JoVE Logo

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Vivo memeli modellerinin kritik ölçekli kemik defektleri ortopedik tedavi ve şifa mekanizmaları eğitim araştırmacılar için gereklidir. Burada, bir protokol tekrarlanabilir, gelen bir segmental, femur kusurları eksternal fiksasyon kullanarak stabilize Sıçanlarda oluşturulması için tanıtmak.

Özet

Ortopedik araştırma ağır kemik içinde vivo şifa mekanizmaları çalışma gibi yeni tedavi teknikleri araştırmak için hayvan modellerinde dayanmaktadır. Segmental kusurları kritik ölçekli klinik olarak tedavi etmek için zorlu ve araştırma çabalarının güvenilir, Ambulatuvar küçük bir hayvan model bir segmental femur kusur faydalanabilir. Bu çalışmada, biz bir eksternal fiksatör ile stabilize bir sıçan uyluk bir 5 mm kritik diaphyseal kusur tutarlı ve tekrarlanabilir oluşturulması için en iyi duruma getirilmiş bir cerrahi Protokolü mevcut. Diaphyseal ostectomy 4 Kirschner telleri bicortically, yerleştirmek için özel bir jig kullanarak hangi bir adapte eksternal fiksatör aygıtla stabilize gerçekleştirildi. Salınan bir kemik testeresini kusur oluşturmak için kullanılan. Yalnız bir kollajen sünger veya rhBMP-2'de batırılmış bir kollajen sünger defekt implante ve kemik şifa 12 hafta boyunca ilerlemenin kullanarak izlenir. 12 hafta, sıçan kurban edildi sonra histolojik analiz eksize denetimde gerçekleştirilmiş ve kalça tedavi. RhBMP-2 tedavi bir remodeling periosteal duygusuz ve yeni kemik oluşumu vermiştir iken sadece kollajen sünger içeren kemik defektleri sigara-Birliği'nde, sonuçlandı. Hayvanlar implantasyonu sonrası de kurtarılan ve harici fiksasyon 12 hafta boyunca femoral kusurları sabitleme başarılı oldu. Bu aerodinamik cerrahi model kemik şifa çalışma ve test yeni ortopedik Biyomalzeme ve rejeneratif tedaviler içinde vivokolayca uygulanabilir.

Giriş

Ortopedik travma cerrahisi karmaşık kırıklar geniş bir tedavi üzerinde duruluyor. Kritik diaphyseal gelen bir segmental kemik kusurları klinik olarak çevreleyen kas ve kapaklarini azalma rejeneratif yeteneği hem de yetersizliği nedeniyle tedavi etmek zor kanıtlamıştır angiogenez1yerelleştirilmiş. Modern tedavi teknikleri, Kemik greftleme ile operatif fiksasyon içerir (Masquelet) Kemik greftleme, kemik taşıma, füzyon veya amputasyon2,3,4gecikmeli. Ambulatuar işlevi ile iyi işleyen distal ekstremitelerde, onların travma sonrası korunmuş olan çoğu hasta uzuv hurda açıkça daha iyi bir tedavi seçeneği5mevcuttur. Bu hurda tedaviler genellikle uzun tedavi boyunca aşamalı cerrahi müdahaleler gerektirir. Bazı yazarlar bu eksternal fiksasyon implante internal fiksasyon azalmış doku hasarı nedeniyle bu uygulamalar için azalmıştır implantasyon sırasında yüzey alanı ve artan Postoperatif olarak ayarlanabilir, ile karşılaştırıldığında üstün olduğunu düşündürmektedir fiksatör6. Ancak, bir prospektif randomize kontrollü bu tartışmalara ciddi açık kırık tibia7eksternal fiksasyon karşı iç gidermek için şu sıralar başlatıldı. Ne yazık ki, seçili her iki tedavi ile önemli komplikasyon ve başarısızlık oranları8,9devam etmektedir. Segmental kemik kaybı ile ilgili olarak her iki tedavi yöntemi ile cerrah önemli sorunlar mevcut gelen bir segmental diaphyseal kusurları ile uğraşmak zorundadır. Düzeltmeler segmental kusurların kemik sabitleme en üst düzeye çıkarmak ve aynı anda Osteojenik işlemi10,11geliştirmek gerekir.

Klinik önemi nedeniyle, henüz kritik ölçekli diaphyseal gelen bir segmental kusurların düşük ses etkili bir tekrarlanabilir bir hayvan modelini tedavi teknikleri geliştirmek ve sonuçta klinik sonuçlar geliştirmek araştırma ekipleri etkinleştirmek gereklidir. Araştırmacılar vivo içinde fizyolojik şifa mekanizmaları bir memeli hayvan modelinde çalışması gerekir. 12,13,14,15eksternal fiksasyon zaten böyle modelleri mevcut iken, tedavi edilmeyen hayvanlarda seçimi ile azalma maliyetleri sendikalar için daha güvenilir bir yöntem sağlamak umut uygun fiyatlı fiksatör malzeme ve anahat gelecek çalışmalar kolay uygulaması basit bir cerrahi protokolü. Bu iletişim kuralı öncelikli hedefi de, fareler bir kritik diaphyseal kusur bir güvenilir ve tekrarlanabilir model kurmaktır. Prosedürü sabitleme ve sıçan uyluk içinde 12 hafta boyunca şifa kemik değerlendirilmesi tarafından incelendi. Dahil ikincil hedefleri: cerrahi yaklaşım ve sabitleme basitleştirmek ve sağlanması uygun bir model olarak bir maliyet etkin olarak olası, hayvan bakımı etik yapma. Yazarlar ve araştırma ekibi ile farklı Biyomalzeme ve segmental bu üründe şifa geliştirmek için potansiyel rejeneratif tedaviler bir dizi ön deneyler yaptı.

Protokol

Bu çalışmada kullanılan fareler travma yönergelere uygun olarak günlük bakım ötenazi hayvanlar için alınan: 2013 Edition16. Kurumsal hayvan bakım ve kullanım Komitesi, Wisconsin-Madison Üniversitesi değerlendirildi ve proje başlamadan önce bu deneysel protokol onayladı.

1. hayvanlar

  1. Yaklaşık 350 gr ağırlığında outbred Sprague-Dawley erkek rats kullanın.

2. hazırlık, kemik morfogenetik Protein-2 (rhBMP-2) batırılmış sünger iskele

Not: İskele hazırlık femur implantasyon hemen önce gerçekleşmesi gereken (bkz. Adım 6,14).

  1. Kollajen sünger, liyofilize rhBMP-2 ve sulandırma17için steril su içeren bir kurulan rhBMP-2 kemik greft kit kullanımı için üreticinin yönergelerini izleyin. Kısırlık Bakımı, rhBMP-2 için bir konsantrasyon 1.5 mg/mL steril su ile yeniden oluşturma.
  2. Steril makas ve steril bir cetvel, 5 mm x 3 mm x 3 mm kusur sığacak şekilde yeniden şekillendirmek için rhBMP-2 sırılsıklam kollajen sünger gelene dek kırpın.
  3. Böylece bu emilir kullanarak, rhBMP-2 çözüm kollajen sünger üzerinde eşit olarak dağıtabilmenizi.

3. özel eksternal fiksasyon aygıt hazırlanması

Not: 1A rakam boyutları daha tam listesi için bkz.

