Name: a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees
Uploaded: 2016-09-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

Our study was conducted with the permission of United States Sugar Corporation. We want to thank R. Raid, S. Raid and T. Lang for their assistant. We also M. Stanback and three anonymous reviewers for suggestions that improved this manuscript.

Sürü Trap Kutuları 1. İnşaat NOT: 1.1 ve 1.2 adımları olarak oğul tuzak yapımı için iki alternatif protokoller vardır dahildir. tuzak kutuları inşa edilebilir birkaç ek yolu vardır. Biz deneylerde onları test ettik ve başarılı olmuştur çünkü aşağıdaki iki yöntem burada sunulmuştur. Her iki protokol için, 2 cm kalınlığında olmayan basınç tedavi kontrplak 1.3 cm kullanın. <ol><li> Sürü Trap Protokol Seçenek 1 İnşaatı: bir tuzak Kutusu Bina <ol><li> kontrplak 30 cm x 30 cm altı parça kesin. </li><li> çivi veya vida ile birlikte Kutunun dört kenarı, takın. </li><li> çivi veya vida ile alt parça takın. </li><li> vida veya tellerle üst parça takın. <ol><li> üst sabitlemek için çivi kullanmayın. Üst arıları çıkmak ve kutuyu temizlemek için çıkarılabilir olmalıdır. </li></ol></li><li> 2.5 cm alt kenardan tuzak kutunun bir yüzeyinin ortasında 2.5 cm delik delin. </li><li> S astarı uygulayınealant veya hava şartlarından ahşap korumak için tuzak kutusunun dışına boya. <ol><li> tuzak kutusunun içine boya veya dolguları sürmeyin. Bu itici ya da arılar için toksik olabilir. </li></ol></li></ol></li><li> Kullanım Standart Derin kovan Gövde: 2 Swarm Trap Kutusu Protokol Seçeneği İnşaatı <ol><li> Yerel bir arı malzemeleri satan bir mağazadan standart bir 10 kare derin kovan vücudu edinin. </li><li> genişliğinde 41.3 cm her ölçüm 50,8 cm uzunluğunda kontrplak bir alt ve üst kesti. </li><li> çivi veya vida ile alt parça takın. </li><li> vida veya tellerle üst parça takın. <ol><li> üst sabitlemek için çivi kullanmayın. Üst arıları çıkmak ve kutuyu temizlemek için çıkarılabilir olmalıdır. </li></ol></li><li> 2.5 cm alt kenardan tuzak kutusunun bir yanı üzerinde ortasında 2.5 cm delik delin. </li><li> hava koşullarından ahşap korumak için tuzak kutusunun dışına astar, dolgu macunu veya boya uygulayın. <ol><li> herhangi bir boya veya dolguları sürmeyintuzak kutusunun içinde. Bu itici ya da arılar için toksik olabilir. </li></ol></li></ol></li></ol> Feromon Lure 2. Hazırlık <ol><li> : 1 oranında bir 2 de sitral ve geraniol bir karışım hazırlayın. </li><li> bir çırpıda üstü 1.5 ml polipropilen mikrosantrifüj tüp içine bu karışımdan 1 ml yerleştirin. </li><li> ışıktan korumak için alüminyum folyo ile lures sarın. Not: santrifüj tüpünün kapağı bir itme pimi ile delinir monte sürüsü tuzağı yerleştirildiğinde. Not: Yemler A oda sıcaklığında karanlık bir yerde ya da daha uzun depolama için saklanabilir -10 ° C sıcaklıkta dondurucuya. </li></ol> Sürü Trap kutular 3. Kurulum NOT: adımlarda 3.1 ve 3.2 sunulan sürüsü tuzak kutuları montaj için iki alternatif protokoller vardır. <ol><li> Bir Post Kurulum: Swarm Trap Kutu Protokolü 1. Seçenek montajı <ol><li> zemine 10 cm basınç işlenmiş ahşap çit posta yoluyla 10 cm koyun 10 mkuş yuva kutusu bulunduğu yerden 15 m. </li><li> 20 cm 20 cm boyutlarında 1.3 cm kalınlığında basınç işlenmiş ahşap bir asma panosu oluşturun. </li><li> Kutunun üst üzerinde 10 cm, tuzak kutusunun bir tarafında ortasında asılı kartını hizalayın. yönetim kurulu her iki tarafında en az iki çivi veya vida ile kutuya kartını sabitleyen. </li><li> tuzak kutusu arılar tarafından kolonize edildiğinde güvenli ve kaldırma için kolay bir yükseklikte (1.5 m ile 3 m) de yazı üzerine tuzak kutusunun üzerine yerleştirin. asılı tahta takarak mesaja kutuyu vidalayın. yaklaşık 5 cm asılı kurulu üst altında bir vida yerleştirin ve vidalayın. <ol><li> onlar kaldırmak zordur, çünkü çivi kullanmayın. </li></ol></li></ol></li><li> Bir Tree Kurulum: Swarm Trap Kutu Protokolü Seçenek 2 montajı <ol><li> Kutunun her iki tarafında üst arka köşesinde 5 mm delik delin. </li><li> deliklerden bir tel geçirin. Not: Bu protokolü kullanarak Eğer EASI olacaker kutusunun üst güvence önce deliklerden tel koymak. </li><li> kuş yuva kutusu bulunduğu yerden yaklaşık 10 m 15 m uzaklıkta bir ağaç seçin. <ol><li> Birisi kuş kutusunun durumu hakkında kontrol ettiğinde, arılar tarafından kolonize tuzak kutuları savunmacı olmaya arılar neden rahatsız olabilir, çünkü kuş kutuları aynı ağaçlarda tuzak kutuları koymayınız. </li></ol></li><li> ağacın etrafında 1,5 m yerden 3 m tel sabitleyin. Not: ağacı korumak için, bir kambiyum koruyucu tel çevresinde kullanılabilir. <ol><li> o devrilebilir etmediğini emin kutu seviyesi ve güvenli olduğundan emin olun. kutu varsa eklenen istikrar için bir ağaç dalı üzerinde dinlenmiş olabilir. </li></ol></li></ol></li></ol> Feromon Lure 4. eklenmesi <ol><li> 2. bölümde bir önceden hazırlanmış cazibesi alın ve bir raptiye ile tüpün üst delinme. </li><li> inst sonra girişine yakın alt tuzak kutusunun içinde cazibesine yerleştirinkutusunu monte ederken sağlamak için allation dışarı girmemektedir. </li></ol> Permethrin ile Bird Nest Box 5. Tedavi <ol><li> Sadece kuşlar kümes kullanılmak üzere etiketlenmiş veya kafesli bir permetrin ürünü seçin. </li><li> karıştırma ve uygulama için etiket talimatları izleyin DİKKAT: Etiket önerileri üzerinde herhangi bir kişisel koruma yönergeleri izleyin. </li><li> sıvı 3.7 L el pompası püskürtücü kullanılarak kutunun kenarlarını kapalı çalışır noktaya kadar tamamen yuva kutunun içini püskürtün. Not: Nest kutuları önce veya kurulumdan sonra tedavi edilebilir. </li></ol> Bal Arısı tarafından işgal edilmiş bir tuzak Box 6. Kaldırma <ol><li> küçük bir havlu ile giriş deliğini takın. DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. <ol><li> sürüsü öldürülecek ise, yani en kısa sürede keşfettiği gibi yapın. sürüsü kullanılacak ise, u (arılar tam bunları kaldırmak için denemeden önce tuzak kutuları kolonize izinsually yaklaşık 2 hafta). Mümkünse (bütün arılar içinde olduğunda), geceleri işgal tuzak kutuları kaldırın. tuzak giriş geceleri takılabilir ve daha sonra kutu gündüz ertesi sabah kaldırıldı. Not: Geceleri arılar etrafında çalışırken kırmızı filtrelenmiş ışık kullanın. </li></ol></li><li> görevinden kutuyu sökün veya ağacının yanındaki kutuyu tutan teli kesti. </li><li> (Uzakta en az 4 km) yeni yerine taşımak ve giriş deliğinden dışarı havlu çekin. </li></ol> Tuzak Kutusunda Arı Kolonisi 7. İmha Not: Africanized bal arıları korumak için yasadışı olduğu yerlerde, koloninin imha garanti edilebilir. Eğer öyleyse, iki protokol burada sunulmuştur. <ol><li> Colony Solarizing <ol><li> küçük bir havlu ile giriş deliğini takın. DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. </li><li> görevinden kutuyu sökün veya ağacının yanındaki kutuyu tutan teli kesti. </li><li> Enclose bir plastik torba içinde tamamen tuzak kutunun mühür ve birkaç gün boyunca tam güneş bırakın ve DİKKAT: bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. </li></ol></li><li> Bir Böcek Sprey Kullanımı <ol><li> tuzak kutusunun içine sprey arıları öldürmek için kullanılmak üzere etiketlenmiş bir insektisit spreyi kullanın. DİKKAT: insektisit etiket talimatları izleyin ve bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun kişisel koruyucu ekipman kullanın. </li><li> giriş Tak ve 24 saat kutusunu bırakın. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. Not: artık insektisit çıkarmak için tuzak kutusu sabunlu su çözeltisi ile içini temizlemek tekrar kullanmak için. iyice durulayın ve tekrar monte etmeden önce tamamen kurumasını bekleyin. </li></ol></li><li> bir insektisit bir köpük kullanılması <ol><li> Bir deterjan bazlı bir köpük ile işgal tuzak tüm boşluğu doldurmak. (DİKKAT: Uçan böcekleri yok etme üzerine etiket talimatları izleyinki pestisit ve uygun kişisel koruyucu ekipman kullanımı ve) bal arıları gelen sokmaları önlemek için uygun koruyucu giysiler giyin. Not: Köpük ticari haşere kontrol köpük jeneratörü veya basınçlı hava yangın söndürücü ile uygulanabilir. Not: Bir yangın söndürücü kullanmak için: yerleştirin su 3.8 L 9,5 L yangın söndürücü içine, söndürücü mühür, ajan (ya da bulaşık yıkama deterjanı) köpük 190 ml ekleyin ve / metrekare 100-125 lira basınçla. inç (psi). Kullanımı şiddetle ajitasyon ve tuzak taşan olana kadar köpük uygulamak için hemen önce. Not: Köpük spiracles giren ve trakea engelleyerek 60 saniye içinde arılar öldürür. </li><li> giriş Tak ve 24 saat kutusunu bırakın. </li><li> Ölü arılar ve tarak kaldırarak kutuyu temizleyin. Not: artık insektisit çıkarmak için tuzak kutusu sabunlu su çözeltisi ile içini temizlemek tekrar kullanmak için. iyice durulayın ve tekrar monte etmeden önce tamamen kurumasını bekleyin. &lt;/ Li&gt; </ol></li></ol>

<ol>
	<li>Winston, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+and+management+of+Africanized+honey+bees.">The biology and management of Africanized honey bees.</a> Annu Rev Entomol. 37, 173-193 (1992).</li><li>Schmidt, J. O., Hurley, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selection+of+nest+cavities+by+Africanized+and+European+honey+bees.">Selection of nest cavities by Africanized and European honey bees.</a> Apidologie. 26, 467-475 (1995).</li><li>Eadie, J., Sherman, P., Semel, B., Casro, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Conspecific+Brood+Parasitism,+Population+Dynamics,+and+the+Conservation+of+Cavity-Nesting+Birds.">Conspecific Brood Parasitism, Population Dynamics, and the Conservation of Cavity-Nesting Birds.</a> In: Behavioral Ecology and Conservation Biology. , 306-340 (1998).</li><li>Newton, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+nest+sites+in+limiting+the+numbers+of+hole-nesting+birds:+a+review.">The role of nest sites in limiting the numbers of hole-nesting birds: a review.</a> Biol Conserv. 70, 265-276 (1994).</li><li>White, T. H., Abreu-Gonz&#225;lez, W., Toledo-Gonz&#225;lez, M., Torres-B&#225;ez, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=From+the+field:+artificial+nest+cavities+for+Amazona+parrots.">From the field: artificial nest cavities for Amazona parrots.</a> Wildl Soc Bull. 33, 756-760 (2005).</li><li>Vaughan, C., Nemeth, N., Marineros, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ecology+and+management+of+natural+and+artificial+Scarlet+Macaw+(Ara+macao)+nest+cavities+in+Costa+Rica.">Ecology and management of natural and artificial Scarlet Macaw (Ara macao) nest cavities in Costa Rica.</a> Ornitol Neotrap. 14, 381-396 (2003).</li><li>WCS Guatemala Program. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Integrated+interventions+to+conserve+Scarlet+Macaws+as+flagships+for+the+Maya+Biosphere+Reserve,+Guatemala.">Integrated interventions to conserve Scarlet Macaws as flagships for the Maya Biosphere Reserve, Guatemala.</a> 2009-2010 Report to BBC Wildlife Fund. , (2011).</li><li>Fish and Wildlife Service. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Puerto Rican Parrot (Amazona vittata) 5-Year Review: Summary and Evaluation. , (2008).</li><li>Berkunsky, I., DiazLuque, J. A., Kacoliris, F. P., Daniele, G., Milpacher, S., Gilardi, J. D., Martin, S., Eckles, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=10+Years:+Blue-throated+Macaw+Conservation.">10 Years: Blue-throated Macaw Conservation.</a> PsittaScene. 24, 3-5 (2012).</li><li>Synder, N., McGowen, P., Gilardi, J. D., Grajal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Parrots: Status Survey and Conservation Action Plan 2000-2004. , (2000).</li><li>Delnicki, D. E., Bolen, E. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+Black-Bellied+Whistling+duck+nest+sites+by+other+species.">Use of Black-Bellied Whistling duck nest sites by other species.</a> SW Naturalist. 22, 275-277 (1977).</li><li>Twedt, D. J., Henne-Kerr, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+Cavities+Enhance+Breeding+Bird+Densities+in+Managed+Cottonwood+Forests.">Artificial Cavities Enhance Breeding Bird Densities in Managed Cottonwood Forests.</a> Wildl Soc Bull. 27, 680-687 (2001).</li><li>Carlile, N., Priddel, D., Zino, F., Natividad, C., Wingate, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+four+successful+recovery+programmes+for+threatened+sub-tropical+petrels.">A review of four successful recovery programmes for threatened sub-tropical petrels.</a> Mar Ornithol. 31, 185-192 (2003).</li><li>Oldroyd, B. P., Lawler, S. H., Crozier, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Do+feral+honey+bees+(Apis+mellifera)+and+regent+parrots+(Polytelis+anthopeplus)+compete+for+nest+sites.">Do feral honey bees (Apis mellifera) and regent parrots (Polytelis anthopeplus) compete for nest sites.</a> Aust J Ecol. 19, 444-450 (1994).</li><li>Downs, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artificial+nest+boxes+and+wild+Cape+Parrots+Poicephalus+robustus:+persistence+pays+off.">Artificial nest boxes and wild Cape Parrots Poicephalus robustus: persistence pays off.</a> Ostrich. 76, 222-224 (2005).</li><li>Seeley, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+Nest+Cavity+Volume+by+the+Honey+Bee+(Apis+mellifera).">Measurement of Nest Cavity Volume by the Honey Bee (Apis mellifera).</a> Behav Ecol Sociobiol. 2, 201-227 (1977).</li><li>Schneider, S. S., DeGrandi-Hoffman, G., Smith, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+African+Honey+Bee:+Factors+contributing+to+a+successful+biological+invasion.">The African Honey Bee: Factors contributing to a successful biological invasion.</a> Annu Rev Entomol. 49, 351-376 (2004).</li><li>Seely, T. D., Visscher, P. K., Passino, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Group+decision+making+in+honey+bee+swarms.">Group decision making in honey bee swarms.</a> Behav Ecol Sociobiol. 94, 220-229 (2006).</li><li>Taylor, K. S., Waller, G. D., Crowder, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impairment+of+a+classical+conditioning+response+of+the+honey+bee+(Apis+mellifera+L.)+by+sublethal+doses+of+synthetic+pyrethroid+insecticides.">Impairment of a classical conditioning response of the honey bee (Apis mellifera L.) by sublethal doses of synthetic pyrethroid insecticides.</a> Apidologie. 18, 243-252 (1987).</li><li>Ingram, E. M., Augustin, J., Ellis, M. D., Siegfried, B. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluating+sub-lethal+effects+of+orchard-applied+pyrethroids+using+viedo-tracking+software+to+quantify+honey+bee+behaviors.">Evaluating sub-lethal effects of orchard-applied pyrethroids using viedo-tracking software to quantify honey bee behaviors.</a> Chemosphere. 135, 272-277 (2015).</li><li>Rieth, J. P., Levin, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+repellent+effect+of+two+pyrethroid+insecticides+on+the+honey+bee.">The repellent effect of two pyrethroid insecticides on the honey bee.</a> Physiol Entomol. 13, 213-218 (1988).</li><li>Efstathion, C. A., Bardunias, P. M., Boyd, J. D., William, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+push-pull+integrated+pest+management+scheme+for+preventing+use+of+parrot+nest+boxes+by+invasive+Africanized+honey+bees.">A push-pull integrated pest management scheme for preventing use of parrot nest boxes by invasive Africanized honey bees.</a> J Field Ornithol. 86, 65-72 (2015).</li><li>Seeley, T. D., Morse, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nest+site+selection+by+the+honey+bee,+Apis+mellifera.">Nest site selection by the honey bee, Apis mellifera.</a> Insect Sco. 25, 323-337 (1978).</li><li>Schmidt, J. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Attraction+of+reproductive+honey+bee+swarms+to+artificial+nests+by+nasonov+pheromone.">Attraction of reproductive honey bee swarms to artificial nests by nasonov pheromone.</a> J Chem Ecol. 20, 1053-1056 (1994).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

Son derece başarılı bir istilacı böcek 17 olarak AHB onların aralığı boyunca kavite-yuvalama kuşlar için önemli bir rakip oluşturmaktadır. Burada sunulan protokol AHB ile kuş yuva kutuları kolonizasyon oranlarını azaltmak için tasarlanmıştır. Bu tasarımın ana bileşenleri 1) itici ve kuş güvenli insektisit, permetrin kullanımı yer alır; 2) Arılar için alternatif bir yuva sitenin sağlanması; ve 3) tuzak kutuları içinde bir çekici feromon kullanımı. Yeni bir yuva sitesi <su...

1957 1 Sao Paulo, Brezilya içine iki düzineden fazla Afrika bal arısı kraliçe yanlışlıkla tanıtılmasından bu yana, bu böcekler (daha az iyi adapte Avrupa bal arılarının gasp ve değiştirilmesi, Güney ve Orta Amerika boyunca ve yukarı güney Amerika Birleşik Devletleri içine yayıldı vahşi nüfus EHB). Bu melez Africanized bal arıları (AHB) insanlarda ve yaban hayatı hem de çatışma koyun özelliklere sahip. Onlar, son derece savunmacı davranışlar çok hızlı yeniden ve onlar bir ev 1,2 yapmak nerede daha az seçici bulunmaktadır. Yuva kutuları uzun kavite-yuvalama kuşlar 3,4 ile üreme geliştirmek için kuş bilimcilerin kullandığı olmasına rağmen, bunların kullanımı tropik 5,6 tehdit ve tehlike altında olan papağan üreme arttırmak için özellikle etkili olduğu görülmüştür. Ne yazık ki, Africanized bal arıları genellikle bu aynı yuva kutuları seçmek - hatta bazen oturan öldürmes. Onlar yuva çalışmalar yapıyorlar Ayrıca, bu AHB biyologlar için önemli bir tehdit oluşturmaktadır. AHB kurulmuştur Güney Amerika bölgelerinde, çeşitli papağan koruma projeleri AHB 7-10 tarafından işgal onların yapay yuva kutuları gördük. bal arıları ile yuva kutuları için Rekabet yaygın ve papağan sınırlı değildir. Yeni ve Eski Dünya&#39;da birçok diğer kuş türleri 11-15 etkilenir. bu istilacı AHB tehdidini azaltmak için çabaları olmadan, papağan korunmasında son başarılar kaybolmuş olabilir. Arılar rekabet yönetmek için mevcut uygulamaları derhal sezon 8 veya yuva kutuları 15 dıştan dışa kimyasalların uygulanması ıslah sonra, elle sürüleri kaldırarak, 7 permetrin yuva girişlerini kapatarak tekrarlanan, yüksek dozlarda kullanımını içerir. emek katılan ve biyologlar için tehlike daha uygun daha bu stratejileri vermekteyiz. Bir preventio geliştirilmesin protokol garanti edilir. Bal arısı kolonileri eski kraliçe işçi arıların 16 kadar dörtte üçü ile koloni bırakır kaynıyordu, olarak bilinen bir süreç yoluyla çoğalırlar. Africanized bal arıların yüksek üreme oranı onları daha sık 17 (yılda bir veya iki kez sürüsü) EHB daha (yılda dört ila sekiz kez) sürüsü verir. Ayrıca, AHB yıl boyunca yerine EHB gibi belirli bir sezon boyunca sürüsü olabilir. Sonuç olarak, AHB hızla belirli bir bölgede uygun yuvalama alanlarının çoğu işgal edebilir. Bal arısı ev avcılık davranış yuva sitenin kendi seçimini etkilemek için kullanılabilir. bir sürüsü içinde arıların küçük bir kısmı bulmak ve yeni potansiyel yuva siteleri incelemek için uçup. Birkaç potansiyel yuva siteleri aynı anda için Gözlemlenmemiş edilir. Bu keşif arılar sürüsü dönmek ve sitenin yerini belirtmek için dansları. SCO güçlü dans bir site için, daha hızlı numaraut arılar bu sitede 18 kurar. Bu nedenle, arılar vasat veya kötü sitelere kıyasla daha kaliteli siteler için güçlü dans. Bir çekirdek eşik ulaşıldığında, oğul kapalı alır ve yeni seçilen ev sitesine 18 uçar. Insektisit permetrin Alt öldürücü temas dozları yönlendirmek ve aktivite düzeyi 19,20 azaltmak için izci arı yeteneğini engelleyebilir. Ilk başta yuva kutuları içinde permetrin bir uygulama kimyasal düşerse olarak arılar 21 ve fazla mesai keşif için itici gerektiğini, kutunun kendi değerlendirmesi sırasında permetrin maruz kalan izci arılar, miktarını azaltarak, güçlü işe alım dansları daha