3'LIFE Test kullanma Yüksek throughput miRNA Hedefleri tespiti

Özet

Luminescent identification of functional elements in 3’ untranslated regions (3’UTRs) (3’LIFE) is a technique to identify functional regulation in 3’UTRs by miRNAs or other regulatory factors. This protocol utilizes high-throughput methodology such as 96-well transfection and luciferase assays to screen hundreds of putative interactions for functional repression.

Özet

3'UTRs fonksiyonel Elementlerin Lüminesans Tanımlama (3'LIFE) sorgulanan 3'UTRs yüzlerce bir dizi içinde spesifik miRNA'ların hedefleri hızlı tanımlanmasını sağlar. Hedef tespiti MiRNA hedefleme işlevsel bir okuma verir translasyon çıkışının ölçülmesi mRNA düzeyinde bağlanmasını saptayan çift lusiferaz deneyi, dayanmaktadır. 3'LIFE genom ekranlar yapma tescilli olmayan tamponlar ve reaktifler ve kamuya açık muhabiri kütüphaneleri kullanır uygulanabilir ve maliyet-etkin. 3'LIFE standart laboratuar ortamında ya yapılmış ya da sıvı taşıma robotlar ve diğer yüksek verimli enstrümantasyon kullanılarak ölçeklendirilebilir. İnsan 96-yuvalı plakalar içinde klonlanmış 3'UTRs ve iki test miRNA'ların bir veri kümesi kullanılarak bir yaklaşımı göstermektedir, salma 7c ve miR-10b. Bu 96 gözlü bir formatta DNA hazırlama, transfeksiyon, hücre kültürü ve lusiferaz tahlilleri yerine ve veri için araçlar temin etmek gösterilmektedirAnaliz. Sonuç olarak 3'LIFE yüksek, tekrarlanabilir hızlı, sistematik ve yüksek güven hedeflerini belirler.

Giriş

Bu yöntemin genel amacı algılamak ve hassas yüksek throughput microRNA (miRNA) hedefleri harita etmektir. MiRNA ~ uzunluğu 22 nükleotid endojen kodlayıcı olmayan RNA'lar bulunmaktadır. Transkripsiyonu ve işleme sonrasında, olgun miRNA'lar bir protein kompleksi içinde dahil edilmiştir kompleksi (RISC) susturulması kaynaklı RNA çağırdı. Her miRNA çeviri baskıya veya mRNA bölünme ¹ ya sonuçlanan öncelikle haberci RNA'lar 3 'çevrilmemiş bölgelerine (3'UTRs) (mRNA)' de yer alan unsurları hedef RISC yönlendirir. U baz eşleşmesi sallanmak ve olan dejenere doğada, birden eşleşmeyen baz çifti içeren ve bölgeler şişti: Mirna standart Watson-Crick ve G dayalı hedef siteleri tanır. Birçok miRNA'lar geniş biyolojik rolleri çeşitli bir yelpazede oynamak insanlarda ^2,3 için bitkilerden muhafaza edilir. Metazoan'da ise miRNA'lar hücre kaderinin kararları ^4, gelişimsel zamanlama ⁵ dahil olmak üzere birçok biyolojik süreçleri etkileyebilir Ve çoğu zaman dokuya özgü ekspresyonu ^6,7 sergiler. MIRNA misexpression aynı zamanda, hedef genlerin işlevine yalnızca temel hücre davranışı üzerinde önemli bir etkiye sahip olabilir olarak anormal gen regülasyonu, neden olabilir. Bu nedenle, miRNA'ların nörodejenerasyon ^8,9, diyabet ¹⁰ ve kanser de dahil olmak üzere ^11, hastalıkların geniş bir bağlantılıdır. Biyoinformatik ve ıslak tezgah yaklaşımları her miRNA yüksek verimli veya genom yaklaşımlar potansiyel etkileşimler bu büyük bir havuz soruşturma için gerekli olduğunu belirten farklı mRNA ^12-14 binlerce yüz hedefleme yeteneğine sahip olabileceğini düşündürmektedir.

Hedef genlerin belirlenmesi mekanistik tanımlayan miRNA fonksiyonunun kritik bir bileşenidir, ve bunu yapmak için araştırmacılar büyük çapta hedeflerini ortaya gerekir. Çeşitli yaklaşımlar biyoinformatik tahmin algoritmaları da dahil olmak üzere miRNA hedefler, tanımlamak için geliştirilmiştir, yüksek hacimli dizilemebir mRNA'ları hedeflenen ve raportör deneyleri tabanlı. Bu yaklaşımların her biri doğal güçlü ve zayıf yanları vardır. MiRNA hedefleme sekansı özgüllük tarafından yönlendirilir olduğu göz önüne alındığında, özellikle nükleotid miRNA 2-6, çeşitli algoritmalar birçok organizma genomu boyunca MiRNA hedefleri tahmin etmek için geliştirilmiştir (tohum bölge olarak da adlandırılır). Bu algoritmalar valide miRNA hedeflerinin gözlenen baz eşleşmesi motifleri kullanılarak eğitimli ve sık sık bu tür sıkı tohum eşleştirme, site korunması ve / veya termodinamik stabilite ¹⁵ gibi parametreleri kullanan vardır. Bu filtreler sadece yüksek güven hedefleri için yeterli tamamlayıcılık ile olası hedeflerin çok sayıda rafine ederken, onlar son kanıtlar ^16-24 yaygın olduğunu düşündürmektedir türe özel ve kanonik olmayan miRNA hedef siteleri, dışarıda olabilir. Ayrıca, bu tahminlerin gibi alternatif poliadenilasyonu olarak miRNA hedef siteleri, dışarıda mRNA işleme hesap mekanizmaları yapmayız25, RNA düzenleme ^26, RNA metilasyonu ²⁷ ve kooperatif bağlama. Bu nedenle, yüksek yanlış pozitif ve yanlış negatif oranları birçok algoritmalar ^22,24,28 için rapor edilmiştir. Bu algoritmalar sonraki deneysel doğrulama için aday miRNA hedefler belirlemek için yararlı olmakla birlikte, bu yüksek hata oranları sistematik miRNA hedef tespiti için biyoinformatik yaklaşımların etkinliğini sınırlamaktadır.

Sistematik belirli bir miRNA arasındaki etkileşimler ve potansiyel olarak hedeflenmiş 3'UTRs problanması için biz 3'UTRs (3'LIFE) ²⁴ fonksiyon elementleri arasında Lüminesans tanımlanması adı verilen bir yüksek verimli bir deney geliştirilmiştir. Bu tahlil ölçer doğrudan etkileşimleri ve çift lusiferaz haberci sistemini kullanarak bir sorgu miRNA test 3'UTR'sinden translasyon baskı. Bu sistemde, ilgi konusu bir genin 3'UTR ateşböceği lusiferaz (Fluc) raportör okuma çerçevesinin alt klonlanır. muhabir eksilerinitruct HEK293T hücrelerinde bir sorgu miRNA ile kotransfekte edilir. MIRNA hedefleme Test Fluc :: 3'UTR muhabir ve ikinci bir non-spesifik Renilla lusiferaz raportör arasındaki nispi değişimin ölçülmesi ile tespit edilir. Önemli olarak, lusiferaz deneyleri, raportör translasyon çıkış etkileyen fonksiyonel MiRNA / mRNA etkileşimlerini tespit eder. Bu bu 3'UTR tabanlı düzenlemenin bağımsız protein bolca mRNA bozulması ve translasyonel baskıya farklılıkları yanı sıra değişiklikleri atlar, bu tür RT-qPCR ve Western lekeleri olarak miRNA düzenleme, tespit etmek için geleneksel yöntemlere göre önemli bir avantajdır.

Lusiferaz deneyleri, yaygın olarak tüketilebilir reaktifler ile ilişkili yüksek maliyetler ile sınırlıdır, çünkü göreceli basitlik ve hassaslık, ancak, yüksek verimli taramalara kullanımları doğrudan MiRNA hedeflerini doğrulamak için kullanılır, kamu kaynaklarından 3'UTR kütüphanelerinin eksikliği ve yokluğu standart lusiferaz prot arasındaocols, birden veri setleri üzerinde fonksiyonel baskıya karşılaştırılmasında zorluklara yol açmaktadır. 3'LIFE testinin kullanımını kolaylaştırmak için, düzenli olarak güncellenen ve genişletilmiş bir 3'UTR kütüphane oluşturarak, deneysel tasarım, ticari olmayan transfeksiyon ²⁴ ve lusiferaz reaktif ²⁹ kullanımı basitleştirilmesi vurgu ve yoluyla kullanılabilir var kamu plazmid deposu ^30.

3'LIFE testinin ölçeklenebilirlik bioinformatically belirlenen genler doğru ekranı eğme olmadan belirli bir miRNA tarafından hedef için büyük bir 3'UTR kütüphanenin tarama sağlar. Kanonik ve tahmin edilen etkileşimleri test etmek için ek olarak, bu sistematik bir yaklaşım, kurallı olmayan ve / veya tür spesifik etkileşimler yoluyla tahrik edilen yeni hedeflerin tanımlanmasına izin verir. Önemli olarak, protein üretimi ile ilgili hedef miRNA etkisi, genel olarak mütevazi bir translasyon baskı ^{15,31 anlaşılmalıdır/ Sup>, miRNA düzenlemenin bir birincil rolü, protein çıkışı ince ayar gen ifadesinin anormal düzeylerde karşı koruma ve belirli programları 32,33 hücre sağlamlık sağlamak olduğunu düşündürmektedir. 3'LIFE ekranında negatif MiRNA / mRNA etkileşimlerin doğal sayıda kombine lusiferaz deneyi duyarlılığı MiRNA genlerinin bir çok sayıda hedef ince etkilerinin belirlenmesine ve gen ağlarının birden çok bileşenden tanınmasını sağlar Belirli bir miRNA 24 düzenlenir.}

Burada 3'LIFE protokol açıklar ve 275 insan 3'UTRs (Şekil 1) 'in bir paneline karşı iyi karakterize edilmiş iki miRNA'lar, miR-10b ve izin-7c taranmasıyla, fizibilite olduğunu göstermektedir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

1. Hücre Kültürü (24-48 saat transfeksiyondan önce),

1. Transfeksiyon öncesi tohuma 24-48 saat 96 oyuklu plakalar sayısına göre HEK293T hücrelerin yeterli bir miktarı ile transfekte edilir.
   NOT: tutarlı transfeksiyonlar için, yeterli bir yoğunlukta plaka hücreleri hızlı bir şekilde bölünme lehine, ancak transfeksiyon zamanı en fazla% 70-90 konfluent olarak vermeye.
2. Her 96 oyuklu plaka (rezervuar ve çok kanallı pipet kullanımı için hesap oyuk başına 75,000 hücre, plaka başına 120 kuyu) 9 x 10 ⁶ hücre gerektirir. HEK293 hücreleri (tipik olarak ~ 20 saat) iki katına çıkma süresi hesaplayın ve hücreler uygun sayıda transfeksiyon zamanı en az 9 x 10 ⁶ hücre elde etmek üzere tohum. Yeni bir levha reseed kalan hücrelerin ~% 10, ~% 90 konfluansa kadar yetiştirilen bir 145 mm'lik dairesel kültürü plakası, tipik olarak 3 96 oyuklu Transfeksiyonlar için yeterlidir.

Transfeksiyondan 2. Hazırlık Önceki

_content "> Not: bu reaktiflerin hazırlanması zaman alıcı olabilir çünkü aşama 2.0-2.2 tamponların ve plazmid DNA hazırlanması, transfeksiyondan önce günde yapılmalıdır.

1. 3'LIFE testi ile uyumlu İnsan 3'UTR klonları kamu plazmid deposu ³⁰ edinilebilir. Elle veya sıvı taşıma robotlar ile DNA plazmid arındırın. Bir transfeksiyon dereceli alkali lizis mini hazırlık 96-kuyu kiti kullanın ve üreticinin talimatlarına uyun. Kuyuya ~ 100 ng / ml başına saflaştırılmış vektörler süspanse.
   NOT: plazmid konsantrasyonu aşağıda 40 ng / ul düşerse yetersiz lusiferaz sinyali neden olacaktır.
2. PLIFE-miRNA Şekil 1B ²⁴ boru hattını kullanarak ³⁰ veya klon vektörleri elde edilir. Her miRNA ve boş kontrol plasmidler için 500 ng / ul'lik bir konsantrasyonda vektörleri yeniden süspanse edin.
3. Nucleofection tampon koşulları hassasiyeti nedeniyle, sağlamak(hücreler ve plasmidler de dahil olmak üzere), transfekte edilmiş malzemelerin toplam hacmi 96 çukurlu transfeksiyon plakanın her bir toplam sıvı% 10 geçmez. Bunu elde etmek için, en az 500 ng / ul'lik bir konsantrasyonda pLIFE-MiRNA plazmid stok konsantre edilir.
4. 10x ateşböceği lusiferaz tampon reaktifleri (Tablo 1) ve 6 aya kadar saklanabilir 1x Renilla lusiferaz tampon reaktifleri (Tablo 2), hazırlayın.
   Not: ateşböceği lusiferaz tampon çözeltisi içindeki DTT, tek kullanımlık parçalar halinde ^-20 ° C'de çözelti içinde saklanabilir olması gerekir.

3. Transfeksiyonu için hemen öncesinde ardından Ürünleri hazırlayın

1. PBS ihtiva eden transfeksiyon tamponu,% 1.5 HEPES, pH 7.0 hazırlanır. Bu Transfeksiyon etkinliğindeki fark düşüşler olmadan 4 ° C'de en fazla 1 aya kadar saklanabilir, ancak, bu taze hazırlayın. Tampon ve plazmid DNA hacimleri formüle ederken, su için her 96 oyuklu plaka için 120 reaksiyonlar kabulfficiently pipetle sıvı rezervuarları ve çok kanallı pipet kullanarak kayıp hacim hataları oluşturmaktadır. Kısım kuyu transfeksiyon tamponu başına 18 ul (/ 96-plaka 120 kuyu = plaka başına 2.16 ml) ve bir kenara koyun.
   NOT: hücre elektroporasyon cihazı hücrelerini transfekte etmek için kullanılan tampon koşulları son derece duyarlıdır. Hazırlama tamponlar ekipman tutarlı performans sağlayacak Doğruluk. Özellikle bu tampon mikrosantrifüj tüpleri, 96-yuvalı plakalar, rezervuar ve elektrot plakaları içinde ortaya kalan zamanı en aza düşürülmesiyle, tamponlar buharlaşmasını önlemek için tahlil yapmak azami dikkat edilmelidir.
2. Rezerv Aşağıdaki denetimler için dört kuyu, hiçbir pLIFE-3'UTR (lusiferaz tahlil arka ölçmek için), pLIFE-SV40 3'UTR (negatif hedef kontrolü), miRNA # 1 için pozitif kontrol, miRNA # için pozitif kontrol 2.
   NOT: Bu vektörler ³⁰ kamuya mevcuttur. Alternatif olarak, daha önce onaylanmış bir hedefBir pozitif kontrol olarak da kullanılabilir.
3. Sıcak ortam, 37 ° C tripsin (% 0.25).
4. DMEM,% 10 FBS,% 1 Pen / Strep ile takviye edilmiş 96 oyuklu hücre kültürü plakasının her bir oyuğuna, 200 ul ve transfeksiyonu takiben kullanılmak için bir 37 ° C kuluçka makinesi içine yerleştirilmiştir.
5. Destek yazılımları tarafından takip tüm cep elektroporasyon aygıtları açın. HEK293T hücreleri ve PBS / HEPES tamponu için Darbe kod FF120 kullanın.

Plazmid DNA ve hücre karışımı 4. hazırlanması

Not: Aşağıdaki protokol, iki miRNA'ların (miRNA- # 1 ve miRNA- # 2) ile birlikte, bir ekran için bir deneyde, üç, 96 gözlü levhalar transfekte varsayar. Her bir plaka pLIFE-3'UTR plasmidlerin, aynı 96-yuvalı plaka karşılık gelir, ve pLIFE-miRNA boş pLIFE-miRNA- 1. veya pLIFE-miRNA- # 2 ile üç kez tedavi edilebilir.

1. Her miRNA için pLIFE-miRNA + transfeksiyon tamponu 3 stokları hazırlayın. Bu stok her birinin toplam hacminin% 50'si (10 ul) ayarlanabilmelidiriyi, 120 kuyular ile çarpılır. Böylece, her bir hisse senedi 1.08 ml tampon + 120 ul plazmid DNA (pLIFE-miRNA) içermelidir.
2. Medya elüsyon PBS ile hafifçe yıkanır ve 37 ° C'de 5 dakika boyunca ~ 5 mi,% 0.25 tripsin ile muamele etmek suretiyle 145 mm kültür hücreleri plakadan çıkarın. 5 dakika boyunca 300 xg'de eşit medya hacmi ve pelet hücreleri ile tripsin nötralize eder.
3. 5-10 ml medya (hücre yoğunluğu ve hücre sayacın doğru aralığına bağlı olarak) ~ tripsini / medya ve tekrar süspansiyon pelet çıkarın.
4. Bir hücre sayacını kullanarak hücreleri saymak. % 95 canlı ve makinenin doğru aralığında> hücreler olduğundan emin olun.
   NOT: tutarlı hücre sayısı, son derece yüksek hücre konsantrasyonlarında (> 6.0x 10 ⁶ / ml) bir sonucu olabilir. Hücre oranı ve / veya transfeksiyon verimliliği azalan: transfecting çok hücre ölçüde plazmid azaltarak hedef miRNA verimliliğini azaltabilir.
5. Kısım üç tüp her biri 9 x 10 ⁶ hücre, hücrelere karşılık gelen rBir 96-yuvalı plaka transfeksiyonu için equired. 3 dakika boyunca 300 xg'de hücreleri Spin.
6. Ortamı çıkarın. Aşırı medya transfeksiyon etkinliğini etkileyebilir olarak pelet minimal rahatsızlık ile mümkün olduğunca çok ortamı çıkarmak için emin olun.
7. 1.2 ml transfeksiyon tamponu / miRNA plazmid karışımı ve bir kenara yeniden süspanse hücreleri.
8. Aşağıdaki transfeksiyon tamponunda pLIFE-3'UTR plazmid detay tabanda yineleyin. Bu 96 kuyucuğu oluşur gibi, her zaman plakaları kaplayarak tampon buharlaşmasını önlemek için özen gösterin.
   1. Bir çok kanallı pipet kullanarak, 96 PCR plakanın her oyuğuna transfeksiyon tamponu ul 32,4 hareket ([transfeksiyon başına] 9 ul * 3: [plakaları] * 1.2 [pipet hata için hesap]).
   2. Her kuyuya 3.6 ul mini prepped pLIFE-3'UTR plazmid (± 100 ng / | il) ilave edin ve iyice karıştırın.
   3. Pipet 96 oyuklu transfeksiyon levhasının ve kapağın her oyuğuna Bu karışımın 10 ul.

5. Transfeksiyon

1. Rezervuar içine ilk hücre / tampon / pLIFE-miRNA plazmid karışımı 1.2 ml taşıyın. Iyice karıştırın.
2. Önce 10 ul transfeksiyon tampon / pLIFE-3'UTR içeren birinci 96 oyuklu transfeksiyon plaka içine bu karışımın 10 ul ekle. Yukarı pipetleme ve birkaç kez aşağı iyice karıştırın.
   NOT: tamponunda hücrelerin Eşit süspansiyon bile emin ve küvet ile elektrik akımının geçişi kapsamlı ve transfeksiyon verimliliği maksimize edecek.
3. Hücre elektroporasyon cihazda 96-iyi transfeksiyon plaka koyun ve transfeksiyon başlatmak.
4. Transfeksiyon tamamlandıktan sonra, 96-çukurlu transfeksiyon plakanın her oyuğuna 96 oyuklu bir kültür plakasına gelen önceden ısıtılmış ortam 100 ul ekleyin ve iyice karıştırın. 96-çukurlu kültür plakasına her bir göze 100 ul taşıyın.
5. Hücreler w yanlarındaki topaklaşma eğilimi gibi, iyi merkezinde dikey olarak yerleştirilmiş pipetle kültür plakasına hücreleri karıştırınell düzgün karışık sürece.
6. Geri kalan iki tabak 5,1-5,5 tekrarlayın.
7. Temizleme 96-kuyu transfeksiyon plaka
   1. 96 oyuklu plakalar, transfeksiyon deneyler arasında, nükleik asitlerin üzerinde hiçbir yürütülmesini sağlamak üzere,% 70 EtOH ile yıkanarak geri dönüştürülebilir. Tamamen elektrot şeritler aşırı EtOH silerek (alt taraf) ve kültürü kaputu tamamen kuru transfeksiyon plakaları izin vererek, ardından her iyi doldurmak için bir sprey şişesi kullanarak iki% 70 EtOH yıkar gerçekleştirin.
      NOT: bir plazmid DNA ile% 70 EtOH ile tek bir yıkama ve bir ikinci transfeksiyon, ardından HEK293T hücrelere her biri, plazmid pmaxGFP 2 ug ile 12 kuyu transfekte edilmesiyle carry-over DNA kontaminasyonu için test edilmiştir. Bu, son derece yüksek bir plazmid konsantrasyonu, son derece parlak muhabir ve tek bir yıkama ile, 12 kopya transfeksiyonlar herhangi gözlenebilir bir floresan olmasıdır.
8. Çift lucif ardından 37 ° C'de 48-72 saat süre ile kültür hücreleri,tahlil silebilirsiniz.

6. Hücre Lusiferaz Assay için Lizat hazırlanması

1. 4 kısım su, bir rezervuar pasif lizis tamponu 5x 1 parça ile lizis tamponu ile seyreltilir. 26 ul / kuyu, ~ 20 ekstra hacimleri ekleyerek rezervuar kaybı hesaba hesaplayın.
   NOT: Tampon -20 ° C'de saklanır ve pipetleme doğruluğu artıracak oda sıcaklığını yaklaşım 5x tampon izin böylece önce, son derece viskoz olabilir.
2. Floresan mikroskopi kullanılarak transfeksiyon etkinliği için de her bir analiz edin. Verimli transfect vermedi kuyularda tutarsızlıkları (>% 90 transfeksiyon verim) Not veya kalabalık ya da medya bitkinlik göstergesidir RFP düşük seviyelerde ifade edilir. Analizden Bu kuyu çıkarın.
3. Tamamen hücreler ayırmak neden olan çok hızlı Zehir için dikkatli olmak, hücrelerden ortamı çıkarın.
   NOT: Kalan medya experime genelinde değerleri lizat ve neden dalgalanmaları sulandırmakNTS.
4. 20-30 dk ~ düşük / orta hızda bir plaka çalkalayıcı / rocker her iyi ve yere lizis tamponu 26 ul ekleyin. Lusiferaz tamponlar hazırlamak lüminometre (ler) yıkayın ve prime ve opak ölçüm plakalarına lizat aktarmak için bu kez kullanın.

7. Çift Lusiferaz Deneyi

NOT: Birden plakaları tek lüminometre üzerinde sırayla ölçülen yapılıyorsa, hemen her plaka kullanmadan önce pH ayarlaması ardından bu reaktif ekleyerek, ATP ve yüzeylerde hariç her şeyi ile tampon ana karışımları oluşturun. ATP ve yüzeyler zamanla düşebilir; Bu reaktifler tampon içinde olan süreyi tutarlılık birden plakalar arasında tutarlılık artıracaktır.

1. 1x lusiferaz tamponlar hazırlanması (Tablo 1):
   1. Yüzeyler ışığa duyarlı olabileceğinden, alüminyum folyo ile ateşböceği ve Renilla tamponlar içeren iki tüpleri (genellikle 15/50 ml santrifüj tüpleri) sarın.
   2. 1x Firefly lusiferaz tampon hazırlayın. Nihai 1x konsantrasyonu 5 ml H ₂ 0, EGTA son ekleme, her beş 10x ateşböceği lusiferaz reaktif 1 ml ekleyin.
      1. Ateşböceği tampon 1x 10 ml, 0.025 gr ATP ilave edin. Birkaç kez baş aşağı çevirerek kanştınn. Her zaman buz üzerinde ATP tutun. ATP düşer, bu nedenle birden fazla plaka sekans ölçülmesi halinde, tampon her bir ek plaka için bu adımda taze başlangıç ​​yapılmalıdır.
      2. Tampon pH dayalı sarımsı renk değiştirmek gerekir 100 böceği luciferase (alt tabaka) (Tablo 1) 100 ul ekleyin.
   3. 1x Renilla lusiferaz tamponu sulandırma: 96 oyuklu bir plaka, kısım 1, 10 ml başına "Renilla tampon".
      1. BSA, 100 ul (44 mg / ml stok) ilave edilir.
      2. Birden fazla tabak, 10 ml'lik içine ayrı ana karışımı tarama edin.
      3. Tampon koelenterazin 100 ul ekle (daha önce bölünüp 100x konsantre C'de saklandı.)
   4. NaOH ve HCI kullanılarak 5.0 1x Renilla tamponu ardından, ateşböceği 8.0 tampon 1x pH ayarlayın.
      NOT: Her tampon aktivitesi, ve ateş böceği lusiferaz aktivitesini bastırmak için Renilla tampon kabiliyeti pH değerine oldukça bağlıdır. Tutarlı sonuçlar için bu adımda son derece doğru.
   5. Luminometre astarlanması için yerleştirmek için 10.5 ml (1, 96 oyuklu plakaya tekabül eden) her bir tampon hacmi getirin.
2. Opak beyaz plakalara lizat transfer Bu noktada hücreler, 20 dakika için ~ liziz tamponu içinde olmalıdır. Her bir kuyunun çok kanallı pipet kullanarak 25 ul alın, hücre kümeleri break up ve homojenleştirin aşağı iyice yukarı pipetlemeyin emin ve olmayacak.
3. Lüminometre hazırlayın. Lüminometre açın ve "iki enjeksiyonları ile DLR" adlı DLR klasöründe protokolü seçin. Diğer formatlar veri analizi boru hattı (aşağıda) ile uyumlu değildir.
   1. T olmak kuyuları seçinested (bütün kuyular varsayılan).
   2. (Açıklama için ²⁹ bakınız) 10 sn ölçüm süresi, 5 saniye ayarı 'ölçümden önce Delay' uzatın.
   3. Kılcal yıkama adımları: Su 3x, EtOH 3x, su 3x, kuru 3x. Arka tampon tüpleri içine bir kez atık haline Başbakan tamponlar ve daha sonra başbakan ikinci kez karıştırma sağlamak. Sağ kılcal Renilla ardından sol kılcal, ilk ve Başbakan ateşböceği tampon enjekte edilir.
4. Lusiferaz deneyi başlatın. Her plaka okuma ~ 48 dk almalıdır. Tamamlanmasından sonra ilk dosyayı kaydedin ve sonra yıkama adımları tekrarlayın ve lüminometre kapatın.
   NOT: luminometre programı çökmesine nerede Çoklu plakalar okuma ve aynı saklanan veriler excel dosyası olabilir, sorunları birden plaka ile karşılaştı olabilir ancak okur. Ölçümlerin arasındaki tüm verileri kaydetmek ve kaydetme mümkün önce program çökerse ekran görüntüleri almak için emin olun.
   1. Eski tamponlar değiştirinYeni ile yeni plaka başlamadan önce en az iki kez yeni tamponlar ile Başbakan emin olmak.

8. Veri Analizi

1. Edinilebilir - ve "multiplate analizi 3'LIFE" - excel tabloları "tek plaka analizi 3'LIFE" yararlanın www.mangonelab.com . Elektronik tablo - "tek plaka analizi 3'LIFE" içine negatif durum, miRNA 1. ve miRNA 2. tekabül yerlere luminometre çıktı dosyasından ateş böceği ve Renilla lusiferaz ölçümleri için ham veri kopyalayın.
2. Elektronik tablo otomatik ateşböceği / Renilla oranını hesaplamak ve uygun negatif kontrol her miRNA normalleştirmek ve her plaka üzerinde baskı değerleri normale olacaktır.
   NOT: Bu e-tablo otomatik olarak anlamlı bastırılmış kuyu vurgulayın düşük lusiferaz sinyali ile kuyu tespit ve repressi tedbirlerini sağlayacaktüm plaka üzerinde üzerinde. İstatistiksel analiz detaylı açıklama için ²⁴ Bkz.
   1. Test edilen her miRNA için 1. çoğaltmak tekabül eden konumda - "multiplate analizi 3'LIFE" e-tabloda karşılık gelen hücrelere, "Normalize RI Endeksi" kutusundan değerleri kopyalayın. Farklı günlerde yapılan tüm biyolojik çoğaltır için tekrarlayın.
3. Arzu edildiği takdirde, sırası ile, sütun B ve D gen isimleri ve hedef tahmini durumunu yerleştirin.
   1. Elektronik tablo otomatik olarak tüm plaka ortalamasını hesaplamak için izin verin. Bir ısı haritası olarak 96 sıra formatta (Şekil 2) verileri dikkate alınmalıdır. dosyası da liste biçiminde veri (Şekil 2) düzenler.
      NOT: baskı endeksi, farazi miRNA hedeflerini tanımlamak için kullanılan bir ölçüdür. Farklı sertlikteki parametreler tek tek tercihlerine bağlı olarak, kullanılabilir. Ortalama olarak biz 0 baskı endeksi altında muhtemel hit düşünün.8 ve t testi (p-değeri <0.05) istatistiksel olarak anlamlı. Şekilde gösterildiği gibi, bu kriterlere göre 3 potansiyel hedefler kırmızı vurgulanır.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

luminometre çıktı dosyası hem ateş böceği ve Renilla lusiferaz proteinleri ham ölçümlerini içerir. Ve - Mangone laboratuvar web sitesinden (edinilebilir "3'LIFE multiplate analizi" tabloları - Bu ham biçimi "tek plaka analizi 3'LIFE" ile uyumludur www.mangonelab.com ). Tek plaka analizi tablo otomatik ateşböceği / Renilla oranını hesaplar uygun negatif kontrole her miRNA normalleştirir ve her plaka üzerinde baskı d...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

3'LIFE deneyi yüksek throughput 3'UTRs fonksiyonel MiRNA hedefleri tanımlar. Bu deney, kendi ilgi miRNA için farazi hedef çok sayıda tespit etmek isteyen araştırmacılar için yararlıdır. 3'LIFE tahlil miRNA hedefleme fonksiyonel bir ölçü ve güvenle hitap edebilecek tek bir miRNA karşı 3'UTR'sinden :: tek muhabir ikili test sağlar ki 3'UTR tahrik düzenlenmesi için sorgulamak için güçlü bir yaklaşımdır Bireysel genlerin hedef durumu. Bu yaklaşımı doğrulamak için, 275 ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

Name	Company	Catalog Number	Comments
Reagents
glycylglycine	Sigma	G1127-25G
Kx PO4	Sigma	P2222
EGTA	Sigma	E3889
ATP	Sigma	FLAAS
DTT	Sigma	D0632
MgSO4	Sigma	M7506
CoA	Sigma	C4282
luciferin	Sigma	L9504
NaCl	Sigma	S7653
Na2EDTA	Sigma	E0399
K H2 P O4	Sigma	1551139
BSA	Sigma	A2153
NaN3	Sigma	S2002
Coelenterazine	Sigma	C3230
PBS/HEPES	Corning	21-040-CV
DMEM	Sigma	D5546
FBS	Sigma	F2442
Pennicilin/Streptomicin	Sigma	P4333
Trypsin		T2600000
Consumables
MaxiPrep Kit	Promega	A2392
96-well miniprep plate	Pall	8032
96-well shuttle plates	Lonza	V4SP-2096
5x Lysis Buffer	Promega	E1941
Instruments
96-well GloMax Plate Reader	Promega	E9032
Biomech FX Liquid Handler Robot	Beckmann	A31842
4D-Nucleofector Core Unit	Lonza	AAF-1001
96-well Shuttle System	Lonza	AAM-1001
Cell Counter Countess	Invitrogen	C10227