JoVE Logo
Yazarlar
Bize Ulaşın

Oturum Aç

Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliği gereklidir. Oturum açın veya ücretsiz deneme sürümünü başlatın.

Bu Makalede

  • Özet
  • Özet
  • Giriş
  • Protokol
  • Sonuçlar
  • Tartışmalar
  • Açıklamalar
  • Teşekkürler
  • Malzemeler
  • Referanslar
  • Yeniden Basımlar ve İzinler

Özet

Sunulan, yaşlı bir Drosophila modelinde meyve sineklerinin uyku davranışını izleyerek uykuyu iyileştirmek için yüksek verimli ilaç taraması için bir protokoldür.

Özet

Sağlığın ve genel refahın önemli bir bileşeni olan uyku, genellikle kısa uyku süresi ve parçalanmış kalıplarla karakterize uyku bozuklukları yaşayan yaşlı bireyler için zorluklar sunar. Bu uyku bozuklukları ayrıca yaşlılarda diyabet, kardiyovasküler hastalıklar ve psikolojik bozukluklar dahil olmak üzere çeşitli hastalık riskinin artmasıyla da ilişkilidir. Ne yazık ki, uyku bozuklukları için mevcut ilaçlar, bilişsel bozukluk ve bağımlılık gibi önemli yan etkilerle ilişkilidir. Sonuç olarak, yeni, daha güvenli ve daha etkili uyku bozukluğu ilaçlarının geliştirilmesine acilen ihtiyaç duyulmaktadır. Bununla birlikte, mevcut ilaç tarama yöntemlerinin yüksek maliyeti ve uzun deneysel süresi sınırlayıcı faktörler olmaya devam etmektedir.

Bu protokol, memelilere kıyasla yüksek oranda korunmuş bir uyku düzenleme mekanizmasına sahip bir tür olan Drosophila melanogaster'ı kullanan ve onu yaşlılarda uyku bozukluklarını incelemek için ideal bir model haline getiren uygun maliyetli ve yüksek verimli bir tarama yöntemini tanımlar. Yaşlı sineklere çeşitli küçük bileşikler uygulayarak, uyku bozuklukları üzerindeki etkilerini değerlendirebiliriz. Bu sineklerin uyku davranışları kızılötesi izleme cihazı kullanılarak kayıt altına alınmakta ve açık kaynak kodlu veri paketi Uyku ve Sirkadiyen Analiz MATLAB Programı 2020 (SCAMP2020) ile analiz edilmektedir. Bu protokol, uyku regülasyonu için düşük maliyetli, tekrarlanabilir ve verimli bir tarama yaklaşımı sunar. Meyve sinekleri, kısa yaşam döngüleri, düşük yetiştirme maliyetleri ve kullanım kolaylıkları nedeniyle bu yöntem için mükemmel konular olarak hizmet eder. Örnek olarak, test edilen ilaçlardan biri olan Reserpine, yaşlı sineklerde uyku süresini artırma yeteneğini gösterdi ve bu protokolün etkinliğini vurguladı.

Giriş

İnsanın hayatta kalması için gerekli olan temel davranışlardan biri olan uyku, iki ana durumla karakterize edilir: hızlı göz hareketi (REM) uykusu ve hızlı olmayan göz hareketi (NREM) uykusu1. NREM uykusu üç aşamadan oluşur: N1 (uyanıklık ve uyku arasındaki geçiş), N2 (hafif uyku) ve N3 (derin uyku, yavaş dalga uykusu), uyanıklıktan derin uykuyailerlemeyi temsil eder 1. Uyku hem fiziksel hem de zihinsel sağlıkta çok önemli bir rol oynar2. Bununla birlikte, yaşlanma yetişkinlerde toplam uyku süresini, uyku verimliliğini, yavaş dalga uyku yüzdesini ve REM uyku yüzdesini azaltır3. Yaşlı bireyler, yavaş dalga uykusuna kıyasla hafif uykuda daha fazla zaman geçirme eğilimindedir ve bu da onları gece uyanmalarına karşı daha duyarlı hale getirir. Uyanma sayısı arttıkça, ortalama uyku süresi azalır, bu da yaşlılarda parçalanmış bir uyku düzenine neden olur, bu da farelerdeHcrt nöronlarının aşırı uyarılmasıyla ilişkili olabilir 4. Ek olarak, sirkadiyen mekanizmalarda yaşa bağlı düşüşler, uyku süresinde daha erken bir kaymaya katkıda bulunur 5,6. Fiziksel hastalık, psikolojik stres, çevresel faktörler ve ilaç kullanımı ile birlikte, bu faktörler yaşlı yetişkinleri uykusuzluk, REM uykusu davranış bozukluğu, narkolepsi, periyodik bacak hareketleri, huzursuz bacak sendromu ve uykuda solunum bozukluğu gibi uyku bozukluklarına karşı daha duyarlı hale getirir 7,8.

Epidemiyolojik çalışmalar, uyku bozukluklarının yaşlılardadepresyon 10, kardiyovasküler hastalık11 ve demans12 dahil olmak üzere kronik hastalıklarla 9 yakından bağlantılı olduğunu göstermiştir. Uyku bozukluklarının ele alınması, kronik hastalıkların iyileştirilmesinde ve tedavi edilmesinde ve yaşlı yetişkinler için yaşam kalitesinin artırılmasında çok önemli bir rol oynar. Şu anda, hastalar uyku kalitesini artırmak için öncelikle benzodiazepinler, benzodiazepin olmayanlar ve melatonin reseptör agonistleri gibi ilaçlara güvenmektedir13. Bununla birlikte, benzodiazepinler, uzun süreli kullanımdan sonra reseptörlerin aşağı regülasyonuna ve bağımlılığa yol açabilir ve kesilme üzerine ciddi yoksunluk semptomlarına neden olabilir14,15. Benzodiazepin olmayan ilaçlar da demans16, kırıklar17 ve kanser18 dahil olmak üzere riskler taşır. Yaygın olarak kullanılan melatonin reseptörü agonisti ramelteon, uyku gecikmesini azaltır, ancak uyku süresini artırmaz ve kapsamlı ilk geçiş eliminasyonu nedeniyle karaciğer fonksiyonuyla ilgili endişeleri vardır19. Bir melatonin reseptörü agonisti ve serotonin reseptör antagonisti olan Agomelatin, depresyona bağlı uykusuzluğu iyileştirir, ancak aynı zamanda karaciğer hasarı riski taşır20. Sonuç olarak, uyku bozukluklarını tedavi etmek veya hafifletmek için daha güvenli ilaçlara acil ihtiyaç vardır. Bununla birlikte, otomatik sistemler ve bilgisayar analizi ile birleştirilmiş moleküler ve hücresel deneylere dayanan mevcut ilaç tarama stratejileri pahalı ve zaman alıcıdır21. Reseptör yapısına ve özelliklerine dayanan yapıya dayalı ilaç tasarım stratejileri, reseptör üç boyutlu yapısının net bir şekilde anlaşılmasını gerektirir ve ilaç etkileri için öngörü yeteneklerinden yoksundur22.

2000 yılında, Campbell ve Tobler tarafından 1984'te önerilen uyku kriterlerine dayanarak 23, araştırmacılar, uyku benzeri durumlar sergileyen Drosophila melanogaster de dahil olmak üzere uyku24'ü incelemek için basit hayvan modelleri oluşturdular25,26. Drosophila ve insanlar arasındaki anatomik farklılıklara rağmen, Drosophila'da uykuyu düzenleyen birçok nörokimyasal bileşen ve sinyal yolu memeli uykusunda korunur ve insan nörolojik hastalıklarının incelenmesini kolaylaştırır27,28. Drosophila, sinekler ve memeliler arasındaki çekirdek osilatörlerindeki farklılıklara rağmen, sirkadiyen ritim çalışmalarında da yaygın olarak kullanılmaktadır 29,30,31. Bu nedenle Drosophila, uyku davranışını incelemek ve uyku ile ilgili ilaç taraması yapmak için değerli bir model organizma olarak hizmet eder.