  1. Alüminyum levha stok (türü 6061, 0,088" kalınlığı) 2-kesilmiş parçalar (1.4" x 6") bir Yapboz veya diğer uygun aracı kullanarak.
  2. Freze makinesi tek parça monte ve bir 1/8" 90 °-nokta karbür matkap değirmen kullanılarak, dört 'V' grooves (0.035" derin) kesme boyuna. Diğer parça keser özgür bırakın.
  3. Genişliğinin 0.3" iki bireysel plakalar kesilmiş parçalar (şekil 1B). Ölçü ve Matkap üzerindeki vida delikleri 4-40 iş parçacığı için. 4-40 iplik ile 'V' yivli plaka dokunun. #4 vida vücut tatbikat oluklar olmadan plaka matkap.
  4. Köşeleri yuvarlak ve ağırlığı (şekil 1 c) azaltmak için iki adet kum.
  5. Oluklar düz plaka (şekil 1 d) karşı aynı hizada olması ile birlikte 4-40, 18-8 paslanmaz çelik düğmesini baş cap vidaları (0,25") adet vida

4. anestezik yordam ve Analjezi

  1. Anestezi indüksiyon Odası 4 L O2/min ile % 4 isoflurane teslim fareyi yerleştirerek neden.
    Dikkat: Araştırma personeli anestezik gaz zehirlenmesinden önlemek ve uygun başlık ve havalandırma Laboratuvarı korumak gerekir.
  2. Fareyi iyileştiren refleks kaybeder sonra fareyi odasından kaldırın, burun konisi eklemek ve idame dozu anestezi (O2 teslim oran için 2-3 L/dak ve % 0,8 isoflurane) burundan yerleştirin.
  3. Fareyi Isıtma yastığını veya hipotermi önlemek için Isınma ışık altında ekleyin.
  4. Anestezi yeterli derinliği parmak pinching veya palpebral refleks testi onaylayın.
  5. Yağlama gözleri kornea dışarı kurutma önlemek için geçerlidir.
  6. Genişletilmiş sürüm buprenorfin (1 mg/kg) bir subkutan enjeksiyon gövde/patolojisi analjezi sağlamak ilâ 3 gün boyunca ameliyatı takiben cerrahi siteye, uzakta sıçan sunmak.

5. aseptik hazırlık ve antibiyotik preventatives

  1. 13inci kaburga, ayak, dorsal orta hat ve ventral orta hat kenar boşluklarını kullanmak hindleg çevresini tıraş.
  2. Traş fırçalayın alanı % 10 povidone-iyot % 70 oranında takip ile batırılmış steril 2 x 2 gazlı bez kullanarak alkol (4 kez her biri, alternatif).
  3. Sülfadiyazin (20 mg/kg) bir kas içi enjeksiyon içine operatif kuadriseps yönetmek.
  4. Enrofloksasin (0.25 mg/ml) içme suyunda postoperatively sürekli antibiyotik koruma için 7 gün için yönetmek.
  5. Fareler PIN yolu enfeksiyonları önlemek için çalışma süresi için tıbbi besleme (örneğin, Uniprim) yerleştirin.
  6. Çift Kişilik antibiyotikli bir krem cilt-pin arabirim için bir kez her gün postoperatively 3 gün boyunca geçerlidir.
    Not: herhangi bir harici fiksasyon PIN önlemek veya hangi enfeksiyon gelişmesine katkıda bulunabilir gevşeme kelepçe.

6. cerrahi müdahale

Not: uyumlu bir çaba bir steril alan ve çalışma alanı korumak ve steril tekniği kasanın tamamı boyunca takip edin.

