americana) 14, cobras do milho (Elaphe guttata guttata) 15,   répteis Squamata (por exemplo, lagartos manchado do lado [Uta stansburiana]) 16, e primatas não-humanos (por exemplo, os lêmures de rato [Microcebus murinus]) 17. Nos nossos laboratórios, o desempenho do labirinto de Barnes tem sido utilizada como um índice de neurotoxicidade, após desenvolvimento bisfenol A (BPA) ou etinilestradiol (EE2) exposição 9-1113. Também é comumente utilizado para a fenotipagem comportamento de várias linhagens de camundongos 18-21, a avaliação dos efeitos do envelhecimento 7,22-28, e def relacionada com a doença de Alzheimericits em modelos animais 3,29-33, bem como os efeitos do exercício e alimentar, do ambiente, e alterações metabólicas 34-42.

Uma vantagem principal da utilização de Barnes labirinto é que ele induz menos stress nas questões relativas ao labirintos de água, tais como o labirinto de água de Morris 43, embora ambos possam induzir aumentos significativos na concentração plasmática de corticosterona em ratos 44. Como um labirinto terra seca, o labirinto Barnes podem ser mais relevantes para ethologically-roedores terrestres 45. Embora o desempenho do labirinto de água tem sido mostrado para ser mais sensível a alterações genéticas em ratos 3,46,47, o desempenho do labirinto de Barnes é mais sensível a determinadas outras alterações 48,49. Em modelos de roedores, onde o uso labirinto de água não é possível, o labirinto Barnes pode fornecer uma avaliação aperfeiçoá-lo de retenção de memória espacial 31. Os estímulos aversivos levemente normalmente utilizados no labirinto Barnes (luzes brilhantes), ou seja,no entanto, não pode proporcionar suficiente motivação para o roedor para localizar a gaiola de escape 45. Além disso, os roedores podem aprender que nenhuma punição ocorre se eles não entram na jaula de fuga. Assim, em vez de procurar ativamente para a gaiola de fuga, alguns roedores explorar ativamente o labirinto por longos períodos de cada tentativa. Como revisto por Kennard e Woodruff-Pak 24, este aumento da exploração vai prolongar a latência para localizar a gaiola de escape, comprimento de percurso, e aumentar o número de erros. Assim, a medição de vários parâmetros, incluindo latência, taxa de erro, o tempo gasto nos quadrantes corretas e incorretas, velocidade, tempo em movimento, tempo de descanso, e estratégia de busca, pode fornecer coletivamente um melhor indicador do espaço de aprendizagem de navegação e memória a capacidade de cada sujeito 8 -10. Além disso, o desempenho pode ser medido como a latência para localizar a primeira gaiola de escape (medida primária) ou a latência para entrar na gaiola de escape (medida total). Alguns têm argued que as medidas primárias de desempenho são um reflexo mais preciso da aprendizagem espacial do que as medidas totais 50. A maioria dos estudos, incluindo os exemplos descritos aqui, utilizar a latência para entrar na gaiola de escape para determinar a taxa de erro e a estratégia de pesquisa. Além disso, alguns sistemas de software de monitoramento tem um sistema de detecção de corpo de três pontos que podem medir as freqüências de cheirar os contra buracos incorretas corretas. Finalmente, o labirinto deve ser cuidadosamente limpos com etanol entre ensaios para remover sinais olfativos que poderiam fornecer pistas ou provar uma distração para os animais subseqüentes.

Projetos de labirinto Barnes variar, mas geralmente cada um tem 12 ou 20 possíveis buracos de fuga, apenas um dos que leva à casa ou uma gaiola de fuga. A gaiola de escape pode estar situada tanto diretamente abaixo do buraco de fuga no último labirinto (por labirintos sem paredes) ou embutido na parede em torno do labirinto. As pistas podem variar em tamanho de cerca de 16,5 centímetros de altura ou de largura (no mAZE) a uma linha horizontal 21,6 centímetros de largura colocados do chão ao teto da parede do quarto do lado de fora do labirinto. Figuras 1-5 mostram exemplos de projetos de labirinto de Barnes para espécies Peromyscus (Figura 1) e ratos (Figuras 2-5). Plugs ou fundos falsos deve cobrir os buracos nonescape para evitar que o animal caia para fora do labirinto. Tamanho da sala de teste pode variar (~ 20 m 2), mas deve ser grande o suficiente para fornecer um amplo espaço para o labirinto, habituar os animais para a sala, com capacidade de um computador com vídeo set-up (se usado), e um lugar para o experimentador de se sentar a uma distância (pelo menos ~ 122 cm) do aparelho labirinto de tal forma que a sua presença não interfere com o desempenho do animal. Cessão de fuga localização gaiola deve ser equilibrada entre os grupos de tratamento e sexo. Enquanto os procedimentos específicos descritos aqui não incluem girar o labirinto entre ensaios para desencorajar o uso do intra-labirinto odor pistas, alguns estudosincorporar esse procedimento 50. Em nossos procedimentos, o labirinto é limpo com etanol entre ensaios para eliminar sinais de odor.

Em localizar a gaiola fuga, três tipos de estratégias de busca foram definidos (originalmente chamados "padrões" de Barnes 7): 1) aleatórios, operacionalmente definidos como pesquisas localizadas de buracos separados por caminhos que cruzam o centro do labirinto, 2) de série, definidos como uma busca sistemática de buracos consecutivos no sentido horário ou sentido anti-horário, e 3) direta ou espacial, definida como navegar diretamente para o quadrante correto, sem atravessar o centro do labirinto mais de uma vez e com três ou menos erros. Em geral, com testes repetidos, roedores normalmente progredir através das estratégias de busca na ordem listada (aleatória, serial e direto) 51. Um ensaio de sonda sem gaiola de escape, também pode ser usado como uma medida adicional de memória 50.

O protocolo e representanteresultados aqui foram desenvolvidos dois tipos de roedores (pequenos roedores Peromyscus espécies, caso contrário chamados) e ratos. Enquanto esses procedimentos gerais podem também conter para camundongos endogâmica e / ou outbred (Mus musculus), outros estudos devem ser consultados sobre as diferenças de metodologia potenciais para estas últimas espécies 18-21.

Protocolo

1. Barnes Labirinto Procedimento para pequenos roedores

  1. Acenda as luzes do teto acima do labirinto e lugar "Não entre" os sinais do lado de fora da porta do laboratório.
  2. Traga ratinhos nas suas gaiolas normais para a sala de teste de aproximadamente 30 minutos antes de começar o primeiro ensaio para permitir a habituação. Se a sala é calma, pode não ser necessário incluir o ruído branco, caso contrário, esta medida de precaução pode ser considerada.
  3. Configure o programa de rastreamento.
  4. Remova cuidadosamente o primeiro rato a partir de sua gaiola e coloque na caixa de plástico de altura coberto. Coloque o seu escape (casa limpa) gaiola de polipropileno (29 centímetros x 19 cm x 13 cm) sob o buraco de fuga designado.
    1. Verifique se o papel que está bloqueando o tubo é removido desse buraco de fuga e todos os outros buracos são tapados.
    2. Desenhe cortina em torno do labirinto.
  5. Coloque a caixa de plástico com o mouse dentro no centro do labirinto e cerca de 8 segundos depois, suavemente take o animal fora da gaiola e coloque-a no labirinto.
    1. Depois de colocar o animal no centro do labirinto, tranquilamente passar para a área de computador (~ 150 cm do labirinto).
    2. Inicie o programa de software de monitoramento apropriado que já deve estar aberta para garantir o mínimo de tempo (em alguns segundos) decorrido a partir do momento que o animal foi colocado no labirinto até que o programa começa a documentar o seu desempenho.
  6. Observar o desempenho do animal de monitor de computador e número buraco registro, número de julgamento, a estratégia de pesquisa e número de erros cometidos. Um erro é definido como sniffing de um buraco incorreta. Avaliação da estratégia de busca pode ser feita ao vivo ou posteriormente com base no padrão de rastreamento.
    1. Estratégia de busca é classificado como direto (indo diretamente para a gaiola de fuga com 3 ou menos erros),
    2. De série (que viaja ao longo do perímetro do labirinto até que o compartimento de escape está localizado), ou
    3. Aleatório </ Strong> (atravessando o centro do labirinto várias vezes para verificar vários buracos).
  7. Parar o programa de rastreamento quando o animal tem todas as quatro patas dentro da gaiola de fuga.
  8. Se o mouse não consegue entrar na gaiola de fuga dentro de 5 min, guiá-la suavemente para o local correto e dentro da jaula de fuga. Deixe o rato permanecer na gaiola de fuga durante 2 minutos.
  9. Remover rato da gaiola fuga e coloque na gaiola casa.
  10. Pulverizar o topo labirinto e escapar gaiola com 70% de etanol e seque. Defina a primeira gaiola / mouse de lado por 30 minutos antes de executar seu segundo julgamento.
  11. Antes de iniciar a próxima mouse, tapar o buraco de fuga previamente correto e retirar a ficha de papel bloqueando o buraco do buraco fuga designada para o próximo assunto.
  12. Cada rato é testado para 2 ensaios / dia, com um intervalo inter-julgamento de aproximadamente 30 min.
  13. Repita essas etapas até que todos os ratos foram testados por sete dias consecutivos, o que pode aumentar a probabilidade de of observando melhorou o desempenho e / ou diferenças entre os grupos de tratamento, relativamente a apenas quatro dias de dados.

