Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Burada, maldi-TOF-TOF tandem kütle spektrometresi ve yukarıdan aşağıya proteomik analiz kullanılarak genomik olarak sıralanmış patojenik bakteriler tarafından üretilen proteinlerin şirket içinde geliştirilen yazılımla hızlı tanımlanması için bir protokol sunuyoruz. Metastable protein iyonları, aspartik asit etkisi nedeniyle parçalanır ve bu özgüllük protein tanımlaması için yararlanılmıştır.

Özet

Bu protokol bakterisidal enzimlerin bağışıklık proteinlerini tanımlar: antibiyotik indüksiyonu kullanılarak patojenik bir Escherichia koli suşu tarafından üretilen ve MALDI-TOF tandem kütle spektrometresi ve yukarıdan aşağıya proteomik analiz ile şirket içinde geliştirilen yazılımla tanımlanan kolisin E3 ve bakteriyosin. Kolisin E3 (Im3) bağışıklık proteini ve bakteriyosin (Im-Bac) bağışıklık proteini, kuşkonmaz asit, glutamik asit ve kuşkonmaz kalıntılarının C-terminal tarafındaki polipeptid omurga bölünmesi (PBC) tarafından üretilen belirgin b ve/veya y tipi parça iyonlarından kuşkonmaz asit etkisi parçalanma mekanizması ile tanımlanmıştır. Yazılım, bakteri suşunun tüm genom diziliminden elde edilen siliko protein dizilerini hızla tarar. Yazılım ayrıca olgun protein dizisinin kesilmesi durumunda bir protein dizisinin amino asit kalıntılarını yinelemeli olarak giderir. Tek bir protein dizisi, her bağışıklık proteini için tespit edilenlerle tutarlı kütle ve parça iyonlarına sahipti. Aday sırası daha sonra algılanan tüm parça iyonlarının atanabileceğini onaylamak için el ile denetlendi. Im3'ün N-terminal metiyoni çeviri sonrası kaldırılırken, Im-Bac tam sıraya sahipti. Ek olarak, doğru protein dizisini tanımlamak için PBC tarafından oluşturulan sadece iki veya üç tamamlayıcı olmayan parça iyonlarının gerekli olduğunu gördük. Son olarak, bakteriyel suşun plazmid genomunda antibakteriyel ve bağışıklık genlerinin yukarı akışta bir promotör (SOS kutusu) tespit edildi.

Giriş

Sindirilmemiş proteinlerin kütle spektrometresi ile analizi ve tanımlanması yukarıdan aşağıya proteomik analiz1, 2,3,4olarak adlandırılır. Artık elektrospray iyonizasyon (ESI)5 ve yüksek çözünürlüklü kütle analizörleri6ve elektron transferi ayrışması (ETD), elektron yakalama ayrışması (ECD)7,ultraviyole foto-ayrışma (UV-PD)8,vb.

Diğer yumuşak iyonizasyon tekniği matris destekli lazer desorpsiyon/iyonizasyon (MALDI)9,10,11 yukarıdan aşağıya analiz için daha az yaygın olarak kullanılmıştır, çünkü kısmen diğer kütle analizörlerine kıyasla sınırlı çözünürlüğe sahip uçuş zamanı (TOF) kütle analizörleri ile birleştirilmiştir. Bu sınırlamalara rağmen, MALDI-TOF ve MALDI-TOF-TOF cihazları saf proteinlerin ve fraksiyone edilmiş ve kırılmamış protein karışımlarının hızlı yukarıdan aşağıya analizi için yararlanmıştır. Saf proteinlerin tanımlanması için, kaynak içi çürüme (ISD) özellikle yararlı bir tekniktir, çünkü ISD parça iyonlarının kütle spektrometresi (MS) analizine ve ayrıca genellikle hedef proteinin N ve C-terminisinden diziye özgü parça sağlayan protein iyon parçalarının tandem kütle spektrometresine (MS/ MS) izin verir, Edman dizileme12,13'e benzer . ISD yaklaşımının bir dezavantajı, Edman diziliminde olduğu gibi, numunenin yalnızca bir protein içermesi gerektiğidir. Tek protein gereksinimi, parça iyonlarının öncül bir iyona kesin bir şekilde atfedilmesi ihtiyacından kaynaklanmaktadır. Bir örnekte iki veya daha fazla protein varsa, hangi parça iyonlarının hangi öncül iyonlara ait olduğunu atamak zor olabilir.