  1. Delikli, açık yapışkan örtüsü ve steril bir alan oluşturmak için steril havlu kapak cerrahi tezgah traş bacak uzatmak.
  2. Uyluk kemiği muayene et ve proksimal femur, büyük trochanter patella uzanan deri yoluyla anterolateral kesik oluşturmak için #15 bıçak kullanın.
  3. Dikkatle yanal bacak fasya yanal uyluk maruz kadar vastus okuli kas kuadriseps, anteriorly hamstrings özafagusu ayırmak için intermuscular septum boyunca deşmek. Büyük trochanter tarihinde kaçıran gluteal tendon ekleme korumak.
  4. Dikkat et, Atravmatik sirkumferansiyel yumuşak doku diseksiyon gerçekleştirmek ve yanal yüzeyde başlayan onun orta diaphysis, femur bulaşmasına neden. Bunu yapmak için #15 bıçak bıçak kemik yüzeyine kontur karşı paralel tutarak temel kemik uzak kas hafifçe kesmek için kullanın. Kas maruz kemik uzak disseke gibi kaldırıp ulaşana kadar 7-10 mm Merkezi diaphysis, yumuşak doku ostectomy için hazırlamak için tüm tarafların temizlenmiş oldu femur şaft devam periosteal asansörü kullanın.
    Not: medial femoral nörovasküler demet yaralanma kaçının.
  5. Dört 1.0 mm Kirschner (k) teller takın: 2 proksimal ve 2 lateral femur dikey femur distal medial için düz lateral yönetti. Her iki cortices (bicortical) yeterli istikrar (şekil 2A) için tüm pins meşgul olun.
  6. En distal iğne ile ilk, sadece lateral epicondyle düzeyinde başlar. Yer jig yanal distal femur boşaltır ve 1.0 dişli ucu k-dinleme cihazı takın.
  7. Kemikteki jig konumunu koruyarak, en proksimal PIN jig delikleri alan kemik girmek nerede tanımlayın. Konum belirlendikten sonra dikkatle paralel gluteal tendon lifleri için doku geçmesine, proksimal pin için küçük bir boşluk oluşturmak için gerektiğinde böylece tendon iyatrojenik zarar en aza indirerek deşmek. 1.0 mm evreli olmayan k-tekrar pin her iki cortices (şekil 2B) yürütmektedir sağlanması dinleme cihazı bu boşluğu içinde matkap.
  8. Kemik ile temas halinde görürse oyun konumunu korumak ve iki 1.0 mm dişli k-telleri, gelecekteki kusuru sitesinde her iki tarafında bir matkap. Her iki cortices (şekil 2C) iğne meşgul olun.
  9. Düzey 1 cm cilt üzerinde bar eksternal fiksatör yerleştirin ve sıkıca, yer çubuğunda kilitleme canı cehenneme. Aşırı PIN uzunlukları (şekil 2B) küçük.
  10. Ostectomy (kusur oluşturma) için küçük, eğri Retraktörü anterior ve posteiror uyluk çevresinde yerleştirerek çevreleyen yumuşak dokusu, kas ve nörovasküler demet korumak için hazır olun. ~ 5 mm sagittal salınan kullanan testere, çok dikkatli bir 5 mm segmental kusur orta diaphysis aracılığıyla oluşturun. Bir ışık, gereksiz kırığı (şekil 2E) önlemek için testere ile bile basınç uygulayın.
  11. Termal Kemik nekrozu önlemek için kusur oluşturulurken sulama (oda sıcaklığında % 0,9 steril normal salin (NS)) gerektiği gibi az miktarda uygulayın.
  12. Defekt oluşturduktan sonra NS 10 mL kullanarak yara floş.
  13. 0.1 mL % 0.25 bupivacaine epinefrin (1: 200, 000) ile bir analjezik ve vasoconstrictor olarak yara için yönetmek.
  14. INSERT kollajen sünger veya rhBMP-2 (5 x 3 x 3 mm) İskele defekt içine ( Adım 2) üzerinden sünger batırılmış. Her iskele uzunluğu ve konumda kalın sünger yardım kusur, hacmi yayılmasını uygun boyutta olması.
    Not: Bu noktada, mRNA kompleksleri hazırlanacak ve bioluminescence görüntüleme gerçekleştirmek eğer 7,1-7,3 aşağıdaki adımlarda açıklandığı şekilde enjekte.
  15. 4-0 absorbe dikiş ile basit kesintiye uğramış desen kullanarak kas uçak kapatın. 4-0 absorbe dikiş ile çalışan bir subcuticular düzeni kullanmak cilt katman kapatın ve çıkıntılı pimleri etrafında boşlukları kapatmak için tutkal cilt.
  16. Burun konisi, Isıtma yastığını üzerinde kalan fareyi kaldırın ve sürekli fare sürekli dik bir duruş korumak için güçlü olana izlemek. Bu noktada, kurtarmak için temiz bir kafese koyun.

7. complexed mRNA ve bioluminescence görüntüleme hazırlanması

Not: Transfection mRNA kompleksleri ile ameliyat 1 gün öncesine ışıldama görüntüleme sırasında yapılmalıdır. Steril teknikleri mRNA işlerken kullanın.

  1. Mix 10 µL mRNA lipidik transfecting Aracısı 30 µL ile Gaussia luciferase (hisse senedi konsantrasyon 1 µg/µL) için kodlama.
  2. Forma mRNA-lipid kompleksleri için oda sıcaklığında en az 5 min için kuluçka tarafından izin. Lipidik transfecting Ajan mRNA molekülleri onları istikrarı ve transfection verimliliği arttırmak yoğunlaşmak.
    Not: kompleksleri hemen kullanılmazsa, onları buz en fazla 1 saat için saklayın.
  3. Filtre uygulanmış ipuçları ile donatılmış bir 20 µL pipet kullanarak, mRNA kompleksleri defekt, distal ve proksimal uçları birimin sırasıyla enjekte et.
  4. Ertesi gün, görüntüleme önce 3 dk inhale isoflurane adım 4.1 daha önce açıklandığı gibi kullanarak fare anestezi.
  5. Fareyi bir bakım isoflurane (% 0,8 isoflurane, O2 teslim oranı 2-3 L/dak) teslim bir burun konisi ile donatılmış oda Imaging vivo yerleştirin.
  6. Coelenterazine 4 mg/kg vücut ağırlığı defekt birbirine bir doz, serum resuspended enjekte.
  7. Bioluminescence görüntüleri görüntüleme sistemi (İVIS) göre üreticinin yönergeleri18 in vivo elde.

8. görüntüleme Protokolü

  1. Düz Radyografi makine, bir x-ışını sistemi19, ayarlama sonra anestezi inhale isoflurane yukarıda açıklanan (bkz: Adım 4.1) kullanarak fare ve fare ile inhale isoflurane (% 0,8 isoflurane, O2 burun konisi yerleştirin teslimat oranı 2-3 L/dak) için bir hastanın (AP) uyluk grafisi.
    1. Fareyi sternal recumbency, cerrahi hindlimb ileri, kalçada esneme ilerlemek ve ortak bastırmak. Yaklaşık 90 ° bastırmak ortak esnek. Pençe plantar yan aşağı, vücut duvara yakın teyp. Uyluk kemikleri superimposing olasılığını ortadan kaldırmak için gelen tibia öne getirin. Kalça hafif kaçırma sağlamak için kasık bölgesinde yarı saydam sünger (yaklaşık 15 mm kalınlığında) yerleştirin. Sonra uyluk ön-arka (Kaudal kafatası) görüntüsünü elde etmek.
  2. Bu AP uyluk radyografik görünümü hemen ardından cerrahi, 4 hafta ve 12 hafta tekrarlayın. Gazlı bez ve bant hayvanın ekstremite kalite ve tutarlı görüntüleme için uygun şekilde konumlandırmak için kullanın.
  3. Burun konisi fareyi kaldırın ve sürekli fare sürekli dik bir duruş korumak için güçlü olana izlemek. Sonra kafesin içine yerleştirin.

9. histolojik yordamı

  1. Fareler ile inhale CO2 travma etik standartları16göre bir odasında ötenazi.
  2. Aşağıdaki ötenazi, hindlimb tıraş, Cilt operatif ekstremite kaldırmak ve uyluk, kalça disarticulate. Dikkatli bir şekilde tüm yumuşak doku (tüm kas, tendon ve bağ da dahil olmak üzere) operatif uyluk çıkarın. Şifa bölge diseksiyon sırasında yanlışlıkla zararlardan korumak için kusur sitesi çevreleyen kas sadece ince bir tabaka bırakın.
  3. Uyluk kemiği % 10'luk yer tarafsız arabelleğe alınmış fiksasyon için izin vermek için Formalin 3-4 gün için oda sıcaklığında. 15:1 formalin doku hacim oranı için tutun. Çözüm fiksasyon işlemi boyunca yarıya kadar bir kez değiştirin.
  4. Uyluk kemiği bir çözümde % 15 Ethylenediaminetetraacetic asit (EDTA) pH 6,5 3-4 hafta boyunca decalcify. Kalsiyumun bitiş noktası belirlemek için seri halinde ilerlemenin toplamak.
  5. Uyluk kemiği boyuna bir kesim anterior posterior-sagittal düzlemde ile bisect. Doku standart parafin gömme ve Hematoksilen ve Eozin (H & E) boyama için gönderin.
  6. H & E slaytlar bir patolog histolojik değerlendirme için gönder.

Sonuçlar

Ameliyat yaklaşık bir saat içinde bir Yardımcısı Yardımı ile bir cerrah tarafından gerçekleştirilmiştir. Cerrahi optimizasyonu sonra içi ve ameliyat sonrası komplikasyonlar Ģunları büyük ölçüde minimize ve tutarlı büyüklüğünü (5 x 3 x 3 mm) ve femur kusurların yerelleştirme jig cihazları kullanın. Fareler ve anestezi Ambulatuar hemen aşağıdaki kurtarma vardı değiştirilen herhangi bir davranış kalıpları için görünmedi; onların yürüyüş antal...

Tartışmalar

Küçük hayvan modelleri tam Kemik kırıkları gibi ortopedik yaralanma mekanizmaları osteogenesis ve Biyomalzeme20tedavi potansiyelini değerlendirmek araştırıyor araştırma etkinleştirin. Bu çalışmada bir sıçan tanıttı segmental kusur modeli stabilize bir laboratuar ve Biyomedikal Mühendisliği ekibi kolayca daha fazla taşıma osteosynthetic kemik onarım çalışmaları için yeniden oluşturabilirsiniz özel bir eksternal fiksatör tarafından.

Önc...

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının veya yararları bildirin. Doğrudan veya dolaylı olarak bu makalede yazarlar tarafından alınan hiçbir faydaları olmuştur.

Teşekkürler

Bu eser bir NIH ekipman hibe 1S10OD023676-01 tarafından University of Wisconsin'ın ortopedi bölümler ve Rehabilitasyon ve Tıp Fakültesi ve halk sağlığı ile sağlanan ek desteği ile desteklenmiştir. UW'ın Carbone Kanser Merkezi destek hibe P30 CA014520 ve onların küçük hayvan Imaging tesisi yanı sıra NIH eğitim Grant 5T35OD011078-08 kullanım destek H. Martin için kabul etmek istiyorum. Biz de Michael ve Mary Sue Shannon kas-iskelet rejenerasyon ortaklık verdikleri destek için teşekkür ederiz.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
0.9% Sterile SalineBaxter2F7124Used for irrigating wound and rehydration
10% Iodine/PovidoneCarefusion1215016Used to prep skin
10% Neutral Buffered FormalinVWR89370094Used as fixative
1mm non-threaded kirschner wireDePuy SynthesVW1003.15Sterilized, used for the most proximal pin
1mm threaded kirschner wireDePuy SynthesVW1005.15Sterilized, used for the 3 most distal pin slots
2x2 gauzeCovidien4006130Sterilized, used to prep skin and absorb blood
4-0 Vicryl SutureEthicon4015304Used to close muscle and skin layers
4-40 x 0.25",18-8 stainless steel button head cap screwsGenericExternal fixator assembly
4200 Cordless DriverStrykerOR-S-4200Used to drill kirschner wires
4x4 gauzeCovidien1219158Sterilized, used to absorb blood
70 % EthanolUsed to prep skin
BaytrilBayer Healthcare LLC, Animal health division312.10010.3Added to water as an antibiotic
CefazolinHikma Pharmaceuticals8917156Pre-op antibiotic
CleanCap Gaussia Luciferase mRNA (5moU)TriLink BiotechnologiesL-7205Modified mRNA encoding for Gaussia Luciferase, keep on ice during use
Coelenterazine nativeNanoLight Technology303Substrate for Guassia Luciferase, used to assess luciferase activity in vivo
Double antibiotic ointmentJohnson & Johnson consumer Inc8975432Applied to pin sites post-op as wound care
Dual Cut MicrobladeStryker5400-003-410Used to create 5mm defect in femur
Ethylenediamine Tetraacetic Acid (EDTA)FisherBP120-500Used to decalcify bone to prep for histology
Extended Release BuprenorphineZooPharmUsed as 3 day pain relief
Fenestrated drapes3M1204025Used to establish sterile field
Handpiece cord for TPSStrykerOR-S-5100-4NUsed to create 5mm defect in femur
Heating padK&H Pet Products121239Rat body temperature maintenance
Hexagonal head screwdriverWiha263/1/16 " X 50External fixator tightening
Induction chamberGenericAnesthesia for rats
Infuse collagen sponge with recombinant human Bone Morphogenic Protein-2Medtronic7510200Clinically relevant treatment used as positive control
IsofluraneClipper10250Anesthesia for rats
IVISPerkin Elmer124262Bioluminescence imaging modality
JigCustomUsed to place bicortical pins
Lipofectamine MessengerMAXFisher ScientificLMRNA003mRNA complexing agent that enables mRNA delivery
Sensorcaine-MPF (Bupivicane (0.25%) and Epinephrine (1:200,000))APP Pharmaceuticals, LLCNDC 63323-468-37Applied to surgical site for pain relief and vasoconstriction
Sterile waterHospira8904653Used as solvent for cefazolin powder
Titanium external fixator platesCustomPrepared in house with scrap titanium and milling machine
Total Performance System (TPS) ConsoleStrykerOR-S-5100-1Used to create 5mm defect in femur
TPS MicroSaggital SawStrykerOR-S-5100-34Used to create 5mm defect in femur
Ultrafocus Faxitron with DXAFaxitronHigh resolution radiographic imaging modality
Uniprim rat dietEnvigoTD.06596Medicated rat diet
Universal Handswitch for TPSStrykerOR-S-5100-9Used to create 5mm defect in femur
Vetbond Tissue Adhesive3M1469Skin closure

