Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Метод функциональной визуализации мыши коричневой жировой ткани (BAT) описан в котором холодно-стимулированного поглощения 18F-фтордезоксиглюкозы (ФДГ) в НДТ является неинвазивным оценку со стандартизированным протоколом micro-PET/CT. Этот метод является надежным и чувствительным, чтобы обнаружить различия в BAT деятельности на мышах.

Аннотация

Браун жировой ткани (BAT) отличается от белой жировой ткани (WAT) ее дискретным расположением и красно-коричневый цвет из-за богатой васкуляризации и высокую плотность митохондрий. BAT играет важную роль в энергетических затрат и не дрожать термогенеза у новорожденных млекопитающих, а также взрослые 1. BAT-опосредованной термогенез высоко регулируется симпатической нервной системы, преимущественно через β адренергических рецепторов, 2, 3. Недавние исследования показали, что BAT деятельности в человеческом взрослых отрицательно коррелирует с индексом массы тела (ИМТ) и другие параметры, диабетическая 4-6. BAT, таким образом, был предложен в качестве потенциальной мишенью для терапии anti-obesity/anti-diabetes упором на модуляции энергетического баланса 6-8. Хотя несколько холодных задача на основе позитронной эмиссионной томографии (ПЭТ) методы, установленные для обнаружения человека BAT 9-13, по существу, отсутствует стандартизированный протокол для работы с изображениями и quantification НИМ в небольших моделях животных, таких как мыши. Здесь мы опишем надежные ПЭТ / КТ изображений методом функциональной оценки BAT у мышей. Короче говоря, взрослый C57BL/6J мышей были холодные лечение в условиях голодания на продолжительность 4 часа, прежде чем они получили одну дозу 18 F-фтордезоксиглюкозы (ФДГ). Мышей остался в холодном еще на один час после инъекции ФДГ, а затем отсканированы с небольшим животным выделенных micro-PET/CT системы. Полученные изображения ПЭТ были совместно зарегистрированы в КТ-изображений для анатомических ссылки и анализировали на поглощение ФДГ в межлопаточной области BAT представить BAT деятельности. Этот стандартизированный холодной обработки и визуализации протокола было подтверждено путем тестирования деятельностью BAT во время фармакологических вмешательств, например, подавленное BAT активации лечение β-адренорецепторов пропранололом 14, 15, или расширенной активации BAT по β3 агонист BRL37344 16. Метод де-описанными здесь может быть применен для выявления наркотиков / соединений, которые модулируют активность BAT, или чтобы идентифицировать гены / путями, которые участвуют в BAT развития и регулирования в различных доклинические и фундаментальных исследований.

протокол

1. Подготовка животных и Лечение холодом

  1. Найдите и осмотрите 4 ° C холодную комнату, которая была одобрена для размещения лабораторных мышей.
  2. Предварительное охлаждение клеток для животных на ночь в холодной комнате. Клетки собирают без корма и подстилки, но с бутылкой воды.
  3. Утром в день эксперимента, место мышей по одному в каждой из предварительно охлажденных клетках каждые 30 мин. Каждый по отдельности клетке мыши должен оставаться в холодном помещении в течение почти 4 часа, прежде чем он транспортируется в лабораторию изображений. Убедитесь, что мыши поста, но с доступом к воде.
  4. В 4 ч после холодного транспорта лечение одного животного в то время, каждые 30 минут до изображениями Lab. Это может быть достигнуто путем заполнения контейнера пенополистирола со льдом и размещение предварительно охлажденные жилья клетки в верхней части льда внутри коробки. Свободно установите крышку на коробку из пенопласта.

2. Установка Micro-PET/CT изображений Workflow

В этом протоколе micro-PET/CT изображений достигается с Siemens Inveon Выделенный ПЭТ (dPET) системы и Inveon Комплексное (MM) система (КТ / SPECT) в закрепленном режиме. Животное помещается от MM вход, сначала сканируются с КТ для анатомических ссылки, а затем снизилась до центра dPET для статического F18 ПЭТ приобретением. Для того, чтобы включить компьютер для выполнения этих задач последовательного автоматически, следующий "рабочий процесс" запрограммирован на рабочем месте Inveon Acquisition (IAW) программного обеспечения до фактического сессии изображений.

  1. CT Приобретение: для компьютерной томографии всего тела, установить ток 500 мкА, напряжение на 80kV, время экспозиции при 200 мс и 240 шагов на 240 ° вращение. Для детектор рентгеновского излучения, выберите разрешение в "малом увеличении системе" с 78 мм осевое поле изображения и одиночный режим кровать. Выберите "реального времени реконструкции" с помощью "Общие Cone-Beam реконструкции" метод так, что хост-компьютер переговоры свыделенном реальном времени компьютерной реконструкции (Cobra), чтобы инициировать задачу.
  2. ПЭТ выбросов Приобретение: Set 600 секунд (10 минут) для "фиксированное время сканирования" в "приобрести по времени" вариант. Выберите F-18 как "исследование изотопов» и использовать 350-650 кэВ, как "уровень энергии".
  3. ПЭТ выбросов Гистограмма: Set "динамический кадр", как "черная" для обработки данных как один кадр в течение всего срока для достижения статического сканирования. Выберите "3D", как гистограмма типа и выберите "нет разброса коррекции".
  4. ПЭТ реконструкции: Используйте 2D заказанные Максимизация Subset Ожидание (OSEM2D), как реконструкция алгоритма.

3. Инъекции FDG

  1. Заказать клинических пакет из 18 F-ФДГ (10 мКи) из регионального поставщика для своего прибытия в лабораторию визуализации ~ 30 минут до запланированного первой инъекции. Следите безопасности института процедур для получения и обследовать пакет, содержащий радиоактивный материиLs (RAM).
  2. С защитой, предоставляемой L-блок столешницы щит, аликвоты ФДГ и сделать разведение стерилизованной физиологическим раствором. Разбавленной концентрации активности ФДГ должны быть доступны на 200-300 μCi/100 улица для каждой инъекции. Нарисуйте решение ФДГ в 1 мл шприц с 26G 1/2 дюйма иглы, и измерения радиоактивности всего шприц с дозой калибратора.
  3. Inject животное, которое просто переносится из холодного помещения (см. Шаг 1,4) с 100 мкл раствора ФДГ через внутрибрюшинно (IP) маршруту. Запись времени впрыска. Измерьте остаток радиоактивности шприц снова с дозой калибратора.
  4. Положить животное обратно в клетку холодную внутри холодильника пенополистирола поддерживается со льдом. Инкубируйте животных в холодном (~ 4 ° C) в течение 1 часа для поглощения FDG.
  5. Рассчитать впрыском деятельности ФДГ для каждой мыши по следующей формуле:
    Введенный деятельности (мкКи) = активность в шприце перед инъекцией- Деятельность в шприце после инъекции

4. Micro-PET/CT изображений

  1. Визуализации micro-PET/CT начинается через 1 час после введения ФДГ или 5 часов после холодной обработки. Положите животное в камеру вводного наркоза с 3% Isoflurane в кислороде.
  2. После анестезии индуцируется, животное перемещается на микро-CT гранул (животное кровать) с его голова покоилась в маске конус лица, которые непрерывно поставляет Isoflurane (2%) при расходе 2 л / мин. Электрическая грелка (Биовет, m2m изображений корпорация) находится под животным для поддержания температуры тела.
  3. Вставьте животного к входу в М.М. сканер, активировать "лазер" значок на панели инструментов, а также использовать сенсорную панель управления для перемещения кровати так, чтобы грудь животного на пересечении горизонтальных и вертикальных линий лазера. В "Лазерная Выравнивание" окне выберите "Первый тип сканирования", как КТ, и "PET приобретения включена в рабочий процесс", как Optioн.
  4. Откройте "Scout View" окно и приобрести разведчик вид рентгеновского снимка. Используйте IAW регулировать положение животного кровать так, чтобы центр поля зрения CT расположена в центре корпуса мыши (печень). Повторите этот шаг, если это необходимо.
  5. Начало "рабочий процесс", созданный в шаге 2. При варианты всплывают, выберите соответствующий 3D ПЭТ-КТ матрицы преобразования файлов, которые будут использоваться в КТ реконструкция, и выберите недавно созданный файл для нормализации ПЭТ реконструкции без ослабления коррекции. IAW затем начнет КТ и ПЭТ последовательно, как запрограммировано.
  6. После того, как весь рабочий процесс завершен, которое может занять 20-25 минут, кратко оценить качество приобретенных КТ и ПЭТ изображения с ASIPro В.М., микро-PET программного обеспечения для анализа совместно с установленной IAW. Архив визуализации данных на устройство хранения данных или передачи данных через сеть на пост станцию ​​анализа изображений (см. Шаг 5) для дальнейшего анализа.
  7. Releaсебе животное из системы визуализации и поместите его в чистую клетку корпуса с нормальной пищи и воды для ее восстановления при комнатной температуре. Системы готовы к следующему животных в очереди. Обратите внимание, заботу и обработки пост-изображений животных должны соблюдать правила института о "обработка лабораторных животных, которым вводили RAM". Также отметим, что использованные иглы / шприцы, впитывающие прокладки, перчатки, и все постельные принадлежности и фекалии должны рассматриваться как радиоактивные отходы, и обрабатывается в соответствии с институтом соответствующие правила утилизации отходов RAM распоряжении.

5. После анализа изображений

  1. Открытые исследования Inveon рабочем месте (IRW) программное обеспечение (Siemens) и вручную импортировать как КТ и ПЭТ наборов данных. Co-регистр КТ и ПЭТ изображений в "Регистрация" окна с помощью инструментов "Общий анализ" функции, и под "Обзор" окна убедитесь, что идеальное соответствие между КТ и ПЭТ фотографий во всех 3-х измерениях.
  2. От «области интереса (ROI) Количественная окна", с ссылками осуществляется совместно зарегистрированных КТ-изображений, определить BAT в межлопаточной области шеи, наиболее распространенных холодно-индуцируемых BAT у взрослых мышей, и рисовать объем процентных (ВОИ) НИМ над ПЭТ набор данных. Выберите "Voxel Intensity" как "Количественное Type" и запишите среднее радиоактивности в VOI как Бк / мл. Калибровочный коэффициент, который преобразует имп / сек Бк / мл была ранее создана путем сканирования призрак с известной радиоактивностью.
  3. ФДГ поглощения в BAT количественно как процент введенной дозы на грамм ткани (% ID / г) с распадом коррекции. Вводят внутривенно в дозе является результатом Шаг 3,5, однако, преобразуется в Беккерель (Бк) блок (1 мкКи = 37000 Бк), мы предполагаем, что 1 мл ткани равна 1 гр.

Результаты

Пример micro-PET/CT изображений мышь BAT показано на рисунке 1. Хотя КТ предоставляет анатомической информации, изображений ПЭТ кодирует распределении и количестве 18 F-ФДГ поглощения по всему телу. Эти визуализации данных может рассматриваться отдельно (1А и 1В), плавленый (1C), ил?...

Обсуждение

В этом исследовании micro-PET/CT-based метод визуализации был разработан для обнаружения BAT деятельности у взрослых мышей, которые просто требуют лечения простуды и одной инъекции коммерчески доступные 18 F-ФДГ. Вся процедура может быть сделано в течение одного дня после обработки и визуа...

Раскрытие информации

Нет конфликта интересов объявлены.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить Лаура Диаз, Кевин Филлипс, Вилла А. Сюэ, и король С. Ли за их полезные комментарии и техническую поддержку в разработке этого метода.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Название реагента Компания Номер в каталоге Комментарии (по желанию)
Micro-PET/CT Imaging System Siemens Medical Solutions USA, Inc Inveon Выделенный ПЭТ системы и Inveon Комплексное CT / SPECT системы (стыковка)
Пропранолол Сигма P0884
BRL 37344 Сигма B169
18 F-ФДГ Cyclotope Инк
C57BL/6J самцов мышей Jackson Laboratory 000664 3-4 месяцев

Ссылки

  1. Cypess, A. M., Kahn, C. R. The role and importance of brown adipose tissue in energy homeostasis. Curr. Opin. Pediatr. 22, 478-484 (2010).
  2. Cannon, B., Nedergaard, J. Brown adipose tissue: function and physiological significance. Physiol. Rev. 84, 277-359 (2004).
  3. Collins, S., Surwit, R. S. The beta-adrenergic receptors and the control of adipose tissue metabolism and thermogenesis. Recent Prog. Horm. Res. 56, 309-328 (2001).
  4. Ouellet, V., et al. Outdoor temperature, age, sex, body mass index, and diabetic status determine the prevalence, mass, and glucose-uptake activity of 18F-FDG-detected BAT in humans. J. Clin. Endocrinol. Metab. 96, 1115-1125 (2011).
  5. Cypess, A. M. Identification and importance of brown adipose tissue in adult humans. N. Engl. J. Med. 360, 1509-1517 (2009).
  6. Fruhbeck, G., Becerril, S., Sainz, N., Garrastachu, P., Garcia-Velloso, M. J. BAT: a new target for human obesity. Trends Pharmacol. Sci. 30, 387-396 (2009).
  7. Cypess, A. M., Kahn, C. R. Brown fat as a therapy for obesity and diabetes. Curr. Opin. Endocrinol. Diabetes Obes. 17, 143-149 (2010).
  8. Virtanen, K. A., et al. Functional brown adipose tissue in healthy adults. N. Engl. J. Med. 360, 1518-1525 (2009).
  9. van Marken Lichtenbelt, W. D., et al. Cold-activated brown adipose tissue in healthy men. N. Engl. J. Med. 360, 1500-1508 (2009).
  10. Cohade, C., Mourtzikos, K. A., Wahl, R. L. "USA-Fat": prevalence is related to ambient outdoor temperature-evaluation with 18F-FDG PET/CT. J. Nucl. Med. 44, 1267-1270 (2003).
  11. Garcia, C. A. Reduction of brown fat 2-deoxy-2-[F-18]fluoro-D-glucose uptake by controlling environmental temperature prior to positron emission tomography scan. Mol. Imaging Biol. 8, 24-29 (2006).
  12. Saito, M. High incidence of metabolically active brown adipose tissue in healthy adult humans: effects of cold exposure and adiposity. Diabetes. 58, 1526-1531 (2009).
  13. Agrawal, A., Nair, N., Baghel, N. S. A novel approach for reduction of brown fat uptake on FDG PET. Br. J. Radiol. 82, 626-631 (2009).
  14. Soderlund, V., Larsson, S. A., Jacobsson, H. Reduction of FDG uptake in brown adipose tissue in clinical patients by a single dose of propranolol. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 34, 1018-1022 (2007).
  15. Zhao, J., Cannon, B., Nedergaard, J. Thermogenesis is beta3- but not beta1-adrenergically mediated in rat brown fat cells, even after cold acclimation. Am. J. Physiol. 275, 2002-2011 (1998).
  16. Rowland, D. J., Garbow, J. R., Laforest, R., Snyder, A. Z. Registration of [18F]FDG microPET and small-animal MRI. Nucl. Med. Biol. 32, 567-5672 (2005).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

6918 F

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены