NINDS hibe NS49720 ve NS65819 ve NCI hibe CA97257

1. Tümör Hücre hazırlanması. Tümörler atimik farelerde subkütan büyümeleri olarak, ya da hücre kültürü yayılır gelen, insan beyin tümörü xenografts için hücreleri ya kaynaklı olabilir. Her iki hücre kaynaklarından yararlanma hücre implantasyonu için bir yöntem gösteri ile birlikte, aşağıda tartışılmıştır. Intrakranial bölmesi transferi için subkutan tümörler hücreleri hazırlamak için, doku, başlangıçta, bir hücre toplam süspansiyon 1 oluşturmak için tekrarlayan pipetleme bir neşter ve sonra mekanik kesintiye kıyılmış nerede eksize kanadını tümörler, kültür yemekler konur. Hücre agrega süspansiyon sonra intrakraniyal enjeksiyon için uygun tek bir hücre süspansiyonu üretmek için filtre 70 mcM naylon örgü geçirilir. Hücre süspansiyonu, 10 dakika boyunca 1000 4 dak ° C, ve nihai bir çalışma konsantrasyonu (aşağıya bakın) elde etmek için uygun bir serum ücretsiz medya hacmi hücre pelletini resuspending önce aspire süpernatant santrifüj edilir. Intrakranial implantasyonu için kurulan hücre hatları hazırlamak için, hücreler, sonra 2 Yukarıda belirtildiği gibi hücreler santrifüj ve resuspending neurosphere süspansiyon kültürleri toplayarak trypsinizing mono tabakaları tarafından hasat, veya. Enjekte edilen hücrelerin sayısı nöroanatomik yere enjeksiyon değişken bağımlı. Beyin sapı enjeksiyonları 3, 5 x 10 4 hücreler olarak en az 0.5 mcL enjekte ise supratentoryal enjeksiyonları için rutin serum ücretsiz medya (DMEM) 3 mcL 3-5 x 10 5 hücre enjekte. Önerilenden daha geniş hacimli enjekte çıkan ekzofitik (Şekil 1) ziyade, intrakranial tümör büyümesini, iğne yolu ile tümör hücresi reflü neden olabilir. Intrakranial enjeksiyon için örnek çekmek sonra, kalan hücre süspansiyonu bir enjeksiyon serisinin üyeleri arasında intrakranial tümör kurulması tamamlarken uygun konsantrasyonu elde etmek için sık sık karıştırılır içeriği ile buz yerleştirilir olmalıdır. 2. Tümör Hücre İmplantasyonu Not aşağıda açıklanan tüm prosedürleri California San Francisco Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından gözden geçirilmiş ve onaylanmıştır var. <ol><li> Cerrahi alanda,% 2 klorheksidin çözüm olarak, bir dezenfektan ile tüm yüzeylerde püskürtme tarafından hazırlanmış olmalıdır. Dezenfektan kullandıktan sonra, aşağıdaki malzemeleri, cerrahi alanda yer almalıdır: <ul><li> Fare vücut ısısını korumak için ısıtma yastığı </li><li> % 2 klorheksidin içeren% 3 hidrojen peroksit içeren tek ve bir, iki küçük Petri kutularına </li><li> Steril gazlı bez ve pamuklu </li><li> Steril tek kullanımlık neşter </li><li> Otoklavlı cerrahi zımba </li></ul></li><li> Enjekte anestezi için anestezi kullanılmalıdır; tipik bir ketamin ksilizin karışımı. </li><li> Bir fare uyuşturulduktan sonra, kafa derisi, klorheksidin çözüm batırılmış bir parça steril gazlı bez ile birkaç kez sürüntü hazırlanır. Göz merhemi işlem sırasında yeterli nemi korumak için uygulanmalıdır. Steril bir neşter kullanarak, uzun, yaklaşık 1cm parieto-oksipital kemik üzerinde sagital kesi tamamlamak. Maruz kafatası yüzeyi daha sonra% 3 hidrojen peroksit çözeltisi ile ıslatılmış pamuklu bir bez kullanılarak temizlenebilir. Bregma (video) Bu noktada anlaşılması gerekir. </li><li> Tümör hücrelerinin enjeksiyon için koordinatları tümör kurulması için istenen siteye göre değişir. Aşağıda, biz, birçok beyin tümörlü hastalarda tümör geliştirme deneyimi nöroanatomik yerde intraserebral tümör kurulması için 2 kullanın prosedür temsil eder. Beyin tümörü araştırma ilgi diğer yerlerde pons, beyin sapı tümörleri 3 anatomik modelleme için, meningeal tümörlerin yerini 4 modelleme için subdural enjeksiyonları içerir . Tümör hücresi enjeksiyonu önce, böylece tümör hücrelerinin (video) enjeksiyon için bir açılış yaratarak bregma ve koronal sütür 1 mm ön sağ 2 mm kafatası ponksiyon steril 25 gauge keskin iğne kullanın. Bu prosedür, fare ve sıçan (22 sıçanlar için iğne) her ikisi için de iyi çalışır. </li><li> Önce şırıngaya hücreleri çizim, parmağınızla dokunarak hücre süspansiyonu içeriğini karıştırın. Hava kabarcıklarını önlemek için dikkatli olmak, istenilen miktarda hücre süspansiyonu ile şırınga yükleyin. Şırınga dış ekstrakraniyal tümör kurulması ve büyüme (Şekil 1A) önlemeye yardımcı olacak herhangi bir yandaşı bir hücre, serbest dışını silmek için bir alkollü bez ile temizlenmesi gerekir. Uygun enjeksiyon derinliği elde olduğundan emin olmak için, P20 pipetteman ucu sivri ucundan 3mm kesmek için bir neşter kullanın. Şırınga ucu Bu bölümde üzerinde monte edilebilir ve enjeksiyon derinliğini sınırlamak için hareket edecek ve ayrıca sağlayacaktır tişırınga iğnesi p kafatasının alt 3mm. Kafatası dik şırınga yerleştirin ve önceden oluşturulmuş bir delik ve yavaş yavaş hücre süspansiyonu (3μL süspansiyon 1 dakikalık süre içinde enjekte edilmelidir) enjekte. Şırınga yerleştirilmesi uygun olmayan bir açı hücreleri ve sonraki spinal yayılması (Şekil 1B: Sağ) intraventriküler enjeksiyon sonucu enjeksiyon tamamladıktan sonra, bir dakika için iğne bırakın, sonra yavaş yavaş çekilmeye (video): Bu adımları azaltmaya yardımcı olacaktır tümör hücre reflü. </li><li> Intrakranial tümör hücre implantasyonu 5 yardımsız ya da serbest bir yaklaşım bir alternatif olarak, genellikle, daha tutarlı bir enjeksiyon konuma teşvik küçük bir hayvan stereotaktik çerçeve (şematik bakış panel F) kullanımı, ancak önemli miktarda pahasına işlem süresi. Serbest el yaklaşım kullanarak, deneyimlerimiz, küçük bir hayvan stereotaktik çerçeve ile maksimum enjeksiyon hızı yaklaşık 15 fareler / saat iken, iki cerrahi personel, fare / saat kadar 60 enjekte edebilir. Usul elverişsizlik farelerin büyük seri enjekte önemli bir husus olup, tümör hücreleri enjekte edilecek, buz üzerinde olduğu zaman azaltmaya yardımcı olur. </li><li> Kuru steril bir pamuklu çubukla kullanarak% 3 hidrojen peroksit ve kuru kafatası temizleyin. Deliğine steril kemik mum uygulayın. Forseps kullanarak, yakın kafatası ve elyaf üzerinde birlikte kafa derisi çizin. Optimum iyileşme için, kafa derisi kafa derisi birbirine karşı her iki tarafında alt karşı dermis (alt) ile zımbalanmış olmalıdır. Klorheksidin çözüm, daha sonra post-operatif ağrı subkutan enjeksiyon yoluyla uygulanan ve buprenorfin zımbalanmış kafa derisi kullanılarak temizlenebilir olmalıdır. </li><li> Onlar ayakta olur ve normal aktiviteye korumak kadar ameliyat sonrası tüm fareler izleyin. Genelde, iyileşme süresi yaklaşık 30 dakika. </li></ol> 3. Tümör Büyüme Biyoparlaklık İzleme <ol><li> Arka plan. Biyoparlaklık görüntüleme (BLI) luciferase oksidasyon bazlı [(-) -2 - d-(60-hidroksi-20-benzothiazolyl) thiazone-4-karboksilik asit oksijen ve adenozin trifosfat (ATP) varlığı. Bu reaksiyon çıkan emisyonu ile ışık fotonları kimyasal enerjiye dönüştüren bir enzim lucifeares, tarafından katalize edilmektedir. İnsan hücreleri luciferase substrat varlığında yayan ışık yeteneğine sadece lusiferaz ifade hücreleri ile (aşağıya bakın) lusiferaz ifade değiştirilebilir. Tümör büyümesi ve in vivo tedaviye yanıt çok hassas izlenmesine olanak lusiferaz modifiye tümör hücrelerinin lüminesans emisyonları tespit etmek için çok olumlu bir sinyal-gürültü oranı olduğu gibi luciferase ile tedavi barındıran hayvanlardan elde edilen minimal arka plan lüminesans, yoktur. Ayrıca, lusiferaz ve substrat, luciferase memeli hücreleri için toksik olmayan, ve ilgili değiştirilmemiş hücrelere lusiferaz akrabası ifade hücreleri arasındaki işlevsel farklılıklar gözlemledik. Luciferase kolayca böylece lusiferaz değiştirilmiş hücreler içeren her bölmesi görüntüleme sağlayan, hücre zarları ve sonra kan-beyin bariyerini intraperitoneal (ip) ya da intravenöz (iv) enjeksiyonu farelerde geçer. Lusiferaz değiştirilmiş hücreler yayılan ışık ve spektrum foton emisyon seviyesi, küçük bir araştırma, fare ve sıçan gibi hayvanlar, dokulara nüfuz için yeterli ve düşük ışık harici görüntüleme kameraları ile tespit edilebilir. Biyoparlaklık görüntüleme noninvaziv doğa, tümör büyümesi ve bireysel hayvan konularda tedaviye yanıt tekrarlanan izlenmesine olanak sağlar. </li><li> İmplante hücre kaynakları stably ateşböceği lusiferaz ifade için modifiye edilmelidir. Bu tür hücre kaynakları satın, ya da luciferase kurucu ifade etmek için inşa edilmiştir lentivirüs kullanarak bireysel laboratuvarlarda üretilebilir. Önemle art arda bireysel hayvan denekler için, tümör yükü değişikliklerin doğru göstergesi sağlamak için kantitatif lüminesans görüntüleme için gerekli olan in vivo, lusiferaz istikrarlı hücresel ifade sağlamak için, yerine plazmid daha lusiferaz kodlama lentivirüs, değiştirilmiş hücreler kullanmanızı öneririz Bir denemenin ders sırasında görüntülenmiş. </li><li> BLI izleme. Biz tümör hücresi enjeksiyonu takiben bir hafta başlayan, kantitatif biyoparlaklık görüntüleme (qBLI) 1x-2x haftalık yapmanızı öneririz. Bizim qBLI IVIS Lumina görüntüleme istasyonu (Kaliper Yaşam Bilimleri) kullanılarak yapılan ve sonuçları benzer veri IVIS Lumina, 150 IVIS, veya IVIS 200 görüntüleme istasyonu kullanılarak elde edilir. Görüntüleme için hazırlık, fareler, enjeksiyondan sonra 12 dakika görüntülü farelerde intraperitoneal enjeksiyon yoluyla Ketamin / Xylazine ve yönetilen luciferase (D-luciferase potasyum tuzu, 150 mg / kg, kaliper Yaşam Bilimleri) ile eş zamanlı anestezi. Luciferase, farmakokinetiği göstermektedir ki idari arasındaki süreluciferase belirlenmesi ve hücre lüminesans tration maksimum lüminesans emisyon ve algılama büyük hassasiyet elde etmek için, luciferase 10-15 dakika enjeksiyon arasında olmalıdır. 10-15 dakikalık bir zaman aralığı içinde, seçilen zaman uzunluğu görüntülü olan hayvanlar arasında sabit olarak muhafaza edilmelidir. BLI okuma luciferase ve elde enjeksiyonu arasındaki zaman uzunluğu tutarlılığı korumak için son derece önemlidir. Sinyal intrakranial alanı kapsayan ilgi Bölgeler Yaşam Görüntü yazılım (Şekil 2) kullanılarak tanımlanan ve toplam photons/s/sr/cm2 (cm kare başına steradian ortalama saniyede fotonlar) (video) kaydedilir. </li><li> Veri analizi. Bireysel hayvanlarda tümör büyümesi ve tedaviye yanıt izlenir Oysa, biz çok tümör yanıtı ile ilgili sonuçların istatistiksel kesinlik artırmak için en az 8 tedavi grupları tavsiye ya da tedaviye, bunların eksikliği. Lüminesans okumaları 6,7 okuma karşılık gelen maksimum tedavi öncesi lüminesans, terapötik rejiminin tamamlanmasından sonra sunulması qBLI sonuçları ile ilgili olarak, her bir fare s lüminesans bölünmesiyle normalize değerleri dönüştürülür sırasında elde edilen ve . Sağkalım analizi için Kaplan-Meier tahmincisi 8 kullanılır ve sağkalım eğrileri oluşturulur ve medyan sağkalım değerleri belirlendi. Sağkalım eğrileri arasındaki farklar log-rank testi 9 kullanılarak karşılaştırıldı. </li><li> Işlenmiş ve işlenmemiş tümör sonraki analiz için beyin Alma. Hayvan ötenazi üzerine farenin beyin hızlı (video) eksize ve ya tümör morfolojisi ve immünohistokimya sonraki analiz için formalin yerleştirilir ya da örnek dondurma OCT monte edilmelidir olmalıdır. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar Şekil 3A gösterilen örnekte, ardışık ortalama luminescence değerleri ilerleyen tümör büyümesini kadar intrakranial tümör hücresi enjeksiyonu alan fareler, intrakranial lüminesans monitörize edildi ve hangi zaman tedavisi 34 gün (gri ok başında başlatılan erlotinib 150 mg günlük uygulanan gerekli ötenazi kadar / kg). Her fare için Lüminesans değerleri, her bir fare için son tedavi öncesi görüntüleme değerine normalize sonraki lüminesans okumaları ile tedaviye başlanmadan anda 1 normalleştirilmiş bir değer olarak ayarlanır. Bir örnek olarak, lüminesans 6.0 &#39;artmıştı 34 günde 2.0 x 10 7 fotonlar / sn, son bir tedavi öncesi lüminesans okuma ile bir fare gün 38 x 10 7 fotonlar / sn, bir günde 38 normalize lüminesans değeri olurdu 3.0. Normalize biyoparlaklık ve kontrol ve tedavi grupları için ilgili standart hata ortalaması her görüntüleme zaman noktası için çizilir. Bu örnekte, ortalama normalize lüminesans önemli bir fark (gün 38) tedavi başlandıktan sonraki ilk görüntüleme zaman noktada, daha sonraki zaman noktalarında daha fazla artış göstererek ortalama grup lüminesans farkı ile açıktır. Çoğu durumda, tedavisi, qBLI tarafından belirtildiği gibi, anti-tümör aktivitesi örneğinde olduğu gibi burada (Şekil 3B) karşılık gelen bir hayatta kalma anlamlı bir fark (yani, p &lt;0.05) ile birlikte. Paneller 3C ve 3D gösterisi bitişik hematoksilen &amp; eozin ve fare beyin anti-EGFR boyanan kesitler kesit için formalin ve sonraki parafine gömme rezeke beyin yerleştirilmesini takiben, ötenazi zamanı elde etti. <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1 intrakranial enjeksiyon hataları işaretleri. A) ekzofitik (ekstrakraniyal) tümör büyümesi (kırmızı daire), çok büyük bir enjeksiyon hacmi, şırıngaya takılı kalan hücre süspansiyonu neden olabilir, ya da tümör hücreleri enjekte sonra çok hızlı bir şekilde şırınga çekilmesi. B) ventriküller içine tümör hücreleri enjekte, tümör hücrelerinin düzgün enjekte aksine, enjeksiyon yerinde (sol fare) lokalize kalır sinyal spinal tümör yayılması (sağ fare) neden olabilir. <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Tedaviye yanıt deneyi Şekil 2. Isı harita görüntüsü temsili kontrol fareler için biyoparlaklık yoğunluğu temsilleri (solda) ve tedavi grupları (sağda). The Living Image yazılımı, ilgi alanları tanımlamak için (kırmızı daireler), ya da araç operatörleri ilgi bölgelerde elle tanımlayabilirsiniz. Görüntüleri için bu rakam inşaat gibi kullanmak için, biz de cihazı kullanan operatör, hayvan konular arasındaki biyoparlaklık farkı ölçüde görsel temsilini sağlamak için, aynı biyoparlaklık ısı haritası aralığı (rakam üst kısmı) kullanılarak ısı haritası görüntüleri gösterir öneririz. <img src="/files/ftp_upload/1986/1986fig3.jpg" alt = &quot;Şekil 3&quot; /&gt; Şekil 3 Biyoparlaklık, yaşam kalitesi ve terapötik yanıt belirgin olduğu bir deney tümör dokusu analizi. A) standart hata ile kontrol ve tedavi grubundaki fareler için ortalama biyoparlaklık okumaları, Arsa, her görüntü noktası için belirtilen. B) aynı fareler için Survival arsa; p-değeri, log-rank testi 7 kullanımı yoluyla belirlenir . C) fare beyin tümörü olan H &amp; E lekeli bölümü. D) EGFR lekeli bölümü. Tümör baskılayıcı protein PTEN için negatif boyanma gösteren panel E sırasıyla paneller C ve D, E ve F) belirtilen alanların büyütmelerde.

<ol>
	<li>Giannini, C., Sarkaria, J. N., Saito, A., Uhm, J. H., Galanis, E., Carlson, B. L., Schroeder, M. A., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Patient+Tumor+EGFR+and+PDGFRA+Gene+Amplifications+Retained+in+an+Invasive+Intracranial+Xenograft+Model+of+GBM.">Patient Tumor EGFR and PDGFRA Gene Amplifications Retained in an Invasive Intracranial Xenograft Model of GBM.</a> Neuro-Oncol. 7, 164-176 (2005).</li><li>Ozawa, T., Wang, J., Hu, L. J., Bollen, A. W., Lamborn, K. R., Deen, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Growth+of+human+glioblastomas+as+xenografts+in+the+brains+of+athymic+rats.">Growth of human glioblastomas as xenografts in the brains of athymic rats.</a> In Vivo. 1, 55-60 (2002).</li><li>Hashizume, R., Ozawa, T., Dinca, E. B., Banerjee, A., Prados, M. D., James, C. D., Gupta, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+human+brainstem+glioma+xenograft+model+enabled+for+bioluminescence+imaging.">A human brainstem glioma xenograft model enabled for bioluminescence imaging.</a> J Neurooncol. , (2009).</li><li>Baia, G. S., Dinca, E. B., Ozawa, T., Kimura, E. T., McDermott, M. W., James, C. D., VandenBerg, S. R., Lal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+orthotopic+skull+base+model+of+malignant+meningioma.">An orthotopic skull base model of malignant meningioma.</a> Brain Pathol. 2, 172-179 (2007).</li><li>Ozawa, T., James, C. D., Van Meir, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+Brain+Tumor+Cell+and+Tumor+Tissue+Transplantation+Models.">Human Brain Tumor Cell and Tumor Tissue Transplantation Models.</a> CNS Cancer: Models, Markers, Prognostic Factors, Targets, and Therapeutic Approaches. , 147-162 (2009).</li><li>Sarkaria, J. N., Yang, L., Grogan, P. T., Kitange, G. J., Carlson, B. L., Schroeder, M. A., Galanis, E., Giannini, C., Wu, W., Dinca, E. B., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Molecular+Characteristics+Correlated+with+Glioblastoma+Sensitivity+to+EGFR+Kinase+Inhibition+Through+Use+of+an+Intracranial+Xenograft+Test+Panel.">Identification of Molecular Characteristics Correlated with Glioblastoma Sensitivity to EGFR Kinase Inhibition Through Use of an Intracranial Xenograft Test Panel.</a> Mol. Cancer Ther. 6, 1167-1174 (2007).</li><li>Dinca, E. B., Sarkaria, J. N., Schroeder, M. A., Carlson, B. L., Voicu, R., Gupta, N., Berger, M. S., James, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioluminescence+Monitoring+of+Intracranial+Glioblastoma+Xenograft+Response+to+Primary+and+Salvage+Temozolomide+Therapy.">Bioluminescence Monitoring of Intracranial Glioblastoma Xenograft Response to Primary and Salvage Temozolomide Therapy.</a> J. Neurosurg. 107, 610-616 (2007).</li><li>Kaplan, E. L., Meier, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Non-parametric+estimation+from+incomplete+observations.">Non-parametric estimation from incomplete observations.</a> J. Am. Stat. Assoc. 53, 457-481 (1958).</li><li>Peto, R., Peto, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Asymptotically+efficient+rank+invariant+procedures.">Asymptotically efficient rank invariant procedures.</a> J. R. Stat. Soc. Ser. A. Stat. Soc. 135, 185-207 (1972).</li><li>Camphausen, K., Purow, B., Sproull, M., Scott, T., Ozawa, T., Deen, D. F., Tofilon, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+in+vivo+growth+on+human+glioma+cell+line+gene+expression:+convergent+profiles+under+orthotopic+conditions.">Influence of in vivo growth on human glioma cell line gene expression: convergent profiles under orthotopic conditions.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A.. 102, 8287-8292 (2005).</li></ol>

Ortotopik (intrakranial) beyin tümörü xenograft kurulmasını, terapötik yanıt için test modelleme CNS kanseri için 10 uygun bir mikroçevresinin sağlar . Modelleme Bu tür ek deneysel bir ajan, hastalarda klinik deneme değerlendirme için gelişmiş gerekip gerekmediğini belirlemek için kritik öneme sahip olan beyin ve beyin tümörü, tedavi ile ilgili bilgi sağlar. Kaliperler tarafından gibi, intrakranial xenograft tümör miktarını doğrudan ölçülebilir değil çünkü, intrakranial tümör büyümesi ve tedaviye yanıt boyuna izleme deneyimi gösteren biyoparlaklık görüntüleme ile birincil hedefi deneyler için en pratik yaklaşım olarak, non-invaziv görüntüleme gerektirir tedaviye tümör yanıtı ölçüde değerlendirmektedir. Biyoparlaklık görüntüleme sonuçları hayvan konu sağkalım analizi ile birlikte, iki veri setleri, deneysel tedavi etkinliğini değerlendiren için güçlü ve güvenilir bir yaklaşım sağlamak. Son olarak, intrakranyal beyin tümörü xenografts morfolojik ve moleküler tedavi etkilerini değerlendirmek için ötenazi hayvan konular hasat derece önemli olduğunu ve bunun için bir sonraki analiz için rezeke beyin korunması, ötenazi anda tüm beyin rezeksiyonu tercih. Yukarıdaki beyin tümörü araştırma özel sunum yapılmıştır Oysa, kavramları kesinlikle kemirgenlerde ortotopik modelleme için uygun olan diğer insan kanserlerin generalizeable vardır.

<table border="1">
	<thead>
		<tr>
			<th>Material Name</th>
			<th>Type</th>
			<th>Company</th>
			<th>Catalogue Number</th>
			<th>Comment</th>
		</tr>
	</thead>
	<tbody>
		<tr>
			<td>Disposable Scapels</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Feather</td>
			<td>2975</td>
			<td>No.21</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Heating Pad</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Dunlap</td>
			<td>HP950</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Gauze</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>22028563</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cotton Swabs</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>23-400-100</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>2% Chlorhexidine</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>NC9756995</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>3% Hydrogen Peroxide</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>H312P-4</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25g Needle</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Becton Dickinson</td>
			<td>305122</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10ul Hamilton Sharp Microsyringe</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Hamilton</td>
			<td>20734</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Skin Stapler and Staples</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Stoelting</td>
			<td>59020</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Stereotaxic Frame</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Stoeling</td>
			<td>51725</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Living Image Software</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Caliper Life Science</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>D-luciferin</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Gold Biotechnology</td>
			<td>LUCK-1G</td>
			<td>Potassium Salt</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Xenogen Lumina</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>Caliper Life Science</td>
			<td>&nbsp;</td>
			<td>&nbsp;</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

establishing intracranial brain tumor xenografts with subsequent analysis of tumor growth and response to therapy using bioluminescence imaging

Nöro-onkoloji araştırma, insan beyin tümörü hücreleri kullanarak Nakli modelleri, uzun yıllar boyunca önemli bir işlevi hizmet etmiş. Geçmişte, insan tümör xenograft kurulması için en sık kullanılan prosedür kültür şişeler hücreleri toplanması, toplanan hücreler, immün sistemi baskılanmış farelerde subkütan enjeksiyon yoluyla takip oluşuyordu. Bu yaklaşım hala birçok laboratuvarlarında sık kullanılması görüyor, oysa, beyin tümörleri örneği, tümör hücresi enjeksiyonu uygun nöroanatomik yapılar gerektirir, kadavradan xenograft kurulması yönünde vurgu son on yılda önemli bir kayma, olmuştur. Intrakranial xenograft kurulması kaliperler kullanımı, ortotopik beyin tümörü xenograft modellere doğru vurgu kayması ile doğrudan ölçüm ile tümör büyümesi gibi izlemenize olanak attığından ana hayvanlarda tümör yükü değerlendirmek için non-invaziv görüntüleme kullanımı ihtiyacını doğurmuştur. Mevcut görüntüleme yöntemleri, biyoparlaklık izleme, genellikle en iyi kombinasyonu duyarlılık, yararlılık ve maliyet teklif olarak kabul edilir. Burada, ortotopik beyin tümörü kurulması için, deneysel tedaviler test ederken, tümör büyümesi ve tedaviye yanıtın izlenmesi için prosedürler gösterecektir.

Watch this Scientific Journal Video about Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging at JoVE.com

Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging

Lusiferaz modifiye insan beyin tümörü xenografts atimik farelerde tümör büyümesi ve biyoparlaklık görüntüleme kullanarak tedaviye yanıt daha sonraki izleme ile intrakranyal kurulmuş olabilir. Sağkalım analizi ile birlikte, biyoparlaklık izleme, beyin tümörlerinin tedavisi için düşünülen tedavilerin klinik öncesi test için önemli bir araştırma aracı.

Biyoparlaklık Görüntüleme kullanarak Tümör Büyüme ve Terapi yanıt sonraki Analizi ile İntrakranial Beyin Tümörü Xenografts kurulması

Transplantation models using human brain tumor cells have served an essential function in neuro-oncology research for many years. In the past, the most ...

establishing-intracranial-brain-tumor-xenografts-with-subsequent

Research

JoVE Journal

Neuroscience

39.0K Görüntüleme.  University of California, San Francisco - UCSF. Lusiferaz modifiye insan beyin tümörü xenografts atimik farelerde tümör büyümesi ve biyoparlaklık görüntüleme kullanarak tedaviye yanıt daha sonraki izleme ile intrakranyal kurulmuş olabilir. Sağkalım analizi ile birlikte, biyoparlaklık izleme, beyin tümörlerinin tedavisi için düşünülen tedavilerin klinik öncesi test için önemli bir araştırma aracı.

Video: Establishing Intracranial Brain Tumor Xenografts With Subsequent Analysis of Tumor Growth and Response to Therapy using Bioluminescence Imaging

Brain Imaging Investigation of the Impairing Effect of Emotion on Cognition

Emotions can impact cognition by exerting both enhancing (e.g., better memory for emotional events) and impairing (e.g., increased emotional distractibility) effects (reviewed in 1). Complementing our recent protocol 2 describing a method that allows investigation of the neural correlates of the memory-enhancing effect of emotion (see also 1, 3-5), here we present a protocol that allows investigation of the neural correlates of the detrimental impact of emotion on cognition. The main feature of this method is that it allows identification of reciprocal modulations between activity in a ventral neural system, involved in 'hot' emotion processing (HotEmo system), and a dorsal system, involved in higher-level 'cold' cognitive/executive processing (ColdEx system), which are linked to cognitive performance and to individual variations in behavior (reviewed in 1). Since its initial introduction 6, this design has proven particularly versatile and influential in the elucidation of various aspects concerning the neural correlates of the detrimental impact of emotional distraction on cognition, with a focus on working memory (WM), and of coping with such distraction 7,11, in both healthy 8-11 and clinical participants 12-14.

We present a protocol that allows investigation of the neural mechanisms mediating the detrimental impact of emotion on cognition, using functional magnetic resonance imaging. This protocol can be used with both healthy and clinical participants.

Biliş üzerine Duygu bozarak Etkisi Beyin Görüntüleme İncelenmesi

Emotions can impact cognition by exerting both enhancing (e.g., better memory for emotional events) and impairing (e.g., increased emotional ...

Nörobilim

Enabling High Grayscale Resolution Displays and Accurate Response Time Measurements on Conventional Computers

Display systems based on conventional computer graphics cards are capable of generating images with 8-bit gray level resolution. However, most experiments in vision research require displays with more than 12 bits of luminance resolution. Several solutions are available. Bit++ 1 and DataPixx 2 use the Digital Visual Interface (DVI) output from graphics cards and high resolution (14 or 16-bit) digital-to-analog converters to drive analog display devices. The VideoSwitcher 3 described here combines analog video signals from the red and blue channels of graphics cards with different weights using a passive resister network 4 and an active circuit to deliver identical video signals to the three channels of color monitors. The method provides an inexpensive way to enable high-resolution monochromatic displays using conventional graphics cards and analog monitors. It can also provide trigger signals that can be used to mark stimulus onsets, making it easy to synchronize visual displays with physiological recordings or response time measurements.
Although computer keyboards and mice are frequently used in measuring response times (RT), the accuracy of these measurements is quite low. The RTbox is a specialized hardware and software solution for accurate RT measurements. Connected to the host computer through a USB connection, the driver of the RTbox is compatible with all conventional operating systems. It uses a microprocessor and high-resolution clock to record the identities and timing of button events, which are buffered until the host computer retrieves them. The recorded button events are not affected by potential timing uncertainties or biases associated with data transmission and processing in the host computer. The asynchronous storage greatly simplifies the design of user programs. Several methods are available to synchronize the clocks of the RTbox and the host computer. The RTbox can also receive external triggers and be used to measure RT with respect to external events. 
Both VideoSwitcher and RTbox are available for users to purchase. The relevant information and many demonstration programs can be found at <a href="http://lobes.usc.edu/">http://lobes.usc.edu/</a>.

Conventional computer hardware can not generate visual stimuli with sufficiently high grayscale resolution and measure response times with sufficient accuracy. We describe how to use the VideoSwitcher to produce high-resolution monochromatic displays, and the RTbox to measure response times with high accuracy on conventional computer hardware.

Etkinleştirilmesi Yüksek Çözünürlük görüntüler ve Konvansiyonel Bilgisayarlara Doğru Tepki Süresi Ölçümleri Grayscale

Display systems based on conventional computer graphics cards are capable of generating images with 8-bit gray level resolution. However, most experiments ...

Isolation and Expansion of Human Glioblastoma Multiforme Tumor Cells Using the Neurosphere Assay

Stem-like cells have been isolated in tumors such as breast, lung, colon, prostate and brain. A critical issue in all these tumors, especially in glioblastoma mutliforme (GBM), is to identify and isolate tumor initiating cell population(s) to investigate their role in tumor formation, progression, and recurrence. Understanding tumor initiating cell populations will provide clues to finding effective therapeutic approaches for these tumors. The neurosphere assay (NSA) due to its simplicity and reproducibility has been used as the method of choice for isolation and propagation of many of this tumor cells. This protocol demonstrates the neurosphere culture method to isolate and expand stem-like cells in surgically resected human GBM tumor tissue. The procedures include an initial chemical digestion and mechanical dissociation of tumor tissue, and subsequently plating the resulting single cell suspension in NSA culture. After 7-10 days, primary neurospheres of 150-200 &mu;m in diameter can be observed and are ready for further passaging and expansion.

This video protocol demonstrates the isolation and expansion of stem like cells from surgically resected human glioblastoma mutliforme (GBM) tumor tissue using the neurosphere assay culture method.

Neurosphere Testi İnsan Glioblastoma Multiforme Tümör Hücreleri İzolasyon ve Genişleme

Stem-like cells have been isolated in tumors such as breast, lung, colon, prostate and brain. A critical issue in all these tumors, especially in ...

Co-analysis of Brain Structure and Function using fMRI and Diffusion-weighted Imaging

The study of complex computational systems is facilitated by network maps, such as circuit diagrams. Such mapping is particularly informative when studying the brain, as the functional role that a brain area fulfills may be largely defined by its connections to other brain areas. In this report, we describe a novel, non-invasive approach for relating brain structure and function using magnetic resonance imaging (MRI). This approach, a combination of structural imaging of long-range fiber connections and functional imaging data, is illustrated in two distinct cognitive domains, visual attention and face perception. Structural imaging is performed with diffusion-weighted imaging (DWI) and fiber tractography, which track the diffusion of water molecules along white-matter fiber tracts in the brain (Figure 1). By visualizing these fiber tracts, we are able to investigate the long-range connective architecture of the brain. The results compare favorably with one of the most widely-used techniques in DWI, diffusion tensor imaging (DTI). DTI is unable to resolve complex configurations of fiber tracts, limiting its utility for constructing detailed, anatomically-informed models of brain function. In contrast, our analyses reproduce known neuroanatomy with precision and accuracy. This advantage is partly due to data acquisition procedures: while many DTI protocols measure diffusion in a small number of directions (e.g., 6 or 12), we employ a diffusion spectrum imaging (DSI)1, 2 protocol which assesses diffusion in 257 directions and at a range of magnetic gradient strengths. Moreover, DSI data allow us to use more sophisticated methods for reconstructing acquired data. In two experiments (visual attention and face perception), tractography reveals that co-active areas of the human brain are anatomically connected, supporting extant hypotheses that they form functional networks. DWI allows us to create a "circuit diagram" and reproduce it on an individual-subject basis, for the purpose of monitoring task-relevant brain activity in networks of interest.

We describe a novel approach for simultaneous analysis of brain function and structure using magnetic resonance imaging (MRI). We assess brain structure with high-resolution diffusion-weighted imaging and white-matter fiber tractography. Unlike standard structural MRI, these techniques allow us to directly relate anatomical connectivity to functional properties of brain networks.

FMRI ve difüzyon ağırlıklı görüntüleme ile Beyin Yapısı ve Fonksiyonu Co-analizi

The study of complex computational systems is facilitated by network maps, such as circuit diagrams. Such mapping is particularly informative when ...

Lineage-reprogramming of Pericyte-derived Cells of the Adult Human Brain into Induced Neurons

Direct lineage-reprogramming of non-neuronal cells into induced neurons (iNs) may provide insights into the molecular mechanisms underlying neurogenesis and enable new strategies for in vitro modeling or repairing the diseased brain. Identifying brain-resident non-neuronal cell types amenable to direct conversion into iNs might allow for launching such an approach in situ, i.e. within the damaged brain tissue. Here we describe a protocol developed in the attempt of identifying cells derived from the adult human brain that fulfill this premise. This protocol involves: (1) the culturing of human cells from the cerebral cortex obtained from adult human brain biopsies; (2) the in vitro expansion (approximately requiring 2-4 weeks) and characterization of the culture by immunocytochemistry and flow cytometry; (3) the enrichment by fluorescence-activated cell sorting (FACS) using anti-PDGF receptor-&#946; and anti-CD146 antibodies; (4) the retrovirus-mediated transduction with the neurogenic transcription factors sox2 and ascl1; (5) and finally the characterization of the resultant pericyte-derived induced neurons (PdiNs) by immunocytochemistry (14 days to 8 weeks following retroviral transduction). At this stage, iNs can be probed for their electrical properties by patch-clamp recording. This protocol provides a highly reproducible procedure for the in vitro lineage conversion of brain-resident pericytes into functional human iNs.

Targeting brain-resident cells for direct lineage-reprogramming offers new perspectives for brain repair. Here we describe a protocol of how to prepare cultures enriched for brain-resident pericytes from the adult human cerebral cortex and convert these into induced neurons by retrovirus-mediated expression of the transcription factors Sox2 and Ascl1.

Kaynaklı Nöronlar içine Yetişkin İnsan Beyninin perisit türetilmiş Hücreler Lineage yeniden programlama

Direct lineage-reprogramming of non-neuronal cells into induced neurons (iNs) may provide insights into the molecular mechanisms underlying neurogenesis ...

Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons

Susceptibility to neuron cell death associated to neurodegeneration and ischemia are exceedingly increased in the aged brain but mechanisms responsible are badly known. Excitotoxicity, a process believed to contribute to neuron damage induced by both insults, is mediated by activation of glutamate receptors that promotes Ca2+ influx and mitochondrial Ca2+ overload. A substantial change in intracellular Ca2+ homeostasis or remodeling of intracellular Ca2+ homeostasis may favor neuron damage in old neurons. For investigating Ca2+ remodeling in aging we have used live cell imaging in long-term cultures of rat hippocampal neurons that resemble in some aspects aged neurons in vivo. For this end, hippocampal cells are, in first place, freshly dispersed from new born rat hippocampi and plated on poli-D-lysine coated, glass coverslips. Then cultures are kept in controlled media for several days or several weeks for investigating young and old neurons, respectively. Second, cultured neurons are loaded with fura2 and subjected to measurements of cytosolic Ca2+ concentration using digital fluorescence ratio imaging. Third, cultured neurons are transfected with plasmids expressing a tandem of low-affinity aequorin and GFP targeted to mitochondria. After 24 hr, aequorin inside cells is reconstituted with coelenterazine and neurons are subjected to bioluminescence imaging for monitoring of mitochondrial Ca2+ concentration. This three-step procedure allows the monitoring of cytosolic and mitochondrial Ca2+ responses to relevant stimuli as for example the glutamate receptor agonist NMDA and compare whether these and other responses are influenced by aging. This procedure may yield new insights as to how aging influence cytosolic and mitochondrial Ca2+ responses to selected stimuli as well as the testing of selected drugs aimed at preventing neuron cell death in age-related diseases.

Fluorescence and Bioluminescence Imaging of Subcellular Ca2+ in Aged Hippocampal Neurons

Intracellular Ca2+ remodeling in aging may contribute to excitotoxicity and neuron damage, processes mediated by Ca2+ overload. We aimed at investigating Ca2+ remodeling in the aging brain using fluorescence and bioluminescence imaging of cytosolic and mitochondrial Ca2+ in long-term cultures of rat hippocampal neurons, a model of neuronal aging.

Subselüler Ca Floresans ve Biyoparlaklık Görüntüleme<sup&gt; 2+</sup&gt; Yaşlı Hipokampal Nöronlar

Susceptibility to neuron cell death associated to neurodegeneration and ischemia are exceedingly increased in the aged brain but mechanisms responsible ...

Preparation of Acute Brain Slices Using an Optimized N-Methyl-D-glucamine Protective Recovery Method

This protocol is a practical guide to the N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. Numerous recent studies have validated the utility of this method for enhancing neuronal preservation and overall brain slice viability. The implementation of this technique by early adopters has facilitated detailed investigations into brain function using diverse experimental applications and spanning a wide range of animal ages, brain regions, and cell types. Steps are outlined for carrying out the protective recovery brain slice technique using an optimized NMDG artificial cerebrospinal fluid (aCSF) media formulation and enhanced procedure to reliably obtain healthy brain slices for patch clamp electrophysiology. With this updated approach, a substantial improvement is observed in the speed and reliability of gigaohm seal formation during targeted patch clamp recording experiments while maintaining excellent neuronal preservation, thereby facilitating challenging experimental applications. Representative results are provided from multi-neuron patch clamp recording experiments to assay synaptic connectivity in neocortical brain slices prepared from young adult transgenic mice and mature adult human neurosurgical specimens. Furthermore, the optimized NMDG protective recovery method of brain slicing is compatible with both juvenile and adult animals, thus resolving a limitation of the original methodology. In summary, a single media formulation and brain slicing procedure can be implemented across various species and ages to achieve excellent viability and tissue preservation.

Preparation of Acute Brain Slices Using an Optimized N-Methyl-D-glucamine Protective Recovery Method

This protocol demonstrates the implementation of an optimized N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. A single media formulation is used to reliably obtain healthy brain slices from animals of any age and for diverse experimental applications.

En iyi duruma getirilmiş bir Nkullanarak akut beyin dilimleri hazırlanması-metil-D-glucamine koruyucu kurtarma yöntemi

This protocol is a practical guide to the N-methyl-D-glucamine (NMDG) protective recovery method of brain slice preparation. Numerous recent studies have ...

Peering at Brain Polysomes with Atomic Force Microscopy

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, formed by ribosomes, mRNAs, several proteins and non-coding RNAs, represent integrated platforms where translational controls take place. However, while the ribosome has been widely studied, the organization of polysomes is still lacking comprehensive understanding. Thus much effort is required in order to elucidate polysome organization and any novel mechanism of translational control that may be embedded. Atomic force microscopy (AFM) is a type of scanning probe microscopy that allows the acquisition of 3D images at nanoscale resolution. Compared to electron microscopy (EM) techniques, one of the main advantages of AFM is that it can acquire thousands of images both in air and in solution, enabling the sample to be maintained under near physiological conditions without any need for staining and fixing procedures. Here, a detailed protocol for the accurate purification of polysomes from mouse brain and their deposition on mica substrates is described. This protocol enables polysome imaging in air and liquid with AFM and their reconstruction as three-dimensional objects. Complementary to cryo-electron microscopy (cryo-EM), the proposed method can be conveniently used for systematically analyzing polysomes and studying their organization.

While ribosome structure has been extensively characterized, the organization of polysomes is still understudied. To overcome this lack of knowledge, we present here a detailed preparation protocol for accurate imaging of mammalian polysomes by atomic force microscopy (AFM) in air and liquid.

Atomik Kuvvet Mikroskobu ile Beyin Polisomlar de Peering

The translational machinery, i.e., the polysome or polyribosome, is one of the biggest and most complex cytoplasmic machineries in cells. Polysomes, ...

Kinematic Analysis Using 3D Motion Capture of Drinking Task in People With and Without Upper-extremity Impairments

Kinematic analysis is a powerful method for objective assessment of upper extremity movements in a three-dimensional (3D) space. Three-dimensional motion capture with an optoelectronic camera system is considered as golden standard for kinematic movement analysis and is increasingly used as outcome measure to evaluate the movement performance and quality after an injury or disease involving upper extremity movements. This article describes a standardized protocol for kinematic analysis of drinking task applied in individuals with upper extremity impairments after stroke. The drinking task incorporates reaching, grasping and lifting a cup from a table to take a drink, placing the cup back, and moving the hand back to the edge of the table. The sitting position is standardized to the individual&#39;s body size and the task is performed in a comfortable self-paced speed and compensatory movements are not constrained. The intention is to keep the task natural and close to a real-life situation to improve the ecological validity of the protocol. A 5-camera motion capture system is used to gather 3D coordinate positions from 9 retroreflective markers positioned on anatomical landmarks of the arm, trunk, and face. A simple single marker placement is used to ensure the feasibility of the protocol in clinical settings. Custom-made Matlab software provides automated and fast analyses of movement data. Temporal kinematics of movement time, velocity, peak velocity, time of peak velocity, and smoothness (number of movement units) along with spatial angular kinematics of shoulder and elbow joint as well as trunk movements are calculated. The drinking task is a valid assessment for individuals with moderate and mild upper extremity impairment. The construct, discriminative and concurrent validity along with responsiveness (sensitivity to change) of the kinematic variables obtained from the drinking task have been established.

This protocol describes an objective method to evaluate the movement performance and sensorimotor function of the upper extremity applied to individuals with stroke and healthy controls. A standardized test procedure, kinematic analysis and outcome variables for three-dimensional motion capture of drinking task are provided.

Kinematik analiz 3D hareket yakalama kişilerde içme görev ile ve üst ekstremite bozuklukları olmadan

Kinematic analysis is a powerful method for objective assessment of upper extremity movements in a three-dimensional (3D) space. Three-dimensional motion ...

Analyzing Neural Activity and Connectivity Using Intracranial EEG Data with SPM Software

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive neuroscience. Intracranial electroencephalography (EEG) can directly record electrical neural activity and has the unique potential to accomplish this goal. Traditionally, averaging analysis has been applied to analyze intracranial EEG data; however, several new techniques are available for depicting neural activity and intra- and inter-regional connectivity. Here, we introduce two analytical protocols we recently applied to analyze intracranial EEG data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency SPM analysis for neural activity and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity. We report our analysis of intracranial EEG data during the observation of faces as representative results. The results revealed that the inferior occipital gyrus (IOG) showed gamma-band activity at very early stages (110 ms) in response to faces, and both the IOG and amygdala showed rapid intra- and inter-regional connectivity using various types of oscillations. These analytical protocols have the potential to identify the neural mechanisms underlying cognitive functions with high spatial and temporal profiles.

We present two analytical protocols that can be used to analyze intracranial electroencephalography data using the Statistical Parametric Mapping (SPM) software: time-frequency statistical parametric mapping analysis for neural activity, and dynamic causal modeling of induced responses for intra- and inter-regional connectivity.

Sinirsel aktivite ve bağlanırlığı İntrakraniyal EEG veri SPM yazılım programıyla analiz

Measuring neural activity and connectivity associated with cognitive functions at high spatial and temporal resolutions is an important goal in cognitive ...