Referanslar

  1. Filipowska, J., Tomaszewski, K. A., Niedźwiedzki, &. #. 3. 2. 1. ;., Walocha, J. A., Niedźwiedzki, T. The role of vasculature in bone development, regeneration and proper systemic functioning. Angiogenesis. 20 (3), 291-302 (2017).
  2. Charalambous, C. P., Akimau, P., Wilkes, R. A. Hybrid monolateral-ring fixator for bone transport in post-traumatic femoral segmental defect: A technical note. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 129 (2), 225-226 (2009).
  3. Xing, J., et al. Establishment of a bilateral femoral large segmental bone defect mouse model potentially applicable to basic research in bone tissue engineering. The Journal of Surgical Research. 192 (2), 454-463 (2014).
  4. Chadayammuri, V., Hake, M., Mauffrey, C. Innovative strategies for the management of long bone infection: A review of the Masquelet technique. Patient Safety in Surgery. 9 (32), (2015).
  5. Koettstorfer, J., Hofbauer, M., Wozasek, G. E. Successful limb salvage using the two-staged technique with internal fixation after osteodistraction in an effort to treat large segmental bone defects in the lower extremity. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 132 (19), 1399-1405 (2012).
  6. Fragomen, A. T., Rozbruch, S. R. The mechanics of external fixation. The Musculoskeletal Journal of Hospital for Special Surgery. 3 (1), 13-29 (2007).
  7. O’Toole, R. V., et al. A prospective randomized trial to assess fixation strategies for severe open tibia fractures: Modern ring external fixators versus internal fixation (FIXIT Study). Journal of Orthopaedic Trauma. 31, S10-S17 (2017).
  8. Fürmetz, J., et al. Bone transport for limb reconstruction following severe tibial fractures. Orthopedic Reviews. 8 (1), 6384 (2016).
  9. Dohin, B., Kohler, R. Masquelet’s procedure and bone morphogenetic protein in congenital pseudarthrosis of the tibia in children: A case series and meta-analysis. Journal of Children's Orthopaedics. 6 (4), 297-306 (2012).
  10. Einhorn, T. A., Gerstenfeld, L. C. Fracture healing: Mechanisms and interventions. Nature Reviews Rheumatology. 11, 45-54 (2015).
  11. Pascher, A., et al. Gene delivery to cartilage defects using coagulated bone marrow aspirate. Gene Therapy. 11 (2), 133-141 (2004).
  12. Glatt, V., Matthys, R. Adjustable stiffness, external fixator for the rat femur osteotomy and segmental bone defect models. Journal of Visualized Experiments. (92), (2014).
  13. Betz, O. B., et al. Direct percutaneous gene delivery to enhance healing of segmental bone defects. The Journal of Bone and Joint Surgery. 88 (2), 355-365 (2006).
  14. Fang, J., et al. Stimulation of new bone formation by direct transfer of osteogenic plasmid genes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (12), 5753-5758 (1996).
  15. Kaspar, K., Schell, H., Toben, D., Matziolis, G., Bail, H. J. An easily reproducible and biomechanically standardized model to investigate bone healing in rats, using external fixation. Biomedizinische Technik. 52 (6), 383-390 (2007).
  16. Leary, S., et al. AVMA guidelines for the euthanasia of animals: 2013 edition. American Veterinary Medical Association. , (2013).
  17. McKay, W. F., Peckham, S. M., Badura, J. M. A comprehensive clinical review of recombinant human bone morphogenetic protein-2 (INFUSE Bone Graft). International Orthopaedics. 31 (6), 729-734 (2007).
  18. . . Living lmage Software. , (2006).
  19. Bassett, J. H. D., Van Der Spek, A., Gogakos, A., Williams, G. R. Quantitative X-ray imaging of rodent bone by faxitron. Methods in Molecular Biology. , 499-506 (2012).
  20. Histing, T., et al. Small animal bone healing models: Standards, tips, and pitfalls results of a consensus meeting. Bone. 49 (4), 591-599 (2011).
  21. Lieberman, J. R., et al. The effect of regional gene therapy with bone morphogenetic protein-2-producing bone-marrow cells on the repair of segmental femoral defects in rats. The Journal of Bone and Joint Surgery. 81 (7), 905-917 (1999).
  22. Tsuchida, H., Hashimoto, J., Crawford, E., Manske, P., Lou, J. Engineered allogeneic mesenchymal stem cells repair femoral segmental defect in rats. Journal of Orthopaedic Research. 21 (1), 44-53 (2003).
  23. Jiang, H., et al. Novel standardized massive bone defect model in rats employing an internal eight-hole stainless steel plate for bone tissue engineering. Journal of Tissue Engineering and Regenerative Medicine. 12 (4), 2162-2171 (2018).
  24. Baltzer, A. W., et al. Genetic enhancement of fracture repair: Healing of an experimental segmental defect by adenoviral transfer of the BMP-2 gene. Gene Therapy. 7 (9), 734-739 (2000).
  25. Li, Y., et al. Bone defect animal models for testing efficacy of bone substitute biomaterials. Journal of Orthopaedic Translation. 3 (3), 95-104 (2015).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Biyom hendisliksay 145eksternal fiksasyonkritik Kemik defektigelen bir Segmental kemik kaybrejeneratif t pdoku M hendisli ifare modelitranslasyonel ara t rma

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Araştırma

Eğitim

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır