Bu çalışma Rehabilitasyon Araştırma Eğitim Fiziksel ve Mesleki Terapistler Kapsamlı Fırsatlar (K12 HD055931), Fizik Tedavi ve Pittsburgh Claude D. Biber Yaşlı Amerikalılar Bağımsızlık Merkezi Vakfı (P30 AG024827 Sağlık (NIH) K12 Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından finanse edildi ).

1. Elektrot Hazırlanması <ul><li> Vektör devre kartı bir 1 cm x 1 cm bölümü kesin. </li><li> Dışında yaklaşık 3.5 mm aralıklı iğneli, bir başkan yardımcısı tutuş kullanarak 2 wirewrap pimleri stabilize. Pim çatallı uçları yukarı dönük olmalıdır. </li><li> Kargaburnu pense kullanarak, yaklaşık yarım uzunluğu boyunca 90 ° açıyla iğne wirewrap bükün. </li><li> Tel izolasyon sıyırma tarafından konektörler, kurşun bağlantısı yaklaşık 7 cm&#39;lik bakır teller Açığa. </li><li> Bir wirewrap pimlerin çatallı ucuna lehim bakır tel biri. Diğer wirewrap pin için lehim işlemi tekrarlayın. </li><li> Izolasyon ve istikrarı sağlamak üzere bakır kablo ve altın iğneli arasındaki lehimli bağlantı az şirink tüplerde çekin. Lehimleme ucu kullanarak tüp ısıtın. </li><li> Breadboard devre komşu açıklıklara wirewrap pinlerinin unsoldered ipuçları yerleştirin. </li><li> Wirewrap pinleri birbirine paralel ve st olduğundan emin olunyönetim kurulu ile yerleştirildiğinde ipuçları aynı mesafede bulunan bu tür breadboard üzerinden ick. </li><li> Net epoksi içinde iğne lehimli biter Embed. Epoksi yaklaşık 10 dakika boyunca kurumaya bırakınız, veya tamamen kuru kadar. </li><li> Pimleri ve vektör devre tamamen kurşun teller için yapısal bütünlüğünü ve gerilimin azaltılmasını sağlamak amacıyla gömülü kadar epoksi uygulaması tekrarlayın. </li><li> Altın iğne uçları ortaya çıkarmak için metal bir dosya kullanarak epoksi aşağı Kum. </li><li> Kablolarının düzgün süreklilik var, iki kahramanın elektriksel kısa devre olmadığından emin olun ve bir multimetre kullanın </li><li> Elektrot kadın 2 yönlü telli bağlayıcı (Pomona kablonuzla) için NMES cihazdan açar takın. </li></ul> 2. Hayvan Hazırlık <ul><li> Hayvanlar% 100 O 2 gaz% 2 isofluorane (Abbott Laboratories, North Chicago, IL) ile inhalasyon yoluyla anestezi uygulanmıştır. Hayvan t boyunca anestezi kalmalıdırO oturumda NMES. </li><li> Başlamadan önce NMES protokolü hayvan tam anestezi olmasını sağlamak için bir ayak tutam gerçekleştirin. </li><li> Hayvan düzenli anestezi düzeyi yeterlidir sağlamak için uyarılara yanıt için kontrol edilmelidir. Gerektiğinde anestezi ayarlanması gerekmektedir. Uyarılmış bacak, solunum derinliği değişiklikler ve mukoza renk dışındaki Hareketi tüm anestezi derinliği izlemek için düzenli olarak değerlendirilmelidir. </li><li> Lateral pozisyonda hayvan yerleştirin. </li><li> İşlem sırasında kornea kurutma önlemek üzere gözlere oftalmik yağlayıcı. </li><li> Tedavi edilecek bacak alanı Tıraş ve alkol ile silin. </li><li> Su ile yıkayın, daha sonra% 3 çamaşır suyu ile elektrot silin. </li><li> Elektrot uygulanacak sitesi üzerinden jel iletken bir katman uygulayın. Elektrot ve deri arasında akımı sağlamak için NMES protokolü boyunca gerektiği gibi yeniden uygulayın. </li><li> Bir ısı lambası or dolaşan su örtüsü, normal çekirdek vücut aralıkları korumak için kullanılmalıdır. </li><li> Not: Tüm prosedürleri incelenmiş ve onaylanmış Pittsburgh Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından temin PHS ve AAALAC Int yapılmıştır. akredite programı ve tesisleri. </li></ul> 3. Uyarım <ul><li> Elektrot yerleşimi: <ul><li> Tibialis anterior ve ekstansör digitorum longus kas dahil olmak üzere ön kompartman kasları, uyarılması için, doğrudan peroneal sinirin distal dalı kapalı hayvanın derin fibula sinir üzerinde yüzey elektrodu yerleştirin ve sadece ön bulunur fibula başında. </li><li> Stimülasyon tam ayak bileği dorsifleksiyon ve rakamlardan tam ekstansiyon elicits zaman ön kompartman kaslarının uyarılması için, elektrot yerleştirme doğrulanır. Diğer taraftan, dorsifleksiyon, basamaklı bir uzantısı yokluğunda göstermektedir ki, sadece ön tibialisrior kas uyarılmış edilmektedir. Bu tür bir hedef, kontraktil tepkisi çalışma tasarımına bağlı olarak, arzu edilebilir. </li><li> Başlangıç ​​sırasında oluşan bir serbest hareket eden, konsantrik fazı, ~ 0.5 saniye: kas kasılması stimülasyon 2 evreye ayrılır. Bu ilk aşamasında, pençe maksimal dorsifleksiyon ve basamaklı uzantısı bir dinlenme pozisyonundan hareket. Stimülasyon ikinci aşaması sonu aralık dorsifleksiyon haneli uzantısı sürdürülebilir bir izometrik kasılma olduğunu. </li></ul></li><li> Uyarım parametreleri: <ul><li> Bu NMES modeli geleneksel NMES 2 kanal (bkz. Tablo) sağlayan 300 PV Empi işlevli elektroterapi cihazı kullanmaktadır. Bu modelde amaçları için, sadece 1 kanalı kullanılır. </li><li> Kullanılan parametreler simetrik dalga, 150 ms&#39;den bir darbe süresi ve 50Hz bir frekans içerir. Stimülasyon süresi 0.5 saniye rampa aşağı yukarı 0.5 saniye rampa ile, 5 saniye olarak ayarlanır. Bu, kas accli daha yavaş yavaş sağlayacakstimülasyon dostum. Mevcut protokolde, kasılmalar arasında zaman kapalı 10 saniye olarak ayarlandı, ancak bu istenilen etkiye bağlı olarak ayarlanabilir. Kez kapalı azalmış kas yorgunluğu daha hızlı başlamasına neden olacaktır. Bu stimülasyon parametreleri önemli iskelet kası hasarı 1, 15, 16 neden olmadan, nöromüsküler elektrik stimülasyonu kullanarak kas gücünü artırmak için tasarlanmış klinik protokollere dayalı idi. </li><li> Fareler set arasında 5 dakikalık bir dinlenme ile, 10 kasılmaları iki set tamamlamak. </li><li> Yetişkin hayvanlar için, NMES yoğunluğu tipik olarak 9 mA başlatılır. Bizim deneyim, bu uyarım hemen ardından gözle görülür bir yürüme bozukluğu yol açmaz maksimal başlangıç ​​yoğunluğuna yaklaşık değerlerdir. Müteakip NMES seans, yoğunluğu 1 mA tarafından hayvanlara 20 tam dorsiflexions tamamlamak için mümkün olan her seferinde artar. </li></ul></li><li> Stimülasyon protokolü ve Reco tamamlanmasını takibenÇok anestezi, hayvanlar genellikle normal bir yürüyüş ve duruş göstermek. Yürüme NMES programı süresince yerinde idi kalmalıdır. </li></ul> 4. Temsilcisi Sonuçlar Vahşi Tipi (B6/10), B6.SCID ve mdx / SCID fareleri: Bu makalede açıklanan NMES protokolü dahil olmak üzere birçok fare suşları, uygulamaya konmuştur. 3-5 ay içerisinde 4 hafta (20 seans) üzerinden yapılan NMES Temsilcisi sonuçları eski mdx / SCID sunulmaktadır. Hayvanlar insanca anestezi altında ise servikal dislokasyon ile ötenazi uygulandı. Tibialis anterior kas 2 metil-bütan sıvı azot içinde ön-soğutulur ve -80 ° C&#39;de C hasat ve hemen donduruldu Seri kesitler (10 mikron) elde edilen ve slaytlar üzerine monte edildi. İstatistiksel analizler (SPSS v19.0 yazılım) standart istatistiksel yazılım paketleri kullanılarak yapıldı. İlk olarak, Levene testi olmadığını orada wa değerlendirmek için kullanılanVaryansların s eşitliği. Bağımsız örneklem t-testi sonra NMES ve Kontrol gruplar arasındaki farklılıkları araştırmak amacıyla yapıldı. Hematoksilen ve Eosin (H &amp; E) lekeleri NMES protokolü distrofik kas artmış yaralanmaya neden olup olmayacağını araştırmak için yapıldı. Bir bölümüne seçildi ve resimler bir ışık mikroskobu (Nikon Eclipse E800; Nikon, Japonya) kullanılarak elde edilmiştir. Rejenerasyon indeksi anlamlı bir artış (merkezi çekirdekli liflerin sayısı vardı geliştirilmiş bir görüntü analiz yazılımı, Resim J. - elyaf ve merkezi çekirdeği olan liflerin sayısı toplam sayısı elle Ulusal Sağlık Enstitüsü (NIH) kullanılarak sayıldı Şekil 1); / NMES sunulan hayvanlarda liflerin sayısı), kontroller olarak (p = 0,802 ile karşılaştırıldığında. Bu NMES uygulama distrofik hayvanlarda görülen dejenerasyonu-rejenerasyon kaskadı artmaz gösterdiğini ve bu nedenle olası değildirartmış bir kas yara endükledikten edilmesi. CD31 için immünofloresan boyama kas vaskülaritesi üzerine 4 haftalık NMES protokolü etkisini araştırmak amacıyla yapıldı. Kısaca, kas bölümleri formalin% 4 oranında sabit ve% 5 At Serumu (HS) ile bloke edildi. Kesitler, bir sıçan anti-fare primer antikor (% 5 HS 1:300 seyreltme) ile inkübe edildi ve bir 555-etiketli keçi anti-sıçan sekonder antikor (% 5 HS 1:300 seyreltme) ile muamele edildi. CD31 pozitif hücrelerinin toplam sayısını ölçmek için, bir bölüm seçilmiş ve floresan mikroskop (Nikon Eclipse E800, Japonya) ile fotoğraflandı. Kılcal damarların toplam sayısı elle Kuzey Eclipse Yazılım (Empix Imaging Inc) kullanılarak sayıldı. NMES protokol olarak iskelet kas anjiyogenez teşvik tarif belirten; kontroller (Şekil 2 p &lt;0.01) ile karşılaştırıldığında NMES sunulan hayvanlarda CD31 pozitif hücrelerin sayısı önemli bir artış vardı. <strong&gt; in situ kontraktil test sisteminde: dört haftalık bir NMES protokolü tamamlanmasından sonra, ön kompartman kas kasılma test in situ test cihazı (Model 809B, Aurora Scientific Inc, Kanada), uyarıcısı (Model 701C, Aurora Scientific Inc bir kullanılarak gerçekleştirildi , Kanada) ve kuvvet dönüştürücü (Aurora Scientific Inc, Kanada). Kısaca, anestezi hayvanların peroneal sinir diz lateralinde küçük bir kesi ile izole edildi. Fareler daha sonra bir platform üzerine yerleştirildi ve yatar test edilen ayak ayak levhasının üzerine yerleştirildi. Test için kullanılan bacak diz ve ayak üzerinde bez bant ile stabilize edildi. Kaslar derinin altına yerleştirilen bir kanca elektrotlar kullanılarak uyarıldı. Tetanik kas kasılması, 4 haftalık NMES protokolü kas yürürlükte gelişmelere neden olup olmayacağını araştırmak için 350ms için 150Hz frekansında test edildi. Sonuçlar ıslak kas ağırlığı normalize edildi. Tetan yılında yaklaşık% 30 artış olduaçıklanan protokol düşündüren denetimleri (p = 0.005) (Şekil 3) ile karşılaştırıldığında NMES sunulan hayvanların ic kasılması, mdx / SCID hayvanlarda iskelet kas gücünü artırır. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig1.jpg" /> NMES 4 hafta sonra A) tedavi verilmeyen kontrol, B). Şekil distrofik 1 Hematoksilen &amp; Eosin iskelet kas boyama (mdx) / bağışık yetmezliği olan farelere (4-5 ay) (10x büyütme). <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig2.jpg" /> Şekil 2. Distrofik iskelet kası (mdx) / bağışık yetmezliği olan farelere (4-5 ay) (20x büyütme) A) tedavi edilmemiş kontrol iskelet kası vaskülarite bir göstergesi olarak CD31 immünofloresan (kırmızı), B) 4 hafta sonra NMES. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/3914/3914fig3.jpg" /> Şekil 3. Kontraktil testiön kompartman kontrol kas ve 4 hafta süreyle NMES ile muamele edilen hayvanların. MNm = milli Newton metre. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3914/3914fig3large.jpg">büyük rakam görmek için buraya tıklayın</a> .

<ol>
	<li>Snyder-Mackler, L., Delitto, A., Bailey, S. L., Stralka, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strength+of+the+quadriceps+femoris+muscle+and+functional+recovery+after+reconstruction+of+the+anterior+cruciate+ligament.+A+prospective,+randomized+clinical+trial+of+electrical+stimulation.">Strength of the quadriceps femoris muscle and functional recovery after reconstruction of the anterior cruciate ligament. A prospective, randomized clinical trial of electrical stimulation.</a> Journal of Bone &#38; Joint Surgery - American. 77, 1166-1173 (1995).</li><li>Gibson, J. N., Smith, K., Rennie, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+disuse+muscle+atrophy+by+means+of+electrical+stimulation:+maintenance+of+protein+synthesis.">Prevention of disuse muscle atrophy by means of electrical stimulation: maintenance of protein synthesis.</a> Lancet. 2, 767-770 (1988).</li><li>Malatesta, D., Cattaneo, F., Dugnani, S., Maffiuletti, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+electromyostimulation+training+and+volleyball+practice+on+jumping+ability.">Effects of electromyostimulation training and volleyball practice on jumping ability.</a> Journal of Strength &#38; Conditioning Research. 17, 573-579 (2003).</li><li>Maffiuletti, N. A., Dugnani, S., Folz, M., Di Pierno, E., Mauro, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+combined+electrostimulation+and+plyometric+training+on+vertical+jump+height.">Effect of combined electrostimulation and plyometric training on vertical jump height.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 34, 1638-1644 (2002).</li><li>Pichon, F., Chatard, J. C., Martin, A., Cometti, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+and+swimming+performance.">Electrical stimulation and swimming performance.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 27, 1671-1676 (1995).</li><li>Gondin, J., Guette, M., Ballay, Y., Martin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electromyostimulation+training+effects+on+neural+drive+and+muscle+architecture.">Electromyostimulation training effects on neural drive and muscle architecture.</a> Med. Sci. Sports Exerc. 37, 1291-1299 (2005).</li><li>Mathieu-Costello, O., Agey, P. J., Wu, L., Hang, J., Adair, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Capillary-to-fiber+surface+ratio+in+rat+fast-twitch+hindlimb+muscles+after+chronic+electrical+stimulation.">Capillary-to-fiber surface ratio in rat fast-twitch hindlimb muscles after chronic electrical stimulation.</a> Journal of Applied Physiology. 80, 904-909 (1996).</li><li>Ebina, T., Hoshi, N., Kobayashi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+angiogenesis+in+electrically+stimulated+skeletal+muscle+in+rabbits:+characterization+of+capillary+sprouting+by+ultrastructural+3-D+reconstruction+study.">Physiological angiogenesis in electrically stimulated skeletal muscle in rabbits: characterization of capillary sprouting by ultrastructural 3-D reconstruction study.</a> Pathology International. 52, 702-712 (2002).</li><li>Zhao, M., Huai, B., Wang, E., Forrester, J. V., McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+directly+induces+pre-angiogenic+responses+in+vascular+endothelial+cells+by+signaling+through+VEGF+receptors.">Electrical stimulation directly induces pre-angiogenic responses in vascular endothelial cells by signaling through VEGF receptors.</a> Journal of Cell Science. 117, 397-405 (2004).</li><li>Nagasaka, M., Kohzuki, M., Fujii, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+low-voltage+electrical+stimulation+on+angiogenic+growth+factors+in+ischaemic+rat+skeletal+muscle.">Effect of low-voltage electrical stimulation on angiogenic growth factors in ischaemic rat skeletal muscle.</a> Clinical &#38; Experimental Pharmacology &#38; Physiology. 33, 623-627 (2006).</li><li>Brutsaert, T. D., Gavin, T. P., Fu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Regional+differences+in+expression+of+VEGF+mRNA+in+rat+gastrocnemius+following+1+hr+exercise+or+electrical+stimulation.">Regional differences in expression of VEGF mRNA in rat gastrocnemius following 1 hr exercise or electrical stimulation.</a> BMC Physiology. 2, 8 (2002).</li><li>Putman, C. T., Dusterhoft, S., Pette, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+satellite+cell+content+and+myosin+isoforms+in+low-frequency-stimulated+fast+muscle+of+hypothyroid+rat.">Changes in satellite cell content and myosin isoforms in low-frequency-stimulated fast muscle of hypothyroid rat.</a> Journal of Applied Physiology. 86, 40-51 (1999).</li><li>Monaghan, B., Caulfield, B., O'Mathuna, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surface+neuromuscular+electrical+stimulation+for+quadriceps+strengthening+pre+and+post+total+knee+replacement.">Surface neuromuscular electrical stimulation for quadriceps strengthening pre and post total knee replacement.</a> Cochrane Database Syst. Rev. CD007177, (2010).</li><li>Jubeau, M., Gondin, J., Martin, A., Sartorio, A., Maffiuletti, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Random+motor+unit+activation+by+electrostimulation.">Random motor unit activation by electrostimulation.</a> Int. J. Sports Med. 28, 901-904 (2007).</li><li>Piva, S. R., Goodnite, E. A., Azuma, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuromuscular+electrical+stimulation+and+volitional+exercise+for+individuals+with+rheumatoid+arthritis:+a+multiple-patient+case+report.">Neuromuscular electrical stimulation and volitional exercise for individuals with rheumatoid arthritis: a multiple-patient case report.</a> Physical Therapy. 87, 1064-1077 (2007).</li><li>Delitto, A., Rose, S. J., McKowen, J. M., Lehman, R. C., Thomas, J. A., Shively, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrical+stimulation+versus+voluntary+exercise+in+strengthening+thigh+musculature+after+anterior+cruciate+ligament+surgery.[erratum+appears+in+Phys+Ther+1988+Jul;68(7):1145].">Electrical stimulation versus voluntary exercise in strengthening thigh musculature after anterior cruciate ligament surgery.[erratum appears in Phys Ther 1988 Jul;68(7):1145].</a> Physical Therapy. 68, 660-663 (1988).</li></ol>

Biz ifşa hiçbir şey yok.

Bu sonuçlar NMES bizim gelişmiş sıçan modelinde iskelet kas anjiyogenez (Şekil 2) ve güçlendirme (Şekil 3) arttırır fakat iskelet kas hasarı (Şekil 1) neden olmadığını düşündürmektedir. Burada tarif edilen uyarılması parametreleri ön kompartman kas aşırı bir kas indüklemek için dizayn edilmiş olduğu not edilmelidir. Klinik senaryolar için olduğu gibi, elektrot yerleştirme NMES üzere kas tepkisi lif tipi bileşimine bağlı olarak, farklı olabilir, ancak, başka kas grupları uyarmak için ayarlanabilir. NMES süresi, tedavi seans sayısı ve tekrar sayısı ve toplam tasarım eğitimine göre modifiye edilebilir. Herhangi bir protokol ile olduğu gibi, bu yöntem not edilmelidir sınırlamaları vardır. Bu çalışmada, stimülasyon derin fibula sinir üzerinde yapıldı. Ancak, klinikte, stimülasyon ilar genellikle motor ünitesi uygulandı. Hayvan modeli, sinir stimülasyonu tam kas kasılması ortaya çıkarmak için daha düşük bir yoğunluğu gerektirecektir. Sunulduğu gibi modelin bir diğer kısıtlılığı hayvanlar anestezi olduğu göz önüne alındığında, NMES uygulama sırasında bilgilere ilişkin konfor seviyesi elde etmek mümkün olmasıdır. Bu nedenle, bir klinik popülasyonda karşılaştırılabilir yoğunluklarının tolere değerlendirmek için zordur. Ancak, histolojik sonuçları açıklandığı gibi, kas hasarı teşvik etmez, bizim NMES modeli öneriyoruz. Yaygın klinikte uygulanan yöntemler tedavi müdahalelerine karşı hücresel ve moleküler yanıtların daha iyi anlaşılması için olanak yararlı laboratuar araçları ile bize taklit hayvan modellerinin geliştirilmesi. Ayrıca, bu modellerin her ikisi de mevcut rehabilitasyon protokolleri rafine ve yeni göstergeler geliştirmek için klinik öncesi çalışmalar yapmak yararlıdır.

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td></tr><tr><td> Çatallı lehim terminali ile vektör tel sarma Mesajları </td><td> Newark </td><td> T68 </td></tr><tr><td> Vektör devre kartı </td><td> Newark </td><td> 3662-2 </td></tr><tr><td> Pomona kablonuzla </td><td> Newark </td><td> P-36-0 </td></tr><tr><td> 5 dakikalık epoksi </td><td> VO Baker A.Ş. </td><td> 4001 </td></tr><tr><td> Spectra 360 Elektrot Jel </td><td> Milliken Tıp </td><td> MR41217 </td></tr><tr><td> Taşınabilir nöromüsküler stimülasyon cihazı </td><td> EMPI </td><td> 300pv </td></tr></tbody></table>

a murine model of muscle training by neuromuscular electrical stimulation

Nöromüsküler elektriksel stimülasyon (NMES) yaygın olarak 2 korumak veya 3-5 kas fonksiyonel kapasitesini artırmak, 1 geri yüklemek için kullanılan yaygın bir klinik yöntemidir. Iskelet kasının Transkutanöz yüzey stimülasyonu böylece motor ünitesi ve çevresindeki kas liflerinin heyecanı inducing bir katot ve anot arasında bir akım akışı, içerir. NMES çeşitli nedenlerden dolayı iskelet kas adaptif yanıtları değerlendirmek için cazip bir yöntemdir. Birincisi bu myofiber hipertrofi ve kas güçlendirme 6, anjiogenez 7-9, büyüme faktörü salgılanması 9-11, ve kas öncü hücre aktivasyonu 12 gibi fizyolojik adaptasyon, iyi belgelenmiş olduğu bir tekrarlanabilir deneysel bir model sunar. Bu tür fizyolojik yanıtlar dikkatle stimülasyon farklı parametreler (Cochrane için, 13) kullanılarak titre edilebilir. Buna ek olarak, acemi NMESmotor birimleri non-selektif ve bir uzaysal olarak sabitlenir ve geçici olarak senkronize bir şekilde 14, tüm liflerinin bir tedavi etkisi uygulayabilen bir avantaj sunar, bağımsız olarak fiber tip. Periferik venöz bozukluklar veya malignite dahil olmak üzere klinik popülasyonlarda NMES için belirtilen kontrendikasyonlar olmasına rağmen, örneğin, NMES hatta hasta ve / veya yatalak olanlar için ve sıkı egzersiz zor olabilir hangi popülasyonlar için, güvenilir, uygulanabilir. Burada, ticari olarak mevcut elektrotlar adapte ve bir sıçan modelinde kullanılarak bir NMES protokolü gerçekleştirmek için protokol göstermektedir. Bu hayvan modeli bir klinik kullanıma cihazı kullanan ve istenen kas kasılma etkisini ortaya çıkarmak için elektrot yerleştirme ile ilgili anında geribildirim sağlama avantajına sahiptir. Bu yazının amacı için, bir farenin arka ayakların ön kompartman kaslarının kas stimülasyonu için protokol anlatacağız.

Watch this Scientific Journal Video about A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation at JoVE.com

A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation

Ön kompartman kasları nöromüsküler elektriksel stimülasyon bir fare modeli (NMES), güvenli ve ucuz bir klinik yöntem, anlatılmıştır. Bu modelde, farelerde ve spesifik hedef kas kontraksiyonlarının ortaya çıkarmak amacıyla, kolayca bulunabilen bir klinik cihazı değiştirerek bir avantaja sahiptir.

Nöromüsküler Elektriksel Stimülasyon tarafından Kas Eğitimi A Mürin Modeli

Neuromuscular electrical stimulation (NMES) is a common clinical modality that is widely used to restore1, maintain2 or enhance3-5 muscle functional ...

a-murine-model-muscle-training-neuromuscular-electrical

Research

JoVE Journal

Medicine

20.8K Görüntüleme.  University of Pittsburgh. Ön kompartman kasları nöromüsküler elektriksel stimülasyon bir fare modeli (NMES), güvenli ve ucuz bir klinik yöntem, anlatılmıştır. Bu modelde, farelerde ve spesifik hedef kas kontraksiyonlarının ortaya çıkarmak amacıyla, kolayca bulunabilen bir klinik cihazı değiştirerek bir avantaja sahiptir.

Video: A Murine Model of Muscle Training by Neuromuscular Electrical Stimulation

Programmed Electrical Stimulation in Mice

Genetically-modified mice have emerged as a preferable animal model to study the molecular mechanisms underlying conduction abnormalities, atrial and ventricular arrhythmias, and sudden cardiac death.1 Intracardiac pacing studies can be performed in mice using a 1.1F octapolar catheter inserted into the jugular vein, and advanced into the right atrium and ventricle. Here, we illustrate the steps involved in performing programmed electrical stimulation in mice. Surface ECG and intracardiac electrograms are recorded simultaneously in the atria, atrioventricular junction, and ventricular myocardium, whereas intracardiac pacing of the atrium is performed using an external stimulator. Thus, programmed electrical stimulation in mice provides unique opportunities to explore molecular mechanisms underlying conduction defects and cardiac arrhythmias.

Programmed electrical stimulation provides the ability to determine conduction properties of the heart, and the possibility to induce and terminate cardiac arrhythmias using various pacing protocols. Using a transvenous catheter, intracardiac electrogram recordings can be obtained in mice following programmed electrical stimulation protocols to identify arrhythmogenic substrates.

Farelerde Programlı Elektrik Stimülasyon

Genetically-modified mice have emerged as a preferable animal model to study the molecular mechanisms underlying conduction abnormalities, atrial and ...

Tıp

Utilizing Transcranial Magnetic Stimulation to Study the Human Neuromuscular System

Transcranial magnetic stimulation (TMS) has been in use for more than 20 years 1, and has grown exponentially in popularity over the past decade. While the use of TMS has expanded to the study of many systems and processes during this time, the original application and perhaps one of the most common uses of TMS involves studying the physiology, plasticity and function of the human neuromuscular system. Single pulse TMS applied to the motor cortex excites pyramidal neurons transsynaptically 2 (Figure 1) and results in a measurable electromyographic response that can be used to study and evaluate the integrity and excitability of the corticospinal tract in humans 3. Additionally, recent advances in magnetic stimulation now allows for partitioning of cortical versus spinal excitability 4,5. For example, paired-pulse TMS can be used to assess intracortical facilitatory and inhibitory properties by combining a conditioning stimulus and a test stimulus at different interstimulus intervals 3,4,6-8. In this video article we will demonstrate the methodological and technical aspects of these techniques. Specifically, we will demonstrate single-pulse and paired-pulse TMS techniques as applied to the flexor carpi radialis (FCR) muscle as well as the erector spinae (ES) musculature. Our laboratory studies the FCR muscle as it is of interest to our research on the effects of wrist-hand cast immobilization on reduced muscle performance6,9, and we study the ES muscles due to these muscles clinical relevance as it relates to low back pain8. With this stated, we should note that TMS has been used to study many muscles of the hand, arm and legs, and should iterate that our demonstrations in the FCR and ES muscle groups are only selected examples of TMS being used to study the human neuromuscular system.

Transcranial magnetic stimulation (TMS) is a non-invasive tool to gain insight on the physiology and function of the human nervous system. Here, we present our TMS techniques to study cortical excitability of the upper limb and lumbar musculature.

İnsan Nöromusküler Sistem Eğitim Transkraniyal Manyetik Uyarım kullanımı

Transcranial magnetic stimulation (TMS) has been in use for more than 20 years 1, and has grown exponentially in popularity over the past decade.  While ...

Breathing-controlled Electrical Stimulation (BreEStim) for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

Electrical stimulation (EStim) refers to the application of electrical current to muscles or nerves in order to achieve functional and therapeutic goals. It has been extensively used in various clinical settings. Based upon recent discoveries related to the systemic effects of voluntary breathing and intrinsic physiological interactions among systems during voluntary breathing, a new EStim protocol, Breathing-controlled Electrical Stimulation (BreEStim), has been developed to augment the effects of electrical stimulation. In BreEStim, a single-pulse electrical stimulus is triggered and delivered to the target area when the airflow rate of an isolated voluntary inspiration reaches the threshold. BreEStim integrates intrinsic physiological interactions that are activated during voluntary breathing and has demonstrated excellent clinical efficacy. Two representative applications of BreEStim are reported with detailed protocols: management of post-stroke finger flexor spasticity and neuropathic pain in spinal cord injury.

Breathing-controlled Electrical Stimulation BreEStim for Management of Neuropathic Pain and Spasticity

The purpose is to present a new method, breathing-control electrical stimulation (BreEStim) for management of neuropathic pain and spasticity.

Nöropatik Ağrı ve Spastisite Yönetiminde Solunum kontrollü Elektriksel Stimülasyon (BreEStim)

Electrical stimulation (EStim) refers to the application of electrical current to muscles or nerves in order to achieve functional and therapeutic goals. ...

Murine Model of Wound Healing

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. Impaired wound healing, which occurs in diabetic patients for example, can lead to severe unfavorable outcomes such as amputation. There is, therefore, an increasing impetus to develop novel agents that promote wound repair. The testing of these has been limited to large animal models such as swine, which are often impractical. Mice represent the ideal preclinical model, as they are economical and amenable to genetic manipulation, which allows for mechanistic investigation. However, wound healing in a mouse is fundamentally different to that of humans as it primarily occurs via contraction. Our murine model overcomes this by incorporating a splint around the wound. By splinting the wound, the repair process is then dependent on epithelialization, cellular proliferation and angiogenesis, which closely mirror the biological processes of human wound healing. Whilst requiring consistency and care, this murine model does not involve complicated surgical techniques and allows for the robust testing of promising agents that may, for example, promote angiogenesis or inhibit inflammation. Furthermore, each mouse acts as its own control as two wounds are prepared, enabling the application of both the test compound and the vehicle control on the same animal. In conclusion, we demonstrate a practical, easy-to-learn, and robust model of wound healing, which is comparable to that of humans.

A murine model of cutaneous wound healing that can be used to assess therapeutic compounds in physiological and pathophysiological settings.

Yara Şifa murin Modeli

Wound healing and repair are the most complex biological processes that occur in human life. After injury, multiple biological pathways become activated. ...

A Murine Model of Subarachnoid Hemorrhage

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of Willis perforation (CWp) and proven by intracranial pressure (ICP) monitoring. Thereby a homogenous blood distribution in subarachnoid spaces surrounding the arterial circulation and cerebellar fissures is achieved. Animal physiology is maintained by intubation, mechanical ventilation, and continuous on-line monitoring of various physiological and cardiovascular parameters: body temperature, systemic blood pressure, heart rate, and hemoglobin saturation. Thereby the cerebral perfusion pressure can be tightly monitored resulting in a less variable volume of extravasated blood. This allows a better standardization of endovascular filament perforation in mice and makes the whole model highly reproducible. Thus it is readily available for pharmacological and pathophysiological studies in wild type and genetically altered mice.

A standardized mouse model of subarachnoid hemorrhage by intraluminal Circle of Willis perforation is described. Vessel perforation and subarachnoid bleeding are monitored by intracranial pressure monitoring. In addition various vital parameters are recorded and controlled to maintain physiologic conditions.

Subaraknoid Kanama bir fare modeli

In this video publication a standardized mouse model of subarachnoid  hemorrhage (SAH) is presented. Bleeding is induced by endovascular Circle of  Willis ...

Reproducable Paraplegia by Thoracic Aortic Occlusion in a Murine Model of Spinal Cord Ischemia-reperfusion

Background 
Lower extremity paralysis continues to complicate aortic interventions. The lack of understanding of the underlying pathology has hindered advancements to decrease the occurrence this injury.&#160;The current model demonstrates reproducible lower&#160;extremity paralysis following thoracic aortic occlusion.
Methods 
Adult male C57BL6 mice were anesthetized with isoflurane. Through a cervicosternal incision the aorta was exposed. The descending thoracic aorta and left subclavian arteries were identified without entrance into pleural space. Skeletonization of these arteries was followed by immediate closure (Sham) or occlusion for 4 min (moderate ischemia) or 8 min (prolonged ischemia). The sternotomy and skin were closed and the mouse was transferred to warming bed for recovery.&#160; Following recovery, functional analysis was obtained at 12 hr intervals until 48 hr.
Results 
Mice that underwent sham surgery showed no observable hind&#160;limb deficit. Mice subjected to moderate ischemia for 4 min had minimal functional deficit at 12 hr followed by progression to complete paralysis at 48 hr. Mice subjected to prolonged ischemia had an immediate paralysis with no observable hind-limb movement at any point in the postoperative period. There was no observed intraoperative or post&#160;operative mortality.
Conclusion 
Reproducible lower extremity paralysis whether immediate or delayed can be achieved in a murine model. Additionally, by using a median sternotomy and careful dissection, high survival rates, and reproducibility can be achieved.

The lack of mechanistic understanding of spinal cord ischemia-reperfusion injury has hindered further adjuncts to prevent paraplegia following high risk aortic operations. Thus, the development of animal models is imperative. This manuscript demonstrates reproducible lower extremity paralysis following thoracic aortic occlusion in a murine model.

Spinal Kord İskemi-reperfüzyon bir Mürin Modelinde Torasik Aort Tıkanıklığı tarafından tekrarlanabilir Parapleji

Background
Lower extremity paralysis continues to complicate aortic interventions. The lack of understanding of the underlying pathology has hindered ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, the RV is significantly affected in pulmonary diseases such as pulmonary artery hypertension (PAH). In addition, the RV is remarkably sensitive to cardiac pathologies, including left ventricular (LV) dysfunction, valvular disease or RV infarction4. To understand the role of RV in the pathogenesis of cardiac diseases, a reliable and noninvasive method to access the RV structurally and functionally is essential.
A noninvasive trans-thoracic echocardiography (TTE) based methodology was established and validated for monitoring dynamic changes in RV structure and function in adult mice. To impose RV stress, we employed a surgical model of pulmonary artery constriction (PAC) and measured the RV response over a 7-day period using a high-frequency ultrasound microimaging system. Sham operated mice were used as controls. Images were acquired in lightly anesthetized mice at baseline (before surgery), day 0 (immediately post-surgery), day 3, and day 7 (post-surgery). Data was analyzed offline using software.
Several acoustic windows (B, M, and Color Doppler modes), which can be consistently obtained in mice, allowed for reliable and reproducible measurement of RV structure (including RV wall thickness, end-diastolic&#160;and end-systolic dimensions), and function (fractional area change, fractional shortening, PA peak velocity, and peak pressure gradient) in normal mice and following PAC.
Using this method, the pressure-gradient resulting from PAC was accurately measured in real-time using Color Doppler mode and was comparable to direct pressure measurements performed with a Millar high-fidelity microtip catheter. Taken together, these data demonstrate that RV measurements obtained from various complimentary views using echocardiography are reliable, reproducible and can provide insights regarding RV structure and function. This method will enable a better understanding of the role of RV cardiac dysfunction.

Right ventricle (RV) dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease, yet limited methodologies are available for its evaluation. Recent advances in ultrasound imaging provide a noninvasive and accurate option for longitudinal RV study. Herein, we detail a step-by-step echocardiographic method using a murine model of RV pressure overload.

Transtorasik Ekokardiyografi ile Pulmoner Arter Konstrüksiyon Fare Modeli sağ ventrikül yapı ve fonksiyonlarının değerlendirilmesi

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As such, primary or &#39;neuronal-like&#39; cell culture systems are commonly utilized. While&#160;these systems are relatively easy to work with, and are useful model systems in which various functional outcomes (such as cell death) can be readily quantified, the examined outcomes and pathways in cultured immature neurons (such as excitotoxicity-mediated cell death pathways) are not necessarily the same as those observed in mature brain, or in intact tissue. Therefore, there is the need to develop models in which cellular mechanisms in mature neural tissue can be examined. We have developed an in vitro technique that can be used to investigate a variety of molecular pathways in intact nervous tissue. The technique described herein utilizes rat cortical tissue, but this technique can be adapted to use tissue from a variety of species (such as mouse, rabbit, guinea pig, and chicken) or brain regions (for example, hippocampus, striatum, etc.). Additionally, a variety of stimulations/treatments can be used (for example, excitotoxic, administration of inhibitors, etc.). In conclusion, the brain slice model described herein can be used to examine a variety of molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.

Excitotoxic Stimulation of Brain Microslices as an In vitro Model of Stroke

We have developed a brain slice model which can be used to examine molecular mechanisms involved in excitotoxicity-mediated brain injury.&#160;This technique generates viable mature brain tissue and reduces animal numbers required for experimentation, whilst keeping the neuronal circuitry, cellular interactions, and postsynaptic compartments partly intact.

Bir olarak Beyin Microslices arasında excitotoxic uyarılması<em&gt; In vitro</em&gt; İnme Model

Examining molecular mechanisms involved in neuropathological conditions, such as ischemic stroke, can be difficult when using whole animal systems. As ...

Clinical Assessment of Spatiotemporal Gait Parameters in Patients and Older Adults

Spatial and temporal characteristics of human walking are frequently evaluated to identify possible gait impairments, mainly in orthopedic and neurological patients1-4, but also in healthy older adults5,6. The quantitative gait analysis described in this protocol is performed with a recently-introduced photoelectric system (see&#160;Materials table) which has the potential to be used in the clinic because it is portable, easy to set up (no subject preparation is required before a test), and does not require maintenance and sensor calibration. The photoelectric system consists of series of high-density floor-based photoelectric cells with light-emitting and light-receiving diodes that are placed parallel to each other to create a corridor, and are oriented perpendicular to the line of progression7. The system simply detects interruptions in light signal, for instance due to the presence of feet within the recording area. Temporal gait parameters and 1D spatial coordinates of consecutive steps are subsequently calculated to provide common gait parameters such as step length, single limb support and walking velocity8, whose validity against a criterion instrument has recently been demonstrated7,9. The measurement procedures are very straightforward; a single patient can be tested in less than 5 min&#160;and a comprehensive report can be generated in less than 1&#160;min.

This protocol is used to evaluate spatial and temporal gait variables of neurological/orthopedic patients and older persons by means of a recently-introduced floor-based photocell system.

Hastalar ve Yaşlı Bireylerde Spatiotemporal Yürüme Parametrelerinin Klinik Değerlendirilmesi

Spatial and temporal characteristics of human walking are frequently evaluated to identify possible gait impairments, mainly in orthopedic and ...

Reproducible Arterial Denudation Injury by Infrarenal Abdominal Aortic Clamping in a Murine Model

Percutaneous vascular interventions uniformly result in arterial denudation injuries that subsequently lead to thrombosis and restenosis. These complications can be attributed to impairments in re-endothelialization within the wound margins. Yet, the cellular and molecular mechanisms of re-endothelialization remain to be defined. While several animal models to study re-endothelialization after arterial denudation are available, few are performed in the mouse because of surgical limitations. This undermines the opportunity to exploit transgenic mouse lines and investigate the contribution of specific genes to the process of re-endothelialization. Here, we present a step-by-step protocol for creating a highly reproducible murine model of arterial denudation injury in the infrarenal abdominal aorta using external vascular clamping. Immunocytochemical staining of injured aortas for fibrinogen and &#946;-catenin demonstrate the exposure of a pro-thrombotic surface and the border of intact endothelium, respectively. The method presented here has the advantages of speed, excellent overall survival rate, and relative technical ease, creating a uniquely practical tool for imposing arterial denudation injury in transgenic mouse models. Using this method, investigators may elucidate the mechanisms of re-endothelialization under normal or pathological conditions.

Understanding the cellular and molecular mechanisms of re-endothelialization following arterial denudation injury is of paramount importance in preventing thrombosis and restenosis of arteries. Here we describe a protocol for reproducible arterial denudation injury of the infrarenal abdominal aorta. The procedure was developed to investigate the underlying mechanisms that regulate endothelial regeneration using mouse models.