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Neste Artigo

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  • Resumo
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  • Agradecimentos
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  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Here, we present an overview of the preparation and animal handling procedures required to safely perform medical imaging in an animal biosafety level 4 laboratory. Computed tomography of a mock-infected guinea pig illustrates these procedures that may be used to evaluate the disease caused by a high consequence pathogen.

Resumo

Medical imaging using animal models for human diseases has been utilized for decades; however, until recently, medical imaging of diseases induced by high-consequence pathogens has not been possible. In 2014, the National Institutes of Health, National Institute of Allergy and Infectious Diseases, Integrated Research Facility at Fort Detrick opened an Animal Biosafety Level 4 (ABSL-4) facility to assess the clinical course and pathology of infectious diseases in experimentally infected animals. Multiple imaging modalities including computed tomography (CT), magnetic resonance imaging, positron emission tomography, and single photon emission computed tomography are available to researchers for these evaluations. The focus of this article is to describe the workflow for safely obtaining a CT image of a live guinea pig in an ABSL-4 facility. These procedures include animal handling, anesthesia, and preparing and monitoring the animal until recovery from sedation. We will also discuss preparing the imaging equipment, performing quality checks, communication methods from "hot side" (containing pathogens) to "cold side," and moving the animal from the holding room to the imaging suite.

Introdução

A missão do Instituto Nacional de Alergia e Doenças Infecciosas (NIAID) Facilidade Integrado de Pesquisa em Fort Detrick em Frederick MD (IRF-Frederick) é a realização de pesquisa de doenças infecciosas emergentes para compreender os processos de doença clínicos que se correlacionam com a gravidade da induzida por microbiano doença. O IRF-Frederick tem uma capacidade única para realizar imagiologia médica em modelos animais de patógenos de alta-consequência num laboratório 1 NBA-4. Os métodos de imagem disponíveis para os investigadores incluem: tomografia computadorizada (TC), ressonância magnética (MRI), tomografia por emissão de positrões (PET), de fóton único tomografia computadorizada (SPECT), ultra-som, raios-X e fluoroscopia. Pesquisadores usam recursos de imagem disponíveis para monitorar a progressão da doença e avaliar a eficácia das intervenções, tais como tratamento de drogas e de vacinação, em estudos longitudinais.

As modalidades de imagem no IRF-Frederick foram especificamenteprojetado para manter os principais componentes do equipamento fora da alta contenção 2,3 e acessível para manutenção e reparação. Este projeto separa a suíte de imagem em (contendo agente patogénico) "quente" e "frio lados." Para conseguir esta separação, os tubos foram construídos especialmente concebidos para alargar o espaço de alta contenção com os orifícios de cada modalidade de imagiologia (Figura 1). Além de proporcionar contenção biológica, estes tubos proteger o equipamento de imagem a partir de gases e químicos utilizados para descontaminar o laboratório de alta contenção. cientistas e tecnólogos de imagem operar os scanners do "lado frio", enquanto Medicina Comparativa (CM) punho equipe e monitorar animais no "lado quente". Uma vez que a equipe CM deve trabalhar em estreita colaboração com cientistas de imagem para coordenar estas experiências, esta separação pode resultar em desafios de comunicação.

Depois de avaliar as opções disponíveis, a equipe CM estavam foraequipado com peças de orelha Bluetooth que transmitem ondas de rádio ultra-alta frequência de curto comprimento de onda para os telefones usados ​​para chamar o pessoal de imagem fora do confinamento. Devido à concepção da instalação, os pontos de acesso sem fios tiveram que ser instalados em cada um dos quartos para ultrapassar a interferência do sinal provocada por as camadas de cimento e do aço entre o "quente" e "frio" lados. Assim, a comunicação entre a equipe CM vestindo ternos de pressão positiva ruidosos e funcionários de imagem fora de alta contenção agora é confiável. Câmeras também foram instalados no lado quente dos quartos de imagem para imagem pessoal para ver a atividade no "lado quente". Com as câmeras, a equipe de imagem pode orientar técnicos CM com posicionamento animal ou quaisquer alterações de última hora para o protocolo de imagem.

Todo o trabalho na NBA-4 laboratório terno IRF-Frederick requer pessoal a usar de pressão positiva encapsular ternos 4. Vestindo estes ternos reduz a mobilidade, e a pesada tardex luvas ligados ao terno além de até três camadas adicionais de luvas compromete destreza. O resultado é que os procedimentos demoram mais tempo para ser concluído e tarefas que exigem habilidade motora fina são muito mais difíceis. Como o nível de biossegurança aumenta, manejo dos animais e manipulações tornam-se mais difícil e demorado, especialmente com pequenos animais. Procedimentos em um laboratório NBA-4 pode levar até 2-3 vezes mais do que um laboratório NBA-2.

O objetivo deste artigo é demonstrar visualmente os desafios associados com modelos de imagens de animais em um ambiente NBA-4 utilizando CT procedimento de digitalização de uma cobaia como um exemplo.

Protocolo

Este protocolo segue as seguintes orientações de cuidados de animais. Os animais foram alojados em uma instalação credenciada pela Associação de Avaliação e Acreditação do Laboratório de Animal Care International. Todos os procedimentos experimentais foram aprovados pelo Instituto Nacional de Alergia e Doenças Infecciosas, da Divisão de Investigação Clínica, Animal Care e do Comitê Use e estavam em conformidade com os regulamentos Animal Welfare Act, política de Serviço de Saúde Pública, e o Guia para o Cuidado e Uso de Animais de laboratório recomendações.

1. Prepare CT Scanner (em "Cold Side")

  1. Condicionar o Tubo de Raios-X
    1. Verifique se nenhum membro da equipe está na sala de digitalização e mesa o assunto está vazio.
    2. Executar o procedimento tubo condicionado de acordo com as especificações do fabricante do scanner.
  2. Executar a calibração Air
    1. Certifique-se de que nenhum objeto está no campo de digitalização.
    2. Execute o procedimento de calibragem de ar de acordo com as especificações do fabricante do scanner. Em muitas plataformas, esta calibração é automática ou semi-automática.
  3. Execute Qualidade de digitalização de controle (em "Hot Side")
    1. Complete os procedimentos de entrada de laboratório NBA-4 terno (descritos em detalhe em referência 5) com a adição de uma etapa extra. Se os procedimentos envolvem a exposição aos materiais radioactivos, clipe de um dosímetro para os scrubs sob o fato de protecção. Por sua vez, o dosímetro a cada 2 meses para o cálculo da exposição à radiação.
    2. Coloque a cabeça eo corpo fantasma CT, que é feito fora do ar, água e Teflon, no suporte apropriado na mesa de digitalização.
  4. Execute Qualidade de digitalização de controle (em "Cold Side")
    1. A partir do lado frio, avançar o fantasma para o centro do furo 6.
    2. Adquirir uma varredura usando parâmetros de controle laboratorial padronizado de qualidade (QC) para ensure o scanner está dentro das especificações do fabricante.
    3. Execute QC análise computadorizada de imagens para calcular os desvios médios e padrão de intensidade de sinal dentro de regiões de interesse centrado sobre cada tipo de material (ar, água ou Teflon) de acordo com o protocolo do fabricante.
    4. Notificar os funcionários CM que o tomógrafo está pronto para uso.
    5. Verifique as informações dos animais (número de identificação, peso, data de nascimento) com a equipe CM.
  5. Registre Informação Assunto para o Banco de Dados do Paciente.
    1. No console do tomógrafo (no "lado frio"), acesse Sistema de Informação de Radiologia do scanner (RIS). Verifique se o RIS é preenchida com os detalhes do cronograma de digitalização.
    2. Selecione o assunto e dados demográficos, como número de identificação, idade, data de nascimento e data do exame atual; em seguida, o tipo de exame deve preencher automaticamente.
    3. inserir manualmente peso assunto.
    4. Escolha correta suorientação bject no CT pórtico (por exemplo, de cabeça, pés em primeiro lugar, de bruços, em decúbito dorsal).

2. Prepare Áreas de Trabalho no terno do Laboratório NBA-4

  1. Prepare o II Biossegurança Gabinete Class (BSC) ou Downdraft mesa na sala Procedimento Animal. Ligue BSC (ou Downdraft Table) pelo menos 10 min antes do uso.
    1. solução desinfectante (acetato de cloreto de amónio dimetil benzil amónio cloreto de dimetil-benzil-N-alquil-, N-alquilo) Limpar e desinfectar superfícies interiores do BSC ou a superfície de topo da mesa de corrente descendente com um desinfectante aprovado, tal como 5% de amónio quaternário dupla. Pulverizar as superfícies interiores do BSC ou a superfície de topo da mesa de corrente descendente e limpar superfícies secas após 10 min de tempo de contacto. Spray e limpe as superfícies com 70% de etanol para remover desinfectante residual.
    2. equipamentos lugar e suprimentos necessários na tabela de BSC ou downdraft, incluindo a caixa indução da anestesia e animais luvas de manipulação.
    3. ol>
    4. Prepare o CT Scanner Bed.
      1. Defina-se o dispositivo de retenção de animais na cama CT.
      2. Set-up O monitor de sinais vitais para detectar a frequência cardíaca e saturação de oxigênio. Se sessão de digitalização é mais do que 10 min, temperatura monitor.
    5. Prepare o aparelho de anestesia.
      1. Verificar o volume isoflurano no vaporizador e adicionar mais isoflurano, se necessário.
      2. Realizar um teste de vazamento através da pressurização do circuito respiratório anestésico com oxigénio, verificando para o gás escapou, e inspecionar visualmente a máquina de anestesia para vazamentos 1.
        1. Se for detectado um vazamento, determinar a fonte, corrija o problema e executar um teste de vazamento de acompanhamento para verificar as correções foram devidamente implementadas.
      3. Pesar o recipiente de eliminação descartável que capta gás anestésico resíduos. Se o recipiente é ≥50 g sobre o peso inicial do recipiente, substitua canister 7.
    title "> 3. Transporte de Animal de quarto animal Procedimento e Preparação de Anestesia Indução no CT quarto Scanner (em" Hot Side ")

    1. Transfira a gaiola de habitação a cobaia de um dos Rodent Dadas Quartos Adjacentes para a Suíte de imagem para o BSC Classe II.
      1. Verifique se o ID animal.
      2. Remova o cartão de gaiola e manter com o animal.
    2. Abra a tampa para a gaiola e don luvas de couro de proteção de animais sobre as luvas terno de pressão positiva. Levante com cuidado a cobaia, colocar animais na caixa de indução da anestesia, e cobrir a caixa com a tampa.
    3. Remova a caixa de indução anestésica contendo o animal do BSC Classe II e colocá-lo em um carrinho de transporte.
    4. Usando o carrinho, levar o animal ao quarto do varredor do CT.
    5. Na sala scanner CT, ligue imediatamente o recipiente de eliminação e aparelho de anestesia para a caixa de indução. Ligue o gás oxigénio para a caixa de indução e definir o vaporizador para DelivER 4% de isoflurano para indução inicial da anestesia 8.
    6. Monitorar o animal durante a indução da anestesia para a profundidade adequada da anestesia (por exemplo, não responde a estímulos externos, tônus muscular, respiratório estável e taxas de coração) 8.
    7. Desligue a anestesia para a caixa de indução quando a cobaia está totalmente anestesiado.

    4. Organizar Assunto on Imaging Bed no CT Scanner (no "lado quente")

    1. Remova a anestesiado Cobaia da Caixa de Indução e colocar no Imagiologia Bed.
      1. Coloque a cobaia na almofada participação numa posição de bruços.
      2. Aplicar pomada oftálmica em ambos os olhos para proteger o epitélio corneano de secar.
    2. Administrar Manutenção isoflurano Anestesia.
      1. Coloque o cone do nariz na cobaia e transformar em gás para entregar 1 L / min de oxigênio para o nariz cone 8.
      2. Definir o vaporizador para entregar 2-3%isoflurano para a cobaia através do cone do nariz.
      3. Uma vez que o tema atinja o plano desejado de anestesia (nenhum movimento, ~ 60 respirações por minuto), reduza o ajuste para entregar 1,0-1,5% de isoflurano para a manutenção da anestesia vaporizador.
      4. Monitorar os sinais vitais, incluindo a temperatura corporal, freqüência cardíaca e freqüência respiratória. Se a freqüência respiratória começa a acelerar ou desacelerar, aumentar ou diminuir a porcentagem de isoflurano, respectivamente 9.
    3. Proporcionar uma fonte de calor adicional para manter a temperatura do corpo da cobaia entre 37 e 39 ° C, se necessário, dependendo do comprimento esperado de aquisição de dados e de profundidade de anestesia mantida 8,9.
    4. Garantir uma cobertura plástica sobre a parte superior da almofada de retenção.
    5. Avançar cama de imagens para dentro do tubo de contenção.

    5. Definir o campo Imagem do Vista

    1. Ative o sistema de laser (equipe de imagens) sobre o "lado frio" do sc CTanner espaço para posicionar a cobaia para a digitalização CT. Use a tabela "em" botões e "out" para cobrir a anatomia de interesse sob a mira a laser.
    2. Para definir o campo de visão, use o botão de laser para definir o ponto de partida sobre a anatomia de interesse.
    3. Contato na equipe CM em "lado quente" para colocar um escudo de chumbo, entre si, o scanner CT.

    6. adquirir imagens

    1. Adquirir varredura levantamento para colocação fatia de imagens do estudo CT de acordo com o protocolo do fabricante.
    2. Prescrever colocação fatia de imagens do estudo CT em imagens da pesquisa.
    3. Coordenar com pessoal "do lado quente" se a injeção de contraste é para ser usado.
    4. Adquirir varredura estudo de acordo com o protocolo do fabricante.
    5. Reconstruir imagens de CT no console do scanner de acordo com o protocolo do fabricante.
    6. Enviar imagens para um PACS. Realizar mais qualitativa e quantitative analisa a partir deste sistema de arquivo de acordo com o protocolo do fabricante.

    Recuperação 7. Pós-scan

    1. Transferir cobaia do scanner a uma gaiola microisolator limpo com comida e guloseimas.
    2. Usando o carrinho, transportar a gaiola com animais de volta à sua área de habitação.
    3. Monitorar o animal até que esteja totalmente recuperado da anestesia.
    4. Uma vez totalmente recuperado, volte a gaiola para o High Efficiency Particulate Air (HEPA) filtrado por prateleiras ventiladas.

    8. Desinfecção do Scanner Bay e Equipamentos

    1. Desinfectar área da baía do scanner (por exemplo, superfícies que estavam em contato direto com o animal, scanner, chão da sala scanner, puxadores das portas) com uma solução de amônio 5% dupla quaternário para um tempo de contacto de 10 min.
    2. Enxaguar as superfícies com uma solução de etanol a 70% após uma exposição de 10 min a uma solução de amónio quaternário dupla.
    3. Limpe itens que não podem ser pulverizadas diretamentecom uma solução dupla quaternário de amônio (equipamentos eletrônicos sensíveis) com um pano dual-quaternário-saturado de amónio seguido por um pano saturado de etanol.

Resultados

O cumprimento rigoroso de todos os procedimentos de segurança e procedimentos operacionais padrão para manuseio dos animais é essencial para trabalhar com segurança em um laboratório NBA-4. Transferência de animais infectados dentro da caixa de indução a partir dos animais quarto procedimento para a suite de imagem a minimizar o risco de contaminação dos corredores comuns. Seguindo os procedimentos necessários, não há infecções adquiridas em laboratório ou contaminação ...

Discussão

Artigos anteriores desta série têm enfatizado a extensa formação, atenção aos detalhes, os procedimentos de segurança e controles de engenharia adicionais necessários para trabalhar com segurança em um 12,13 máxima laboratório de contenção. Realizar o trabalho com segurança é a maior prioridade nesses laboratórios. Esta filosofia é ainda mais importante quando se trabalha com animais vivos, devido a riscos adicionais, tais como o potencial de animais infectados para infligir mordidas ou arran...

Divulgações

The authors have nothing to disclose.

Agradecimentos

The content of this publication does not necessarily reflect the views or policies of the US Department of Health and Human Services (DHHS) or of the institutions and companies affiliated with the authors. This work was funded in part through Battelle Memorial Institute's prime contract with the US National Institute of Allergy and Infectious Diseases (NIAID) under Contract No. HHSN272200700016I. M.R.H., K.J., D.P., L.B., and J.W. performed this work as employees of Battelle Memorial Institute. Subcontractors to Battelle Memorial Institute who performed this work are: R.B., an employee of Charles River Laboratories - Insourcing Solutions; L.K. and M.R.L., employees of MEDRelief Staffing Inc.; M.G.L. as an employee of Lovelace Respiratory Research Institute, Inc.; and J.H.K. as an employee of Tunnell Government Services, Inc.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Micro-Chem PlusNational Chemical Laboratories255
CT scannerPhilips Healthcare
CT phantomPhilips Healthcare
Isovue-300 (CT contrast reagent)Bracco DiagnosticsNDC 0270-1315-30
Ventilated rackLab Products
Micro-isolator cageLab Products
Biosafety cabinetNuaire
Anesthesia machineSurgiVetWWV9000
Anesthesia induction boxVetEquip
Anesthesia maskHenry Schein
IsofluraneHenry Schein
Waste gas scavenging canisterFisherF/AIR
Holding cushion
Ophthalmic ointment
Vital signs monitorBionetBM3Vet
Mobile phoneSpectralink8440
Blue Tooth ear piece
Wireless access points
Sperian positive-pressure suitHoneywell Safety ProductsBSL 4-2
Outer suit gloves (latex, Ansell Canners and Handlers)Fisher19-019-601
Outer suit gloves (nitrile/rubber, MAPA)Fisher2MYU1
ScrubsCintas60975/60976
SocksCintas944
Duct tapePack-N-Tape51131069695
TowelsCintas2720
Zip lubeAmazonB000GKBEJA

Referências

  1. Jahrling, P. B., et al. The NIAID Integrated Research Facility at Frederick, Maryland: a unique international resource to facilitate medical countermeasure development for BSL-4 pathogens. Pathog Dis. , (2014).
  2. de Kok-Mercado, F., Kutlak, F. M., Jahrling, P. B. The NIAID Integrated Research Facility at Fort Detrick. Appl Biosafety. 16, 58-66 (2011).
  3. Keith, L., Moyer, B. R., Cheruvu, N. P. S., Hu, T., et al. . Preclinical imaging in BSL-3 and BSL-4 envrionments: imaging pathophysiology of highly pathogenic infectious diseases. , (2014).
  4. Chosewood, L. C., Wilson, D. E. . Biosafety in microbiological and biomedical laboratories. , (2009).
  5. Janosko, K., et al. Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 1. Laboratory suite entry and exit procedures. J Vis Exp. , (2016).
  6. Diagnostic Radiology Committee Task Force on CT Scanner Phantoms. . Phantoms for evaluation and quality assurance of CT scanners. , (1977).
  7. Collins, B. ACUP 712.01 Waste anesthetic gas scavenging systems. Institutional Animal Care and Use Committee. , (2013).
  8. Gargiulo, S., et al. Mice anesthesia, analgesia, and care, Part I: anesthetic considerations in preclinical research. ILAR J. 53, E55-E69 (2012).
  9. Office of the Press Secretary. . Executive order 13546. Optimizing the security of Biological Select Agents and Toxins in the United States. The White House. , (2010).
  10. Escaffre, O., Borisevich, V., Rockx, B. Pathogenesis of Hendra and Nipah virus infection in humans. J Infect Dev Ctries. 7, 308-311 (2013).
  11. Sueblinvong, V., et al. Critical care for multiple organ failure secondary to Ebola virus disease in the United States. Crit Care Med. , (2015).
  12. Mazur, S., et al. Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 2. General practices. J Vis Exp. , (2016).
  13. Bohannon, J. K., et al. Safety precautions and operating procedures in an (A)BSL-4 laboratory: 3. Aerobiology. J Vis Exp. , (2016).

Reimpressões e Permissões

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