Bu çalışma, yaşlı sinekler kullanılarak uyku bozukluklarını tedavi etmek için küçük moleküllü ilaçların taranması için uygun maliyetli ve basit fenotipe dayalı bir yaklaşım önermektedir. Drosophila'da uyku regülasyonu yüksek oranda korunur25 ve yaşla birlikte gözlenen uykudaki düşüş ilaç uygulaması ile geri dönüşümlü olabilir. Bu nedenle, bu uyku fenotipine dayalı tarama yöntemi, ilaç etkinliğini sezgisel olarak yansıtabilir. Sinekleri incelenen ilaç ve yiyecek karışımı ile besliyoruz, Drosophila Activity Monitor (DAM)32 kullanarak uyku davranışını izliyor ve kaydediyoruz ve elde edilen verileri MATLAB'daki açık kaynaklı SCAMP2020 veri paketini kullanarak analiz ediyoruz (Şekil 1). İstatistiksel analiz, istatistik ve grafik yazılımı kullanılarak gerçekleştirilir (bkz. Örnek olarak, uykuyu arttırdığı bildirilen veziküler monoamin taşıyıcının küçük moleküllü bir inhibitörü olan Reserpin hakkında deneysel veriler sunarak bu protokolün etkinliğini gösteriyoruz33. Bu protokol, yaşa bağlı uyku problemlerini tedavi etmek için ilaçları tanımlamak için değerli bir yaklaşım sağlar.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protokol

Bu protokol, Bloomington Drosophila Stok Merkezi'nden 30 günlük w1118 sineğini kullanır (BDSC_3605, bkz.

1. Yaşlı meyve sineklerinin hazırlanması

  1. Yemek hazırlama
    1. 50 g/L mısır gevreği, 110 g/L şeker, 5 g/L agar ve 25 g/L mayayı karıştırarak standart mısır nişastası kültür ortamını hazırlayın. Mısır gevreğini ve mayayı jelatinleştirmek için suyla ısıtın ve ardından tüm maddeleri tamamen çözün.
    2. Ortam 50-60 °C'ye soğuduğunda, 6 mL/L propiyonik asit ekleyin ve bunları hemen kültür şişelerine koyun.
  2. Sinek yetiştiriciliği ve yaşlı sineklerin hazırlanması
    1. Sinek suşunu w 1118'i standart bir mısır nişastası kültürü ortamı içeren şişelerde üretin ve şişeleri 25 ° C'de,% 68 bağıl nemde, 500-1000 lüks aydınlatma koşullarında ve 12 saat: 12saat ışıkta sabit sıcaklıkta bir inkübatöre koyun: karanlık döngü.
    2. Sineklerin büyüme döngüsüne göre sinekleri her 7 günde bir yeni bir şişeye aktarın ve aynı şişedeki bireylerin yaşını tutarlı tutun.
    3. Orijinal şişeden çıkan yeni sinek grubunu aktardıktan 3 gün sonra toplayın ve yeni bir şişeye koyun. Şişeyi her 7 günde bir değiştirme prensibine göre, yaklaşık 30 günlük olana kadar kültürleneceklerdir.

2. İzleme için tıbbi gıda ve cam tüplerin hazırlanması

NOT: Cam tüp hazırlama prosedürü, Jin ve ark.modifikasyonlarla 34.

  1. Cam tüplerin temizlenmesi ve kurutulması
    1. Cam tüpü (5 mm çap x 65 mm uzunluk, Malzeme Tablosuna bakın) büyük bir behere yerleştirin, ıslatın ve çift damıtılmış su ile 20 dakika kaynatın. 3 kez tekrarlayın.
    2. Cam tüpü çıkarın ve paketleyin, içini 3-5 kez çift damıtılmış suyla durulayın ve kuruması için fırına koyun.
  2. Basit kültür ortamının hazırlanması (100 mL)
    1. 1.5 g agar ve 5 g sükrozu çift damıtılmış suda çözün, ısıtın ve 100 mL'ye konsantre edin.
    2. Ortam yaklaşık 70 °C'ye soğuduğunda 600 μL propiyonik asit ekleyin ve sabit sıcaklıkta bir su banyosu kullanarak katılaşmasını önleyin.
    3. İlaç 20 μM veya 50 μM'ye ulaşana kadar 10 mL'lik küçük bir behere yaklaşık 4 mL basit ortam ve Reserpin (Malzeme Tablosuna bakınız) ekleyin.
  3. İlaç içeren cam tüplerin hazırlanması
    1. Ortamın akışını kolaylaştırmak için, uygun uzunlukta bir cam tüpü küçük bir behere dikkatlice yerleştirin. Ortam, atmosferik basınç nedeniyle doğal olarak cam tüpe girecektir.
    2. Kültür ortamı tamamen katılaştığında cam tüpü dışarı çekin ve bir ucunda ilaç içeren bir kültür ortamı bulunan bir izleme cam tüpü elde etmek için dış duvarı silin.
    3. Katı parafini bir beherde 70 °C'de eriyene kadar ısıtın, cam tüpün ucunu yiyeceğe yakın bir yerde yaklaşık 5 mm parafin sıvısına koyun ve hızlıca çıkarın. Cam tüpün yiyecek ucunu kapatmak için parafinin katılaşmasını bekleyin.

3. Deneysel tasarım ve sinek tedavisi

  1. Tablo 1'i takip ederek sinek tedavisi için deneyi tasarlayın.

4. Drosophila montajı ve uyku izleme

NOT: Drosophila montajı prosedürü, Jin ve ark.34'ün çalışmalarını değişikliklerle takip eder.

  1. Sinekleri CO2 gazı ile uyuşturun, parafinle kapatılmış cam tüplere (tüp başına bir tane) koyun ve sineklerin kaçmasını önlemek ve hava sirkülasyonunu sağlamak için gıda dışı ucunu emici bir pamuk top ile bloke edin.
  2. Tüpleri izlemek için kızılötesi monitöre yükleyin.
    1. Sinek içeren cam tüpleri aynı yönde bir kızılötesi monitöre monte edin ve her ilaca karşılık gelen monitör numarasını ve delik numarasını kaydedin.
    2. Her tüpün hizalamasını ayarlayın ve kızılötesi ışınların sineğin aktivite aralığının merkezinden dikey olarak geçmesini sağlayın.
    3. Monitörü, belirtilen ayarları izleyerek sinek uykusu karanlık odasında bulunan 25 °C'lik bir inkübatörün içine yerleştirin: 25 °C sıcaklık, Zeitgeber 12 (ZT12) (yerel saat 08:00'e eşdeğer) ve ZT24 (yerel saat 08:00'e eşdeğer). Bu kurulum, sineklerin 12 saatlik aydınlık ve karanlık dönemlerini dönüşümlü olarak deneyimlemelerini sağlar.
      NOT: İzleme sırasında inkübatörde sabit bir ortam sağlamak için izleme verilerinin toplanması tamamlanana kadar kapıyı açmamaya çalışın.
    4. DAM2 sistemini kullanarak izlemeye başlayın (Malzeme Tablosuna bakın).
    5. İzleme tamamlandıktan sonra, toplanan verileri sistemden .txt formatında indirin.

5. Veri işleme

NOT: DAM sistemi, DAMFileScan107 ve SCAMP kullanılarak veri işleme, resmi web sitelerindeki talimatlara göre gerçekleştirilmiştir (bkz.

  1. Yukarıdaki txt dosyasını taramak için DAMFileScan107 yazılımına aktarın ve uyku verilerini elde etmek için gerektiği gibi bölün.
    1. Segmentasyon verilerinin başlangıç saatini, monitörleri başlattıktan sonraki üçüncü sabah 8:01 (1 dakikalık segmentasyon) veya 8:00 (30 dakikalık segmentasyon) olarak ayarlayın ve sonlandırma saati, başlangıç saatinden üç gün sonra 8:00'dir (Şekil 2A1).
      NOT: Sinekler en az bir gün boyunca izleme ortamına uyum sağlamalıdır. Böylece, bölünmüş veri başlangıç saati, monitör başladıktan sonraki üçüncü gün sabah 8'e ayarlanabilir.
    2. Verileri 1 dakika ve 30 dakika aralıklarla bölün. "Bin Uzunluğu" seçeneğini 1 dakika olarak değiştirin, "Çıktı Dosyası Türü" seçeneğini Kanal dosyaları, yeniden adlandırın ve çıktı olarak değiştirin. 30 dakikalık veri segmentasyon yöntemi yukarıdakiyle aynıdır (Şekil 2A2-5).
      NOT: 1 dakika ve 30 dakika aralıklarla veri segmentasyonu gerçekleştirirken, iki dosyanın son yeniden adlandırılması tutarlı olmalıdır; aksi takdirde, sonraki Matlab işlemleri sırasında okunamayabilir. Gerekirse, farklılaştırmayı kolaylaştırmak için çıktıdan sonra dosya adı değiştirilebilir.
  2. SCAMP2020 kullanarak veri işleme
    1. Matlab'da SCAMP2020 program paketini açın ve Vecsey Uyku ve Sirkadiyen Analiz MATLAB Programı (SCAMP) üzerine çift tıklayın (Şekil 2B).
    2. Yola "Vecsey SCAMP Scripts" alt klasörünü ekleyin, bu klasörde "scamp.m" dosyasını bulun ve çalıştırın. Aşağıdaki açılır pencerede, sırayla 1 dakika ve 30 dakika klasörlerini seçin (Şekil 2C,D).
    3. Bir monitör seçin, Bireysel yükle'ye tıklayın Önizlemek için Grafiklere bakın (Şekil 3A1) ve görünen görüntüyü kontrol edin. İlgili ölü sinek kanalının işaretini kaldırın (Şekil 3A2, Şekil 3B).
    4. Tüm monitörleri kontrol etmek için yukarıdaki adımları tekrarlayın.
    5. Her monitördeki her kanalı, test edilecek ilgili ilaca göre yeniden adlandırın (Şekil 3A3), tüm monitörleri seçin ve analiz için Seçilen Verileri ANALİZ ET'e tıklayın (Şekil 3A4).
    6. Varsayılan olarak seçilen seçenek, Seçilen Bölme için Analiz Et'e tıklayın, Verileri Dışa Aktar'ı işaretleyin ve son olarak sonuçların çıktısını almak için GRAPH 30 dk Seçili Gruplar için Tüm Günler için Veri Türleri ve Tüm Verileri İHRACAT üzerine tıklayın (Şekil 3C).
  3. CSV dosyasından s30 adlı dosyayı seçin, her monitör için karşılık gelen ortalama değeri ve standart hata verilerini bulun, değişiklik ve ayarlama için Excel'e yedekleyin ve bir uyku durumu diyagramı çizmek için GraphPad Prism'e yapıştırın (Malzeme Tablosuna bakın) (Şekil 4A,B).
  4. "Stdur" adlı dosyayı bulun ve üç gün içinde her sinek için gündüz, gece ve toplam uykunun ortalama değerlerini hesaplayın (Şekil 4A, C). Fark testini tamamlamak ve bir grafik çizmek için verileri Prism yazılımına yapıştırın.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Sonuçlar

Reserpin, monoaminlerin presinaptik veziküllere geri alımını inhibe eden ve uykunun artmasına neden olan veziküler monoamin taşıyıcısının (VMAT) küçük moleküllü bir inhibitörüdür33. Reserpin'in uykuyu teşvik edici etkileri 30 günlük sineklerde incelendi ve kontrol grubu sadece çözücü dimetil sülfoksit (DMSO) ile beslendi. Reserpin grubunda, yaşlı sinekler, DMSO grubuna kıyasla hem gündüz hem de gece boyunca önemli ölçüde artmış uyku sergiledi. Şekil 5A,

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Tartışmalar

Tarif edilen yöntem, küçük ve orta ölçekli uyku ilaçlarını hızlı bir şekilde taramak için uygundur. Şu anda, çoğu ana akım yüksek verimli ilaç tarama yöntemi biyokimyasal ve hücresel seviyelere dayanmaktadır. Örneğin, reseptörün yapısı ve özellikleri, ona bağlanabilen spesifik ligandları aramak için incelenir22. Başka bir yaklaşım, kütle spektrometresi35 ile Nükleer Manyetik Rezonans (NMR) kullanılarak seçilen ilaçların moleküler fr...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Açıklamalar

Yazarlar hiçbir çıkar çatışması beyan etmezler.

Teşekkürler

Prof. Junhai Han'ın laboratuvar üyelerine tartışmaları ve yorumları için teşekkür ederiz. Bu çalışma, Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı tarafından 32170970 YT'ye ve Jiangsu Eyaletinin "Siyanin Mavisi Projesi" tarafından ZCZ'ye desteklenmiştir.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Malzemeler

NameCompanyCatalog NumberComments
AgerBIOFROXX8211KG001
Artificial Climate BoxPRANDTPRX-1000Aofficial website:https://www.nbplt17.com/PLTXBS-Products-20643427/
DAM2 Drosophila Activity MonitorTriKineicsDAM2official website:https://www.trikinetics.com/
DAM2systemTriKineicsversion:v3.03official website:https://www.trikinetics.com/
DAMFileScanTriKineicsversion:1.0.7.0official website:https://www.trikinetics.com/
Dimethyl SulfoxideSIGMA276855
Drosophila Activity Monitoring IncubatorTritech ResearchDT2-CIRC-TKofficial website:https://www.tritechresearch.com/DT2-CIRC-TK.html
Drosophila BottlesBiologix51-17720official website:http://biologixgroup.com/goods.php?id=48
Drosophila: w1118Bloomington Drosophila Stock Center BDSC_3605
ExcelMicrosoftversion:Excel 2016official website:https://www.microsoftstore.com.cn/software/office/excel
Glass tubesTriKineticsPPT5x65official website:https://www.trikinetics.com/
MATLABR2022bMathWorksversion:9.13.0.2049777official website:https://ww2.mathworks.cn/products/matlab.html
PrismGraphPadVersion:Prism 8.0.1official website:https://www.graphpad.com/features
ReserpineMACKLINR817202-1g
SaccharoseSIGMA1245GR500
SCAMPVecsey LabN/Aofficial website:https://academics.skidmore.edu/blogs/cvecsey/

Referanslar

  1. Le Bon, O. Relationships between REM and NREM in the NREM-REM sleep cycle: a review on competing concepts. Sleep Medicine. 70, 6-16 (2020).
  2. Krueger, J. M., Frank, M. G., Wisor, J. P., Roy, S. Sleep function: Toward elucidating an enigma. Sleep Medicine Reviews. 28, 46-54 (2016).
  3. Ohayon, M. M., Carskadon, M. A., Guilleminault, C., Vitiello, M. V. Meta-analysis of quantitative sleep parameters from childhood to old age in healthy individuals: developing normative sleep values across the human lifespan. Sleep. 27 (7), 1255-1273 (2004).
  4. Li, S. B., et al. Hyperexcitable arousal circuits drive sleep instability during aging. Science. 375 (6583), eabh3021(2022).
  5. Rodriguez, J. C., Dzierzewski, J. M., Alessi, C. A. Sleep problems in the elderly. Medical Clinics of North America. 99 (2), 431-439 (2015).
  6. Gulia, K. K., Kumar, V. M. Sleep disorders in the elderly: a growing challenge. Psychogeriatrics. 18 (3), 155-165 (2018).
  7. Wolkove, N., Elkholy, O., Baltzan, M., Palayew, M. Sleep and aging: 1. Sleep disorders commonly found in older people. Canadian Medical Association Journal. 176 (9), 1299-1304 (2007).
  8. Suzuki, K., Miyamoto, M., Hirata, K. Sleep disorders in the elderly: Diagnosis and management. Journal of General and Family Medicine. 18 (2), 61-71 (2017).
  9. Foley, D. J., et al. Sleep complaints among elderly persons - an epidemiologic-study of 3 communities. Sleep. 18 (6), 425-432 (1995).
  10. Yu, D. S. Insomnia Severity Index: psychometric properties with Chinese community-dwelling older people. Journal of Advanced Nursing. 66 (10), 2350-2359 (2010).
  11. Hoevenaar-Blom, M. P., Spijkerman, A. M., Kromhout, D., van den Berg, J. F., Verschuren, W. M. Sleep duration and sleep quality in relation to 12-year cardiovascular disease incidence: the MORGEN study. Sleep. 34 (11), 1487-1492 (2011).
  12. Rebok, G. W., Rovner, B. W., Folstein, M. F. Sleep disturbance and Alzheimer's disease: relationship to behavioral problems. Aging (Milano). 3 (2), 193-196 (1991).
  13. Schroeck, J. L., et al. Review of safety and efficacy of sleep medicines in older adults. Clinical Therapeutics. 38 (11), 2340-2372 (2016).
  14. Pericic, D., Strac, D. S., Jembrek, M. J., Vlainic, J. Allosteric uncoupling and up-regulation of benzodiazepine and GABA recognition sites following chronic diazepam treatment of HEK 293 cells stably transfected with alpha1beta2gamma2S subunits of GABA (A) receptors. Naunyn-Schmiedeberg's Archives of Pharmacology. 375 (3), 177-187 (2007).
  15. Lader, M. History of benzodiazepine dependence. Journal of Substance Abuse Treatment. 8 (1-2), 53-59 (1991).
  16. Chen, P. L., Lee, W. J., Sun, W. Z., Oyang, Y. J., Fuh, J. L. Risk of dementia in patients with insomnia and long-term use of hypnotics: a population-based retrospective cohort study. Plos One. 7 (11), e49113(2012).
  17. Kang, D. Y., et al. Zolpidem use and risk of fracture in elderly insomnia patients. Journal of Preventive Medicine and Public Health. 45 (4), 219-226 (2012).
  18. Kao, C. H., et al. Relationship of zolpidem and cancer risk: a Taiwanese population-based cohort study. Mayo Clinic Protocols. 87 (5), 430-436 (2012).
  19. Sateia, M. J., Kirby-Long, P., Taylor, J. L. Efficacy and clinical safety of ramelteon: an evidence-based review. Sleep Medicine Reviews. 12 (4), 319-332 (2008).
  20. Friedrich, M. E., et al. Drug-induced liver injury during antidepressant treatment: results of amsp, a drug surveillance program. The International Journal of Neuropsychopharmacology. 19 (4), pyv126(2016).
  21. Entzeroth, M., Flotow, H., Condron, P. Overview of high-throughput screening. Current Protocols in Pharmacology. Chapter 9, (2009).
  22. Ferreira, L. G., Dos Santos, R. N., Oliva, G., Andricopulo, A. D. Molecular docking and structure-based drug design strategies. Molecules. 20 (7), 13384-13421 (2015).
  23. Campbell, S. S., Tobler, I. Animal sleep - a review of sleep duration across phylogeny. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 8 (3), 269-300 (1984).
  24. Hendricks, J. C., Sehgal, A., Pack, A. I. The need for a simple animal model to understand sleep. Progress in Neurobiology. 61 (4), 339-351 (2000).
  25. Hendricks, J. C., et al. Rest in Drosophila is a sleep-like state. Neuron. 25 (1), 129-138 (2000).
  26. Shaw, P. J., Cirelli, C., Greenspan, R. J., Tononi, G. Correlates of sleep and waking in Drosophila melanogaster. Science. 287 (5459), 1834-1837 (2000).
  27. Ly, S., Pack, A. I., Naidoo, N. The neurobiological basis of sleep: Insights from Drosophila. Neuroscience & Biobehavioral Reviews. 87, 67-86 (2018).
  28. Jeibmann, A., Paulus, W. Drosophila melanogaster as a model organism of brain diseases. International Journal of Molecular Sciences. 10 (2), 407-440 (2009).
  29. Morse, D., Sassone-Corsi, P. Time after time: inputs to and outputs from the mammalian circadian oscillators. Trends in Neuroscience. 25 (12), 632-637 (2002).
  30. De Nobrega, A. K., Lyons, L. C. Drosophila: an emergent model for delineating interactions between the circadian clock and drugs of abuse. Neural Plasticity. 2017, 4723836(2017).
  31. Reppert, S. M., Weaver, D. R. Coordination of circadian timing in mammals. Nature. 418 (6901), 935-941 (2002).
  32. Koudounas, S., Green, E. W., Clancy, D. Reliability and variability of sleep and activity as biomarkers of ageing in Drosophila. Biogerontology. 13 (5), 489-499 (2012).
  33. Nall, A. H., Sehgal, A. Small-molecule screen in adult Drosophila identifies VMAT as a regulator of sleep. Journal of Neuroscience. 33 (19), 8534-8464 (2013).
  34. Jin, X., Gu, P., Han, J. Protocol for Drosophila sleep deprivation using single-chip board. STAR Protocols. 2 (4), 100827(2021).
  35. Kashyap, A., Singh, P. K., Silakari, O. Counting on fragment based drug design approach for drug discovery. Current Topics in Medicinal Chemistry. 18 (27), 2284-2293 (2018).
  36. Qi, W., Ding, D., Salvi, R. J. Cytotoxic effects of dimethyl sulphoxide (DMSO) on cochlear organotypic cultures. Hearing Research. 236 (1-2), 52-60 (2008).
  37. Nishimura, M., Ueda, N., Naito, S. Effects of dimethyl sulfoxide on the gene induction of cytochrome P450 isoforms, UGT-dependent glucuronosyl transferase isoforms, and ABCB1 in primary culture of human hepatocytes. Biological and Pharmaceutical Bulletin. 26 (7), 1052-1056 (2003).
  38. Solovev, I. A., Shaposhnikov, M. V., Moskalev, A. A. Chronobiotics KL001 and KS15 extend lifespan and modify circadian rhythms of Drosophila melanogaster. Clocks Sleep. 3 (3), 429-441 (2021).
  39. Cavas, M., Beltran, D., Navarro, J. F. Behavioural effects of dimethyl sulfoxide (DMSO): changes in sleep architecture in rats. Toxicology Letters. 157 (3), 221-232 (2005).
  40. Pfeiffenberger, C., Lear, B. C., Keegan, K. P., Allada, R. Locomotor activity level monitoring using the Drosophila Activity Monitoring (DAM) System. Cold Spring Harbor Protocols. 2010 (11), 5518(2010).
  41. Gilestro, G. F. Video tracking and analysis of sleep in Drosophila melanogaster. Nature Protocols. 7 (5), 995-1007 (2012).
  42. Branson, K., Robie, A. A., Bender, J., Perona, P., Dickinson, M. H. High-throughput ethomics in large groups of Drosophila. Nature Methods. 6 (6), 451-457 (2009).
  43. Kabra, M., Robie, A. A., Rivera-Alba, M., Branson, S., Branson, K. JAABA: interactive machine learning for automatic annotation of animal behavior. Nature Methods. 10 (1), 64-67 (2013).
  44. Donelson, N. C., et al. High-resolution positional tracking for long-term analysis of Drosophila sleep and locomotion using the "tracker" program. Plos One. 7 (5), e37250(2012).
  45. Cichewicz, K., Hirsh, J. ShinyR-DAM: a program analyzing Drosophila activity, sleep and circadian rhythms. Communications Biology. 1, 25(2018).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Yeniden Basımlar ve İzinler

Bu JoVE makalesinin metnini veya resimlerini yeniden kullanma izni talebi

Izin talebi

Daha Fazla Makale Keşfet

Y ksek VerimliK k Molek ll la TaramasYa a Ba l Uyku BozukluklarDrosophila MelanogasterUyku S resiPar al r nt lerYa lHastal klarDiyabetKardiyovask ler Hastal klarPsikolojik BozukluklarMevcut la larYan EtkilerBili sel BozuklukBa ml l kDaha G venli la larEtkili Uyku Bozuklu u la larUygun Maliyetli Tarama Y ntemiUyku D zenleme MekanizmasModel OrganizmaK z l tesi zleme CihazUyku ve Sirkadiyen Analizi MATLAB Program 2020 SCAMP2020D k Maliyetli Tarama Protokol

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Gizlilik

Kullanım Şartları

İlkeler

Bize Ulaşın

KÜTÜPHANEYE TAVSİYE ET

JoVE HABER BÜLTENLERİ

Araştırma

Eğitim

Yazarlar

Kütüphaneciler

JoVE Hakkında

Telif Hakkı © 2020 MyJove Corporation. Tüm hakları saklıdır