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摘要

病毒诱导的基因沉默(VIGS)的基因表达击倒在方法的说明烟草benthamiana和西红柿。

摘要

RNA干扰(RNAi)是一个非常具体的的由双链RNA 1引发的基因沉默的现象。这沉默机制使用RNA的监管的两大类:小分子RNA,这是从非蛋白质编码基因和短干扰RNAs(siRNAs)。植物利用RNAi技术来控制转座子和发挥对发育过程中,如花器官的形成和叶的发展 2,3,4的严格控制。植物也利用RNA干扰抵御感染病毒本身。因此,许多病毒已经进化的基因抑制基因沉默,让他们成功定植其主机5。

病毒诱导的基因沉默(VIGS)是一种方法,它利用植物RNAi介导的抗病毒防御机制。在未修改病毒感染的植物的机制是专门针对病毒的基因组。然而,与病毒载体携带来自宿主基因的序列,这个过程可以额外针对相应的主机的mRNA。 VIGS已适应高通量功能基因组学在植物使用的植物病原农杆菌提供,通过其Ti质粒,重组病毒携带整个或部分沉默针对性的基因序列。全身病毒的传播和内源性植物RNAi的机械,其余的照顾。相应的靶基因的dsRNAs生产,然后到21至24个核苷酸的siRNA的核糖核酸酶Dicer的切割。这些siRNAs最终指导的RNA诱导的沉默复合体(RISC)降解目标成绩单2。

在VIGS已采用不同载体和最常用的是基于对烟草脆裂病毒(TRV)。 TRV是一个双边的病毒,正因为如此,两个不同农杆菌株用于VIGS。其中一个进行pTRV1,而另一方面,pTRV2,港口的外壳蛋白和用于VIGS 6,7序列编码的病毒复制和运动功能。接种benthamiana烟草和番茄幼苗混合两种菌株在基因沉默的结果。内源性的八氢番茄红素脱氢酶(PDS)的基因,这将导致漂白,沉默是用来作为VIGS的效率控制。但是,应该指出,在番茄的沉默通常小于 N中的有效benthamiana。应始终感兴趣的基因的RNA转录本丰度测量,以确保有效地被下调的靶基因。然而,从外源基因序列benthamiana可以用他们各自的同源基因沉默番茄,反之亦然8。

研究方案

第1部分:植物材料

本生烟沉默使用的植物应约2个半周龄时,子叶和第2 - 4片真叶出现。番茄( 白毛lycopersicum)植物7 - 8天的出现,片真叶时尚未出现。

第2部分:VIGS

第1天

  1. 对于每一个实验中农杆菌窝藏pTRV1,pTRV2,pTRV2 PDS和pTRV2主机靶基因是生长在LB琼脂板与卡那霉素50微克/毫升和100微克/毫升利福平补充。卡那霉素的选择,而利福平这样做农杆菌pTRV质粒。 2天,在30 ° C孵育板。
    PDS的沉默会导致植物的光漂白和作为一个沉默的效率控制使用。此外,必须克隆到一个pTRV2载体的基因被下调。有网关兼容pTRV2可能有助于克隆的载体,是由刘等人的描述。 (2002年)。

第3天

  1. 接种2 - 3毫升与上述每一株抗生素的LB液体培养。晃动在30 ° C孵育16 - 18小时和200 RPM

第4天

  1. 接种1:到次要的液体诱导培养基(IM),与卡那霉素,利福平和200微米的乙酰丁香酮(表1,2和3)IM文化,小学文化25稀释。乙酰丁香酮是用来作为一种必需的,而在IM模拟的环境,这种病菌遇到主机质外体的T - DNA 转移 到植物9农杆菌vir区基因的诱导。孵育,在30 ° C震动20 - 24小时和200 RPM

第5天

  1. 收获的细胞,离心10分钟,3000 × G.悬浮在相同体积与10毫米MgCl 2的 10毫米MES的pH值5.5,原有的文化。细胞可能是轻轻振荡,以重悬。
  2. 再次为10分钟3000 × G. Centrifugue细胞重悬在半原始文化的音量氯化镁10毫米,10毫米的MES pH值5.5。
  3. 每个细菌培养一种细菌悬浮液,准备与外径 0.3 600。添加乙酰丁香酮的终浓度为400微米pTRV1文化。
  4. 包含pTRV1 pTRV2在1比1的比例(或含有目的基因的pTRV2)混合的文化。还包括一个pTRV2 - PDS控制。请注意,最后的乙酰丁香酮的浓度是现在的200微米,每一种文化是一个外径600 0.15。
  5. 标签要保持沉默的基因和实验日期渗透苗。
  6. 到每个渗入叶用针戳一个孔。使用1毫升不必要的注射器,渗透到幼苗的菌悬液。番茄,渗透子叶同时为N。 benthamiana,最大的两个片真叶渗透。五毫升每个细菌混合,应足以渗透到15 Nbenthamiana和25个番茄幼苗。改变,不浇水,直到接种后的第二天植物之间的渗透和手套,以避免交叉污染。
  7. 植物都保持在20 - 22 ° C的增长与一个每天16小时的长度和50%RH至少3个半星期之前,他们可能会使用检测室。

第3部分:代表结果

图1显示了一个代表性的实验 N benthamiana和番茄植株适用于PDS沉默。植物漂白表型特征,观察植物的减少数量的类胡萝卜素。对于PDS沉默的对照植株,漂白开始被看作是尽快为1 ½周后渗透。

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图1。PDS控制基因沉默的原因在本生烟(A)和番茄(二)植物漂白。照片是3个半星期后的沉默。

表1。诱导培养基(IM)的制备。

400毫升蒸馏水2 O
4.88摹 MES(2 - (4啉)乙烷磺酸)
2.5摹血糖
0.12摹的NaH 2 PO 4

带上一个DH 2 O的最终体积475毫升,并调整pH值至5.6 。高压灭菌器。介质冷却下来后,添加25毫升20X AB盐。

表2。AB盐的制备。

20克 NH 4 CL
6摹硫酸镁4 · 7H 2 O
3摹氯化钾
0.2克 氯化钙
0.05摹 FESO 4 · 7H 2 O

带至终体积为1升蒸馏水。高压灭菌。要知道,AB盐作为一个橘黄色粉末沉淀。只要将它们混合以及通过其使用前旋转。

表3。乙酰丁香酮的制备的200毫米。请注意,乙酰丁香酮,应准备的一天,它将被用来。

19.6毫克乙酰丁香酮(3',5' -二甲氧基-4' - 羟基苯乙酮)
500μL, DMSO(二甲基亚砜)

讨论

病毒诱导的基因沉默是一种方法,允许快速反向遗传筛选。它避免了新一代的T - DNA或转座子介导的基因敲除,这是只有在某些植物如拟南芥和玉米。它也避开了厂房改造耗时的过程,并允许针对多个基因在同一时间,只要他们有足够的同源性10或不同的主机上的靶序列,同时安排在沉默载体6,11

然而,沉默是没有100%有效,因此,必须小心解释结果...

致谢

我们感谢她的手稿上的有价值的见解博士帕特里夏Manosalva。经费是由美国国家科学基金会植物基因组计划,获奖数量DBI - 0605059。

参考文献

  1. Voinnet, O. RNA silencing as a plant immune system against viruses. Trends Genet. 17, 449-459 (2001).
  2. Carrington, J. C., Ambros, V. Role of microRNAs in plant and animal development. Science. 301, 336-338 (2003).
  3. Chen, X. A microRNA as a translational repressor of APETALA2 in Arabidopsis flower development. Science. 303, 2022-2025 (2004).
  4. Palatnik, J. F. Control of leaf morphogenesis by microRNAs. Nature. 425, 257-263 (2003).
  5. Brigneti, G. Viral pathogenicity determinants are suppressors of transgene silencing in Nicotiana benthamiana. EMBO J. 17, 6739-6746 (1998).
  6. Liu, Y., Schiff, M., Dinesh-Kumar, S. P. Virus-induced gene silencing in tomato. Plant Journal. 31, 777-786 (2002).
  7. MacFarlane, S. A. Molecular biology of the tobraviruses. J. Gen. Virol. 80, 2799-2807 (1999).
  8. Senthil-Kumar, M. A systematic study to determine the extent of gene silencing in Nicotiana benthamiana and other Solanaceae species when heterologous gene sequences are used for virus-induced gene silencing. New Phytol. 176, 782-791 (2007).
  9. McCullen, C. A., Binns, A. N. Agrobacterium tumefaciens and plant cell interactions and activities required for interkingdom macromolecular transfer. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22, 101-127 (2006).
  10. Rosebrock, T. R. A bacterial E3 ubiquitin ligase targets a host protein kinase to disrupt plant immunity. Nature. 448, 370-374 (2007).
  11. Miki, D., Itoh, R., Shimamoto, K. RNA silencing of single and multiple members in a gene family of rice. Plant Physiol. 138, 1903-1913 (2005).
  12. Voinnet, O. Use, tolerance and avoidance of amplified RNA silencing by plants. Trends Plant Sci. 13, 317-328 (2008).
  13. Ekengren, S. K., Liu, Y., Schiff, M., Kumar-Dinesh, S. P., Martin, G. B. Two MAPK cascades, NPR1, and TGA transcription factors play a role in Pto-mediated disease resistance in tomato. Plant J. 36, 905-917 (2003).
  14. Liu, E., Page, J. E. Optimized cDNA libraries for virus-induced gene silencing (VIGS) using tobacco rattle virus. Plant. Methods. 4, 5-5 (2008).

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