The authors would like to thank the staff of the Department of Animal Science&#8217;s Dairy Center for their conscientious care of the experimental cows used to generate data for this study.

Animais envolvidos no experimento descrito em resultados representativos foram tratados de acordo com as orientações do Comitê Universidade Animal Care e Use o estado de Pensilvânia. O comitê analisou e aprovou a experiência e todos os procedimentos realizados no estudo. Detalhes, como informações de animais e composição da dieta e design experimental, pode ser encontrada na publicação completa deste experimento 12. Nota: Para obter uma lista de equipamentos e materiais necessários para a realização do experimento, ver Materiais tabela. 1. Design Experimental <ol><li> Obter aprovação do Comitê de Cuidados e Uso de Animais Institucional para o experimento. Este é um procedimento não-invasivo que não causa dor ao animal e é classificada como USDA Categoria C (dor leve ou momentânea ou angústia ou nenhuma dor ou sofrimento). Anestesia não é necessário. </li><li> Selecione (ou seja, não canulados) vacas intactaspara o experimento com base no estágio de lactação, idade e produção de leite. Não use vacas canuladas com CAHs por causa de vazamento potencial do gás rúmen através da cânula. Um dispositivo destinado a aliviar este problema está sendo testado, mas os resultados não são relatados aqui. </li><li> Se um desenho cruzado (ie, quadrado latino, por exemplo) é utilizado, utilize 8 a 12 vacas, dependendo do número de tratamentos, em um delineamento replicado equilibrado para efeitos residuais. Se, por exemplo, 4 tratamentos são testados, 8 vacas dará um ensaio de criação replicado 4 × 4, etc. A duração mínima recomendada destes tipos de experimentos é de 21 a 28 dias, com os primeiros 14 a 21 dias para a adaptação ao tratamento e 7 dias para coleta de dados. </li><li> Se um delineamento em blocos casualizados é utilizado, usar de 12 a 15 vacas por tratamento. Incluem um período de co-variável de 2 semanas antes do início da coleta de dados. A duração recomendada destas experiências é de 8 a 12 semanas, com as primeiras 2 semanas being para a adaptação ao tratamento. </li><li> Equipar cada animal experimental com um ISO 11784 ou etiqueta de identificação RFID 11785-compatível. </li></ol> 2. Formação dos Animais usar CAHs <ol><li> Antes do experimento começa, mover CAHs nas instalações onde as vacas estão localizados. Coloque a unidade dentro da visão das vacas. Deixe a unidade lá por pelo menos 2 dias. </li><li> Prepare um feed isca que os animais gostam. As diferentes dietas podem ser tentados para atrair vacas, apesar de uma mistura de 70% de milho moído, 27% de melaço secos, e óleo de soja 3% (como-se base de peso) foi usado com sucesso no laboratório. Evite alimentos pegajosos e empoeirados que podem entupir o filtro de ar eo sistema de fornecimento de alimentação de CAHs. É preferível que a alimentação é sedimentado. </li><li> Dê uma pequena quantidade (um punhado) de alimentos para todos os animais, colocando-o no topo do feed eles são usados ​​para, a fim de que eles se familiarizem com a alimentação isca. </li><li> Muito lentamente mover CAHs a cerca de 1,5 m from o animal. </li><li> Coloque cerca de 1 kg de alimento isca em um balde e permitir que o animal cheirar e provar o feed isca. Gradualmente mover o balde para a calha de alimentação da unidade de CAHs, forçando o animal para esticar e alcançar para a calha de alimentação CAHs. </li><li> Despejar alguns dos alimentos isca do balde na manjedoura CAHs e mova lentamente a unidade CAHs para a vaca. Se em qualquer ponto do treinamento, a vaca torna-se apreensivo ou com medo, mova o aparelho longe dela e tente novamente em outro momento ou dia. </li><li> Ao longo de vários dias, repetir o treinamento até que os animais estão acostumados e animado com a unidade CAHs, (ou seja, a alimentação isca). Se um animal não pode se acostumar com CAHs, substitua-o por um outro animal antes do experimento começa e treinar o novo animal seguindo o procedimento acima. </li></ol> 3. Calibração de CAHs Nota: A gama de concentrações do sensor de CO 2 é de 0 a 5%; agama para o sensor de CH4 é de 0 a 2%. Limites de detecção mais baixos são 20 ppm para CH 4 e 50 ppm para CO 2. Não há preocupações com altos níveis de CH 4 e CO 2 fundo, porque os limites de detecção são muito maiores do que os níveis de segurança desses gases em instalações para animais de alta fundo. <ol><li> Para obter a precisão máxima, executar este procedimento de calibração, 5 vezes, no início e 3 vezes no final de cada experiência de medição de gás. </li><li> Use as seguintes gases (ver Tabela de Materiais): 0,15% 2 (grau certificado mestre classe, ± precisão 2%) CH 4 e 1% de CO para gás de calibração e 100% de N 2 (99,999% puro) para o gás zero. </li><li> Encha um saco de amostra com 2 L de gás zero, e um outro saco com 2 L de mistura de gás de calibração. Certifique-se de usar saco totalmente esvaziado. Encha os sacos com gás novo no dia da calibração. </li><li> Substituir os sacos depois de 1 ano de uso ou menos, se necessário. </li><li> Pegue o gásnormas para o local onde o experimento medição de gás ocorre. Se os animais e medição ter lugar numa instalação fechada (ie., Um celeiro de leiteria), vire os fãs celeiro ON durante todo o processo de calibração. Isto é necessário para minimizar o efeito de as concentrações de metano no ar fundo. </li><li> Vire CAHs ON e deixá-lo quente antes de a calibração para pelo menos 30 min. Remover a tampa do tubo de calibração localizado no interior do painel frontal. Certifique-se de que não há água no tubo de calibração. Retire a água, se necessário. A água vai destruir os sensores de concentração de gás. </li><li> Ligue o saco de amostra N2 (gás zero) para o tubo de calibração. Desenrosque a válvula de plástico no saco de recolha dos anti-horário 1 volta completa para permitir o fluxo. </li><li> Rode o botão &quot;RUN-CALIBRATE&quot; localizado no painel de controle do instrumento de CAHs para &quot;Calibrar&quot;. Isso vai começar a bombear a amostra para fora do saco. Uma vez que o fluxo é iniciado, pressionee segure o botão &quot;Calibrar&quot; para 10 segundos, em seguida, liberá-lo. </li><li> Espera para o saco de recolha para esvaziar a cerca de 10% da sua capacidade. Não esvaziar completamente o saco, pois pode danificar o sensor. Quando a bolsa está em cerca de 10% de sua capacidade, gire o botão &quot;RUN-CALIBRATE&quot; de volta para &quot;RUN&quot;. </li><li> Feche o saco de amostra e desligue-o do tubo de calibração. Aguarde 2 min e, em seguida, conecte o saco de mistura de gás de calibração para o tubo de calibração. </li><li> Repita o passo 3.7. </li><li> Uma vez que o fluxo é iniciado, pressione e segure o botão &quot;Calibrar&quot; por 3 segundos e depois liberte-o. </li><li> Repita o passo 3.10. </li><li> Feche o saco de amostra e desligue-o do tubo de calibração. Tapar o recipiente para dentro do tubo de calibração. Nota: Após a calibração é concluída, os valores &quot;factor&quot; aparece na guia dados na página web. O coeficiente de variação dos factores deve ser inferior a 3% e 1% em CH4 e CO2, respectively. Se não dentro dessa faixa, repita a calibração. </li></ol> 4. CO 2 Teste de Recuperação <ol><li> Realizar o teste de recuperação de CO 2, pelo menos uma vez (3 lançamentos = 1 cilindro de CO 2) antes de cada experiência de medição de gás. Em aplicações contínuas, execute o teste de recuperação de uma vez por mês. </li><li> Assegure-se que a válvula de teste de recuperação de CO2 é DESLIGADO (a válvula é perpendicular ao bocal de saída). Anexar uma nova CO 2 cilindros para o sistema de obturação e rode o válvula no sentido horário até apertar. </li><li> Nível e zerar a balança de massa. Coloque todo o sistema de liberação na escala para garantir que é preciso. Teste para garantir CO 2 está fluindo: abrir a válvula ON / OFF e rapidamente fechá-la novamente enquanto escuta para o CO 2 que sai do bico. Deve haver um &quot;whishing&quot; som quando o CO 2 está fluindo. </li><li> Ligue o suporte do cilindro de CO 2 para a calha de alimentação. A partir de Now em, não deixe chegar perto animais / respirar no alimentador. As pessoas também não deve respirar no alimentador. </li><li> Pesar o cilindro de CO 2 com o sistema de liberação. Grave esta massa como massa inicial. Grave a hora local atual, no início de cada liberação de CO 2. </li><li> Coloque o cilindro de CO 2 e sistema de liberação no suporte de CO 2 cilindros (calha de alimentação) e dirigir o bocal para o colector. Não respirar no alimentador. </li><li> Ligue a válvula ON / OFF para liberar CO 2 e gravar começar a época do lançamento. Voltar vários pés de distância do alimentador e aguarde 3 min. Após 3 min, desligue a válvula ON tempo e parada de gravação / OFF de lançamento. </li><li> Remova o cilindro mais liberação sistema de CO 2 a partir do alimentador. Não desapertar o CO 2 cilindros do sistema de liberação. Segure o cilindro de CO 2 em uma banheira de água quente (37-43 ° C). Coloque apenas o cilindro na água, não todo o sistema de liberação. </li><li&gt; Uma vez que o cilindro de CO 2 é aquecida, remova-o da água e use um pano de secagem para limpar toda a água a partir dele. Pesar o cilindro de CO 2 com sistema de liberação e gravar essa massa como final. </li><li> Espere pelo menos 3 min antes do próximo lançamento. Durante o tempo de espera 3 min, não permitem qualquer animal ou pessoa perto da unidade. A 90 g CO 2 cilindros irá fornecer cerca de 3 lançamentos até usar vários cilindros se houver mais de 3 lançamentos. Quando um cilindro está vazio, pesar o cilindro vazio e continuar com um novo cilindro, como descrito acima. </li><li> Repita os passos 4.3 através de 4.9 pelo menos 3 vezes, marcando a nova hora de início, parar o tempo, a massa inicial, e massa final de cada lançamento. </li><li> Após o lançamento final, espere pelo menos 3 min antes de permitir que os animais para acessar a unidade. Quando terminar, solte o CO 2 cilindros do sistema de liberação. </li></ol> 5. Medição de Gás Nota: Antesmedição de gás, uma recente (dentro de uma semana) calibração de CAHs é necessária. Consulte os passos 3, Calibração de CAHs e 4, CO 2 teste de recuperação. Certifique-se de tag RFID do animal está no lugar. <ol><li> Poder-se CAHs e deixe por 30 minutos para aquecer antes de efectuar quaisquer medições. </li><li> Posição CAHs de modo que o fluxo de ar dos ventiladores celeiro tem permissão para entrar na calha de alimentação. Aguarde 2 min. Pressione o botão de alimentação Entrega e segure por 3 segundos para entregar cerca de 50 g de ração. Visualmente validar que a alimentação foi entregue na manjedoura. </li><li> CAHs rolo em frente de uma vaca. Anote o tempo no caderno experimento. A unidade irá ler tag RFID do animal. </li><li> De alimentar 5 vezes adicionais ao longo de um período de amostragem de 5 minutos, o espaçamento entre eles para tentar manter a cabeça do animal continuamente na calha de alimentação. Se for necessária uma alimentação suplementar (para manter a cabeça do animal no cocho de alimentação), anote-lo no notebook experimento. </li><li> Nãoe: Alimentador / pelotas são normalmente entregues uma vez a cada 50 segundos para um total de 6 gotas (300 g / evento medição) para obter os períodos de medição individuais de 5 min. O CAHs está equipado com sensores de infravermelhos para monitorizar continuamente a distância entre a cabeça do animal em relação ao colector de admissão de ar. Estes dados são posteriormente utilizadas para identificar os períodos em que a cabeça do animal não se encontrava na posição de medição e estes dados são descartados. </li><li> Uma vez que o período de amostragem 5 min expirou, puxe CAHs de distância da unidade com animais e posição de modo que o fluxo de ar dos ventiladores celeiro tem permissão para entrar na calha de alimentação. Aguarde 2 min para liberar o ar através do sistema e para coletar dados de composição de fundo de ar. </li><li> Repita os passos 5.2 a 5.5 para animais adicionais. </li><li> Repetição da amostra 8 vezes durante um ciclo de 24 horas de alimentação, escalonada no tempo ao longo de um período de 3 dias. O seguinte esquema de amostragem foi usado com êxito: 0900, 1500, e 2100 h (dia de amostragem 1), 0300, 1200, e 1700 h (dia de amostragem 2), e 0000 e 0500 h (dia de amostragem 3). Este calendário de amostragem vai entregar 8 amostras por animal e por período de amostragem. Os tempos de amostragem pode variar dependendo de alimentação e ordenha vezes. Nota: Quando a amostragem de gás for concluída, recuperar dados de emissão a partir da página web. </li></ol>

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Os autores Patrick R. Zimmerman e Scott R. Zimmerman são co-proprietários de C-Lock, Inc. (Rapid City, SD), o fabricante de GreenFeed (CAHs) descrito no presente artigo.

O sistema CAHs combina elementos de uma técnica dinâmica gabinete, sistema de câmara, e técnica de marcador para medições de fluxo em massa de CH 4 e CO 2. Ao longo do dia, recolhe amostras múltiplas de cada animal para definir os totais médios fluxos de massa de gás por dia. Para identificar um animal e proporcionar a quantidade correcta de isca, um leitor de RFID é incorporado CAHs. A tag RFID é lido como o animal começa a colocar sua cabeça no alimentador. Uma vez que um animal é identificado, CAHs determina se ele é elegível para receber uma recompensa isca naquele momento específico do dia (pastando ou aplicações free-stall celeiro). A hora de início e fim da visita de cada animal (calculado com base nos sensores infravermelhos) é gravado automaticamente. O sistema de entrega de isca é usado para atrair animais para CAHs periodicamente ao longo do dia. Normalmente, a alimentação baiting é peletizado e podem conter grama, alfafa, concentrados de grãos, melaço e óleo vegetal.Enquanto um animal Visitas CAHs, um ventilador puxa o ar sobre sua cabeça (a uma taxa de cerca de 26 L / min), varrendo emitida CH 4 e CO 2 em um coletor de admissão de ar. A velocidade do fluxo de ar é medida continuamente com um anemómetro quente de película no meio do tubo de recolha de ar. Uma sub-amostra de ar contínuo é extraído e encaminhado para um filtro de amostra secundária, em seguida, em dois analisadores não dispersivo de infravermelhos, um sensor de CO 2 e um para CH4. CAHs também inclui sensores adicionais para a temperatura do ar, umidade do ar, queda de isca, tensão do sistema, a pressão atmosférica, a taxa de fluxo de propano, e posição da cabeça. Pasto e reboque versões montadas para sistemas de pastejo incluem um copo anemômetro (velocidade do vento local) e cata-vento (direção do vento). Todos os dados do sensor são armazenados no registador de dados local, um e um computador, permitindo CAHs para funcionar automaticamente e de forma independente. Dados do sensor também são armazenados em um USB padrão interno (Universal Serial Bus) memory stick. Dados CAHssão normalmente transferidos através de uma ligação à Internet, uma vez por hora, para um servidor externo, onde são permanentemente conectado. Os usuários com conectividade internet pode acessar remotamente CAHs e controlar a unidade, modificar horários de iscagem, e examinar os dados históricos e em tempo real, bem como avaliação e monitoramento da função CAHs. No geral, experimentos conduzidos na Universidade Estadual da Pensilvânia demonstraram que o sistema CAHs proporciona estimativas fiáveis ​​para CH 4 e emissões de CO 2 de vacas leiteiras alojadas em galpões tie-stall. As vantagens de CAHs mais câmaras de respiração é que o animal não está restringida e é no seu ambiente natural (isto é., Em pastagem), ou pode mover-se livremente (no celeiro um livre-box). CAHs também é menos caro construir do que uma câmara de respiração tradicional. Este custo relativamente baixo é importante, particularmente para CH 4 investigação mitigação nos países em desenvolvimento. Comparado com o SF 6 traceMétodo R, CAHs é mais simples de operar e não requer equipamento caro e complicado analítica. Talvez a desvantagem mais aparente de CAHs, em comparação com as câmaras e os SF 6 métodos (especialmente quando usados ​​em ambientes de pastagem ou free-stall celeiro), é que o animal tem de se aproximar voluntariamente a unidade e, portanto, eventos de medição de gases são dependentes de visitas animais . Dentro de um dia, essas visitas animais podem ou não ser representativa do ritmo diurno de CH 4 produção. Por conseguinte, em aplicações onde as visitas de animais CAHs voluntariamente, o período de amostragem deve ser suficientemente longo, ou repetido um número de vezes suficiente. A aplicação tie-stall utilizado na Universidade Estadual da Pensilvânia alivia este problema, controlando o número ea distribuição temporal das medições de gás durante um ciclo de alimentação 24 horas. Amostragem de gás suficiente eructação durante um ciclo de alimentação (como indicado no protocolo acima) é importante para representative estimativa de CH4 no rúmen do gado. A quantidade de alimentação de isca alimentados aos animais durante as medições utilizando CAHs tem de ser considerado na análise global (isto é, deve ser adicionado à quantidade total de alimentos consumida pelo animal), de modo que a intensidade de emissão por unidade de alimentação de DMI pode ser exacta estimado. Sob condições normais de alimentação, a alimentação de isca representa menos do que 5% do total de DMI a vacas leiteiras, e o seu efeito sobre a fermentação no rúmen e CH4 produção é pequena. Note-se que CAHs (e outros sistemas semelhantes) não mede CH4 produção em intestino posterior do animal. Fermentação do intestino posterior, no entanto, contribui apenas cerca de 3% do total de emissões de CH4 em um animal ruminante 7. Com base na experiência, existem vários componentes importantes de medição de produção de gás do rúmen entérico usando CAHs: (1) o animal tem que ser acostumados à alimentação de isco (e CAHs) e tem to como ele, a fim de se aproximar e usar o alimentador CAHs, (2) a cabeça do animal tem de ser inserido todo o caminho para o alimentador, a fim de recolher dados sobre as emissões de gases de confiança, (3) o processo de calibração CAHs tem de ser seguido estritamente , (4) que tem tempo suficiente para coletar fundo CH 4 e CO 2 de dados entre a amostragem animais individuais é importante, particularmente em celeiros LAÇO ou free-stall, e (5), é importante que dados suficientes sejam recolhidos em um ciclo de amostragem ( cobrindo um período de 24 horas) para que os dados de emissões geradas por CAHs são representativos da CH diurna real 4 ou emissões de CO 2 por o animal. Testes comparativos com CAHs vs. técnicas CH 4 de medição estabelecidos apoiar as conclusões acima. Por exemplo, um estudo com crescimento novilhas leiteiras concluiu que CAHs foi capaz de estimar emissões de CH 4 do gado e de emissão estimativas geradas por CAHs eram comparáveisaos valores obtidos por câmaras de respiração 9. Estes autores apontam que a implantação das unidades CAHs e replicação devem ser cuidadosamente consideradas para garantir um número suficiente de medições são obtidas. Com base na experiência, 8 eventos de amostragem, escalonados ao longo de um período de 3 dias para cobrir um ciclo de alimentação 24 horas (ver protocolo acima) são suficientes para obter medidas precisas das emissões gasosas e relativamente baixa variabilidade dos dados (ou seja, precisão aceitável). Em um estudo com as vacas em lactação, concluiu-se que CH 4 emissões medidos pelo CAHs foram semelhantes aos valores da literatura derivados de câmaras de respiração e entre a variabilidade dos animais (CV de 11 a 12%; repetibilidade de 0,64 a 0,81) foi também dentro do faixa relatada para câmaras de respiração 10. Em um estudo recentemente publicado com vacas em lactação, CAHs produziu um CV menor do que o método de SF 6 (14,1-22,4% vs. 16,0-111% para SF 6) 13 </sup&gt;. Em um experimento de 12 semanas realizado na Universidade Estadual da Pensilvânia, com 48 vacas em lactação, em que ruminais CH 4 produção foi inibida em 30% (P &lt;0,001), concluímos que CAHs eo método SF 6 produzido CH 4 resultados das emissões semelhantes : 319-481 g / vaca por dia (média = 374 g / d; EPM = 15,9; CV = 13%) e 345-485 g / vaca por dia (média = 396 g / d; EPM = 29,8; CV = 23 %) para CAHs e SF 6, respectivamente 14. Em conclusão, precisas, mas as técnicas práticas para medir CH 4 produção no rúmen são extremamente importantes para o sucesso dos esforços de mitigação de GEE. CAHs é um sistema de medição de gás automatizado que tem sido comprovada para fornecer estimativas confiáveis ​​e precisas de CH 4 entérico e emissões de CO 2 a partir de carne e leite.