2. Barnes Labirinto Testes de ratos quando um programa de rastreamento não está disponível

  1. Verifique se o labirinto está em sua posição correta (diretamente centrado abaixo luzes), fundos falsos que bloqueiam buracos nonescape e evitar que o animal caia estão firmemente no labirinto, ea gaiola de fuga está no local designado para o primeiro assunto. Luzes do teto acima do labirinto deve ser ligado.
  2. Certifique-se de computador e câmera estão prontos e um cronômetro está disponível.
  3. Ligue o ruído branco para atenuar ruídos de outras localidades próximas. Cadeira do testador é cerca de 122 cm da borda mais próxima do topo labirinto e permanece no mesmo local durante todo o teste.
  4. Um timer (definido como 2 min) deve estar disponível (apenas necessário no 1 º dia de teste). Temporizador não deve "bip" ou não fazer barulho. Porta (s) para testar room deveria ter "Não entre" o sinal do lado de fora.
  5. Uma folha de ordem de teste para os sujeitos uma lista da ordem de teste sujeito, o número da sessão, o local da gaiola de fuga para cada sujeito número buraco, e áreas para gravar latência e hora do dia para cada paciente, bem como uma área para quaisquer notas necessárias (Figura 6).
  6. De 30-60 min antes do primeiro rato é para ser testado, trazer os animais nas suas gaiolas de origem para a sala de teste a fim de permitir a habituação.
  7. O tubo central que o rato é colocado no início de um ensaio está situado no centro do labirinto. Defina a folha de papelão, mostrando o primeiro ID animais no topo. Isso permite a gravação de vídeo para capturar o ID de animais para facilitar a identificação de cada sujeito, observando os primeiros segundos do vídeo.

Inicial Dia Teste 1:

  1. Iniciar a gravação de vídeo do computador (se utilizada) e incluem aproximadamente 5 segundos do julgamento com a folha de identificação animal para subject identificação. O nome do arquivo (ou data de criação) identificará dia / momento do teste.
  2. Retire o primeiro animal a partir de sua gaiola (confira identidade se vários animais estão em gaiola) e coloque delicadamente de cabeça para dentro da jaula de fuga. Cubra a gaiola de fuga com um fundo adicional falsa e começar a 2 min timer. Isto permite que o animal para se habituar à gaiola de escape.
  3. Após 2 min timer terminar, retire animais de gaiola escape (retire a tampa fundo falso, bem e definir longe de labirinto), folha de elevador ID e coloque imediatamente o rato dentro do tubo central. Tampa superior do tubo central com folha de papelão ID.
  4. Devagar e com cuidado levante tubo central com capa de papelão e reserve. Inicie o cronometro quando o tubo central é levantado acima do animal. Mover-se para sentar-se na cadeira do testador.
  5. Sente-se calmamente na cadeira, observando tanto o animal como o cronômetro. Cada animal tem um máximo de 5 minutos para encontrar a gaiola de escape.
  6. Se o rato encontra a gaiola de escape em menos de5 min, parar o cronômetro e latência de gravação e hora do dia na folha de pedido de teste. Remover animais de gaiola fuga e coloque de volta na gaiola casa.
  7. Se o rato não localizar a gaiola de escape dentro de 5 min, guiar suavemente o animal na gaiola de fuga e permitir que 15 seg a passar antes de retirar e devolver o animal na gaiola de origem.
    1. Esta duração de 15 segundos pode ser programado usando um relógio com uma segunda mão na parede da sala de teste.
    2. Tempo recorde do dia na folha de pedido de teste e registro que o rato não encontrou a gaiola fuga.
  8. Se o rato cai / pula o labirinto, o testador deve olhar para o cronômetro para o tempo. O testador deve, então, tentar recuperar rapidamente o animal.
    1. Se isso pode ser feito dentro de 10 segundos, troque o animal para o centro do labirinto e registrar o momento da queda / salto na folha de teste (se o testador pode distinguir entre uma queda ou salto, isso deve ser indicado). Continuar o julgamento.
    2. Se recuperando o animal demora mais do que 10 segundos, parar o cronômetro, e colocar animais de volta para a gaiola. Tempo recorde de outono / salto (se o testador pode distinguir entre uma queda ou salto, observe isso).
    3. Os dados de ensaios em que um animal caiu / saltou e não poderia ser recuperados dentro de 10 seg são omitidos análises estatísticas.
  9. Pare a gravação de vídeo no computador. Registre quaisquer comentários sobre o julgamento.
  10. Remova qualquer urina ou fezes do topo labirinto, spray com etanol 70%, e completamente seque. Remover gaiola fuga e limpar com álcool 70%.
  11. Coloque uma gaiola de escape limpo na colocação designada para o próximo assunto. Ter mais de uma gaiola de fuga permite a cada um de ar seco para diminuir o odor de etanol. Coloque um fundo falso limpa no buraco anterior (de modo que todos, mas um buraco tem um fundo falso e que um buraco contém a gaiola escape).
  12. Defina o tubo central com folha de identificação para o próximo assunto no centro do labirinto. Comece a gravação de vídeo no computador.
  13. Retire o próximo animal a ser testado, coloque na gaiola escape (se Dia / Sessão 1), e começar a 2 min temporizador (apenas se Dia / Sessão 1). Continue a partir do passo 2 acima. Cada sujeito recebe um julgamento / dia.
  14. Depois de todos os animais são testados, limpar o labirinto e escapar da gaiola, desligar luzes do teto, e ruído branco. Remover "Não entre" sinal (s) de porta (s).

Dias 2 a 7 Testing

  1. Configure salas de ensaio e labirinto para testes, conforme detalhado acima.
  2. Definir tubo central no centro do labirinto com a folha de ID no topo. Comece a gravação de vídeo. Retire o primeiro animal de gaiola e colocar no tubo central.
  3. Esta etapa diferencia 2-7 dias desde o dia 1, mais especificamente, nos dias 2-7, o sujeito é colocado directamente no centro do tubo, após a remoção a partir da gaiola e o período de habituação 2 min no interior da gaiola de escape não é feito.
  4. Repita o processo começando a partir do passo 4 acima.

3. Análises Estatísticaspara Barnes Maze Endpoints

  1. A análise dos dados pode exigir vários testes estatísticos. As variáveis ​​contínuas, como latência e taxa de erro, pode ser analisado como parcelas subdivididas no espaço e no tempo 52.
  2. Se alguns animais não localizar a fuga ou casa gaiola dentro do tempo máximo estipulado, os dados de latência pode ser atribuído como o máximo e analisados ​​por meio de testes ProcLife no SAS versão 9.2 análise de software.
    1. Este método é útil para a análise estatística dos dados de comportamento nas quais existe um limite superior de corte.
  3. Dados estratégia de busca pode ser analisado por meio de um projeto com medidas repetidas PROC GLIMMIX e SAS versão 9.2 análise de software.
    1. Esta primeira análise emprega uma cumulativo registrá-lo link e uma distribuição multinomial de tal forma que todas as três estratégias de busca (aleatória, serial e direta) estão incluídos nesta análise.
    2. Para determinar se os animais estão aprendendo a usar a estratégia de busca mais eficiente (direto), um em segundaA análise d na estratégia de pesquisa pode ser realizada em que as duas estratégias menos eficientes (aleatórios e em série) são combinados e comparados com a estratégia mais eficiente de pesquisa directa.
    3. Este último método resulta numa distribuição binomial e também emprega GLIMMIX PROC.

Resultados

Sexualmente maduros ratos de cervos machos são dependentes de maior capacidade de navegação espacial para localizar parceiros potenciais criadouros, que são amplamente divulgados em todo o ambiente. Tanto a exposição pré-natal e adulto de testosterona são essenciais na organização e activar esta tarde comportamento adulto masculino 53. Como tal, presume-se que a exposição precoce aos compostos de desregulação endócrina pode perturbar esse traço mais tarde nos machos. Para testar esta hipótese...

Discussão

As etapas críticas em procedimentos de testes de labirinto Barnes incluem: 1) proporcionar o bom estímulo aversivo levemente para motivar o animal para localizar a gaiola de fuga, 2) garantia de condições uniformes são mantidos através dos testes em animais (por exemplo, o tempo de teste, testes de pessoal, controle de ruído externo, e outros estímulos que podem afetar o desempenho), 3) se os ensaios são vídeos gravados, otimizando e assegurando a gravação de vídeo adequada e arquivo de volta, e 4)...

Divulgações

Este documento foi revisado de acordo com a United States Food and Drug Administration (FDA) política e aprovado para publicação. Aprovação não significa que o conteúdo reflecte necessariamente a posição ou opiniões da FDA nem menção de nomes comerciais ou produtos comerciais constituem endosso ou recomendação para o uso. Os resultados e conclusões deste relatório são de responsabilidade dos autores e não representam, necessariamente, a opinião da FDA. Os autores não têm interesses conflitantes e nada a revelar.

