Областью наших исследований является спектральная характеристика физиологических и больных органов и тканей у пациентов, а также на животных моделях. Используя гиперспектральную визуализацию, мы надеемся, что сможем надежно оценить ткани, утвердить эту технологию в качестве нового диагностического столпа в медицине и закрыть существующие диагностические пробелы. В настоящее время экспериментальные проблемы для спектральной характеристики органов грудной клетки заключаются в необходимости обнажения поверхностей органов и артефактах движения в процессе нанесения покрытия из-за механической вентиляции, которые могут быть успешно решены с помощью этой новой техники.
Далее мы сосредоточимся на спектральной характеристике органов и на передаче спектральных данных между различными видами. Это позволит нам абстрагироваться от знаний, полученных на животных моделях, и применить их к людям на благо пациентов. Для начала сложите канюли под углом 135 градусов, в одном сантиметре от кончика.
С помощью замка Люэра подсоедините канюли к пластиковым перфузионным трубкам. Затем поместите грелку на стальную пластину аппарата для хирургического воздействия для термической поддержки. Подготовьте крючки для подготовки хирургической операции с прикрепленными пластиковыми трубками и хирургическими зажимами от комаров, чтобы затем натянуть ткань для хирургического воздействия.
Далее укоротите и скосите внутривенные катетеры разного размера. Во время интубации вставьте направляющую проволоку из набора артериальных лидеркатов в катетер, наиболее подходящий по размеру животного для техники Сельдингера. После обезболивания крысы выполните щипцы ног, чтобы проверить глубину анестезии.
Затем нанесите офтальмологическую мазь на глаза животного. Перед торакотомией проводят дополнительную анальгезию с помощью подкожной инъекции карпрофена. Используйте трансназальную неонатальную маску, чтобы предложить животному 100% вдыхание кислорода, чтобы насытить его циркуляцию кислорода.
Через пять минут замените неонатальную маску на неонатальный вентиляционный мешок, изготовленный из мужского пластикового шприца с наконечником люэровского замка. Обеспечьте кислород и переполнение с помощью кончика шприца, расположенного близко к кончику носа животного. Затем сделайте срединный разрез шейного отдела грудной клетки необходимой длины и с помощью крючков для подготовки к операции обнажите место операции.
Далее с помощью тонких ножниц выполните тупое рассечение через шейную фасцию. Обнажите грудино-ключично-сосцевидную и подъязычную мышцу. После рассечения левой боковой оболочки латерализировать срединную подъязычную мышцу вправо.
Используйте оверхолтовые зажимы для выполнения тупого рассечения по направлению к трахее и туннеля трахеи. Затем с помощью петли силиконового сосуда перевязать трахею и закрепить дистальный отдел трахеи двойным стропом с помощью полифиламентного шва для последующей фиксации эндотрахеальной канюли. С помощью атравматичных плоскогубцев разгибают трахею каудально.
Затем с помощью ножниц сделайте частичный разрез трахеи на 180 градусов по окружности. Теперь вставьте в трахею направляющий провод Seldinger с гибким концом и введите в трахею модифицированный внутривенный катетер соответствующего размера. Затем снимите провод Сельдингера и подсоедините наконечник люэровского замка трахеального катетера к модифицированному вентиляционному мешку.
После этого запустите ручную вентиляцию легких с высокой частотой и низким дыхательным объемом. Закрепите ранее установленный фиксирующий шов скользящим узлом, чтобы предотвратить утечку воздуха и случайное удаление катетера. Далее, используя ножницы с тупым и устойчивым материалом, начните срединную торакотомию от мечевидной кости и продолжайте краниально через грудину.
Кратковременно приостанавливайте вентиляцию при продвижении ножниц в продольном направлении и при резке, чтобы избежать травмирования легких. Удалите крючки для подготовки к операции с кожи и вставьте их в грудную клетку, чтобы получить дальнейшее обнажение. Используйте крючки для подготовки хирургических операций для обнажения грудной клетки и удаления серозальных мембран средостения.
Сатурация кислорода никогда не опускалась ниже 92%, и все крысы выжили в течение 20 минут, необходимых для экспериментальных измерений.
