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Este método envolve a utilização de dados diagnósticos clínicos para pacientes do cancro da próstata a fim guiar procedimentos da amostragem, quando o tecido para que segue o Prostatectomy radical. Isso supera as questões com métodos publicados anteriormente em torno da eficiência e disponibilidade de tecido fresco para uma ampla gama de aplicações a jusante.
Métodos prévios para o tecido de próstata para, seguindo prostatectomia radical, geralmente envolveram amostragem aleatória. A fim de aumentar a eficiência, e permitir uma maior gama de aplicações a jusante, um método mais direcionado de amostragem de tecido prostático foi desenvolvido. Aqui nós usamos a imagem latente de ressonância magnética (MRI) e os dados da biópsia para alvejar áreas específicas do órgão para a amostragem. O método envolve o uso de um dispositivo de fatiamento da próstata previamente publicado que remova uma fatia transversal de 5 milímetros de uma região predeterminada da próstata, seguida pela remoção de biópsias do perfurador de 6 milímetros das áreas predeterminadas desta fatia. Essas amostras podem ser armazenadas congeladas ou fixas para fins de para, ou usadas imediatamente com 70% de confiança do conteúdo tumoral, em comparação com 10% de confiança na abordagem de amostragem aleatória. Isto permite o uso de todas as técnicas downstream padrão tais como a genômica, o proteômica ou o trabalho histológico, mas igualmente o trabalho que exige o tecido fresco tal como a imagem latente viva do tecido ou a cultura ex vivo.
O acesso ao tecido do cancro da próstata humano da alta qualidade é uma exigência chave para conduzir a pesquisa eficaz no campo. Há um número de métodos existentes para a amostra de tecido prostático após prostatectomia radical para pesquisa. Tipicamente, estes envolvem o uso de biópsias de punção para tirar amostras aleatórias de uma fatia fresca, congelada ou fixa de tecido prostático, e confirmando retrospectivamente se o tumor está ou não presente em cada amostra por hematoxilina & eosina (H & E), conforme avaliado por um uropatologista1,2,3,4,5. Uma revisão recente compilou uma visão geral desses métodos existentes6. Estes métodos são úteis para determinadas aplicações a jusante, onde o tecido pode ser armazenado e avaliado para o índice do tumor em uma data mais atrasada, tal como análises genomic da grande escala como o consórcio internacional do genoma do cancro (ICGC) e o Atlas do genoma do cancro (TCGA) 4,7. Entretanto, estes métodos podiam ser melhorados em cima se nós fôssemos usar a imagem latente de ressonância magnética (MRI) e/ou dados da biópsia para alvejar áreas específicas da próstata para a amostragem. Isso melhoraria a metodologia de duas maneiras; em primeiro lugar, reduzindo o número de amostras de tecido coletadas, aumentando a eficiência e reduzindo a pressão sobre os departamentos de patologia e o custo do armazenamento, e em segundo lugar, permitindo que o tecido fresco seja usado imediatamente sem a necessidade de confirmação imediata de conteúdo tumoral, para novas tecnologias de ponta a jusante, como imagens de tecidos vivos, geração organóide ou cultura ex vivo. Esta necessidade da pesquisa conduziu ao desenvolvimento do método dos povos (amostras da próstata paciente para a pesquisa), e os resultados dos primeiros 84 casos biobanked usando povos foram publicados recentemente8. Uma variação desse método também foi publicada com um aparelho de corte impresso tridimensional (3D) e um molde específico para o paciente, a fim de facilitar a RM ex vivo no tecido pré e pós-fixação9,10.
O protocolo adere às diretrizes locais e é aprovado pelo Comitê de ética em pesquisa da UCL/UCLC Biobank (referência 15/YH/0311).
Nota: Como este método envolve a amostragem do tecido humano, todos os procedimentos locais em relação à ética e consentimento devem ser observados antes do início do protocolo. Os casos prostatectomia radicais podem ser incluídos se os dados de MRI e de biópsia estiverem disponíveis antes da cirurgia, com diâmetro do tumor ≥ 5 milímetros. os casos devem ser excluídos se a lesão do índice não é bem definida, isto é, somente as mudanças difusas são visíveis por MRI.
1. próstata cortando o aparelho
2. segmentação por tumor
3. coleção de Ppróstata
4. preparação do espécime
5. corte da próstata
6. amostragem do tecido
7. submissão da próstata para diagnósticos locais
8. descontaminação de aparelhos
O tecido de próstata fresco amostrado usando o método PEOPLE pode ser usado para uma variedade de técnicas downstream, incluindo sequenciamento genômico e cultura ex vivo. Os primeiros 59 casos amostrados usando esse método foram publicados anteriormente em comparação com uma versão anterior do método, juntamente com dados iniciais de downstream8. O tempo do primeiro fatiar a próstata para congelar/fixar as biópsias do perfurador aqui era aproximadamente 1 minuto, que foi mantido a um mínimo para evitar a degradação do RNA. O tempo da remoção da próstata ao fatiamento da próstata deve igualmente ser mantido a um mínimo, embora aqui este fêz exame de aproximadamente 20 minutos devido a nossos laboratórios do Theatre e da patologia que estão em posições diferentes.
Dependendo da aplicação a jusante, tipicamente pelo menos duas amostras são tomadas: uma de uma área do tecido do tumor antecipado e uma de uma área do tecido benigno antecipado. A medida chave do sucesso para o método de amostragem próprio é avaliar o índice do tumor em uma amostra dada.
Para a entrada no projeto dos genomas 100.000, uma seção manchada do tecido de H & e deve ser avaliada por um uropathologist, e a amostra deve conter pelo menos 40% de pilhas do tumor. Amostras que contenham menos de 40% de tumor ainda podem ser incluídas no projeto se forem macrodissecadas com sucesso. Dos primeiros 92 casos amostrados dessa forma, 64% continham pelo menos 40% de tumor e foram submetidos ao projeto genomes 100.000 sem macrodissecção. O DNA foi extraído e foi de rendimento e qualidade suficientes em todos os casos (tabela 1). Um subconjunto inicial de 59 dessas amostras foi publicado anteriormente em comparação com um método anterior8.
Para a cultura ex vivo, o tumor combinado e o tecido benigno devem ser de qualidade suficiente para resistir à cultura 72 h sem degradação significativa. As amostras múltiplas do tecido de um total de três pacientes foram cultivadas com sucesso8.
Figura 1: aparelho de fatiamento da próstata. Este aparelho foi obtido acordo de transferência de material do Instituto de pesquisa do câncer. (A) asparedes são inseridas perpendiculares à base, e os pinos dourados são inseridos na base que circunda a próstata (próstata não retratada). (B) as lâminas paralelas substituíveis são inseridas no punho da lâmina. (C) as lâminas passam entre os pinos de ouro, a fim de cortar uma seção de 5 mm da próstata. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
n (%) | |
Hit (> 40% tumor) | 59 (64%) |
Acerto parcial (5-30% tumor) | 6 (7%) |
Senhorita (0% tumor) | 27 (29%) |
Total | 92 (100%) |
Tabela 1: taxa de acerto tumoral. A taxa de batida do tumor foi determinada por um patologista do consultante que especializa-se no cancro de próstata, seguindo a revisão do tecido manchado de H & E. O índice da pilha do tumor de > 40% foi determinado para ser apropriado para a inclusão no projeto de 100.000 genomes, como por directrizes de Genomics Inglaterra.
As etapas críticas dentro deste protocolo incluem a identificação da região do tumor para a amostragem, a medida da próstata, e a amostragem do tecido. Em primeiro lugar, a medição da RM para identificar a área correta da amostragem é fundamental. Demonstramos este método no vídeo que o acompanha; no entanto, também recomendamos a confirmação de medições com um radiologista em primeira instância. As notas clínicas desobstruídas que apontam o investigador para a área das imagens de MRI que contêm a lesão do índice são ideais. Em segundo lugar, a medida da próstata deve ser realizada com cuidado, assegurando-se de que a régua esteja prendida em um ângulo para medir o comprimento cheio da base ao vértice, paralelo ao anterior da próstata. Em terceiro lugar, as áreas do tumor devem ser confirmadas antes da amostragem inspecionando visualmente a fatia do tecido com relação à imagem original de MRI, palpando o tecido (em alguns casos a área do tumor pode sentir mais densa), e avaliando visualmente a cor do tecido (em alguns casos o tumor parecerá mais pálido do que o tecido benigno circunvizinho).
Este protocolo foi realizado na íntegra na UCL/UCLH por pesquisadores não-clínicos de pós-doutorado, um colega de patologia, consultores de patologia e técnicos de pesquisa. Em nossa experiência todos os passos do protocolo pode ser aprendido em menos de dez casos, independentemente do fundo técnico. No entanto, recomendamos a formação de um radiologista sobre a medição da RM e treinamento de um patologista em relação ao fatiamento em primeira instância. O protocolo pode ser modificado usando uma alça de corte impressa em 3D, conforme publicado anteriormente10.
As limitações potenciais da técnica incluem o risco de impedir no diagnóstico. Fatiar a próstata é um passo chave, que poderia impedir a classificação ou taxas de margem positiva se feito incorretamente. Há dois problemas potenciais aqui. Primeiramente, se toda a lesão do índice for removida e usada para a experimentação fresca do tecido imediatamente, o diagnóstico clínico rotineiro não será realizado para esta lesão e o paciente pode ser diagnosticado mal como tendo um cancro mais baixo da classe. Para evitar isso, o pesquisador deve discutir o plano amostral com o patologista consultor que revisará rotineiramente o caso, antes da amostragem, e concordará com o número e localização das amostras a serem tomadas. Os tumores pequenos podem ser excluídos localmente por esta razão. Em segundo lugar, se a cápsula prostática não é fixada corretamente para a placa de cortiça antes da fixação, isso poderia permitir que o tecido interno a protuberância para fora durante a fixação, alterando as margens cirúrgicas. Isto poderia conduzir a uma margem falsa positiva, onde o tumor restante pareça residir na cápsula puramente devido ao entortamento do tecido.
O significado desta técnica com respeito aos métodos existentes encontra-se principalmente com a segmentação do tumor. Uma série de métodos para amostragem de espécimes de prostatectomia radical foi publicada até à data; no entanto, todos estes dependem de uma abordagem de amostragem totalmente ou parcialmente aleatório1,2,3,4,5,6,7. O uso de biópsia e, em particular, dados de RM aqui melhorou a eficiência, permitindo uma amostragem reduzida com maior confiança na obtenção do tecido tumoral8.
Futuras aplicações deste método permitem a adoção de uma gama mais ampla de técnicas a jusante do que com métodos de amostragem anteriores. Por exemplo, a disponibilidade do tecido fresco que tem uma probabilidade elevada de ser tumor significa que umas técnicas frescas mais caras e/ou labor-intensive do tecido podem ser utilizadas, porque muitas amostras não são exigidas para assegurar a presença de tumor. Isso pode incluir e não está limitado a, cultura ex vivo, ex vivo MRI, imagens avançadas e transcriptomics.
Os autores não têm nada a revelar.
Os autores desejam reconhecer o câncer de próstata do Reino Unido para financiar SH o câncer de próstata Reino Unido centro de excelência e viagem prêmio Fellowship (TLD-PF16-004) e HP inovar (PG14-018-TR2). Este trabalho foi apoiado por pesquisadores do Instituto Nacional de pesquisa em saúde University College London Hospitals centro de pesquisa biomédica.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
6 mm biopsy punch | Fisher Scientific | 13404607 | Disposable biopsy punches for removing 6 mm tissue samples |
Black Ink | Leica Biosystems | 3801753 | Tissue marking & margin dye |
Blue Ink | Leica Biosystems | 3801751 | Tissue marking & margin dye |
Chainmail hand glove | Arco | 1456803 | Chainmail gloves to protect hand during slicing |
Cork board | Fisher Scientific | 12396447 | Cork board for pinning prostate to following sampling procedure |
Needles | SLS (Scientific Laboratory supplies) | SYR6112 | Sterile needles to use to pin tissue to cork board following sampling |
Prostate slicing aparatus | Insitute of Cancer Research, London | NA - must be obtained under MTA | A kit containing the slicer handle, blades, spacer, base, walls and pins |
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