Agradecimentos

Os autores reconhecem o Sr. Eldin Jasarevic, o Sr. Scott Williams, Mr. Roger W. Meissen, Sarah A. Johnson, Dr. R. Michael Roberts, Dr. Mark R. Ellersieck, eo Dr. David C. Geary, da Universidade de Missouri, eo Sr. C. Lei Delbert eo pessoal cuidados com os animais no Centro Nacional de Investigação Toxicológica / FDA. Este trabalho foi financiado pelo NIH um Desafio Grant conceder ao CSR (RC1 ES018195), uma vantagem para Grant Mizzou (CSR e DCG), a Universidade de Missouri Faculdade de Medicina Veterinária prêmio faculdade (CSR) e E7318 protocolo no Centro Nacional de Investigação Toxicológica / FDA.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
NOTE: Those items that are for small rodents only are bolded. Those items that are for large rodents only are italicized. Items neither bolded nor italicized are for both.
Barnes Maze platform with 12 or 20 escape holes every 30°. For rats, each hole is 10.5 cm in diameter and 4 cm from the maze top edge. For use with automated tracking programs, a black top for white rodents or a white top for pigmented rodents is needed. For mice and rats, this circular top is 95 and 122 cm in diameter, respectively.US Plastics Corp, Lima, OH42625This is the top of the Barnes Maze and the surface that the rodent is placed upon. It can be constructed from a variety of materials (e.g., Plexiglas), but for endocrine disruptor work, polypropylene BPA-free material is optimal. One of the holes leads to the an escape cage; all other holes are blind-ending or false-bottomed. For the rat maze, small slides on the underside of the maze platform allow the escape cage and false bottoms to slide in.
2 in Polypropylene pipe plug (24)
2 in 90° Black polypropylene elbow (12)
2 in x 6 in Polypropylene pipe nipple (1)
US Plastics Corp, Lima, OH30724
32086
30712
These are only necessary for the small rodent (e.g. mouse) Barnes Maze. These adaptations are either blind-ending tubes/elbows or one of the tubes is connected to the pipe nipple that then leads to the escape cage.
False bottoms for rat Barnes MazeThese were custom made of ABS plastic and vacuum molded for the rat maze apparatus.
Circular aluminum wall/barrier (50 cm high) around the mazeAce Hardware, Columbia, MOIn the case of small rodents (e.g., mice), this barrier prevents them from falling off the maze; the rat apparatus generally does not require this. The wall may not be needed for laboratory mice that are relatively tame.
Support stand for maze platform topUS Plastics Corp, Lima, OH42625The stand supports the maze platform top such that it is elevated above the floor (typically, 70-100 cm) to motivate the rodent to locate the escape cage. The stand can be constructed of any material.
White noiseSleepMate Sound Conditioner,
Marpac, Rocky Point, NC
980ABackground noise may be used to block out peripheral acoustic cues that may confound Barnes Maze testing across trials and animals
Light fixtures and 300-500 W bulbs encased in aluminum shells. For example, Utilitech 500 W halogen portable work lights.Ace Hardware or LowesBright lights provide a mildly aversive stimulus which motivate the rodent to locate the escape cage. The lights are generally suspended ~150 cm above the maze top.
Escape cage. For small rodents, this can be a polypropylene cage (27.8 cm x 7.5 cm x 13 cm).Ancare, Bellmore, NYN40 PPThe rat escape cage here was custom built and has a ramp leading into the escape cage.
Opaque tube (rats only) (27 cm diameter; 23 cm height) with a piece of thick cardboard to cover the top.The tube is placed in the center of the maze and the rat is placed into the tube from the top which is covered with the cardboard. A handle on the outside of the tube allows easier lifting of the tube, which then begins the trial. The tube can be constructed of any material, but should be opaque.
High resolution video camera (e.g., Panasonic Digital Video Camera)Panasonic, Secaucus, NJICV19458The video camera is positioned overhead and records trials for later analysis.
Extra- or intra-maze geometric cues made of high quality cardboard construction paperany office supply store, such as StaplesThese visual cues orient the animal within the maze environment, providing cues as to the spatial location of the escape cage; in rats, extra-maze cues on the walls work well, whereas in small rodents that require a wall around the maze, intra-maze cues must be used.
Black curtain to surround the maze (small rodents only)any fabric and crafts store, such as Jo-Ann FabricsA black curtain is used in small rodents (especially wild species, e.g. Peromyscus) to maintain attention within the maze confines.
70% EthanolFisher ScientificBP2818-4After each trial, the maze top and escape cage are cleaned to eliminate potential odor cues for consecutively tested rodents.
Tracking software program, such as Ethovision, and computer with appropriate video card and substantial (1 TB or more) hard-drive space. Alternatively, videos can be recorded directly to the computer for later analysis using a program such as Win TV (Hauppauge Computer Works, Inc.).Noldus (Leesburg, VA)Tracking software is required to analyze trials for latency to locate the escape cage, velocity, distance traveled, time spent resting, time spent moving, time spent in the correct versus incorrect quadrants, time spent around the escape hole, number of errors or entries into incorrect holes, and overall search strategy employed to find the escape cage.
External hard drives, such as Seagate or WD, with a minimum 1-2 TB of memoryAny office supply store, such as Staples.Videorecordings should be backed up in at least one separate location.
Videorecording program, e.g. WinTV programHauppauge Computer Works, Inc.,
Hauppauge, NY
If tracking software is not available at the time of the testing,
the trials should be video-recorded for later analysis

Referências

  1. Tolman, E., Gleitman, H. Studies in spatial learning: place and response learning under different degrees of motivation. J. Exp. Psychol. 39, 653-659 (1949).
  2. Olton, D. S., Papas, B. C. Spatial memory and hippocampal function. Neuropsychologia. 17, 669-682 (1979).
  3. Stewart, S., Cacucci, F., Lever, C. Which memory task for my mouse? A systematic review of spatial memory performance in the Tg2576 Alzheimer's mouse model. J. Alzheimers Dis. 26, 105-126 (2011).
  4. Sharma, S., Rakoczy, S., Brown-Borg, H. Assessment of spatial memory in mice. Life Sci. 87, 521-536 (2010).
  5. Brown, W. The effects of intra-maze tetanizing shock upon the learning and behavior of the rat in a multiple-T maze. J. Genet. Psychol. 76, 313-322 (1950).
  6. Morris, R. Development of a water-aze procedure for studying sptial learning in the rat. J. Neurosci. Methods. 11, 47-60 (1984).
  7. Barnes, C. A. Memory deficits associated with senescence: a neurophysiological and behavioral study in the rat. J. Comp. Physiol. Psychol. 93, 74-104 (1979).
  8. Jasarevic, E., Williams, S. A., Roberts, R. M., Geary, D. C., Rosenfeld, C. S. Spatial navigation strategies in Peromyscus: a comparative study. Anim. Behav. 84, 1141-1149 (2012).
  9. Jasarevic, E., et al. Disruption of adult expression of sexually selected traits by developmental exposure to bisphenol A. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 108, 11715-11720 (2011).
  10. Williams, S. A., et al. Effects of developmental bisphenol A exposure on reproductive-related behaviors in California mice (Peromyscus californicus): A monogamous animal model. PLoS ONE. 8, (2013).
  11. Ferguson, S. A., Law, C. D., Abshire, J. S. Developmental treatment with bisphenol A causes few alterations on measures of postweaning activity and learning. Neurotoxicol. Teratol. 34, 598-606 (2012).
  12. Popovic, N., Madrid, J. A., Rol, M. A., Caballero-Bleda, M., Popovic, M. Barnes maze performance of Octodon degus is gender dependent. Behav. Brain Res. 212, 159-167 (2010).
  13. Jasarevic, E., et al. Sex and dose-dependent effects of developmental exposure to bisphenol A on anxiety and spatial learning in deer mice (Peromyscus maniculatus bairdii) offspring. Horm. Behav. 63, 180-189 (2013).
  14. Brown, S., Strausfeld, N. The effect of age on a visual learning task in the American cockroach. Learn. Mem. 16, 210-223 (2009).
  15. Holtzman, D. A., Harris, T. W., Aranguren, G., Bostock, E. Spatial learning of an escape task by young corn snakes, Elaphe guttata guttata. Anim. Behav. 57, 51-60 (1999).
  16. Ladage, L. D., Roth, T. C., Cerjanic, A. M., Sinervo, B., Pravosudov, V. V. Spatial memory: are lizards really deficient. Biol. Lett. 8, 939-941 (2012).
  17. Languille, S., Aujard, F., Pifferi, F. Effect of dietary fish oil supplementation on the exploratory activity, emotional status and spatial memory of the aged mouse lemur, a non-human primate. Behav. Brain Res. 235, 280-286 (2012).
  18. Patil, S. S., Sunyer, B., Hoger, H., Lubec, G. Evaluation of spatial memory of C57BL/6J and CD1 mice in the Barnes maze, the Multiple T-maze and in the Morris water. Behav. Brain Res. 198, 58-68 (2009).
  19. Koopmans, G., Blokland, A., van Nieuwenhuijzen, P., Prickaerts, J. Assessment of spatial learning abilities of mice in a new circular maze. Physiol. Behav. 79, 683-693 (2003).
  20. Holmes, A., Wrenn, C. C., Harris, A. P., Thayer, K. E., Crawley, J. N. Behavioral profiles of inbred strains on novel olfactory, spatial and emotional tests for reference memory in mice. Genes Brain Behav. 1, 55-69 (2002).
  21. Youn, J., et al. Finding the right motivation: genotype-dependent differences in effective reinforcements for spatial learning. Behav. Brain Res. 226, 397-403 (2012).
  22. Barrett, G. L., Bennie, A., Trieu, J., Ping, S., Tsafoulis, C. The chronology of age-related spatial learning impairment in two rat strains, as tested by the Barnes maze. Behav. Neurosci. 123, 533-538 (2009).
  23. Prut, L., et al. Aged APP23 mice show a delay in switching to the use of a strategy in the Barnes maze. Behav. Brain Res. 179, 107-110 (2007).
  24. Kennard, J. A., Woodruff-Pak, D. S. Age sensitivity of behavioral tests and brain substrates of normal aging in mice. Front. Aging Neurosci. 3, 9 (2011).
  25. Stouffer, E. M., Yoder, J. E. Middle-aged (12 month old) male rats show selective latent learning deficit. Neurobiol. Aging. 32, 2311-2324 (2011).
  26. Barreto, G., Huang, T. T., Giffard, R. G. Age-related defects in sensorimotor activity, spatial learning, and memory in C57BL/6 mice. J. Neurosurg. Anesthesiol. 22, 214-219 (2010).
  27. Barnes, C. A., McNaughton, B. L. An age comparison of the rates of acquisition and forgetting of spatial information in relation to long-term enhancement of hippocampal synapses. Behav. Neurosci. 99, 1040-1048 (1985).
  28. Bach, M. E., et al. Age-related defects in spatial memory are correlated with defects in the late phase of hippocampal long-term potentiation in vitro and are attenuated by drugs that enhance the cAMP signaling pathway. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 96, 5280-5285 (1999).
  29. O'Leary, T. P., Brown, R. E. Visuo-spatial learning and memory deficits on the Barnes maze in the 16-month-old APPswe/PS1dE9 mouse model of Alzheimer's disease. Behav. Brain Res. 201, 120-127 (2009).
  30. Reiserer, R. S., Harrison, F. E., Syverud, D. C., McDonald, M. P. Impaired spatial learning in the APPSwe + PSEN1DeltaE9 bigenic mouse model of Alzheimer's disease. Genes Brain Behav. 6, 54-65 (2007).
  31. Yassine, N., et al. Detecting spatial memory deficits beyond blindness in tg2576 Alzheimer mice. Neurobiol. Aging. 34, 716-730 (2013).
  32. Walker, J. M., et al. Spatial learning and memory impairment and increased locomotion in a transgenic amyloid precursor protein mouse model of Alzheimer's disease. Behav. Brain Res. 222, 169-175 (2011).
  33. Banaceur, S., Banasr, S., Sakly, M., Abdelmelek, H. Whole body exposure to 2.4 GHz WIFI signals: effects on cognitive impairment in adult triple transgenic mouse models of Alzheimer's disease (3xTg-AD). Behav. Brain Res. 240, 197-201 (2013).
  34. Fedorova, I., Hussein, N., Baumann, M. H., Di Martino, C., Salem, N. An n-3 fatty acid deficiency impairs rat spatial learning in the Barnes maze. Behav. Neurosci. 123, 196-205 (2009).
  35. King, M. R., Anderson, N. J., Guernsey, L. S., Jolivalt, C. G. Glycogen synthase kinase-3 inhibition prevents learning deficits in diabetic mice. J. Neurosci. Res. 91, 506-514 (2013).
  36. Enhamre, E., et al. The expression of growth hormone receptor gene transcript in the prefrontal cortex is affected in male mice with diabetes-induced learning impairments. Neurosci. Lett. 523, 82-86 (2012).
  37. Agrawal, R., Gomez-Pinilla, F. Metabolic syndrome' in the brain: deficiency in omega-3 fatty acid exacerbates dysfunctions in insulin receptor signalling and cognition. J. Physiol. 590, 2485-2499 (2012).
  38. Li, J., Deng, J., Sheng, W., Zuo, Z. Metformin attenuates Alzheimer's disease-like neuropathology in obese, leptin-resistant mice. Pharmacol. Biochem. Behav. 101, 564-574 (2012).
  39. Teixeira, A. M., et al. Exercise affects memory acquisition, anxiety-like symptoms and activity of membrane-bound enzyme in brain of rats fed with different dietary fats: impairments of trans fat. Neuroscience. 195, 80-88 (2011).
  40. Steinman, M. Q., Crean, K. K., Trainor, B. C. Photoperiod interacts with food restriction in performance in the Barnes maze in female California mice. Eur. J. Neurosci. 33, 361-370 (2011).
  41. Walton, J. C., et al. Photoperiod-mediated impairment of long-term potention and learning and memory in male white-footed mice. Neuroscience. 175, 127-132 (2011).
  42. Wong-Goodrich, S. J., et al. Voluntary running prevents progressive memory decline and increases adult hippocampal neurogenesis and growth factor expression after whole-brain irradiation. Cancer Res. 70, 9329-9338 (2010).
  43. Holscher, C. Stress impairs performance in spatial water maze learning tasks. Behav. Brain Res. 100, 225-235 (1999).
  44. Harrison, F. E., Hosseini, A. H., McDonald, M. P. Endogenous anxiety and stress responses in water maze and Barnes maze spatial memory tasks. Behav. Brain Res. 198, 247-251 (2009).
  45. Sunyer, B., Patil, S., Hoger, H., Lubec, G. Barnes maze, a useful task to assess spatial reference memory in mice. Nat. Protoc. , (2007).
  46. Takeuchi, H., et al. P301S mutant human tau transgenic mice manifest early symptoms of human tauopathies with dementia and altered sensorimotor gating. PLoS ONE. 6, (2011).
  47. Mathis, C., Bott, J. B., Candusso, M. P., Simonin, F., Cassel, J. C. Impaired striatum-dependent behavior in GASP-1-knock-out mice. Genes Brain Behav. 10, 299-308 (2011).
  48. Lewejohann, L., et al. Role of a neuronal small non-messenger RNA: behavioural alterations in BC1 RNA-deleted mice. Behav. Brain Res. 154, 273-289 (2004).
  49. Raber, J., et al. Radiation-induced cognitive impairments are associated with changes in indicators of hippocampal neurogenesis. Radiat. Res. 162, 39-47 (2004).
  50. Harrison, F. E., Reiserer, R. S., Tomarken, A. J., McDonald, M. P. Spatial and nonspatial escape strategies in the Barnes maze. Learn. Mem. 13, 809-819 (2006).
  51. Vorhees, C. V. Methods for detecting long-term CNS dysfunction after prenatal exposure to neurotoxins. Drug Chem. Toxicol. 20, 387-399 (1997).
  52. Steel, R. G. . Principles and Procedures of Statistics: A Biometrical Approach 3rd edn. , 400-428 (1996).
  53. Galea, L. A., Kavaliers, M., Ossenkopp, K. P. Sexually dimorphic spatial learning in meadow voles Microtus pennsylvanicus and deer mice Peromyscus maniculatus. J. Exp. Biol. 199, 195-200 (1996).
  54. Gubernick, D. J., Teferi, T. Adaptive significance of male parental care in a monogamous mammal. Proc. Biol. Sci. 267, 147-150 (2000).
  55. Gubernick, D. J., Alberts, J. R. The biparental care system of the California mouse, Peromyscus californicus. J. Comp. Psychol. 101, 169-177 (1987).
  56. Williams, M. T., et al. Long-term effects of neonatal methamphetamine exposure in rats on spatial learning in the Barnes maze and on cliff avoidance, corticosterone release, and neurotoxicity in adulthood. Brain Res. Dev. Brain Res. 147, 163-175 (2003).
  57. Inman-Wood, S. L., Williams, M. T., Morford, L. L., Vorhees, C. V. Effects of prenatal cocaine on Morris and Barnes maze tests of spatial learning and memory in the offspring of C57BL/6J mice. Neurotoxicol. Teratol. 22, 547-557 (2000).
  58. Pompl, P. N., Mullan, M. J., Bjugstad, K., Arendash, G. W. Adaptation of the circular platform spatial memory task for mice: use in detecting cognitive impairment in the APP(SW) transgenic mouse model for Alzheimer's disease. J. Neurosci. Methods. 87, 87-95 (1999).
  59. O'Leary, T. P., Brown, R. E. The effects of apparatus design and test procedure on learning and memory performance of C57BL/6J mice on the Barnes maze. J. Neurosci. Methods. 203, 315-324 (2012).
  60. O'Leary, T. P., Brown, R. E. Optimization of apparatus design and behavioral measures for the assessment of visuo-spatial learning and memory of mice on the Barnes maze. Learn. Mem. 20, 85-96 (2013).
  61. Bredy, T. W., Lee, A. W., Meaney, M. J., Brown, R. E. Effect of neonatal handling and paternal care on offspring cognitive development in the monogamous California mouse (Peromyscus californicus). Horm. Behav. 46, 30-38 (2004).
  62. Foster, D. J., Knierim, J. J. Sequence learning and the role of the hippocampus in rodent navigation. Curr. Opin. Neurobiol. 22, 294-300 (2012).
  63. Lipton, P. A., Eichenbaum, H. Complementary roles of hippocampus and medial entorhinal cortex in episodic memory. Neural. , 258-467 (2008).
  64. Wolbers, T., Hegarty, M. What determines our navigational abilities. Trends Cogn. Sci. 14, 138-146 (2010).

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