az yetenekli hale getirilmelidir ve izci arılar siteye işe. Daha uygun bir (altta yer alan ideal bir oyuk hacmi, küçük giriş deliği ve bir feromon çekici) diğer yuva Alanı arılar için bir tuzak kutu biçiminde temin edilmektedir. Bu mükemmel tuzak sitesi hızlı bir çekirdek ulaşmalıdırinsektisit tedavi kuş kutusundan daha kuş kutusunun üzerine tuzak kutusunu seçmek için sürüsü lider. Bir örnek olarak, biz Güney Florida şeker kamışı alanları AHB tarafından Peçeli baykuş yapay yuva kutuları kolonizasyonu azaltmak için bir deney açıklanmaktadır. Amacımız feromon baited sürüsü tuzakları doğru &quot;çekme&quot; olarak bir insektisit ile tedavi baykuş yuva kutuları uzak arıları &quot;itme&quot; ve bir itme-çekme yöntemini kullanarak etkinliğini test etmek oldu.

<table><tbody><tr><td>Citral (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC11044-1000</td><td></td></tr><tr><td>Geraniol (ACROS Organics)</td><td>Fisher Scientific</td><td>AC41090-1000</td><td></td></tr><tr><td>PermaCap CS</td><td>BASF</td><td></td><td>controlled release permethrin</td></tr></tbody></table>

a push-pull protocol to reduce colonization of bird nest boxes by honey bees

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. These bees select cavities that are suitable nest sites for birds, resulting in competition. The difficulty of removing bees and their defensive behavior makes a prevention protocol necessary. Here, we describe a push-pull integrated pest management protocol to deter bees from inhabiting bird boxes by applying a bird safe insecticide, permethrin, to repel bees from nest boxes, while simultaneously attracting them to pheromone-baited swarm traps. Shown here is an example experiment using Barn Owl nest boxes. This protocol successfully reduced colonization of Barn Owl nest boxes by Africanized honey bees. This protocol is flexible, allowing adjustments to accommodate a wide range of bird species and habitats. This protocol could benefit conservation efforts where AHB are located.

Brezilya&#39;da yapılan bir önceki küçük pilot itme-çekme çalışması sürüsü tuzakları etkili olduğunu gösterdi ve papağan yuva kutuları 22 arı işgal azalır. itme-çekme yöntemi AHB tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonunu azaltmak için daha büyük bir ölçekte etkili olabilir eğer belirlemek için, güney Florida, ABD&#39;de şekerkamışı tarlalarında bir alan çalışması yapılmıştır. Altmış Peçeli baykuş yuva kutuları monte edildi...

Watch this Scientific Journal Video about A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees at JoVE.com

A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

invaziv Africanized bal arıları tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonu önlenmesi yuva site sınırlı kuşların koruma çalışmaları için çok önemlidir. Biz &quot;itme&quot; arılar uzak yuva kutuları bir itici insektisit, permetrin ile entegre zararlı yönetimi yaklaşımı sağlamak ve feromon baited sürüsü tuzakları doğru onları &quot;çekme&quot;.

Bir Push-pull Protokolü Bal Arısı ile kolonizasyon Bird Nest Kutular azaltmak için

Introduction of the invasive Africanized honey bee (AHB) into the Neotropics is a serious problem for many cavity nesting birds, specifically parrots. ...

a-push-pull-protocol-to-reduce-colonization-bird-nest-boxes-honey

Research

JoVE Journal

Environment

8.6K Görüntüleme.  University of Florida.  invaziv Africanized bal arıları tarafından kuş yuva kutuları kolonizasyonu önlenmesi yuva site sınırlı kuşların koruma çalışmaları için çok önemlidir. Biz "itme" arılar uzak yuva kutuları bir itici insektisit, permetrin ile entegre zararlı yönetimi yaklaşımı sağlamak ve feromon baited sürüsü tuzakları doğru onları "çekme". 

Video: A Push-pull Protocol to Reduce Colonization of Bird Nest Boxes by Honey Bees

Empirical, Metagenomic, and Computational Techniques Illuminate the Mechanisms by which Fungicides Compromise Bee Health

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered &#34;bee-safe,&#34; there is mounting evidence that fungicide residues in pollen are associated with bee declines (for both honey and bumble bee species). While the mechanisms remain relatively unknown, researchers have speculated that bee-microbe symbioses are involved. Microbes play a pivotal role in the preservation and/or processing of pollen, which serves as nutrition for larval bees. By altering the microbial community, it is likely that fungicides disrupt these microbe-mediated services, and thereby compromise bee health. This manuscript describes the protocols used to investigate the indirect mechanism(s) by which fungicides may be causing colony decline. Cage experiments exposing bees to fungicide-treated flowers have already provided the first evidence that fungicides cause profound colony losses in a native bumble bee (Bombus impatiens). Using field-relevant doses of fungicides, a series of experiments have been developed to provide a finer description of microbial community dynamics of fungicide-exposed pollen. Shifts in the structural composition of fungal and bacterial assemblages within the pollen microbiome are investigated by next-generation sequencing and metagenomic analysis. Experiments developed herein have been designed to provide a mechanistic understanding of how fungicides affect the microbiome of pollen-provisions. Ultimately, these findings should shed light on the indirect pathway through which fungicides may be causing colony declines.

Microbial consortia within bumble bee hives enrich and preserve pollen for bee larvae. Using next generation sequencing, along with laboratory and field-based experiments, this manuscript describes protocols used to test the hypothesis that fungicide residues alter the pollen microbiome, and colony demographics, ultimately leading to colony loss.

Ampirik, Metagenomic ve bilgisayar teknikleri mekanizma hangi mantar ilaçları uzlaşma arı sağlık ile aydınlatmak

Growers often use fungicide sprays during bloom to protect crops against disease, which exposes bees to fungicide residues. Although considered ...

Çevre

Evaluating the Effect of Environmental Chemicals on Honey Bee Development from the Individual to Colony Level

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be brought back to the beehive after the bees have foraged on flowers that have been sprayed with pesticides. Pesticide contaminated food can be exchanged between workers which then feed larvae and therefore can potentially affect the development of honey bees. Thus, residual pesticides in the environment can become a chronic damaging factor to honey bee populations and gradually lead to colony collapse. In the presented protocol, honey bee feeding methods are described and applied to either an individual honey bee or to a colony. Here, the insect growth regulator (IGR) pyriproxyfen (PPN), which is widely used to control pest insects and is harmful to the development of honey bee larvae and pupae, is used as the pesticide. The presenting procedure can be applied to other potentially harmful chemicals or honeybee pathogens for further studies.

Herein we present a method to feed pesticide contaminated food to both an individual honey bee and a beehive colony. The procedure evaluates the pesticide effect on individual honey bees by in vivo feeding of basic larval diet and also on the natural condition of beehive colony.

Koloni Düzeyde Bireysel olan Bal Arısı Kalkınma Çevre Kimyasalların Etkisinin Değerlendirilmesi

The presence of pesticides in the beekeeping environment is one of the most serious problems that impacts the life of a honey bee. Pesticides can be ...

Video Tracking Protocol to Screen Deterrent Chemistries for Honey Bees

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey bee colony numbers have been declining in the United States and many European countries since 1947. A number of factors play a role in this decline, including the unintentional exposure of honey bees to pesticides. The development of new methods and regulations are warranted to reduce pesticide exposures to these pollinators. One approach is the use of repellent chemistries that deter honey bees from a recently pesticide-treated crop. Here, we describe a protocol to discern the deterrence of honey bees exposed to select repellent chemistries. Honey bee foragers are collected and starved overnight in an incubator 15 h prior to testing. Individual honey bees are placed into Petri dishes that have either a sugar-agarose cube (control treatment) or sugar-agarose-compound cube (repellent treatment) placed into the middle of the dish. The Petri dish serves as the arena that is placed under a camera in a light box to record the honey bee locomotor activities using video tracking software. A total of 8 control and 8 repellent treatments were analyzed for a 10 min period with each treatment was duplicated with new honey bees. Here, we demonstrate that honey bees are deterred from the sugar-agarose cubes with a compound treatment whereas honey bees are attracted to the sugar-agarose cubes without an added compound.

The loss of honey bee colonies presents a challenge to crop pollination services. Current pollinator protection practices warrant an alternative approach to minimize the contact of honey bees to harmful pesticides using repellent chemistries. Here, we provide detailed methods for a visual tracking protocol to screen deterrents for bees.

Bal Arıları İçin Ekran Koruma Kimyagerleri için Video İzleme Protokolü

The European honey bee, Apis mellifera L., is an economically and agriculturally important pollinator that generates billions of dollars annually. Honey ...

A Proboscis Extension Response Protocol for Investigating Behavioral Plasticity in Insects: Application to Basic, Biomedical, and Agricultural Research

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). There are several behavioral mechanisms through which an insect learns salient associations and relates them to these events. It is important to understand this behavioral plasticity for programs aimed toward assisting insects that are beneficial for agriculture. This understanding can also be used for discovering solutions to biomedical and agricultural problems created by insects that act as disease vectors and pests. The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol was developed for honey bees (Apis mellifera) over 50 years ago to study how they perceive and learn about floral odors, which signal the nectar and pollen resources a colony needs for survival. The PER procedure provides a robust and easy-to-employ framework for studying several different ecologically relevant mechanisms of behavioral plasticity. It is easily adaptable for use with several other insect species and other behavioral reflexes. These protocols can be readily employed in conjunction with various means for monitoring neural activity in the CNS via electrophysiology or bioimaging, or for manipulating targeted neuromodulatory pathways. It is a robust assay for rapidly detecting sub-lethal effects on behavior caused by environmental stressors, toxins or pesticides.
We show how the PER protocol is straightforward to implement using two procedures. One is suitable as a laboratory exercise for students or for quick assays of the effect of an experimental treatment. The other provides more thorough control of variables, which is important for studies of behavioral conditioning. We show how several measures for the behavioral response ranging from binary yes/no to more continuous variable like latency and duration of proboscis extension can be used to test hypotheses. And, we discuss some pitfalls that researchers commonly encounter when they use the procedure for the first time.

The Proboscis Extension Response (PER) conditioning protocol, developed for the honey bee (Apis mellifera), provides an ecologically-relevant and easily quantifiable means for studying several different mechanisms of learning in many insect species.

Bir burnumun Extension Tepki Böcekler Davranış Plastisitesi incelenmesi için protokol: Basic, Biyomedikal Uygulama ve Tarımsal Araştırma

Insects modify their responses to stimuli through experience of associating those stimuli with events important for survival (e.g., food, mates, threats). ...

Nörobilim

Preparation of Single-cohort Colonies and Hormone Treatment of Worker Honeybees to Analyze Physiology Associated with Role and/or Endocrine System

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related division of labor). Young workers are engaged in nursing the brood (nurse bees), while older workers are engaged in foraging for nectar and pollen (foragers). The physiology of the workers changes in association with this role shift. For example, the main function of the hypopharyngeal glands (HPGs) changes from the secretion of major royal jelly proteins (MRJPs) to the secretion of carbohydrate-metabolizing enzymes. Because worker tasks change as the workers age in typical colonies, it is difficult to discriminate the physiological changes that occur with aging from those that occur with the role shift. To study the physiological changes in worker tissues, including the HPGs, in association with the role shift, it would be useful to manipulate the honeybee colony population by preparing single-cohort colonies in which workers of almost the same age perform different tasks. Here we describe a detailed protocol for preparing single-cohort colonies for this analysis. Six to eight days after single-cohort colony preparation, precocious foragers that perform foraging tasks earlier than usual appear in the colony. Representative results indicated role-associated changes in HPG gene expression, suggesting role-associated HPG function. In addition to manipulating the colony population, analysis of the endocrine system is important for investigating role-associated physiology. Here, we also describe a detailed protocol for treating workers with 20-hydroxyecdysone (20E), an active form of ecdysone, and methoprene, a juvenile hormone analogue. The survival rate of treated bees was sufficient to examine gene expression in the HPGs. Gene expression changes were observed in response to 20E- and/or methoprene-treatment, suggesting that hormone treatments induce physiological changes of the HPGs. The protocol for hormone treatment described here is appropriate for examining hormonal effects on worker physiology.

Here we describe our detailed protocol for the preparation of single-cohort honeybee colonies&#160;&#8211; a useful tool for analyzing the role-associated worker physiology. We also describe detailed protocols for treating workers with juvenile hormone and ecdysone to evaluate the involvement of these hormones in the regulation of worker behavior and/or physiology.

Tek kohort Kolonileri ve İşçi arıların Hormon Tedavisi hazırlanması Rolü ve / veya Endokrin Sistemi Fizyolojisi İlişkili Analiz

Honeybee workers are engaged in various tasks related to maintaining colony activity. The tasks of the workers change according to their age (age-related ...

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize and to study. Therefore, bees have long been a favored model amongst neurobiologists and neuroethologists for studying the neural basis of social and natural behavior. It is important, however, that the experimental techniques used to study bees do not interfere with the behaviors being studied. Because of this, it has been necessary to develop a range of techniques for pharmacological manipulation of honey bees. In this paper we demonstrate methods for treating restrained or free-flying honey bees with a wide range of pharmacological agents. These include both noninvasive methods such as oral and topical treatments, as well as more invasive methods that allow for precise drug delivery in either systemic or localized fashion. Finally, we discuss the advantages and disadvantages of each method and&#160;describe common hurdles and how to best overcome them. We conclude with a discussion on the importance of adapting the experimental method to the biological questions rather than the other way around.

Neuropharmacological Manipulation of Restrained and Free-flying Honey Bees, Apis mellifera

This manuscript describes several protocols for administering pharmacological agents to honey bees, including simple noninvasive methods for free-flying bees, as well as more invasive variants that allow precise localized treatment of restrained bees.

Ölçülü ve Serbest uçan Bal Arısı Nörofarmakolojik Manipülasyon,<em&gt; Apis mellifera</em

Honey bees demonstrate astonishing learning abilities and advanced social behavior and communication. In addition, their brain is small, easy to visualize ...

Monitoring Colony-level Effects of Sublethal Pesticide Exposure on Honey Bees

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment methods. Here we describe methods to measure the quantities of adult bees, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, by photographing frames, and by installing hives on scales and with internal sensors. Data from these periodic evaluations are then combined with running average and daily detrended data on hive weight and internal hive temperature. The resulting datasets have been used to detect colony-level effects of imidacloprid applied in a sugar syrup as low as 5 parts per billion. The methods are objective, require little training, and provide permanent records in the form of sensor output and photographs.

Sublethal doses of pesticides may affect colonies in ways that are difficult to detect using only periodic or visual methods. Methods to measure total adult bee mass, brood, and food resources by weighing hives and hive parts, photographing frames, and installing sensors, are provided. Data analysis is also addressed.

Bal arıları üzerinde Sublethal pestisit pozlama koloni düzeyi etkilerinin izlenmesi

The effects of sublethal pesticide exposure to honey bee colonies may be significant but difficult to detect in the field using standard visual assessment ...

Biyoloji

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee (Bombus) Hive Entrances

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis. This has traditionally been done by netting foragers at nest entrances or on flowers, chilling the bees on ice, and then removing the pollen loads from the corbiculae with forceps or a brush. This method is time and labor intensive, may alter normal foraging behavior, and can result in stinging incidents for the worker performing the task. Pollen traps, such as those used on honey bee hives, collect pollen by dislodging corbicular pollen loads from the legs of workers as they pass through screens at the nest entrance. Traps can remove a large quantity of pollen from returning forager bees with minimal labor, yet to date no such trap is available for use with bumble bee colonies. Workers within a bumble bee colony can vary in size making size selection of entrances difficult to adapt this mechanism to commercially reared bumble bee hives. Using 3D printing design programs, we created a pollen trap that successfully removes the corbicular pollen loads from the legs of returning bumble bee foragers. This method significantly reduces the amount of time required by researchers to collect pollen from bumble bee foragers returning to the colony. We present the design, results of pollen removal efficiency tests, and suggest areas of modifications for investigators to adapt traps to a variety of bumble bee species or nest box designs.

A 3D Printed Pollen Trap for Bumble Bee Bombus Hive Entrances

We present a non-lethal and automated mechanism to collect pollen from bumble bee (Bombus) workers returning to a hive. Instructions for producing, preparing, installing and using the devices are included. By using 3D-printed objects, modification to the design was timely, efficient and allowed for quick turnaround for testing.

Bombus Arısı (Bombus) Kovan Girişleri için 3D Baskılı Polen Tuzağı

To verify the plant sources from which bumble bees forage for pollen, individuals must be collected to remove their corbicular pollen loads for analysis.  ...

Collection and Identification of Pollen from Honey Bee Colonies

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate pesticide exposure of bees via pollen. Described herein is an effective pollen-trapping method for collecting corbicular pollen from honey bees returning to their hives. This collection method results in large quantities of corbicular pollen that can be used for research purposes. Honey bees collect pollen from many plant species, but typically visit one species during each collection trip. Therefore, each corbicular pollen pellet predominantly represents one plant species, and each pollen pellet can be described by color. This allows the sorting of samples of corbicular pollen by color to segregate plant sources. Researchers can further classify corbicular pollen by analyzing the morphology of acetolyzed pollen grains for taxonomic identification. These methods are commonly used in studies related to pollinators such as pollination efficiency, pollinator foraging dynamics, diet quality, and diversity. Detailed methodologies are presented for collecting corbicular pollen using pollen traps, sorting pollen by color, and acetolyzing pollen grains. Also presented are results pertaining to the frequency of pellet colors and taxa of corbicular pollen collected from honey bees in five different cropping systems.

We describe methods for collecting corbicular pollen from honey bees as well as protocols for color sorting, acetolysis, and microscope slide preparation of pollen for taxonomic identification. In addition, we present pellet color and taxonomic diversity of corbicular pollen collected from five cropping systems using pollen traps.

Bal Arısı Kolonilerinden Polenlerin Toplanması ve Tanımlanması

Researchers often collect and analyze corbicular pollen from honey bees to identify the plant sources on which they forage for pollen or to estimate ...

Assessing Agrochemical Risk to Mated Honey Bee Queens

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not accurately capture the effects of agrochemical exposure on honey bee queens. As the sole producer of fertilized eggs inside a honeybee colony, the queen is arguably the most important single member of a functioning colony unit. Therefore, understanding how agrochemicals affect queen health and productivity should be considered a critical aspect of pesticide risk assessment. Here, an adapted method is presented to expose honey bee queens and worker queen attendants to agrochemical stressors administered through a worker diet, followed by tracking egg production in the laboratory and assessing first instar eclosion using a specialized cage, referred to as a Queen Monitoring Cage. To illustrate the method&#39;s intended use, results of an experiment in which worker queen attendants were fed diet containing sublethal doses of imidacloprid and effects on queens were monitored are described.

This protocol was developed to enhance the understanding of how agrochemicals affect honey bee (Apis mellifera) reproduction by establishing methods to expose honey bee queens and their worker caretakers to agrochemicals in a controlled, laboratory setting and carefully monitoring their relevant responses.

ÇiftLeşme Bal Arısı Kraliçeleri için Tarımsal Kimyasal Riskin Değerlendirilmesi

Current risk assessment strategies for honey bees rely heavily upon laboratory tests performed on adult or immature worker bees, but these methods may not ...