Yazarlar DHMRI CLAS hayvan bakım personelinin güçlü bir destek kabul etmek istiyorum, Tesis Müdürü Sayın Daniel Peralta ve katılan veteriner Dr. Glicerio Ignacio, DVM MRCVS.

Butun hayvan prosedürleri, protokol 14-017 altında, Kuzey Karolina Araştırma Campus (NCRC) üzerinde yer alan David H. Murdock Araştırma Enstitüsü IACUC onaylı edildi, diyabet ve prediyabet / insülin direnci ve terapötik etkinliğinin bir insan olmayan üstün ırk modelinin karakterizasyonu geliştirmek insülin duyarlılığı ve metabolik fonksiyonu. 1. Hayvan Seçimi ve Çalışma Hazırlık <ol><li> aylık gıda alımı ve vücut ağırlığı kayıtlarına dayanarak Seç diyet ve kilo istikrarlı hayvanlar. Not: yiyecek alımı stabilize kadar iştah son bir azalma sergiledi hayvanlar, özelliği olmamalıdır. <ol><li> olgun hayvanlar için (&gt; 5-6 yıl), bedeni ay üst üste arasındaki ağırlıklar ilk maymun incelenmesi ve ağırlık dramatik değişim için metabolik durumunu değiştirmeden başka nedenler ekarte etmeden% 10&#39;dan fazla farklılık hayvanları seçmeyin. </li></ol></li><li> glukoz, insülin ve C-peptidleri içinde analitler, proteaz inhibitörü (Aprotinin ve DPP4I) K 2 EDTA numune toplama tüpleri hazırlayın. Not: DPP4I + Aprotinin kokteyli proteaz inhibisyonu geniş spektrumlu bir sağlar, bu ek analitler (glukagon, GLP-1) için gerekli olmalıdır. Ek analitler toplanan olmadığını durumunda, kan tüpleri Numune alımında tutarlılığı korumak için aynı şekilde hazırlanmalıdır. Bu yöntem için doğrulanmamıştır tahliller için alınan örnekler üreticinin önerilerine göre, ayrı ayrı toplanmalıdır. <ol><li> DPP4I 10 ml Aprotinin, liyofilize 100 mg karıştırılarak proteaz inhibitör kokteyli hazırlanır. Toplanan kan, her mililitre için her kan tüpüne Aprotinin + DPP4I karışımı 10 ul ekle. </li><li> olası tahsilat fazlalık her tüpe proteaz inhibitör kokteyli ilave 10 ul ekle. kullanılana kadar -20 ° C&#39;de muamele kan tüpleri saklayın. procedu sırasında ıslak buz üzerinde tüpler tutunyeniden 4 ° C &#39;de dönel. </li><li> Standart serum kimyası analiz için başlangıçta bir kan örneği toplamak için bir serum ayırıcı tüp kullanın. Tam kan sayımı (CBC) için, proteaz inhibitörleri olmadan standart K 2 EDTA kullanın. kan örnekleri sonrasında kısım plazma ve serum kullanın cryovials aşağı bükülmüş edilmiştir. </li><li> hayvan tanımlama, tarih, prosedür, timepoint ve örnek hacmi ile uygun kan tüpleri ve cryovials etiketleyin. Uygun deney için plazmada analiz (ler) ile birlikte cryovials etiketleyin. </li></ol></li><li> normal tuzlu su içinde 250 ml&#39;lik bir torbaya ml heparin 1.000 USP birim 0.15 ml enjekte ile heparinize edilmiş tuz akışı hazırlayın. 0.06 mg heparin / ml bir solüsyon elde edilir. örnekler arasında temizlenmesi için bir tuzlu su kilide Bu çözeltiye 60 ml - 40 çizin. sırasıyla infüzyon önce ve sonra dekstroz infüzyonu noktası yıkama için ayrı şırıngalar içine ilave 1 mL ve 5 mL çizin. </li></ol> 2.Hayvan Sedasyon ve Hazırlık <ol><li> hayvanın kafesinden işlem öncesi en az 14 saat ve en fazla 18 saat yiyecek çıkarın. NOT: Bu hayvanların glisemik değerleri herhangi bir postprandial varyasyonu önlemek için prosedür için aç olması önemlidir. Ayrıca anestezi sırasında yetersizliği ve mide içeriğinin aspirasyonu önlemek için bir önlemdir. </li><li> Genel anestezik olarak kas içinden verilen ketamin ile IVGTT prosedür süresince oturaklı hayvanlar, 10 mg / kg. İşlem sırasında, gerektiğinde, 30 dakika ya da 20 - aralıklarla - (10 mg / kg ve 5), ek ketamin yönetme. <ol><li> sedasyon hayvan tartılır. ısıtılmış bir prosedür masaya yanal yatar pozisyonda hayvan yerleştirin. </li><li> Hayvan anestezi istikrarlı bir düzlemde sağlamak için klinik parametrelerin her 15 ila 20 dakika izleyin. Bir pulse oksimetre ile - (200 bpm 100) ve DPT 2 (&gt;% 92) kalp hızını ölçün. (- 50 nefes / dk 20) ​​w solunum hızını ölçmek<html> Bir kronometre i, görsel ya da on beş saniye boyunca elle solunumda sayarak ve dört ile çarpılarak. Tedbir sıcaklığı (&gt; 97 ° F) rektal. sakız ve dudakların (nemli, pembe) etrafında mukoz membran rengini izleyin. </li></ol></li><li> İki kanül siteleri hazırlayın. Kateter eklenecek ilgi alanından saç kesme ve alternatif klorheksidin scrubs ve% 70 alkol ile tüm bölgeyi sterilize etmek için saç makasları kullanın. <ol><li> Sol veya sağ sefalik veya safen venlerin bölgesinde bir kateter yerleştirilir ve üç yollu ile (mg heparin / ml 0.06) bir heparin tuzlu floş ekleyin. Bu örnekleme kan alımı sitesidir. </li><li> Başka bir bacak ikinci kateter yerleştirin veya sefalik veya safen venlerin bölgede kol ve bir bağlantı noktası ekleyin. dekstroz infüzyon için bu siteyi kullanın. önce dekstroz infüzyon için kanül patent tutmak için, küçük heparinize salin 1 ml floş kullanın. </li></ol></li></ol>e_title &quot;&gt; 3. İVGTT Prosedürü Not: IVGTT Prosedür 8 kan alımı numune zaman noktaları (Tablo 1) oluşur. <ol><li> Bazal örneği alın ve açlık kan şekeri düzeyini ölçmek için bir el glukometre kullanın. hayvanın genel sağlığını değerlendirmek için bir CBC standart kimya analizi için bir serum numunesi, aynı zamanda, bütün bir kan örneği alın. Imalatçının talimatlarına 8, 9 uyarınca makaklarda kullanılmak için kabul edilmiş bir kit kullanılarak taban numuneden glikoz ve insülin seviyelerini analiz etmek için plazma numuneleri toplamak. Not: Bu, önceden kanülün ölü boşluk kalan kan veya heparin çıkarmak için kan toplanması için numune alma kanül alınan 0.5 ml&#39;lik bir ön çekmesi önemlidir. </li><li> Bazal örnek alınmasını takiben, dekstroz infüzyonu portuna 30 saniye içinde% 50 dekstroz (250 mg / kg) infüzyonu. Not: yüksek doz modelleri (500 mg / kg), kullanılabilirgerçi doz uzunlamasına karşılaştırmalar yapmak amacıyla prosedürler arasında sabit olmalıdır. <ol><li> Limanda kalmadı dekstroz olduğundan emin olmak için heparinli serum fizyolojik 5 ml infüzyon portu yıkayın. infüzyon sonu T0 olduğunu. infüzyon arta kalan dekstroz sonraki kan örnekleri kontamine olabilir teknisyen, eldiven yerine var. </li></ol></li><li> sonrası ilk infüzyon örnek zaman noktası T5 dakika T7 dakika, T10 dakika, T15 dakika, T20 min ardından dekstroz infüzyon sonunda, gelen, T3 dk ve son örnek zaman noktası T30 min yer almaktadır. Başlangıç ​​numunesi ile deney glikoz ve insülin düzeyleri her bir zaman noktasında plazmanın kazan (adım 3.1). <ol><li> zaman noktasında dk T3, bir kez daha kan şekeri seviyesini kontrol etmek için el glukometre kullanın. NOT: Başlangıçta Glucometer okumalar ve T3 dekstroz infüzyon onaylamak için sadece. zaman noktasında dk T3 kan glukoz düzeyi ~ 100 mg / dl daha yüksek eş olmalıdıraçlık bazal plazma glukoz düzeyine mpared. </li></ol></li></ol> 4. Hayvan Kurtarma ve Örnek İşleme <ol><li> kanüller çıkarın ve zaman noktası dk T30 sonra hemostaz için kateterize sitelere basınç uygulayın. o kendine geldi ve oturmuş kadar hayvan izleyin. hayvan kez Teklif besleme tamamen iyileşti edilir. </li><li> Hemen buz üzerine K 2, EDTA tüpleri içine her bir tam kan örneği yerleştirin. toplama, 10 dakika içinde 4 ° C arasındaki bir sıcaklıkta 3000 rpm&#39;de santrifüj. analize kadar -80 ° C &#39;de cryovials, dondurulması ve depolanması içine kısım plazma numuneleri. <ol><li> Standart serum kimyası analizleri için serum tüpü içine, kan az 20 dakika ve oda sıcaklığında 3000 rpm&#39;de santrifüjlemeden önce en fazla 30 dakika süreyle, oda sıcaklığında bekletin. toplama 48 saat içerisinde deneye tabi tutulana kadar, serum örnekleri dondurun. NOT: olarak kadar CBC analizi için toplanan buzdolabında tam kan örnekleritoplama 24 saat içinde sayed. </li></ol></li></ol> 5. Veri Tedavisi <ol><li> Plazma insülin ve glikoz eğrisi oluşturulması başlangıçta, 16, 17, yukarıda glukoz değerleri için doğal log A eğiminden glukoz klirensi oranı K belirler. Not: Sağlıklı bir NSP sağlıklı hayvan genellikle 30 dakika içinde, başlangıç glukoz değerlerine geri döner olarak, genellikle daha büyük bir 2 veya daha fazla, iyi 1&#39;in üzerinde bir glükoz klirensi oranı K olması beklenebilir. insülin üretimi devre dışı bırakır gibi, glikoz temizlenme oranı K 1&#39;in altına düşen, daha önemli ölçüde düşecek. </li><li> T30 16, 17 vasıtasıyla, zaman noktaları arasında, her çizgi parçasının eğri altında kalan alan temsil yamuk alanının toplamları toplamı olarak, bir bütün olarak AUC hesaplayın. Not: Geleneksel olarak, işlemin ilk on dakika AUC akut olarak kabul edilirprosedürün son 20 dk AUC geç insülin yanıtı (LIR) kabul edilir ise insülin cevabı e, (AIR) glukoz. Hayvan daha dismetabolik hale geldikçe, insülin AUC insülin duyarsızlığı artırmak için tazminat yansıtan artacaktır. Aşikar diyabet hayvan geçişleri gibi, ancak, AUC AIR tarafından yakalanan, akut insülin aşamasında genellikle başlangıçta, azalacaktır. </li></ol>

<ol>
	<li>Bergman, R., Phillips, L., Cobelli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiologic+evaluation+of+factors+controlling+glucose+tolerance+in+man.">Physiologic evaluation of factors controlling glucose tolerance in man.</a> J. Clin. Invest. 68, 1456-1457 (1981).</li><li>Bergman, R., Prager, R., Volund, A., Olefsky, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Equivalence+of+the+insulin+sensitivity+index+in+man+derived+by+the+minimal+model+and+the+euglycemic+glucose+clamp.">Equivalence of the insulin sensitivity index in man derived by the minimal model and the euglycemic glucose clamp.</a> J. Clin. Invest. 79, 790-800 (1987).</li><li>Hovorka, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Partitioning+glucose+distribution/transport,+disposal,+and+endogenous+production+during+IVGTT.">Partitioning glucose distribution/transport, disposal, and endogenous production during IVGTT.</a> Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 282, E992-E1007 (2002).</li><li>Salinari, S., Guidone, C., Bertuzzi, A., Manco, M., Asnaghi, S., Mingrone, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=First-phase+insulin+secretion+restoration+and+differential+response+to+glucose+load+depending+on+the+route+of+administration+in+type+2+diabetic+subjects+after+beriatric+surgery.">First-phase insulin secretion restoration and differential response to glucose load depending on the route of administration in type 2 diabetic subjects after beriatric surgery.</a> Diabetes Care. 32 (3), 375-380 (2009).</li><li>Roden, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Clinical Diabetes Research: Methods and Techniques. , (2007).</li><li>Cobelli, C., Pacini, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+secretion+and+hepatic+extraction+in+humans+by+minimal+modeling+of+c-peptide+and+insulin+kinetics.">Insulin secretion and hepatic extraction in humans by minimal modeling of c-peptide and insulin kinetics.</a> Diabetes. 37, 223-231 (1988).</li><li>Lorenzo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Disposition+index,+glucose+effectiveness,+and+conversion+to+type+2+diabetes:+the+insulin+resistance+atherosclerosis+study.">Disposition index, glucose effectiveness, and conversion to type 2 diabetes: the insulin resistance atherosclerosis study.</a> Diabetes Care. 33, 2098-2103 (2010).</li><li>Hansen, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Investigation+and+treatment+of+type+2+diabetes+in+nonhuman+primates.">Investigation and treatment of type 2 diabetes in nonhuman primates.</a> Methods Mol Biol. 933, 177-185 (2012).</li><li>Hansen, B. C., Bodkin, N. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Standardization+of+IVGTT.+Importance+of+method+used+to+calculate+glucose+disappearance.">Standardization of IVGTT. Importance of method used to calculate glucose disappearance.</a> Diabetes Care. 16 (5), 847 (1993).</li><li>Hardwood, J. H., Listrani, P., Wagner, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonhuman+primates+and+other+animal+models+in+diabetes+research.">Nonhuman primates and other animal models in diabetes research.</a> J Diabetes Sci Tech. 3, 503-514 (2012).</li><li>De Koning, E. J., Bodkin, N. L., Hansen, B. C., Clark, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diabetes+mellitus+in+Macaca+mulatta+monkeys+is+characterized+by+islet+amyloidosis+and+reduction+in+beta-cell+population.">Diabetes mellitus in Macaca mulatta monkeys is characterized by islet amyloidosis and reduction in beta-cell population.</a> Diabetologia. 36, 378-384 (1993).</li><li>Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insulin+secretion,+clearance+and+action+before+and+after+gastroplasty+in+severely+obese+subjects.">Insulin secretion, clearance and action before and after gastroplasty in severely obese subjects.</a> Int J Obes Relat Metab Disord. 18, 295-300 (1994).</li><li>Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Postgastroplasty+recovery+of+ideal+body+weight+normalizes+glucose+and+insulin+metabolism+in+obese+women.">Postgastroplasty recovery of ideal body weight normalizes glucose and insulin metabolism in obese women.</a> J Clin Endocrinol Metab. 80, 364-369 (1995).</li><li>Kim, S. H., Abbasi, F., Chu, J. W., McLaughlin, T. L., Lamendola, C., Polonsky, K. S., Reaven, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rosiglitazone+reduces+glucose-stimulated+insulin+secretion+rate+and+increases+insulin+clearance+in+nondiabetic,+insulin-resistant+individuals.">Rosiglitazone reduces glucose-stimulated insulin secretion rate and increases insulin clearance in nondiabetic, insulin-resistant individuals.</a> Diabetes. 54, 2447-2452 (2005).</li><li>Toffolo, G., Breda, E., Cavaghan, M. K., Ehrmann, D. A., Polonsky, K. S., Cobelli, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+indexes+of+beta-cell+function+during+graded+up+and+down+glucose+infusion+from+C-peptide+minimal+models.">Quantitative indexes of beta-cell function during graded up and down glucose infusion from C-peptide minimal models.</a> Am J Physiol Endocrinol Metab. 280, E2-E10 (2001).</li><li>Wang, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantification+of+beta-cell+insulin+secretory+function+using+a+graded+glucose-infusion+with+C-peptide+deconvolution+in+dysmetabolic,+and+diabetic+cynomolgus+monkeys.">Quantification of beta-cell insulin secretory function using a graded glucose-infusion with C-peptide deconvolution in dysmetabolic, and diabetic cynomolgus monkeys.</a> Diabetology and Metabolic Syn. 5, 40 (2013).</li><li>Xiao, Y. F., Wang, B., Wang, X., Du, F., Benzinou, M., Wang, Y. X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Xylazine-induced+reduction+of+tissue+sensitivity+to+insulin+leads+to+acute+hyperglycemia+in+diabetic+and+normoglycemic+monkeys.">Xylazine-induced reduction of tissue sensitivity to insulin leads to acute hyperglycemia in diabetic and normoglycemic monkeys.</a> Anesthesiology. 13 (33), (2013).</li><li>Porte, D., Kahn, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#946;-cell+dysfunction+and+failure+in+type+2+diabetes+potential+mechanisms.">&#946;-cell dysfunction and failure in type 2 diabetes potential mechanisms.</a> Diabetes. 50, S160-S163 (2001).</li><li>DeFronzo, R. A., Tobin, J. D., Andres, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glucose+clamp+technique:+a+method+for+quantifying+insulin+secretion+and+resistance.">Glucose clamp technique: a method for quantifying insulin secretion and resistance.</a> American Journal of Physiology. 237 (3), G214-G223 (1979).</li><li>Ferrannini, E., Gastaldelli, A., Miyazaki, Y., Matsuda, M., Mari, A., DeFronzo, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=&#946;-cell+function+in+subjects+spanning+the+range+from+normal+glucose+tolerance+to+overt+diabetes:+a+new+analysis.">&#946;-cell function in subjects spanning the range from normal glucose tolerance to overt diabetes: a new analysis.</a> J Clin Endocrinol Metab. 90 (1), 493-500 (2005).</li><li>Vaughan, K. L., Szarowicz, M. D., Herbert, R. L., Mattison, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+anesthesia+protocols+for+intravenous+glucose+tolerance+testing+in+rhesus+monkeys.">Comparison of anesthesia protocols for intravenous glucose tolerance testing in rhesus monkeys.</a> J Med Primatol. 43, 162-168 (2014).</li><li>Kemnitz, J. W., Kraemer, G. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Assessment+of+glucoregulation+in+rhesus+monkeys+sedated+with+ketamine.">Assessment of glucoregulation in rhesus monkeys sedated with ketamine.</a> American Journal of Primatology. 3, 201-210 (1982).</li><li>Dutton, C. J., Parvin, C. A., Gronowski, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+glycated+hemoglobin+percentages+for+use+in+the+diagnosis+and+monitoring+of+diabetes+mellitus+in+nonhuman+primates.">Measurement of glycated hemoglobin percentages for use in the diagnosis and monitoring of diabetes mellitus in nonhuman primates.</a> Am J Vet Res. 64, 562-568 (2003).</li><li>Rai, V., Iyer, U., Mani, I., Mani, U. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serum+biochemical+changes+in+insulin+dependent+and+non-insulin+dependent+diabetes+mellitus+and+their+role+in+the+development+of+secondary+complications.">Serum biochemical changes in insulin dependent and non-insulin dependent diabetes mellitus and their role in the development of secondary complications.</a> Int J Diab Dev Countries. 17, 33-37 (1997).</li><li>Shirasaki, Y., Yoshioka, N., Kanazawa, K., Maekawa, T., Horikawa, T., Hayashi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+physical+restraint+on+glucose+tolerance+in+cynomolgus+monkeys.">Effect of physical restraint on glucose tolerance in cynomolgus monkeys.</a> J Med Primatol. 42, 165-168 (2013).</li></ol>

Yazarlar metabolik hastalık alanında aktif bir sözleşmeli araştırma kuruluşuna (Taç Bioscience) ile bağlıdırlar.

İVGTT tahlil itibaren, açlık kan şekeri ve insülin seviyesinin elde edilir. Vücut ağırlığı 5, 12, 13 dayalı tek bir dekstroz infüzyon ile glukoz ile uyarılmış insülin salınımı kapasitesini değerlendirir ve hayvanın kapasitesinin değerlendirilmesini sağlar insülin bırakın ve başlangıca doğru yükselmiş glukoz düzeyi döndürür. Bu normal bir glukoz ve insülin düzeyi, sağlıklı kontrol, Normogliseminin ile hiperinsülinemik dismetabolik hayvan veya bir hiperglisemik insülin...

IVGTT rutin farklı metabolik Devletleri 5 7 insanlarda β-hücresi fonksiyonunu belirlemek için kullanılan uygun bir işlevsel tahlildir. T2D hayvan modellerinde, bu da iyi metabolik hastalık ilerlemesini gösteren hayvanlar karakterize etmek için bir araç olarak kabul edilmektedir bir dismetabolik hiperglisemik hal 8, 9 sağlıklı. T2D en yakın hayvan modeli, rhesus ve sinomolgus maymunları önemli örneklerdir olan insan olmayan primatlarda (NHPs), gösterilmektedir. Bu hayvanlar doğal insanlarda 10 gibi yaş ve sıklığı katkıda obezite aynı risk faktörleri ile T2D gelişir. Ayrıca, orada da benzer bir hastalık ilerlemesi ve dismetabolik hastalığı 11 ilerledikçe pankreas patoloji amiloid birikimi gösteren. İşte bu hayvanlarda metabolik durumunun bizim koloni karakterizasyonu bir parçası olarak NHPs bir İVGTT gerçekleştirme standart yönteme rapor. Bu yöntem, birtüketen diğer, daha zaman ve pahalı teknikler 2 göreli gerçekleştirmek kolay. IVGTT hızlı ve sık sık hayvanların büyük bir koloni karakterize etmek için yararlıdır. Glike hemoglobin (HbA1C) düzeyi ile dikkate alındığında, hayvanın beslenme ve gıda alımı tarih, yanı sıra yüzde yağsız kütle ve vücut yağ, İVGTT normalde aşikar diyabet 6 doğru bir hayvanın metabolik durumunu ve ilerlemesini karakterize etmek için yeterlidir 8. HbA1C üç ay önceki altı hafta içinde glikoz seviyelerinin güvenilir bir ölçümünü sağlayan bir kırmızı kan hücresinin ömrü boyunca ortalama glisemik düzeyini temsil eder. IVGTT&#39;nin oruç bazal kan örneğinden ölçüldüğünde, bu değer prosedürleri arasında aylarda glisemik kontrol içine bir pencere sağlar. hayvan son IVGTT&#39;nin beri diyabetik için dismetabolik dan geçiş ise, önceki değerinden çok daha yüksek bir HbA1C değeri işaret ederGeçiş yakında başladı son IVGTT&#39;nin sonra ise, yakın önceki değere bir HbA1C değeri sadece son zamanlarda geçişini olduğunu işaret eder. Genel olarak, rhesus makak içinde, HbA1C% 6 kötü glisemik kontrolü 10, 23 anormal kabul edilir ve işaret edilir daha fazla değer verir. Glisemi düzeyleri bir bütün olarak hayvan davranışı ve genel sağlığı kapsamında değerlendirilmelidir. Diyabetik makakları - sergi hyperphagia, polidipsi, poliüri ve - insanlar gibi. Hayvanların grup konut dismetabolik ve diyabetik maymunlar için gerekli bu göstergeler ve bireysel bakım ölçümü için önemli zorluklar sağlar. Bu, tek başına fazla kişisel bakım sağlanabilir sırayla hayvanları konut tavsiye ve daha kolay bir şekilde maymun sağlığı davranışsal belirteçleri 8 izlenmelidir. Buna ek olarak, diyabetik makakları kilo kaybı, yanı sıra artan yüksek bir lipid profili (sergileyecekkolesterol, hipertrigliseridemi) ve serum kimyasında rahatsız mineral metabolizması. Bu organlara zarar metabolik bozukluk / diyabet ilerleyen komplikasyonları genellikle, ve glisemik, lipid ve mineral dengesizlikleri 9, 11, 18 ortak belirleyicileri olabilir 24 gibi, karaciğer ve serum kimyasında böbrek fonksiyonunun belirteçleri ölçmek önemlidir . Bu yöntemi kullanırken bir maymunun hayat belirli değere sahip üzerine, tarihi değerleri çoklu sık karakterizasyonu oluşturulan. Böyle bir glikoz kelepçe veya kademeli glukoz infüzyon (GGI) gibi diğer işlemler, tam bir hayvanın sağlığını değerlendirmek için gerekli olup olmadığını kendi geçmişi kullanılamaz olduğunda, ilk karakterizasyonu üzerine yaygın olduğunu. her üç ayda bir bir sıklıkta bir temel oluşturulmuştur Ancak, bir kez tekrarlanan IVGTT&#39;ler, operasyondan bir hayvanın ilerlemesini takip etmek için, normal olarak yeterlidir. hayvanlar üzerinde birden fazla çalışmalar alındı ​​zaman bu özellikle önemlidirtakvim yılı metabolik durumuna dayalı. sağlık bir seferde yıl nispeten istikrarlı kalabilir sırasında bir hayvanın metabolik durumu kötüleşir zaman, insülin direnci ve glukoz intoleransı dramatik bir artış çok hızlı oluşabilir. HbA1C değerleri üç ay arayla planlanan prosedürleri arasında hayvan sağlık durumunun azalması ya da bazı gelişmeler enterpolasyon için izin verir. Bu nedenle, bu yöntem, doğal ömrü boyunca birden fazla uzunlamasına çalışmalarda kullanılan hayvanların vasıflandırılması için idealdir.

<table><tbody><tr><td>Allegra X-15R Centrifuge</td><td></td><td></td><td>plasma: 4 &amp;#176;C at 3,000 rpm for 10 min</td></tr><tr><td>Sorvall ST16R Centrifuge</td><td></td><td></td><td>serum: 22 &amp;#176;C at 3,000 rpm for 10 min</td></tr><tr><td>Thermo Scientific -86 &amp;#176;C Freezer, Forma 88000 Series</td><td></td><td>Model: 88500A</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose 50% (D50)</td><td>Webster</td><td>07-8008986</td><td>I.V. glucose infusate</td></tr><tr><td>3 ml Luer Lock Syringe</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>serial blood draws</td></tr><tr><td>5 ml Luer Lock Syringe</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>heparinized saline flush</td></tr><tr><td>10 ml Luer Lock Syringe</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td></td><td>delivery of I.V. D50</td></tr><tr><td>Gauze sponges 2 x 2</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>366.23000.4</td><td>Used Dry, w/ 70% Alcohol, and 2% Chlorohex Solution</td></tr><tr><td>4 ml serum separator tubes&amp;nbsp;</td><td>Midwest Veterinary Supply</td><td>366.45000.4</td><td>blood collection tube for superchem panel</td></tr><tr><td>K&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;EDTA, 2 ml</td><td>VWR</td><td>95057-239</td><td>blood collection tubes</td></tr><tr><td>Aprotinin, 100 mg</td><td>Sigma</td><td>A1153-100MG</td><td>blood collection tube protease additive</td></tr><tr><td>22 G x 1&quot; Catheters</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>193.75250.2</td><td>I.V. catheter&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Injection Plug W/ Cap</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.11500.2</td><td>%50 dextrose infusion port</td></tr><tr><td>Porus Tape, 1/2&quot; x 10 yd</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.85000.2</td><td>maintain adherance of catheters and hep. Locks</td></tr><tr><td>Chlorhexidine Solution 2%</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>193.08855.3</td><td>prep catheter site</td></tr><tr><td>70% Ethanol</td><td>VWR</td><td>71001-654</td><td>prep catheter site</td></tr><tr><td>tourniquet</td><td>Webster</td><td>07-8003432</td><td></td></tr><tr><td>3-way stopcock</td><td>Midwest Veterinary Supply</td><td>366.28510.4</td><td>hep. lock</td></tr><tr><td>37&quot; extension set</td><td>Webster</td><td>07-8454200</td><td>hep. lock</td></tr><tr><td>Exel 50-60cc LL Syringes</td><td>Midwest Veterinary Suppy</td><td>001.12250.2</td><td>Heparinized saline flush</td></tr><tr><td>250 ml bag 0.9% saline</td><td>Webster</td><td>07-8365593</td><td>flush</td></tr><tr><td>1,000 U Heparin, 10 ml</td><td>Webster</td><td>07-883-4916</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine (Ketaset) 100&amp;nbsp;mg/ml</td><td>Fort Dodge</td><td>(AV ordered)</td><td></td></tr><tr><td>Precision Xtra glucose test strips 50/bx</td><td>Abbott (American Diabetes Wholesale)</td><td>9381599728K7</td><td>test baseline/T3 blood glucose levels</td></tr><tr><td>Masimo Rad 57</td><td>DRE</td><td>6052057V</td><td>pulse-oximeter</td></tr><tr><td>Pavia rectal thermometer</td><td>Patterson</td><td>07-8391335</td><td></td></tr><tr><td>Precision Xtra Glucometer</td><td>Abbott</td><td>9381599728K7</td><td>Handheld glucometer</td></tr></tbody></table>

characterization of metabolic status in nonhuman primates with the intravenous glucose tolerance test

İntravenöz glikoz tolerans testi (IVGTT) glikoz dengesinin karakterizasyonu önemli bir rol oynar. serum biyokimyasal profilleri, hem beslenen kan glikoz seviyelerinin kapsayıcı ve açlık durumunda, HbA1c, insülin düzeyleri, diyet klinik öykü, vücut kompozisyonu ve vücut ağırlığı durumu, normal ve anormal glisemik kontrolün değerlendirilmesi ile birlikte alındığında yapılabilir . Bir IVGTT&#39;nin yorumlanması dekstroz meydan ilişkin zamanla kan şekeri ve insülin düzeylerinde değişiklikler ölçümü ile yapılır. Dikkate alınması gereken kritik bileşenleri şunlardır: T0 (glikoz infüzyon sonu), ilk 20 dakika içinde hızlı glikoz temizlenmesi eğiminden elde edilen glukoz temizlenme oranı K (T20 T1), zamana göre ulaşılan zirve glikoz ve insülin düzeyleri glikoz taban dönmek için, ve eğri (AUC) altındaki alan. Bu İVGTT önlemler sağlıklı bir t glikoz homeostasis hareket ettikçe karakteristik değişiklikler gösteriroa hastalıklı metabolik durumu 5. Bu yazıda gelen insanlarda Tip II diyabet (T2D) en alakalı hayvan modeli ve İVGTT ve bu hayvanların klinik profilleri insan dışı primatlarda (Rhesus ve sinomolgus makakları), karakterizasyonu anlatacağım bir obez dismetabolik için, sağlıklı yalın, ve T2D devlet 8, 10, 11.

Şekil 1 &#39;de gösterilen sonuçlar, bir 30 dakika IVGTT&#39;nin boyunca, olgun, sağlıklı ve diyabetik sinomolgus makaklar tipik glükoz ve insülin eğrilerinin gösterim bulunmaktadır. Sağlıklı ve ilerlemiş diyabetik maymunlar elde edilen veriler metabolik karakterizasyonu aralığının her iki uç ucundan hayvanlar arasında belirgin farklılıklar kontrast için gösterilmiştir. Bu İVGTT protokol benzer sonuçlar ile rhesus makak yazarlar tarafından ba...

Watch this Scientific Journal Video about Characterization of Metabolic Status in Nonhuman Primates with the Intravenous Glucose Tolerance Test at JoVE.com

Characterization of Metabolic Status in Nonhuman Primates with the Intravenous Glucose Tolerance Test

Bu protokolün amacı, insan dışı primatlarda glisemik kontrolü değerlendirmek ve dismetabolik sağlıklı onların metabolik durumunu değerlendirmek için intravenöz glikoz tolerans testi (IVGTT&#39;ler) gerçekleştirmek için standart bir yöntem sunmaktır.

İntravenöz Glikoz Tolerans Testi ile insan olmayan primatlarda Metabolik Durumu Karakterizasyonu

The intravenous glucose tolerance test (IVGTT) plays a key role in the characterization of glucose homeostasis. When taken together with serum biochemical ...

characterization-metabolic-status-nonhuman-primates-with-intravenous

Research

JoVE Journal

Medicine

10.9K Görüntüleme.  Crown Bioscience.  Bu protokolün amacı, insan dışı primatlarda glisemik kontrolü değerlendirmek ve dismetabolik sağlıklı onların metabolik durumunu değerlendirmek için intravenöz glikoz tolerans testi (IVGTT'ler) gerçekleştirmek için standart bir yöntem sunmaktır. 

Video: Characterization of Metabolic Status in Nonhuman Primates with the Intravenous Glucose Tolerance Test

Analysis of Non-Human Primate Pancreatic Islet Oxygen Consumption

The measurement of oxygen consumption in spheroid clusters of cells, such as ex vivo pancreatic islets, has historically been challenging. We demonstrate the measurement of islet oxygen consumption using a 96-well microplate designed for the measurement of oxygen consumption in spheroids. In this assay, spheroid microplates are coated with a cell and tissue adhesive on the day prior to the assay. We utilize a small volume of adhesive solution to encourage islet adherence to only the bottom of the well. On the day of the assay, 15 islets are loaded directly into the base of each well using a technique that ensures optimal positioning of islets and accurate measurement of oxygen consumption. Various aspects of mitochondrial respiration are probed pharmacologically in non-human primate islets, including ATP-dependent respiration, maximal respiration, and proton leak. This method allows for consistent, reproducible results using only a small number of islets per well. It can theoretically be applied to any cultured spheroids of similar size.

This protocol demonstrates the accurate and reproducible measurement of oxygen consumption in non-human primate pancreatic islets. The islet loading techniques and coating of the microplate provide a framework for efficient measurement of respiration in other types of cultured spheroids.

İnsan Dışı Primat Pankreatik Adacık Oksijen Tüketiminin Analizi

The measurement of oxygen consumption in spheroid clusters of cells, such as ex vivo pancreatic islets, has historically been challenging. We demonstrate ...

Gelişim Biyolojisi

Intraperitoneal Glucose Tolerance Test, Measurement of Lung Function, and Fixation of the Lung to Study the Impact of Obesity and Impaired Metabolism on Pulmonary Outcomes

Obesity and respiratory disorders are major health problems. Obesity is becoming an emerging epidemic with an expected number of over 1 billion obese individuals worldwide by 2030, thus representing a growing socioeconomic burden. Simultaneously, obesity-related comorbidities, including diabetes as well as heart and chronic lung diseases, are continuously on the rise. Although obesity has been associated with increased risk for asthma exacerbations, worsening of respiratory symptoms, and poor control, the functional role of obesity and perturbed metabolism in the pathogenesis of chronic lung disease is often underestimated, and underlying molecular mechanisms remain elusive. This article aims to present methods to assess the effect of obesity on metabolism, as well as lung structure and function. Here, we describe three techniques for mice studies: (1) assessment of intraperitoneal glucose tolerance (ipGTT) to analyze the effect of obesity on glucose metabolism; (2) measurement of airway resistance (Res) and respiratory system compliance (Cdyn) to analyze the effect of obesity on lung function; and (3) preparation and fixation of the lung for subsequent quantitative histological assessment. Obesity-related lung diseases are probably multifactorial, stemming from systemic inflammatory and metabolic dysregulation that potentially adversely influence lung function and the response to therapy. Therefore, a standardized methodology to study molecular mechanisms and the effect of novel treatments is essential.

The incidence of obesity is rising and increases the risk of chronic lung diseases. To establish the underlying mechanisms and preventive strategies, well-defined animal models are needed. Here, we provide three methods (glucose-tolerance-test, body plethysmography, and lung fixation) to study the effect of obesity on pulmonary outcomes in mice.

Mayi glikoz tolerans testi, akciğer işlev ölçümü ve akciğer fiksasyonu obezite ve pulmoner sonuçlar üzerine Engelli metabolizma etkisini incelemek için

Obesity and respiratory disorders are major health problems. Obesity is becoming an emerging epidemic with an expected number of over 1 billion obese ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT

This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). Impaired uptake and metabolism of glucose in multiple organ systems due to insulin resistance is a hallmark of type 2 diabetes. The ability of this technique to extract an image-derived input function from the vena cava using an iterative deconvolution method eliminates the requirement of the collection of arterial blood samples. Fitting of tissue and vena cava time activity curves to a two-tissue, three compartment model permits the estimation of kinetic micro-parameters related to the 18F-FDG uptake from the plasma to the intracellular space, the rate of transport from intracellular space to plasma and the rate of 18F-FDG phosphorylation. This methodology allows for multiple measures of glucose uptake and metabolism kinetics in the context of longitudinal studies and also provides insights into the efficacy of therapeutic interventions.

Determining Glucose Metabolism Kinetics Using 18F-FDG Micro-PET/CT

This study describes a protocol that uses 18F-FDG and positron emission tomography/computed tomography (PET/CT) imaging, together with kinetic modelling, to quantify the in vivo, real-time uptake of 18F-FDG into tissues.

Kullanımı Glukoz Metabolizma Kinetiği Belirlenmesi<sup&gt; 18</sup&gt; F-FDG Mikro PET / BT

This paper describes the use of 18F-FDG and micro-PET/CT imaging to determine in vivo glucose metabolism kinetics in mice (and is transferable to rats). ...

Tıp

Study of In Vivo Glucose Metabolism in High-fat Diet-fed Mice Using Oral Glucose Tolerance Test (OGTT) and Insulin Tolerance Test (ITT)

Obesity represents the most important single risk factor in the pathogenesis of type 2 diabetes, a disease which is characterized by a resistance to insulin-stimulated glucose uptake and a gross decompensation of systemic glucose metabolism. Despite considerable progress in the understanding of glucose metabolism, the molecular mechanisms of its regulation in health and disease remain under-investigated, while novel approaches to prevent and treat diabetes are urgently needed. Diet derived glucose stimulates the pancreatic secretion of insulin, which serves as the principal regulator of cellular anabolic processes during the fed-state and thus balances blood glucose levels to maintain systemic energy status. Chronic overfeeding triggers meta-inflammation, which leads to alterations in peripheral insulin receptor-associated signaling and thus reduces the sensitivity to insulin-mediated glucose disposal. These events ultimately result in elevated fasting glucose and insulin levels as well as a reduction in glucose tolerance, which in turn serve as important indicators of insulin resistance. Here, we present a protocol for the generation and metabolic characterization of high-fat diet (HFD)-fed mice as a frequently used model of diet-induced insulin resistance. We illustrate in detail the oral glucose tolerance test (OGTT), which monitors the peripheral disposal of an orally administered glucose load and insulin secretion over time. Additionally, we present a protocol for the insulin tolerance test (ITT) to monitor whole-body insulin action. Together, these methods and their downstream applications represent powerful tools to characterize the general metabolic phenotype of mice as well as to specifically assess alterations in glucose metabolism. They may be especially useful in the broad research field of insulin resistance, diabetes and obesity to provide a better understanding of pathogenesis as well as to test the effects of therapeutic interventions.

Study of In Vivo Glucose Metabolism in High-fat Diet-fed Mice Using Oral Glucose Tolerance Test OGTT and Insulin Tolerance Test ITT

The current article describes the generation and metabolic characterization of high-fat diet-fed mice as a model of diet-induced insulin resistance and obesity. It further features detailed protocols to perform the oral glucose tolerance test and the insulin tolerance test, monitoring whole-body alterations of glucose metabolism in vivo.

Vivo glikoz metabolizması farelerde Oral glukoz tolerans testi (OGTT) ve insülin tolerans testi (ITT) kullanarak yüksek yağlı diyet beslenen incelenmesi

Obesity represents the most important single risk factor in the pathogenesis of type 2 diabetes, a disease which is characterized by a resistance to ...

Body Composition and Metabolic Caging Analysis in High Fat Fed Mice

Alterations to body composition (fat or lean mass), metabolic parameters such as whole-body oxygen consumption, energy expenditure, and substrate utilization, and behaviors such as food intake and physical activity can provide important information regarding the underlying mechanisms of disease. Given the importance of body composition and metabolism to the development of obesity and its subsequent sequelae, it is necessary to make accurate measures of these parameters in the pre-clinical research setting. Advances in technology over the past few decades have made it possible to derive these measures in rodent models in a non-invasive and longitudinal fashion. Consequently, these metabolic measures have proven useful when assessing the response of genetic manipulations (for example knockout or transgenic mice, viral knock-down or overexpression of genes), experimental drug/compound screening and dietary, behavioral or physical activity interventions. Herein, we describe the protocols used to measure body composition and metabolic parameters using an animal monitoring system in chow-fed and high fat diet-fed mice.

This protocol describes the use of a body composition analyzer and metabolic animal monitoring system to characterize body composition and metabolic parameters in mice. An obesity model induced by high-fat feeding is used as an example for the application of these techniques.

Vücut kompozisyonu ve metabolik Caging Analizi yüksek yağ Fed farelerde

Alterations to body composition (fat or lean mass), metabolic parameters such as whole-body oxygen consumption, energy expenditure, and substrate ...

Acclimation Prior to an Intraperitoneal Insulin Tolerance Test to Mitigate Stress-Induced Hyperglycemia in Conscious Mice

The insulin tolerance test is commonly used in metabolic studies to assess whole body insulin sensitivity in rodents. It is a relatively simple test that involves measurement of blood glucose levels over time following a single intraperitoneal injection of insulin. Given that it is performed in the conscious state and blood is often collected via a tail snip, it has the potential to elicit a stress response from animals due to anxiety associated with handling and blood collection. As such, a stress-induced rise in blood glucose can occur, making it difficult to detect and interpret the primary endpoint measure, namely an insulin-mediated reduction in blood glucose. This has been seen in many mouse strains, and is quite common in diabetic db/db mice, where glucose levels can increase, rather than decrease, after insulin administration. Here, we describe a method of acclimating mice to handling, injections and blood sampling prior to performing the insulin tolerance test. We find that this lowers stress-induced hyperglycemia and results in data that more accurately reflects whole body insulin sensitivity.

<meta charset="utf8"></head><body>Bilinçli farelerde strese bağlı hiperglisemiyi azaltmak için intraperitoneal insülin tolerans testinden önce iklimlendirme

Stress-induced elevations in glucose levels can confound interpretation of data derived from a conscious intraperitoneal insulin tolerance test in mice. In this article, we describe a method to acclimate the mice to handling, injections and blood sampling prior to performing the insulin tolerance test in order to limit stress-induced hyperglycemia.

Bilinçli farelerde strese bağlı hiperglisemiyi azaltmak için intraperitoneal insülin tolerans testinden önce iklimlendirme

The insulin tolerance test is commonly used in metabolic studies to assess whole body insulin sensitivity in rodents. It is a relatively simple test that ...

Evaluation of Hepatic Glucose Production in a Polycystic Ovary Syndrome Mouse Model

Polycystic ovary syndrome (PCOS) is a common disease that results in disorders of glucose metabolism, such as insulin resistance and glucose intolerance. Dysregulated glucose metabolism is an important manifestation of the disease and is the key to its pathogenesis. Therefore, studies involving evaluation of glucose metabolism in PCOS are of utmost importance. Very few studies have quantified hepatic glucose production directly in PCOS models using non-radioactive glucose tracers. In this study, we discuss step-by-step instructions for the quantification of the rate of hepatic glucose production in a PCOS mouse model by measuring M+2 enrichment of [6,6-2H2]glucose, a stable isotopic glucose tracer, via gas chromatography - mass spectrometry (GCMS). This procedure involves creation of stable isotopic glucose tracer solution, use of tail vein catheter placement and infusion of the glucose tracer in both fasting and glucose-rich states in the same mouse in tandem. The enrichment of [6,6-2H2]glucose is measured using pentaacetate derivative in GCMS. This technique can be applied to a wide variety of studies involving direct measurement of the rate of hepatic glucose production.

This study describes the direct measurement of hepatic glucose production in a polycystic ovary syndrome mouse model by using a stable isotopic glucose tracer via tail vein in both fasting and glucose-rich states in tandem.

Polikistik Over Sendromu Fare Modelinde Hepatik Glikoz Üretiminin Değerlendirilmesi

Polycystic ovary syndrome (PCOS) is a common disease that results in disorders of glucose metabolism, such as insulin resistance and glucose intolerance. ...

Glucose Uptake Measurement and Response to Insulin Stimulation in In Vitro Cultured Human Primary Myotubes

Skeletal muscle is the largest glucose deposit in mammals and largely contributes to glucose homeostasis. Assessment of insulin sensitivity of muscle cells is of major relevance for all studies dedicated to exploring muscle glucose metabolism and characterizing metabolic alterations. In muscle cells, glucose transporter type 4 (GLUT4) proteins translocate to the plasma membrane in response to insulin, thus allowing massive entry of glucose into the cell. The ability of muscle cells to respond to insulin by increasing the rate of glucose uptake is one of the standard readouts to quantify muscle cell sensitivity to insulin. Human primary myotubes are a suitable in vitro model, as the cells maintain many features of the donor phenotype, including insulin sensitivity. This in vitro model is also suitable for the test of any compounds that could impact insulin responsiveness. Measurements of the glucose uptake rate in differentiated myotubes reflect insulin sensitivity.
In this method, human primary muscle cells are cultured in vitro to obtain differentiated myotubes, and glucose uptake rates with and without insulin stimulation are measured. We provide a detailed protocol to quantify passive and active glucose transport rates using radiolabeled [3H] 2-deoxy-D-Glucose ([3H]2dG). Calculation methods are provided to quantify active basal and insulin-stimulated rates, as well as stimulation fold.

Glucose Uptake Measurement and Response to Insulin Stimulation in In Vitro Cultured Human Primary Myotubes

In this method, human primary muscle cells are cultured in vitro to obtain differentiated myotubes and glucose uptake rates are measured. We provide a detailed protocol to quantify rates in basal and insulin-stimulated states using radiolabeled [3H] 2-deoxy-D-Glucose.

Glikoz Alımı Ölçümü ve İnsülin Uyarıcısına Yanıt<em&gt; In vitro</em&gt; Kültürlü İnsan Primer Miyotları

Skeletal muscle is the largest glucose deposit in mammals and largely contributes to glucose homeostasis. Assessment of insulin sensitivity of muscle ...

Biyoloji

Using a Combination of Indirect Calorimetry, Infrared Thermography, and Blood Glucose Levels to Measure Brown Adipose Tissue Thermogenesis in Humans

In mammals, brown adipose tissue (BAT) is activated rapidly in response to cold in order to maintain body temperature. Although BAT has been studied greatly in small animals, it is difficult to measure the activity of BAT in humans. Therefore, little is known about the heat-generating capacity and physiological significance of BAT in humans, including the degree to which components of the diet can activate BAT. This is due to the limitations in the currently most used method to assess the activation of BAT-radiolabeled glucose (fluorodeoxyglucose or 18FDG) measured by positron emission tomography-computerized tomography (PET-CT).
This method is usually performed in fasted subjects, as feeding induces glucose uptake by the muscles, which can mask the glucose uptake into the BAT. This paper describes a detailed protocol for quantifying total-body human energy expenditure and substrate utilization from BAT thermogenesis by combining indirect calorimetry, infrared thermography, and blood glucose monitoring in carbohydrate-loaded adult males. To characterize the physiological significance of BAT, measures of the impact of BAT activity on human health are critical. We demonstrate a protocol to achieve this by combining carbohydrate loading and indirect calorimetry with measurements of supraclavicular changes in temperature. This novel approach will help to understand the physiology and pharmacology of BAT thermogenesis in humans.

Here, we present a protocol to quantify the physiological significance of the impact of brown adipose tissue (BAT) activity on human metabolism. This is achieved by combining carbohydrate loading and indirect calorimetry with measurements of supraclavicular changes in temperature. This novel approach can help develop a pharmacological target for BAT thermogenesis in humans.

İnsanlarda kahverengi yağ dokusu termojenezini ölçmek için dolaylı kalorimetri, kızılötesi termografi ve kan şekeri seviyelerinin bir kombinasyonunu kullanma

In mammals, brown adipose tissue (BAT) is activated rapidly in response to cold in order to maintain body temperature. Although BAT has been studied ...

İntravenöz Glikoz Tolerans Testi ile insan olmayan primatlarda Metabolik Durumu Karakterizasyonu

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

İnsan Dışı Primat Pankreatik Adacık Oksijen Tüketiminin Analizi

Mayi glikoz tolerans testi, akciğer işlev ölçümü ve akciğer fiksasyonu obezite ve pulmoner sonuçlar üzerine Engelli metabolizma etkisini incelemek için

Kullanımı Glukoz Metabolizma Kinetiği Belirlenmesi

Vivo glikoz metabolizması farelerde Oral glukoz tolerans testi (OGTT) ve insülin tolerans testi (ITT) kullanarak yüksek yağlı diyet beslenen incelenmesi

Vücut kompozisyonu ve metabolik Caging Analizi yüksek yağ Fed farelerde

Bilinçli farelerde strese bağlı hiperglisemiyi azaltmak için intraperitoneal insülin tolerans testinden önce iklimlendirme

Bilinçli farelerde strese bağlı hiperglisemiyi azaltmak için intraperitoneal insülin tolerans testinden önce iklimlendirme

Polikistik Over Sendromu Fare Modelinde Hepatik Glikoz Üretiminin Değerlendirilmesi

Glikoz Alımı Ölçümü ve İnsülin Uyarıcısına Yanıt

İnsanlarda kahverengi yağ dokusu termojenezini ölçmek için dolaylı kalorimetri, kızılötesi termografi ve kan şekeri seviyelerinin bir kombinasyonunu kullanma