A produção animal representa uma fonte significativa de gases de efeito estufa (GEE) em todo o mundo, gerando CH4 eo óxido nitroso, quer directamente (por exemplo, pela fermentação entérica e manejo de dejetos) ou indiretamente (por exemplo, de actividades de produção de ração e conversão da floresta em pastagens ou terra cultivada). Estimativas para gado contribuição para a emissão de GEE variar desde cerca de 1 7 a 18% de 2, dependendo dos limites da análise e dos métodos utilizados. Nos Estados Unidos, pecuária representou 3,1% do total das emissões de GEE em 2009 3. Entérico CH 4 é o maior contribuinte para as emissões de GEE provenientes da pecuária. Por isso, os cientistas animais têm-se centrado a sua investigação na descoberta de tecnologias de mitigação para reduzir entérico CH 4 produção de ruminantes. Em muitos casos, os resultados são de valor científico questionável devido à inadequada experimental projeto oTécnicas de medição de R 1. Assim, a exatidão e precisão das técnicas de medição são criticamente importantes componentes de pesquisa de mitigação de GEE. Um grande corpo de literatura tem sido publicado sobre este tema nos últimos anos 4-7. Há várias abordagens estabelecidas para medir entérico CH 4 produção em ruminantes, incluindo as câmaras de respiração (altamente precisos, mas com aplicabilidade limitada), gases traçadores (hexafluoreto de enxofre; SF 6), e cabeça-câmaras. Embora câmaras de respiração são considerados o &quot;padrão ouro&quot; para medir as emissões de gases do rúmen, a sua principal desvantagem é que o número de animais na experimentação é geralmente limitado devido ao número limitado de câmaras disponíveis nas instalações de investigação particular. As técnicas mais práticas e amplamente utilizado para medir a produção entérica de CH4 são o método do gás traçador SF 6 e, mais recentemente, um sistema Head-Câmara (Automated CAHs, GreenFeed) que cum monitor de CH 4 e CO 2 fluxos de massa do ar e eructação gás de ruminantes 8. Tanto a técnica de SF 6 e CAHs permitir emissões a serem analisados ​​em um grande número de animais em condições de pastoreio livre ou em celeiros LIVRE e tie-stall. A técnica SF 6 utiliza SF6 como gás marcador, que é continuamente libertado a partir de um tubo de permeação inserida no rúmen do animal, a recolha de uma amostra dos gases expirados, e análise do gás de SF6: CH rácio 4. CAHs é, um sistema de tipo cabeça-câmara automatizado que também se baseia no uso de um gás marcador (propano). Em comparação com o método de câmara de respiração, onde os animais são confinados em condições de alimentação e de comportamento anormal, e com o método traçador SF 6, que requer habilidades analíticas e equipamentos especiais (para coleta de gás e SF 6 análises) mais extensa manipulação animal, CAHs é não -intrusive e é menos caropara adquirir e operar. As principais deficiências do CAHs incluem amostragem representativa (em aplicações, como sistemas de pastagem, onde os animais têm de visitar voluntariamente a unidade) e da utilização de alimentos para animais isca, o que poderia representar até 5% do consumo de matéria seca do animal durante uma medição de gás evento. Experimentos comparativos recentes concluíram que CAHs produz taxas de emissão comparáveis ​​aos estimados utilizando câmaras de respiração ou o SF 6 técnica 9,10. O sistema CAHs autônomo é construído em torno de um alimentador automático robusto que é facilmente transportável à mão ou pode ser montado em um reboque equipado com painéis solares (ou outras fontes de energia) para a operação de campo autônoma e viagens de longa distância. O sistema inclui um sistema animais Radio-Frequency Identification (RFID), um sistema de iscagem, um sistema de tratamento de ar e medição, um sistema de traçador gás, eletrônica e sistema de comunicação, e um sistema de manipulação de dados (&lt;forte&gt; Figura 1). Mais detalhes podem ser encontrados nos documentos da patente original 11. O exemplo de protocolo operação CAHs descrito abaixo é para vacas leiteiras alojadas em um celeiro tie-stall. O procedimento é aplicável a outras categorias de gado (vacas não-lactantes, novilhas leiteiras, ou gado de corte) alojados em instalações similares. O objetivo deste experimento é demonstrar os princípios e operação de CAHs para a medição de CH 4 e emissões de CO 2 a partir de animais ruminantes.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>AHCS</td>
			<td>1</td>
			<td>C-Lock, Inc.</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Zero, 100 N2</td>
			<td>1</td>
			<td>Air Liquide</td>
			<td>4 m3 sized tanks filled with&#160; 13,790 kPa</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Span, 0.15% CH4 and 1% CO2</td>
			<td>1</td>
			<td>Air Liquide</td>
			<td>4 m3 sized tanks filled with 13,790 kPa</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas sampling bag</td>
			<td>2</td>
			<td>SKC, Inc.</td>
			<td>FlexFoil&#174; PLUS Breath-gas analysis bags</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gas regulator</td>
			<td>2</td>
			<td>Scott Gasses</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CO2 cylinder</td>
			<td>6</td>
			<td>JT</td>
			<td>90 g CO2 tanks</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mass scale</td>
			<td>1</td>
			<td>A&#38;D EJ6100</td>
			<td>&#62; 4 kg, with 0.1 g resolution</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Propane cylinder 485 mL</td>
			<td>1</td>
			<td>Coleman</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>ISO 11784/11785 button ear tag</td>
			<td>40</td>
			<td>Allflex USA</td>
			<td>One tag per animal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Alleyway (for free-stalls, tie-stalls)</td>
			<td>2</td>
			<td>Behlen Country</td>
			<td>One alleyway per unit</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>30 m AC extension cord</td>
			<td>1</td>
			<td>HDX</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>A container with warm water (37-43&#176;C)</td>
			<td>1</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stopwatch (sec)</td>
			<td>1</td>
			<td>N/A</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

the use of an automated system (greenfeed) to monitor enteric methane and carbon dioxide emissions from ruminant animals

Os animais ruminantes (domesticados ou selvagens) emitem metano (CH 4), por meio da fermentação entérica em seu trato digestivo e da decomposição do estrume durante o armazenamento. Estes processos são as principais fontes de gases de efeito estufa (GEE) provenientes de sistemas de produção animal. As técnicas para medir entérico CH4 variar de medições directas (câmaras de respiração, que são altamente precisos, mas com aplicabilidade limitada) a vários métodos indirectos (olfactivos, tecnologia de laser, os quais são práticos, mas com precisão variável). O hexafluoreto de enxofre (SF 6) método do gás marcador é comumente usado para medir entérico CH 4 por cientistas de produção de animais e, mais recentemente, a aplicação de um sistema automatizado Head-Câmara (CAHs) (GreenFeed, C-Lock, Inc., Rapid City, SD), que é o foco desta experiência, tem vindo a crescer. CAHs é um sistema automatizado para monitorar CH4 e dióxido de carbono (CO 2) a partir de fluxos de massa arespiração de animais ruminantes. Em uma operação típica CAHs, pequenas quantidades de isca de alimentação são dispensados ​​aos animais individuais para atraí-los para CAHs várias vezes ao dia. Como o animal visita CAHs, um sistema de ventilação puxa o ar passado focinho do animal em um coletor de admissão, e através de um tubo de recolha de ar onde as taxas de fluxo de ar contínuo são medidos. A sub-amostra de ar é bombeado para fora do tubo para sensores infra-vermelho não dispersivo para medição contínua de CH 4 e concentrações de CO 2. Comparações campo de CAHs para câmaras de respiração ou SF 6 demonstraram que CAHs produz resultados CH 4 de emissão repetíveis e precisos, desde que as visitas de animais para CAHs são suficientes para estimativas de emissão são representativos do ritmo diurno da produção de gás rúmen. Aqui, nós demonstrar o uso de CAHs para medir CO 2 e CH 4 fluxos de vacas leiteiras dada uma dieta controle ou dieta acrescida com castanha de caju técnico-gradelíquido shell.

<img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/52904/52904fig1.jpg" /> Figura 1: Componentes do Sistema Head-Câmara (Automated CAHs, GreenFeed) para medir a produção CH 4 em ruminantes. A produção de metano no rúmen é um processo microbiológico dependente de substrato 7. Depois disso. A produção de CH 4 e CO 2 aumenta depois que o animal é alimentado e diminui Figura 2 demonstra o aumento da produção de CH 4 a partir de uma vaca leiteira ad libitum alimentado em cerca de 0600 horas (dados não publicados pela AN Hristov, Pennsylvania State University). <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/52904/52904fig2.jpg" /> Figura 2: CH 4 Diurna emissões provenientes de uma vaca leiteira alimentados uma vez por dia medido utilizando CAHs (barras de erro representam SE; dados cortesia da AN Hristov, PenEstado nsylvania University). As barras de erro nesta figura representam a variabilidade na CH 4 de emissão durante um evento de amostragem (que inclui vários ciclos eructação). É evidente que em alguns casos (em torno de 0400 e 0900 h), a variabilidade foi maior devido à mudança de concentração de CH 4 em gases expirados. É também claro que o aumento das emissões de CH 4 após a alimentação (o qual era de cerca de 0600 horas, neste exemplo). A emissão média diária de CH 4 (ie., Uma média de 13 eventos de medição) a partir desta vaca foi 727 ± 22,9 g / dia, ou 26 g / kg quando expresso por kg de ingestão de matéria seca da dieta (DMI). Para demonstrar a gama de emissões de CH 4 a partir de um grupo de vacas leiteiras em lactação medidos usando CAHs, que incluem dados de um ensaio crossover design recente realizado na Universidade Estadual da Pensilvânia, que utilizou técnica de grau de castanha de caju shell líquido como um CH 4<html> agente de atenuação (Tabela 1). O julgamento foi com 8 vacas leiteiras em lactação da raça Holandesa e 2 períodos experimentais de 21 dias cada. Dados de metano foram coletados durante a última semana de cada período. Dados sobre as emissões de metano não foram coletados a partir de uma vaca no período 1 e dados para aquela vaca também não foram utilizadas no período 2. Detalhes do experimento podem ser encontrados em Branco et al. 12. A emissão de CO 2 média neste estudo foi de mais de 18.000 g / vaca por dia, ou 634 g / kg DMI. Média de CH 4 de emissão para este grupo de vacas foi 523 g / dia ou 20 g / kg DMI, que é semelhante ao CH média 4 emissões relatadas para um conjunto de dados de mais de 370 meios de tratamento (19,1 ± 0,43 g / kg MS) 7. No estudo apresentado na Tabela 1, em comparação com o controlo, de grau técnico casca de noz de caju líquido tende a diminuir a produção de CH4 no rúmen de vacas em cerca de 5% (P = 0,08) 12. e_content &quot;&gt; <img alt="Tabela 1" src="/files/ftp_upload/52904/52904table1.jpg" />

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The Use of an Automated System GreenFeed to Monitor Enteric Methane and Carbon Dioxide Emissions from Ruminant Animals

Accuracy and precision of the techniques used to measure methane emissions from ruminant animals are critically important for the success of greenhouse gas mitigation efforts. This manuscript describes the principles and operation of an automated system to monitor methane and carbon dioxide mass fluxes from the breath of ruminant animals.

O uso de um sistema automatizado (GreenFeed) para monitorar entérica de metano e dióxido de carbono As emissões dos ruminantes

Ruminant animals (domesticated or wild) emit methane (CH4) through enteric fermentation in their digestive tract and from decomposition of manure during ...

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Research

JoVE Journal

Environment

The Use of an Automated System (GreenFeed) to Monitor Enteric Methane and Carbon Dioxide Emissions from Ruminant Animals

21.5K visualizações.  Pennsylvania State University. Accuracy and precision of the techniques used to measure methane emissions from ruminant animals are critically important for the success of greenhouse gas mitigation efforts. This manuscript describes the principles and operation of an automated system to monitor methane and carbon dioxide mass fluxes from the breath of ruminant animals.

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Automated Gel Size Selection to Improve the Quality of Next-generation Sequencing Libraries Prepared from Environmental Water Samples

Next-generation sequencing of environmental samples can be challenging because of the variable DNA quantity and quality in these samples. High quality DNA libraries are needed for optimal results from next-generation sequencing. Environmental samples such as water may have low quality and quantities of DNA as well as contaminants that co-precipitate with DNA. The mechanical and enzymatic processes involved in extraction and library preparation may further damage the DNA. Gel size selection enables purification and recovery of DNA fragments of a defined size for sequencing applications. Nevertheless, this task is one of the most time-consuming steps in the DNA library preparation workflow. The protocol described here enables complete automation of agarose gel loading, electrophoretic analysis, and recovery of targeted DNA fragments. 
In this study, we describe a high-throughput approach to prepare high quality DNA libraries from freshwater samples that can be applied also to other environmental samples. We used an indirect approach to concentrate bacterial cells from environmental freshwater samples; DNA was extracted using a commercially available DNA extraction kit, and DNA libraries were prepared using a commercial transposon-based protocol. DNA fragments of 500 to 800 bp were gel size selected using Ranger Technology, an automated electrophoresis workstation. Sequencing of the size-selected DNA libraries demonstrated significant improvements to read length and quality of the sequencing reads.

This manuscript describes an automated gel size selection approach for purifying DNA fragments for next-generation sequencing. The Ranger Technology provides complete automation of the entire process of agarose gel loading, electrophoretic analysis, and recovery of targeted DNA fragments allowing for high-throughput and high quality next-generation sequencing libraries.

Automated Gel seleção de tamanho para melhorar a qualidade das bibliotecas de sequenciação de próxima geração Preparado a partir de amostras de água do ambiente

Next-generation sequencing of environmental samples can be challenging because of the variable DNA quantity and quality in these samples. High quality DNA ...

Ambiente

How to Create Conditioned Taste Aversion for Grazing Ground Covers in Woody Crops with Small Ruminants

Conditioned taste aversion (CTA) is a learning behavior process where animals are trained to reject certain feed after gastrointestinal discomfort has been produced. Lithium chloride (LiCl) is the preferred agent used in livestock to induce CTA because it specifically stimulates the vomit center. In addition, LiCl is commercially available, and easy to prepare and administer using a drenching gun. Nevertheless, some factors have to be considered to obtain an effective long-lasting CTA, which allows small ruminants to graze during the cropping season. A key aspect is to use animals with no previous contact with the target plant (the plant chosen to be avoided; new feed). Due to their native neophobic feeding behavior, small ruminants can easily associate the negative feedback effects with the new feed, resulting in a strong and persistent CTA. The recommended doses are 200 and 225 mg LiCl/kg body weight (BW) for goats and sheep, respectively. To induce CTA, 100 g of the target plant should be individually offered for at least 30 min, and LiCl administered thereafter if the intake is greater than 10 g. Each time the animal eats the target plant without negative consequences, the CTA becomes weaker. Consequently, to minimize the risk of target plant consumption, it is essential to have sufficient palatable ground cover available. The presence of an alternative feed (of quality and quantity) prevents the accidental consumption of the target plant. A close monitoring of the flock is recommended to remove and re-dose any animal consuming more than 4 bites or 10 g of the target plant. At the beginning of each grazing season, check the CTA status of each animal before moving them to the crop.

Feeding behavior preferences in livestock can be modified to implement a grazing management plan in woody crops. Here, we present a protocol to show a lithium chloride dose after eating a new plant that induces conditioned taste aversion.

Como criar aversão ao sabor condicionado para Grazing forrações em culturas lenhosas com Pequenos Ruminantes

Conditioned taste aversion (CTA) is a learning behavior process where animals are trained to reject certain feed after gastrointestinal discomfort has ...

Implementation of Portable Emissions Measurement Systems (PEMS) for the Real-driving Emissions (RDE) Regulation in Europe

Vehicles are tested in controlled and relatively narrow laboratory conditions to determine their official emission values and reference fuel consumption. However, on the road, ambient and driving conditions can vary over a wide range, sometimes causing emissions to be higher than those measured in the laboratory. For this reason, the European Commission has developed a complementary Real-Driving Emissions (RDE) test procedure using the Portable Emissions Measurement Systems (PEMS) to verify gaseous pollutant and particle number emissions during a wide range of normal operating conditions on the road. This paper presents the newly-adopted RDE test procedure, differentiating six steps: 1) vehicle selection, 2) vehicle preparation, 3) trip design, 4) trip execution, 5) trip verification, and 6) calculation of emissions. Of these steps, vehicle preparation and trip execution are described in greater detail. Examples of trip verification and the calculations of emissions are given.

Implementation of Portable Emissions Measurement Systems PEMS for the Real-driving Emissions RDE Regulation in Europe

The European Commission has developed a Real-Driving Emissions (RDE) test procedure to verify pollutant emissions during real-world vehicle operation using the Portable Emissions Measurement Systems (PEMS). This paper presents the experimental procedures required by the newly-adopted RDE test.

Implementação de Emissões de sistemas portáteis de medição (PEMS) para o Regulamento de Emissões-condução Real (RDE) na Europa

Vehicles are tested in controlled and relatively narrow laboratory conditions to determine their official emission values and reference fuel consumption. ...

Methods of Soil Resampling to Monitor Changes in the Chemical Concentrations of Forest Soils

Recent soils research has shown that important chemical soil characteristics can change in less than a decade, often the result of broad environmental changes. Repeated sampling to monitor these changes in forest soils is a relatively new practice that is not well documented in the literature and has only recently been broadly embraced by the scientific community. The objective of this protocol is therefore to synthesize the latest information on methods of soil resampling in a format that can be used to design and implement a soil monitoring program. Successful monitoring of forest soils requires that a study unit be defined within an area of forested land that can be characterized with replicate sampling locations. A resampling interval of 5 years is recommended, but if monitoring is done to evaluate a specific environmental driver, the rate of change expected in that driver should be taken into consideration. Here, we show that the sampling of the profile can be done by horizon where boundaries can be clearly identified and horizons are sufficiently thick to remove soil without contamination from horizons above or below. Otherwise, sampling can be done by depth interval. Archiving of sample for future reanalysis is a key step in avoiding analytical bias and providing the opportunity for additional analyses as new questions arise.

Repeated soil sampling has recently been shown to be an effective way to monitor forest soil change over years and decades. To support its use, a protocol is presented that synthesizes the latest information on soil resampling methods to aid in the design and implementation of successful soil monitoring programs.

Métodos de Reamostragem do solo para monitorar as mudanças nas concentrações químicas de Solos Florestais

Recent soils research has shown that important chemical soil characteristics can change in less than a decade, often the result of broad environmental ...

Biofilm Removal Using Carbon Dioxide Aerosols without Nitrogen Purge

Biofilms can cause serious concerns in many applications. Not only can they cause economic losses, but they can also present a public health hazard. Therefore, it is highly desirable to remove biofilms from surfaces. Many studies on CO2 aerosol cleaning have employed nitrogen purges to increase biofilm removal efficiency by reducing the moisture condensation generated during the cleaning. However, in this study, periodic jets of CO2 aerosols without nitrogen purges were used to remove Pseudomonas putida biofilms from polished stainless steel surfaces. CO2 aerosols are mixtures of solid and gaseous CO2 and are generated when high-pressure CO2 gas is adiabatically expanded through a nozzle. These high-speed aerosols were applied to a biofilm that had been grown for 24 hr. The removal efficiency ranged from 90.36% to 98.29% and was evaluated by measuring the fluorescence intensity of the biofilm as the treatment time was varied from 16 sec to 88 sec. We also performed experiments to compare the removal efficiencies with and without nitrogen purges; the measured biofilm removal efficiencies were not significantly different from each other (t-test, p &gt; 0.55). Therefore, this technique can be used to clean various bio-contaminated surfaces within one minute.

Biofilms on surfaces can be effectively and rapidly removed by using a periodic jet of carbon dioxide aerosols without a nitrogen purge.

A remoção do biofilme uso de aerossóis de dióxido de carbono sem a purga de azoto

Biofilms can cause serious concerns in many applications. Not only can they cause economic losses, but they can also present a public health hazard. ...

Automated, High-resolution Mobile Collection System for the Nitrogen Isotopic Analysis of NOx

Nitrogen oxides (NOx = NO + NO2) are a family of atmospheric trace gases that have great impact on the environment. NOx concentrations directly influence the oxidizing capacity of the atmosphere through interactions with ozone and hydroxyl radicals. The main sink of NOx is the formation and deposition of nitric acid, a component of acid rain and a bioavailable nutrient. NOx is emitted from a mixture of natural and anthropogenic sources, which vary in space and time. The collocation of multiple sources and the short lifetime of NOx make it challenging to quantitatively constrain the influence of different emission sources and their impacts on the environment. Nitrogen isotopes of NOx have been suggested to vary amongst different sources, representing a potentially powerful tool to understand the sources and transport of NOx. However, previous methods of collecting atmospheric NOx integrate over long (week to month) time spans and are not validated for the efficient collection of NOx in relevant, diverse field conditions. We report on a new, highly efficient field-based system that collects atmospheric NOx for isotope analysis at a time resolution between 30 min and 2 hr. This method collects gaseous NOx in solution as nitrate with 100% efficiency under a variety of conditions. Protocols are presented for collecting air in urban settings under both stationary and mobile conditions. We detail the advantages and limitations of the method and demonstrate its application in the field. Data from several deployments are shown to 1) evaluate field-based collection efficiency by comparisons with in situ NOx concentration measurements, 2) test the stability of stored solutions before processing, 3) quantify in situ reproducibility in a variety of urban settings, and 4) demonstrate the range of N isotopes of NOx detected in ambient urban air and on heavily traveled roadways.

Automated, High-resolution Mobile Collection System for the Nitrogen Isotopic Analysis of NOx

Previous work suggests that the nitrogen isotopic composition of atmospheric nitrogen oxides might distinguish the influence of different sources in the environment. We report on an automated, mobile, field-based method for the high collection efficiency of atmospheric NOx for N isotopic analysis at an hourly time resolution.

Automatizado, de alta resolução Sistema de Coleta Móvel para a análise de azoto isotópica de NO<sub&gt; x</sub

Nitrogen oxides (NOx = NO + NO2) are a family of atmospheric trace gases that have great impact on the environment. NOx concentrations directly influence ...

Controlled-release of Chlorine Dioxide in a Perforated Packaging System to Extend the Storage Life and Improve the Safety of Grape Tomatoes

A controlled-release chlorine dioxide (ClO2) pouch was developed by sealing a slurry form of ClO2 into semipermeable polymer film; the release properties of the pouch were monitored in containers with or without fruit. The pouch was affixed to the inside of a perforated clamshell containing grape tomatoes, and the effect on microbial population, firmness, and weight loss was evaluated during a 14 day storage period at 20 &#176;C. Within 3 days, the ClO2 concentration in the clamshells reached 3.5 ppm and remained constant until day 10. Thereafter, it decreased to 2 ppm by day 14. The ClO2 pouch exhibited strong antimicrobial activity, reducing Escherichia coli populations by 3.08 log CFU/g and Alternaria alternata populations by 2.85 log CFU/g after 14 days of storage. The ClO2 treatment also reduced softening and weight loss and extended the overall shelf life of the tomatoes. Our results suggest that ClO2 treatment is useful for extending the shelf life and improving the microbial safety of tomatoes during storage without impairing their quality.

Here, we describe a protocol for the application of a novel, slow-release ClO2 product that reduces spoilage and extends the shelf life of fresh fruit. The slow-release ClO2 product was added to standard commercial grape tomato packaging and tested against Escherichia coli and Alternaria alternata.

A libertação controlada de dióxido de cloro em um sistema de embalagem perfurada para prolongar a vida de armazenamento e melhorar a segurança dos Tomates da uva

A controlled-release chlorine dioxide (ClO2) pouch was developed by sealing a slurry form of ClO2 into semipermeable polymer film; the release properties ...

Measurement of the Rheology of Crude Oil in Equilibrium with CO2 at Reservoir Conditions

A rheometer system to measure the rheology of crude oil in equilibrium with carbon dioxide (CO2) at high temperatures and pressures is described. The system comprises a high-pressure rheometer which is connected to a circulation loop. The rheometer has a rotational flow-through measurement cell with two alternative geometries: coaxial cylinder and double gap. The circulation loop contains a mixer, to bring the crude oil sample into equilibrium with CO2, and a gear pump that transports the mixture from the mixer to the rheometer and recycles it back to the mixer. The CO2 and crude oil are brought to equilibrium by stirring and circulation and the rheology of the saturated mixture is measured by the rheometer. The system is used to measure the rheological properties of Zuata crude oil (and its toluene dilution) in equilibrium with CO2 at elevated pressures up to 220 bar and a temperature of 50 &#176;C. The results show that CO2 addition changes the oil rheology significantly, initially reducing the viscosity as the CO2 pressure is increased and then increasing the viscosity above a threshold pressure. The non-Newtonian response of the crude is also seen to change with the addition of CO2.

Measurement of the Rheology of Crude Oil in Equilibrium with CO2 at Reservoir Conditions

A method for measuring the rheology of crude oil in equilibrium with carbon dioxide at reservoir conditions is presented.

Medição da reologia do petróleo bruto em equilíbrio com CO<sub&gt; 2</sub&gt; Nas condições do reservatório

A rheometer system to measure the rheology of crude oil in equilibrium with carbon dioxide (CO2) at high temperatures and pressures is described. The ...

The Calibration and Use of Capacitance Sensors to Monitor Stem Water Content in Trees

Water transport and storage through the soil-plant-atmosphere continuum is critical to the terrestrial water cycle, and has become a major research focus area. Biomass capacitance plays an integral role in the avoidance of hydraulic impairment to transpiration. However, high temporal resolution measurements of dynamic changes in the hydraulic capacitance of large trees are rare. Here, we present procedures for the calibration and use of capacitance sensors, typically used to monitor soil water content, to measure the volumetric water content in trees in the field. Frequency domain reflectometry-style observations are sensitive to the density of the media being studied. Therefore, it is necessary to perform species-specific calibrations to convert from the sensor-reported values of dielectric permittivity to volumetric water content. Calibration is performed on a harvested branch or stem cut into segments that are dried or re-hydrated to produce a full range of water contents used to generate a best-fit regression with sensor observations. Sensors are inserted into calibration segments or installed in trees after pre-drilling holes to a tolerance fit using a fabricated template to ensure proper drill alignment. Special care is taken to ensure that sensor tines make good contact with the surrounding media, while allowing them to be inserted without excessive force. Volumetric water content dynamics observed via the presented methodology align with sap flow measurements recorded using thermal dissipation techniques and environmental forcing data. Biomass water content data can be used to observe the onset of water stress, drought response and recovery, and has the potential to be applied to the calibration and evaluation of new plant-level hydrodynamics models, as well as to the partitioning of remotely sensed moisture products into above- and belowground components.

The hydraulic capacitance of biomass is a key component of the vegetation water budget, which serves as a buffer against short and long-term drought stresses. Here, we present a protocol for the calibration and use of soil moisture capacitance sensors to monitor water content in the stems of large trees.

A calibração e a utilização de sensores de capacitância de monitorar o conteúdo de água do caule em árvores

Water transport and storage through the soil-plant-atmosphere continuum is critical to the terrestrial water cycle, and has become a major research focus ...

A Video Surveillance System to Monitor Breeding Colonies of Common Terns (Sterna Hirundo)

Many waterbird populations have faced declines over the last century, including the common tern (Sterna hirundo), a waterbird species with a widespread breeding distribution, that has been recently listed as endangered in some habitats of its range. Waterbird monitoring programs exist to track populations through time; however, some of the more intensive approaches require entering colonies and can be disruptive to nesting populations. This paper describes a protocol that utilizes a minimally invasive surveillance system to continuously monitor common tern nesting behavior in typical ground-nesting colonies. The video monitoring system utilizes wireless cameras focused on individual nests as well as over the colony as a whole, and allows for observation without entering the colony. The video system is powered with several 12 V car batteries that are continuously recharged using solar panels. Footage is recorded using a digital video recorder (DVR) connected to a hard drive, which can be replaced when full. The DVR may be placed outside of the colony to reduce disturbance. In this study, 3,624 h of footage recorded over 63 days in weather conditions ranging from 12.8 &#176;C to 35.0 &#176;C produced 3,006 h (83%) of usable behavioral data. The types of data retrieved from the recorded video can vary; we used it to detect external disturbances and measure nesting behavior during incubation. Although the protocol detailed here was designed for ground-nesting waterbirds, the principal system could easily be modified to accommodate alternative scenarios, such as colonial arboreal nesting species, making it widely applicable to a variety of research needs.

A Video Surveillance System to Monitor Breeding Colonies of Common Terns Sterna Hirundo

This paper describes a protocol that uses a remote video monitoring surveillance system to continuously monitor breeding colonies of ground-nesting waterbirds. The system includes five cameras monitoring individual nests and one camera monitoring the colony as a whole, and is powered by car batteries that are recharged via solar panels.

Um sistema de vigilância por vídeo para monitorar a criação de colônias de andorinhas comuns (Sterna Hirundo)

Many waterbird populations have faced declines over the last century, including the common tern (Sterna hirundo), a waterbird species with a widespread ...