Parça iyon/öncül iyon ilişkilendirmesi MALDI-TOF-TOF-MS/MS kullanılarak ele alınabilir. Her klasik MS/MS deneyinde olduğu gibi, öncül iyonlar parçalanmadan önce kitlesel olarak seçilir/izole edilir ve tespit edilen parça iyonları belirli bir öncül iyona bağlanabilir. Bununla birlikte, bu yaklaşım için mevcut olan ayrışma teknikleri öncelikle yüksek enerjili çarpışma kaynaklı ayrışma (HE-CID)14 veya kaynak sonrası çürüme (PSD)15,16ilesınırlıdır. HE-CID ve PSD en çok peptitlerin ve küçük proteinlerin parçalanmasında etkilidir ve dizi kapsamı bazı durumlarda sınırlı olabilir. Ek olarak, PSD öncelikle aspartik ve glutamik asit kalıntılarının C-terminal tarafında polipeptid omurga bölünmesi (PBC) ile sonuçlanır aspartik asit etkisi17 , 18,19,20.

MALDI-TOF-MS ayrıca mikroorganizmaların taksonomik tanımlamasında niş bir uygulama buldu: bakteri21,mantarlar 22ve virüsler23. Örneğin, MS spektrası, karşılaştırma için desen tanıma algoritmaları kullanarak bilinen bakterilerin MS spektrumlarının bir referans kütüphanesi ile karşılaştırıldığında bilinmeyen bakterileri tanımlamak için kullanılır. Bu yaklaşım, hızı ve basitliği nedeniyle son derece başarılı olmuştur, ancak bir gecede izolenin kültleştirilmesini gerektirmektedir. Bu yaklaşımla tespit edilen protein iyonları (genellikle 20 kDa'nın altında), cins ve tür düzeyinde ve bazı durumlarda alt türler24 ve suş seviyesi 25,26'dataksonomik çözünürlüğe izin sağlayan bir MS parmak izi içerir. Bununla birlikte, sadece taksonomik olarak potansiyel patojenik mikroorganizmaları sınıflandırmakla kalmayıp, aynı zamanda spesifik virülans faktörlerini, toksinleri ve antimikrobiyal direnç (AMR) faktörlerini de tanımlamaya ihtiyaç vardır. Bunu başarmak için peptitlerin, proteinlerin veya küçük moleküllerin kütlesi MS ile ölçülür ve daha sonra MS/MS tarafından izole edilir ve parçalanır.

Patojenik bakteriler genellikle plazmid adı verilen dairesel DNA parçaları taşırlar. Plazmidler, profilaktasyonlarla birlikte, bakteriler arasında yatay gen transferinin önemli bir vektörüdür ve antimikrobiyal direncin ve diğer virülans faktörlerinin bakteriler arasında hızla yayılmasından sorumludur. Plazmidler ayrıca kolitin ve bakteriyotin gibi antibakteriyel (AB) genler de taşıyabilir. Bu genler ifade edildiğinde ve proteinler salgılandığında, aynı çevresel niş işgal komşu bakterilerin protein çeviri makinelerini devre dışı bırakmak için hareket ederler27. Bununla birlikte, bu bakterisidal enzimler, onları üreten konak için de risk oluşturabilir. Sonuç olarak, bir gen, özellikle bir AB enziminin işlevini engelleyen ve bağışıklık proteini (Im) olarak adlandırılan konak tarafından birlikte ifade edilir.

Mitomycin-C ve sirofloksasin gibi DNA'ya zarar veren antibiyotikler genellikle Shiga toksin üreten E. coli'de (STEC) SOS yanıtını teşvik etmek için kullanılır, shiga toksin geni(stx) bakteri genomunda bulunan bir prophage genomunda bulunur28. Daha önce STEC suşları29,30, 31,32 tarafından üretilen Stx tiplerini ve alt tiplerini tespit etmek ve tanımlamak için antibiyotik indüksiyonu, MALDI-TOF-TOF-MS / MS ve yukarıdan aşağıyaproteomikanalizkullandık. Önceki çalışmada, STEC O113:H21 suşu RM7788, mitomycin-C ile desteklenmiş agar media üzerinde bir gecede kültürlendi. Bununla birlikte, m/z ~7816'da Stx2a'nın beklenen B-alt birliğini tespit etmek yerine, m/z ~ 7839'da farklı bir protein iyonu tespit edildi ve bilinmeyen işlev33plazmid kodlu varsayımsal protein olarak tanımlandı. Mevcut çalışmada, antibiyotik indüksiyonu kullanılarak bu suş tarafından üretilen iki plazmid kodlu AB-Im proteini, MALDI-TOF-TOF-MS/MS ve yukarıdan aşağıya proteomik analiz, tam genom diziliminden (WGS) elde edilen siliko protein dizilerini işlemek ve taramak için geliştirilen bağımsız yazılım kullanılarak tespit ettik. Buna ek olarak, sıralı kesilmeyi içeren çeviri sonrası değişiklikler (PTM) olasılığı yazılıma dahil edildi. Bağışıklık proteinleri, aspartik asit etkisinin neden olduğu ve MS/MS-PSD tarafından tespit edilen PBC'den olgun protein iyonunun ve diziye özgü parça iyonlarının ölçülen kütlesinden bu yazılım kullanılarak tanımlanmıştır. Son olarak, bu suş DNA'ya zarar veren bir antibiyotiğe maruz kaldığında bu genlerin ekspresyonunu açıklayabilecek bir plazmid genomda AB / Im genlerinin yukarı akışında bir promotör tespit edildi. Bu çalışmanın bazı bölümleri National American Chemical Society Fall 2020 Virtual Meeting & Expo'da (17-20 Ağustos 2020)34.

Protokol

1. Mikrobiyolojik numune hazırlama

  1. Steril 1 μL döngü kullanarak gliserol stoğundan E. coli O113:H21 suşu RM7788 (veya başka bir bakteriyel suş) ile 50 mL konik tüpte 25 mL Luria suyu (LB) aşılanın. Tüpü ve ön kültürü 37 °C'de 4 saat boyunca sallama (200 rpm) ile kapla.
  2. Aliquot 100 μL önceden kültürlenmiş et suyu ve 400 veya 800 ng/mL mitomycin-C ile desteklenmiş bir LB agar plakasına yayılır. Kültür agar plakaları statik olarak 37 °C'de bir inkübatörde gece boyunca.
    DİkKAT: STEC suşları patojenik mikroorganizmalardır. Bir BSL-2 biyogüvenlik kabininde kültlemenin ötesinde tüm mikrobiyolojik manipülasyonları gerçekleştirin.
  3. Steril 1 μL döngü kullanarak tek görünür kolonilerden bakteri hücrelerini toplayın ve 300 μL HPLC sınıfı su içeren 2,0 mL O-ring kaplı vidalı kapak mikrosantrifüj tüpüne aktarın. Hücreleri peletmek için tüpü, girdabı kısaca ve santrifüjü 2 dakika boyunca 11.337 x g'da kapla.

2. Kütle spektrometresi

  1. Numunenin 0,75 μL aliquot'u paslanmaz çelik MALDI hedefine koyun ve kurumasını bekleyin. Kurutulmuş numune noktasını% 33 asetonitril,% 67 su ve% 0.2 trifluoracetic asit doymuş bir sinapinik asit çözeltisinin a0.75 μL aliquot ile kaplayın. Noktanın kurumasına izin verin.
  2. Maldi-TOF-TOF kütle spektrometresi kullanarak kurutulmuş numune noktalarını analiz edin.
    1. MALDI hedefini kütle spektrometresine yükledikten sonra, edinme yazılımında MS doğrusal mod alımı için düğmeyi tıklatın. Alt ve üst sınırların m/z'lerini (örneğin, 2 kDa ila 20 kDa) satın alma yöntemi yazılımındaki ilgili alanlarına girerek analiz edilecek m/z aralığını girin.
    2. Yazılımdaki MALDI hedef şablonunda analiz edilecek örnek noktaya tıklayın. Ardından, sol fare düğmesini basılın ve lazer ablasyon/iyonizasyon için örneklenecek dikdörtgen bölgeyi belirtmek için fare imlecini örnek noktanın üzerine sürükleyin. Fare düğmesini bırakın ve alım başlayacaktır. Her örnek nokta için 1.000 lazer çekimi toplayın.
      NOT: Veri toplama, yazılım edinme penceresinde gerçek zamanlı olarak görüntülenir.
    3. İyon tespit edilirse, protein iyon sinyali tespit edilene kadar yazılımdaki Lazer Yoğunluğu altında Kayan Ölçek Çubuğunu ayarlayarak lazer yoğunluğunu artırın. Buna eşik denir.
      NOT: Numune nokta analizinden önce, cihazı MS doğrusal modunda, m/z'si analiz edilen aralığı kapsayan protein kalibrantlarıyla harici olarak kalibre edin, örneğin protein kalibrantlarının +1 ve +2 yük durumları: sitokrom-C, lysozyme ve miyoglobin 2 kDa ila 20 kDa kütle aralığını kapsar. Belirtilen kütle aralığındaki bir ara kütle odak kütlesi olarak kullanılır, örneğin, 9 kDa. Odak kütlesi, doğrusal mod dedektörü tarafından algılama için m/z en iyi şekilde odaklanan iyondur.
    4. MS doğrusal mod alımı tamamlandığında, edinme yazılımında MS/MS reflectron modu alma düğmesini tıklatın. Öncü Kitle alanına analiz edilecek öncül kütleyi girin. Ardından, öncü kütlenin düşük ve yüksek kütleli tarafı için Öncü Kütle Penceresine (Da cinsinden) bir izolasyon genişliği girin, örneğin, ±100 Da.
    5. CID Kapalı düğmesine tıklayın. Metastable Suppressor ON düğmesine tıklayın. Yazılımdaki Lazer Yoğunluğu altındaki kayan ölçek çubuğunu ayarlayarak lazer yoğunluğunu maksimum değerinin en az %90'ına ayarlayın.
    6. Yazılımdaki MALDI hedef şablonunda analiz edilecek örnek noktaya tıklayın. Ardından sol fare düğmesini basılın ve lazer ablasyon/iyonizasyon için örneklenecek dikdörtgen bölgeyi belirtmek için fare imlecini örnek noktanın üzerine sürükleyin. Fare düğmesini bırakın ve alım başlatılır. Her örnek nokta için 10.000 lazer çekimi toplayın.
      NOT: Numune nokta analizinden önce, alkillenmiş tiyoksin35'in+1 şarj durumunun kaynak sonrası çürümesinden (PSD) kaynaklanan parça iyonları kullanılarak cihaz MS/MS-reflectron modunda harici olarak kalibre edilmelidir.
  3. Ham MS verilerini işlemeyin. MS/MS-PSD ham verilerini belirtilen sırada aşağıdaki adım sırasını kullanarak işleyin: gelişmiş taban çizgisi düzeltmesi (32, 0,5, 0,0) ve ardından gürültü giderme (iki standart sapma) ve ardından Gauss yumuşatma (31 puan).
  4. MS/MS-PSD verilerini PBC19,20tarafından oluşturulan belirgin parça iyonlarının varlığı için el ile inceleyin.
  5. MS/MS verilerini, parça iyonlarının mutlak ve göreceli bolluğu ve gürültüye sinyal (S/N) açısından değerlendirin. Özellikle MS/MS-PSD verileri gürültülüyse, protein tanımlama için yalnızca en bol parça iyonlarını kullanın.

3. Siliko protein veritabanı yapımında

  1. Protein tanımlama için Protein Biomarker Arayıcı yazılımı tarafından taranacak bakteri suşunun siliko protein dizilerini içeren bir metin dosyası oluşturun. Protein dizileri, analiz edilen suşun (veya yakından ilişkili bir suşun) tam genom diziliminden (WGS) türetilir.
  2. Analiz edilen spesifik bakteri suşunun (örneğin, Escherichia coli O113:H21 strain RM7788) yaklaşık 5.000 protein dizisini indirmek için NCBI/PubMed (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/protein/) web sitesine erişin. En büyük indirme boyutu 200 sıradır.
    1. Sonuç olarak, 25 indirmeyi kopyalayıp tek bir metin dosyasına yapıştırın. Her indirme için FASTA (metin) biçimini seçin.

4. Protein Biyobelirteç Arayıcı yazılımının işletilimi

  1. Protein Biomarker Arayıcı yürütülebilir dosyasına çift tıklayın. Grafik kullanıcı arabirimi (GUI) penceresi görüntülenir (Şekil 1, üst panel).
  2. Protein biyobelirtecinin kütlesini (MS-lineer modda ölçüldüğü gibi) Olgun Protein Kütlesi alanına girin. Ardından, Kütle Toleransı alanına kütle ölçüm hatasını girin. Standart kütle ölçüm hatası 10.000 Da proteini için ±10 Da'dır.
  3. İsteğe bağlı olarak, protein kütlesini putatif tamamlayıcı parça iyon çiftinden (CFIP veya b/y) hesaplamak için Tamamlayıcı b/y iyon Protein Kütle Hesaplayıcısı düğmesine tıklayın. Bir açılır pencere, Protein Kütle Hesaplayıcı Aracı, görünecektir(Şekil 1, alt panel).
    1. Putatif CFIP'nin m/z'sini girin ve Çift Ekle düğmesine tıklayın. Hesaplanan protein kütlesi görünecektir.
    2. Bu numarayı kopyalayıp Olgun Protein Kütlesi alanına yapıştırın ve Protein KütleSi Hesaplayıcı Aracı penceresini kapatın.
  4. Kalıntı Kısıtlamasını Ayarla kutusuna tıklayarak bir N-terminal Sinyal Peptit Uzunluğu seçin. Kayan ölçek ve imleç içeren bir açılır pencere görünecektir. İmleci istediğiniz sinyal peptit uzunluğuna (maksimum 50) taşıyın. Sinyal peptit uzunluğu seçilmezse, yazılım tarafından sınırsız bir sıra kesilmesi gerçekleştirilir.
  5. GUI'deki Parça İyon Durumu altında, polipeptid omurga bölünmesi (PBC) için kalıntılar seçin. Bir veya daha fazla kalıntının kutularına tıklayın: D, E, N ve/veya P.
    1. Aranacak Parça Iyonlarını Gir (+1) düğmesini tıklatın. Bir açılır Parça Sayfası görünecektir. Ardından, girilecek parça iyonlarının sayısına karşılık gelen Parça İyon Ekle düğmesine tıklayın, yani her parça iyon için bir tıklama. Girilecek her parça iyon için bir açılan alan görüntülenir.
    2. Parça iyonlarının m/z'lerini ve ilişkili m/z toleranslarını girin. Tamamlandığında, Kaydet ve Kapat düğmesine tıklayın.
      NOT: Makul bir m/z toleransı ±1,5'tir.
    3. Kaç Parça İyonunun Eşleşmesi Gerektiği 'nin sağındaki kutuda istenen sayıya kaydırarak kimlik için eşleşmesi gereken en az parça iyon sayısınıseçin.
      NOT: Üç eşleşme yeterli olmalıdır.
    4. İlgili daireye tıklayarak oksitlenmiş durumda olmak için sistein kalıntılarını seçin. Aramadan sonra protein tanımlaması bulunamazsa, sisteinlerle aramayı azaltılmış hallerinde tekrarlayın. Aramadan sonra kimlik bulunamazsa, parça iyon toleransını ±3'e genişletin ve aramayı yineleyin.
  6. Dosya Kurulumualtında, daha önce protokol 3.1 ile 3.2 arasında oluşturulan bakteri türünün siliko protein dizilerini içeren FASTA (metin) dosyasına göz atmak ve seçmek için FASTA Dosyasını Seç düğmesini tıklatın. Ardından bir çıktı klasörü seçin ve bir çıktı dosyası adı oluşturun.
  7. Dosya Girişlerinde Aramayı Çalıştır düğmesini tıklatın. Arama başlatılmadan önce arama parametrelerini görüntüleyen Arama Parametrelerini Onayla (Şekil 1, alt panel) başlıklı bir açılır pencere görüntülenir.
  8. Arama parametreleri doğruysa, Aramaya Başla düğmesine tıklayın. Arama parametreleri doğru değilse, İptal düğmesini tıklatın ve doğru parametreleri yeniden girin. Arama başlatıldıktan sonra parametre penceresi kapanır ve aramanın ilerlemesini ve bulunan kimlik sayısının çalışan çetelesini gösteren ilerleme çubuğuna sahip yeni bir açılır pencere(Şekil 1, alt panel) görüntülenir.
  9. Arama tamamlandıktan sonra (birkaç saniye), ilerleme çubuğu otomatik olarak kapanır ve aramanın bir özeti GUI'nin Günlük alanında görüntülenir (Şekil 2, üst panel). Ayrıca, varsa protein tanımlamalarını görüntüleyen yeni bir açılır pencere de görünecektir (Şekil 2, alt panel).
    NOT: Tanınmayan kalıntılara sahip siliko protein dizilerinde, örneğin U veya X, analizden otomatik olarak atlanır ve bu diziler daha sonra, aramanın tamamlanmasından sonra hangi (varsa) sıraların atlandığını operatöre uyarmak için ayrı bir açılır pencere ile raporlanır.

5. Protein dizisinin arama sonrası onayı

  1. El ile analiz ile aday sırasının doğruluğunu onaylayın.
    NOT: Protein Biyobelirteç Arayıcı yazılımının amacı, birçok açıkça yanlış protein dizisini değerlendirmeden ortadan kaldırarak ve dizi kesilmeyi olgun proteine olası bir PTM olarak dahil ederek yüksek doğrulukta bir protein dizisini tanımlamaktır. Döndürülen olası aday sıralarının sayısı az olduğundan, manuel onay yönetilebilir.
  2. Bu işlevselliğe sahip herhangi bir kütle spektrometresi veya proteomik yazılımı kullanarak aday sırasının ortalama m/z'si ve y tipi parça iyonlarının bir tablosunu oluşturun. D-, E-ve N-kalıntılarının C-terminal tarafındaki (ve P-kalıntılarının N-terminal tarafındaki) siliko parça iyonlarının ortalama m/z'sini MS/MS-PSD verilerinden elde edilen belirgin parça iyonlarının m/z'sine karşılaştırın.
    NOT: En belirgin MS/MS-PSD parça iyonları siliko parça iyonlarında D-, E-ve N ile kolayca eşleştirilmelidir. Bununla birlikte, aspartik asit etkisi parçalanma mekanizması, bir protein dizisinin N veya C-termini yakınında daha az verimlidir36.

Sonuçlar

Şekil 3 (üst panel), 400 ng/mL mitomycin-C ile desteklenmiş LBA'da bir gecede kültürlenen STEC O113:H21 suşu RM7788'in MS'ini göstermektedir. M/z 7276, 7337 ve 7841'deki zirveler daha önce sırasıyla soğuk şok proteini C (CspC), soğuk şok proteini E (CspE) ve plazmid kaynaklı bilinmeyen bir proteinolaraktanımlanmıştı. m/z 9780 [M+H]+ protein iyonu Şekil 3'te (alt panel) gösterildiği gibi MS/MS-PSD tarafınd...

Tartışmalar

Protokolle ilgili önemli noktalar
Mevcut protokolün birincil güçlü yönleri hızı, numune hazırlama basitliği ve kullanımı nispeten kolay olan, eğitilen ve bakımı olan bir cihazın kullanımıdır. Sıvı kromatografisi-ESI-HR-MS tarafından yapılan aşağıdan yukarıya ve yukarıdan aşağıya proteomik analiz her yerde bulunmasına ve MALDI-TOF-TOF tarafından yukarıdan aşağıya doğru birçok açıdan çok daha üstün olmasına rağmen, daha fazla zaman, emek ve uzmanlık gerekti...

Açıklamalar

Yazarların çıkar çatışması yoktur.

Teşekkürler

Protein Biomarker Seeker yazılımı, clifton.fagerquist@usda.gov'de Clifton K. Fagerquist ile iletişime geçerek (hiçbir ücret ödemeden) serbestçe kullanılabilir. Ars, USDA, CRIS hibesi: 2030-42000-051-00-D tarafından bu araştırmanın desteğini kabul etmek istiyoruz.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
4000 Series Explorer softwareAB SciexVersion 3.5.3
4800 Plus MALDI TOF/TOF AnalyzerAB Sciex
Acetonitrile Optima LC/MS gradeFisher ChemicalA996-1
BSL-2 biohazard cabinetThe Baker CompanySG403A-HE
Cytochrome-CSigmaC2867-10MG
Data Explorer softwareAB SciexVersion 4.9
Focus Protein Reduction-Alkylation kitG-Biosciences786-231
GPMAW softwareLighthouse DataVersion 10.0
IncubatorVWR9120973
LB AgarInvitrogen22700-025
Luria BrothInvitrogen12795-027
LysozymeSigmaL4919-1G
Microcentrifuge Tubes, 2 mL, screw-cap, O-ringFisher Scientific02-681-343
MiniSpin Plus CentrifugeEppendorf22620207
Mitomycin-C (from streptomyces)Sigma-AldrichM0440-5MG
MyoglobinSigmaM5696-100MG
Shaker MaxQ 420HP Model 420Thermo ScientificModel 420
Sinapinic acidThermo Scientific1861580
Sterile 1 uL loopsFisher Scientific22-363-595
Thioredoxin (E. coli, recombinant)SigmaT0910-1MG
Trifluoroacetic acidSigma-Aldrich299537-100G
Water Optima LC/MS gradeFisher ChemicalW6-4

Referanslar

  1. Fornelli, L., et al. Accurate sequence analysis of a monoclonal antibody by top-down and middle-down orbitrap mass spectrometry applying multiple ion activation techniques. Analytical Chemistry. 90 (14), 8421-8429 (2018).
  2. Fornelli, L., et al. Top-down proteomics: Where we are, where we are going. Journal of Proteomics. 175, 3-4 (2018).
  3. He, L., et al. Top-down proteomics-a near-future technique for clinical diagnosis. Annals of Translational Medicine. 8 (4), 136 (2020).
  4. Wu, Z., et al. MASH explorer: A universal software environment for top-down proteomics. Journal of Proteome Research. 19 (9), 3867-3876 (2020).
  5. Konermann, L., Metwally, H., Duez, Q., Peters, I. Charging and supercharging of proteins for mass spectrometry: recent insights into the mechanisms of electrospray ionization. Analyst. 144 (21), 6157-6171 (2019).
  6. Bourmaud, A., Gallien, S., Domon, B. Parallel reaction monitoring using quadrupole-Orbitrap mass spectrometer: Principle and applications. Proteomics. 16 (15-16), 2146-2159 (2016).
  7. Hart-Smith, G. A review of electron-capture and electron-transfer dissociation tandem mass spectrometry in polymer chemistry. Analitica Chimica Acta. 808, 44-55 (2014).
  8. Brodbelt, J. S., Morrison, L. J., Santos, I. Ultraviolet photodissociation mass spectrometry for analysis of biological molecules. Chemical Reviews. 120 (7), 3328-3380 (2020).
  9. Karas, M., Bachmann, D., Bahr, U., Hillenkamp, F. Matrix-assisted ultraviolet-laser desorption of nonvolatile compounds. International Journal of Mass Spectrometry and Ion Processes. 78, 53-68 (1987).
  10. Karas, M., Bachmann, D., Hillenkamp, F. Influence of the wavelength in high-irradiance ultraviolet-laser desorption mass-spectrometry of organic-molecules. Analytical Chemistry. 57 (14), 2935-2939 (1985).
  11. Tanaka, K., et al. Protein and polymer analyses up to m/z 100 000 by laser ionization time-of-flight mass spectrometry. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 2 (8), 151-153 (1988).
  12. Resemann, A., et al. Top-down de Novo protein sequencing of a 13.6 kDa camelid single heavy chain antibody by matrix-assisted laser desorption ionization-time-of-flight/time-of-flight mass spectrometry. Analytical Chemistry. 82 (8), 3283-3292 (2010).
  13. Suckau, D., Resemann, A. T3-sequencing: targeted characterization of the N- and C-termini of undigested proteins by mass spectrometry. Analytical Chemistry. 75 (21), 5817-5824 (2003).
  14. Mikhael, A., Jurcic, K., Fridgen, T. D., Delmas, M., Banoub, J. Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight/time-of-flight tandem mass spectrometry (negative ion mode) of French Oak Lignin: A Novel Series of Lignin and Tricin Derivatives attached to Carbohydrate and Shikimic acid Moieties. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 34 (18), 8841 (2020).
  15. Demirev, P. A., Feldman, A. B., Kowalski, P., Lin, J. S. Top-down proteomics for rapid identification of intact microorganisms. Analytical Chemistry. 77 (22), 7455-7461 (2005).
  16. Fagerquist, C. K. Unlocking the proteomic information encoded in MALDI-TOF-MS data used for microbial identification and characterization. Expert Review of Proteomics. 14 (1), 97-107 (2017).
  17. Gu, C., Tsaprailis, G., Breci, L., Wysocki, V. H. Selective gas-phase cleavage at the peptide bond C-terminal to aspartic acid in fixed-charge derivatives of Asp-containing peptides. Analytical Chemistry. 72 (23), 5804-5813 (2000).
  18. Herrmann, K. A., Wysocki, V. H., Vorpagel, E. R. Computational investigation and hydrogen/deuterium exchange of the fixed charge derivative tris(2,4,6-trimethoxyphenyl) phosphonium: implications for the aspartic acid cleavage mechanism. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 16 (7), 1067-1080 (2005).
  19. Rozman, M. Aspartic acid side chain effect-experimental and theoretical insight. Journal of the American Society for Mass Spectrometry. 18 (1), 121-127 (2007).
  20. Yu, W., Vath, J. E., Huberty, M. C., Martin, S. A. Identification of the facile gas-phase cleavage of the Asp-Pro and Asp-Xxx peptide bonds in matrix-assisted laser desorption time-of-flight mass spectrometry. Analytical Chemistry. 65 (21), 3015-3023 (1993).
  21. Luethy, P. M., Johnson, J. K. The use of Matrix-Assisted Laser Desorption/Ionization Time-of-Flight Mass Spectrometry (MALDI-TOF MS) for the identification of pathogens causing sepsis. The Journal of Applied Laboratory Medicine. 3 (4), 675-685 (2019).
  22. Knabl, L., Lass-Florl, C. Antifungal susceptibility testing in Candida species: current methods and promising new tools for shortening the turnaround time. Expert Review of Anti-Infective Therapy. 18 (8), 779-787 (2020).
  23. Gould, O., Ratcliffe, N., Krol, E., de Lacy Costello, B. Breath analysis for detection of viral infection, the current position of the field. Journal of Breath Research. 14 (4), 041001 (2020).
  24. Fagerquist, C. K., et al. Sub-speciating Campylobacter jejuni by proteomic analysis of its protein biomarkers and their post-translational modifications. Journal of Proteome Research. 5 (10), 2527-2538 (2006).
  25. Sandrin, T. R., Goldstein, J. E., Schumaker, S. MALDI TOF MS profiling of bacteria at the strain level: a review. Mass Spectrometry Reviews. 32 (3), 188-217 (2013).
  26. Christner, M., et al. Rapid MALDI-TOF mass spectrometry strain typing during a large outbreak of Shiga-Toxigenic Escherichia coli. PLoS One. 9 (7), 101924 (2014).
  27. Masaki, H., Ohta, T. Colicin E3 and its immunity genes. Journal of Molecular Biology. 182 (2), 217-227 (1985).
  28. Michel, B. After 30 years of study, the bacterial SOS response still surprises us. PLoS Biology. 3 (7), 255 (2005).
  29. Fagerquist, C. K., Sultan, O. Induction and identification of disulfide-intact and disulfide-reduced beta-subunit of Shiga toxin 2 from Escherichia coli O157:H7 using MALDI-TOF-TOF-MS/MS and top-down proteomics. Analyst. 136 (8), 1739-1746 (2011).
  30. Fagerquist, C. K., Sultan, O. Top-down proteomic identification of furin-cleaved alpha-subunit of Shiga toxin 2 from Escherichia coli O157:H7 using MALDI-TOF-TOF-MS/MS. Journal of Biomedicine & Biotechnology. 2010, 123460 (2010).
  31. Fagerquist, C. K., et al. Top-down proteomic identification of Shiga toxin 2 subtypes from Shiga toxin-producing Escherichia coli by matrix-assisted laser desorption ionization-tandem time of flight mass spectrometry. Applied and Environmental Microbiology. 80 (9), 2928-2940 (2014).
  32. Fagerquist, C. K., Zaragoza, W. J., Lee, B. G., Yambao, J. C., Quiñones, B. Clinically-relevant Shiga toxin 2 subtypes from environmental Shiga toxin-producing Escherichia coli identified by top-down/middle-down proteomics and DNA sequencing. Clinical Mass Spectrometry. 11, 27-36 (2019).
  33. Fagerquist, C. K., Lee, B. G., Zaragoza, W. J., Yambao, J. C., Quiñones, B. Software for top-down proteomic identification of a plasmid-borne factor (and other proteins) from genomically sequenced pathogenic bacteria using MALDI-TOF-TOF-MS/MS and post-source decay. International Journal of Mass Spectrometry. 438, 1-12 (2019).
  34. Fagerquist, C. K., Rojas, E. . ACS Fall 2020 Virtual Meeting & Expo. American Chemical Society, Virtual. , (2020).
  35. Fagerquist, C. K., Sultan, O. A new calibrant for matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight-time-of-flight post-source decay tandem mass spectrometry of non-digested proteins for top-down proteomic analysis. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 26 (10), 1241-1248 (2012).
  36. Fagerquist, C. K., Zaragoza, W. J. Complementary b/y fragment ion pairs from post-source decay of metastable YahO for calibration of MALDI-TOF-TOF-MS/MS. International Journal of Mass Spectrometry. 415, 29-37 (2017).
  37. Quinones, B., Yambao, J. C., Lee, B. G. Draft genome sequences of Escherichia coli O113:H21 strains recovered from a major produce production region in California. Genome Announcements. 5 (44), 01203-01217 (2017).
  38. Harrison, A. G. The gas-phase basicities and proton affinities of amino acids and peptides. Mass Spectrometry Reviews. 16 (4), 201-217 (1997).
  39. Fagerquist, C. K. Polypeptide backbone cleavage on the C-terminal side of asparagine residues of metastable protein ions analyzed by MALDI-TOF-TOF-MS/MS and post-source decay. International Journal of Mass Spectrometry. 457, (2020).
  40. Fagerquist, C. K., Zaragoza, W. J. . Mass Spectrometry: Application to the Clinical Lab 2019 (MSACL 2019). , (2019).
  41. Fagerquist, C. K., Zaragoza, W. J. Bacteriophage cell lysis of Shiga toxin-producing Escherichia coli for top-down proteomic identification of Shiga toxins 1 & 2 using matrix-assisted laser desorption/ionization tandem time-of-flight mass spectrometry. Rapid Communications in Mass Spectrometry. 30 (6), 671-680 (2016).
  42. Fagerquist, C. K., et al. Web-based software for rapid top-down proteomic identification of protein biomarkers, with implications for bacterial identification. Applied and Environmental Microbiology. 75 (13), 4341-4353 (2009).
  43. Fagerquist, C. K., et al. Rapid identification of protein biomarkers of Escherichia coli O157:H7 by matrix-assisted laser desorption ionization-time-of-flight-time-of-flight mass spectrometry and top-down proteomics. Analytical Chemistry. 82 (7), 2717-2725 (2010).
  44. Maus, A., Bisha, B., Fagerquist, C., Basile, F. Detection and identification of a protein biomarker in antibiotic-resistant Escherichia coli using intact protein LC offline MALDI-MS and MS/MS. Journal of Applied Microbiology. 128 (3), 697-709 (2020).

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

KimyaSay 171

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır