We would like to thank Dr. Konstantin Dobrenis for providing murine microglia for these studies.

1. Hücre floresan etiketleme NOT: floresan boyalar 9 Etiket glioblastoma hücre hatları ve mikroglia. Seçenek olarak ise, 14 de tarif edildiği gibi konstitütif GFP / RFP gibi floresan proteinleri ifade eden hücre hatları oluşturmak. <ol><li> boyama gününde% 80 konfluent - 6 gözenekli bir plakada Plaka hücreleri 70 olacak şekilde. Fare glioblastoma hücre hattı GL261 ve insan glioblastoma hücre hattı U87, plaka 1 x 10 6 ve 1.5 x 10 6 hücre, sırasıyla boyama önce 6 cm çanak 24 saat üzerinde. </li><li> DMSO içinde floresan hücre leke boya çözeltisini hazırlayın ve ortama 5 uM boya ekleyin ya Roswell Park Memorial Institute ortamı (RPMI) veya makrofaj serum barındırmayan ortam (MSFM) de vorteks. </li><li> 37 ° C&#39;de 30 dakika karıştırıldı ve% 5 CO2 için boya ile inkübe hücreleri. </li><li> boya içeren ortamı çıkarın ve hücrelere taze ortam (RPMI veya MSFM) ekleyin. </li><li> 30 dakika boyunca hücreler inkübe edin. Not: Hücreler artıklekeli ve hazır denemede kullanılır. </li></ol> 2. Ön kaplı Matrix Odası Coculture Invasion Testi <ol><li> Forbol miristat asetat (PMA) 15 kullanılarak, THP-1 hücreleri ayırt. <ol><li> Plaka 2 - 6 bölmeli bir kültür tepsisi RPMI /% 10 FBS, 1.5 ml 3 x 10 5 THP-1 hücreleri. Kaplamadan hemen sonra, 100 nM PMA ekleme ve 48 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 inkübe edilir. Not: 48 saat sonra, başarılı bir farklılaşma geçirmiş THP-1 hücreleri yapışkan olacak ve de yuvarlak bir morfolojisi alarak altına yayılır. </li><li> 1x bir kez PBS ile yıkanarak PMA çıkarın ve taze RPMI /% 10 FBS ile değiştirin. Hücreler tayininde kullanıma hazır olana kadar başka bir 48 saat bekleyin. </li></ol></li><li> Bir tek başına medya 500 ul içeren (hiçbir serum) onları yerleştirerek ve üstüne tek başına medya 500 ul ekleyerek matris önceden kaplanmış odaları dengelenmesi. 37 ° C de 2 saat ve% 5 CO2 için bir oda inkübe edin. <br/&gt; Not: Ön kaplı odaları üreticiden satın alındı; Malzemeleri / Ekipman Tabloya bakınız. </li><li> yavaşça hücreler (floresan etiketli glioblastoma hücre hatları ve mikroglia / makrofajlar) çıkarmak için, aspirasyon ile hücrelerden ortamı çıkarın. 2 mM EDTA / PBS ile yemeğin üzerine hücreleri yıkayın. 2 mM EDTA / 500 ul PBS ilave edin ve 5 inkübe edin - 37 ° C&#39;de bir hücre kuluçka makinesi içinde, 10 dakika ve% 5 CO2. </li><li> % 0.3 Sığır Serum Albumin (BSA) ihtiva eden ortam 5 ml içinde süspanse hücreleri. </li><li> 120 x g&#39;de 5 dakika boyunca santrifüje. </li><li> MSFM /% 0.3 BSA ortam aspire supernatant ve tekrar süspansiyon pelet ya da (U87 ve THP-1 hücreleri için) RPMI /% 0.3 BSA (GL261 hücreleri ve mikroglia için) hücre konsantrasyonu 1 x 10 6 hücre / ml&#39;ye eşit olduğu şekilde . hücreleri saymak için bir hemasitometre kullanın. </li><li> 24 gözlü plakanın her bir kuyucuğu 500 ul ortam /% 0.3 BSA ekleyin. </li><li> En az 2 saat (adım 2.2) için dengelenmiş olan odaları bulunan ortamı çıkarın. Yeri Chambeiyi 500 ul medya /% 0.3 BSA (adım 2.7) ihtiva eden rs. </li><li> inhibitörleri makrofaj üzerindeki etkisini incelemek için kullanılıyorsa / mikroglia alt ve odanın üst kısımlarına hem uygun konsantrasyon ekleyin glioma işgali uyarılır. Not: CSF-1R konsantrasyonları GL261 glioblastoma istilası Referans 9 bulunabilir uyarılmış tam mikroglia inhibe etmek için kullanılır inhibitördür. </li><li> Fare glioblastoma (2.10.1) ve insan glioblastoma (2.10.2) kullanılan hücre hatları bağlı olarak, aşağıdaki iki adımda tarif edildiği gibi üst bölmeye hücreleri ekleyin. <ol><li> 1.5 x 10 5 GL261 (glioblastoma) hücreleri (150 ul) ve 5 x 10 4 fare mikroglia (50 ul) (ortam detayları için adım 2.6) karıştırın. 300 ul MSFM /% 0.3 BSA eklenerek 500 ul hacim kazandırın. Üst bölmeye hücre karışımı ekleyin ve 48 st için 37 ° C,% 5 CO2 inkübe edilir. NOT: i tarif edildiği gibi Fare mikroglia yenidoğan farelerin izole edilmiştirn, 1 ila 6. </li></ol></li></ol> 7.5 x 10 4 U87 (glioblastoma) hücreleri (75 ul) ve 2.5 x 10 4 THP1 (makrofaj) hücreleri (25 ul) karıştırın. 400 ul RPMI /% 0.3 BSA ilave edilerek 500 ul hacim getirin. üst bölmeye hücre karışımı ekleyin. 24 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 hücreleri inkübe edin. <ol><li> kuluçkadan sonra hafif aspirasyon ile odasının üst hücreleri çıkarmak ve PBS içinde% 3.7 formaldehit içinde yerleştirerek odaları düzeltin. Chambers, oda sıcaklığında 15 dakika boyunca (ya da gece boyunca 4 ° C) sabitleştirici kalmasına izin verir. Nazik aspirasyonu ile Fiksatif çıkarın ve PBS 1x 500 ul ile değiştirin. görüntü analizi için bölüm 4 geçin. NOT: Deney şu anda durdurulmuş ve 1x PBS içinde görüntüleme için kaydedilebilir. Floresan boya sinyalleri tespit sonrasında en fazla 2 hafta tespit edilebilir. </li></ol> Matrix glioma ve makrofajlar / mikroglia katıştırma 3. Invasion Testi &quot;3D&quot; <ol><li>gece boyunca 4 ° C&#39;de çözülme matriks karışımı. kaputu buz üzerinde matris kullanarak tüm diğer manipülasyonlar gerçekleştirin. </li><li> Buz üzerinde% 0.3 BSA ile ortam matrisin 10 mg / ml konsantrasyon (MSFM veya RPMI) hazırlayın. Not: matris stok konsantrasyonu tipik olarak yaklaşık 15 mg / ml&#39;dir. </li><li> matris içinde süspansiyon için (adım 1 &#39;de etiketli) hücreler hazırlamak için, aspirasyon ile hücrelerden ortamı çıkarın. 2 mM EDTA / PBS ile yemeğin üzerine hücreleri yıkayın. Hücrelere 2 mM EDTA / 500 ul PBS ilave edin ve 5 inkübe edin - 37 ° C&#39;de kuluçka makinesi içinde, 10 dakika ve% 5 CO2. </li><li> % 0.3 BSA ihtiva eden ortam 5 ml içinde süspanse hücreleri. </li><li> 120 x g&#39;de 5 dakika boyunca santrifüje. </li><li> pelet Süpernatant aspire. Hücre konsantrasyonu 1 x 10 6 hücre / ml&#39;ye eşit olduğu şekilde ortam /% 0.3 BSA içinde süspanse pelet. hücreleri saymak için bir hemasitometre kullanın. </li><li> 1.5 ml mikrofüj tüpüne + 5 x 10 4 mikroglia hücreleri (50 ul) (150 ul) 1.5 x 10 5 GL261 hücreleri ekleyin.Ayrı bir 1.5 ml mikrofüj tüpe 2 x 10 5 GL261 hücreleri (200 ul) eklenir. Not: Tek başına mikroglia olmayan GL261 hücreleri, kontrol olarak hizmet eder. </li><li> 120 x g&#39;de 5 dakika boyunca mikrofuj Spin hücreleri. </li><li> buz üzerinde 200 ul soğuk matris içinde süspanse edin hücreleri. </li><li> 8 mcM gözenek boyutu odası ucun üst bölmesinin merkezi üzerine plakası 50 ul (50,000 hücreler). </li><li> polimerizasyon meydana gelmesi için, 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edin. </li><li> Alt de üst bölmesi ve 700 ul serum içeren hücre büyüme ortamına 200 ul serumsuz ortam ekleyin. </li><li> 48 saat boyunca 37 ° C&#39;de,% 5 CO2 inkübe edin. </li><li> kuluçkadan sonra hafif aspirasyon ile odasının üst hücreleri çıkarmak ve PBS içinde% 3.7 formaldehit içinde yerleştirerek odaları düzeltin. Chambers, oda sıcaklığında 15 dakika boyunca (ya da gece boyunca 4 ° C) sabitleştirici kalmasına izin verir. Nazik aspirasyonu ile Fiksatif çıkarın ve PBS 1x 500 ul ile değiştirin. bölüm 4 fo geçinr görüntü analizi. </li></ol> 4. Görüntüleme Tahliller <ol><li> % 3.7 formaldehit odaları çıkarın ve PBS 1x taze 500 ul içeren iyi yıkayın. NOT: odalar kurumasına izin vermeyin. </li><li> bir pamuklu kullanarak, yavaşça filtre yüzeyi kazınarak filtrenin üst kısmı (yan bölmesinin içine bakan) için invazif olmayan hücreler temizleyin. yavaşça başlayın ve giderek basıncı artar. odasının başına bu en az 3 kez yapın. </li><li> ya bir cam tabanlı çanak odaları yerleştirin veya 24 plaka bırakın. </li><li> Kamera ve görüntü yakalama yazılımı 9,10 ile donatılmış bir epifluorescent veya lazer konfokal floresan mikroskop sahnede örnek yerleştirin. </li><li> temsili alanların birkaç 10X veya 20X fotoğraf çekmek. </li><li> Örneğin ImageJ gibi bir görüntü analiz yazılımı kullanarak, alt 9,10 filtreyi geçti glioblastoma hücrelerinin sayısını saymak. </li><li> &quot;3D görüntüleme Eğer. 4.6 Yukarıda açıklanan - &quot;işgali tahlil (bölüm 3 açıklanan), bir floresan lazer konfokal mikroskop 5-6 kullanarak Z yığını serisi oluşturmak görüntü için filtrenin alt invaziv hücre popülasyonunu, protokolü takip 4.2 adımları. </li></ol>

<ol>
	<li>Buckner, J. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+nervous+system+tumors.">Central nervous system tumors.</a> Mayo Clin Proc. 82 (10), 1271-1286 (2007).</li><li>Furnari, F. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Malignant+astrocytic+glioma:+genetics,+biology,+and+paths+to+treatment.">Malignant astrocytic glioma: genetics, biology, and paths to treatment.</a> Genes. Dev. 21 (21), 2683-2710 (2007).</li><li>Charles, N. A., Holland, E. C., Gilbertson, R., Glass, R., Kettenmann, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+brain+tumor+microenvironment.">The brain tumor microenvironment.</a> Glia. 60 (3), 502-514 (2012).</li><li>Li, W., Graeber, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+profile+of+microglia+under+the+influence+of+glioma.">The molecular profile of microglia under the influence of glioma.</a> Neuro. Oncol. 14 (8), 958-978 (2012).</li><li>Watters, J. J., Schartner, J. M., Badie, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglia+function+in+brain+tumors.">Microglia function in brain tumors.</a> J. Neurosci. Res. 81 (3), 447-455 (2005).</li><li>Zhai, H., Heppner, F. L., Tsirka, S. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglia/macrophages+promote+glioma+progression.">Microglia/macrophages promote glioma progression.</a> Glia. 59 (3), 472-485 (2011).</li><li>Bettinger, I., Thanos, S., Paulus, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglia+promote+glioma+migration.">Microglia promote glioma migration.</a> Acta Neuropathol. 103 (4), 351-355 (2002).</li><li>Wesolowska, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglia-derived+TGF-beta+as+an+important+regulator+of+glioblastoma+invasion:+an+inhibition+of+TGF-beta-dependent+effects+by+shRNA+against+human+TGF-beta+type+II+receptor.">Microglia-derived TGF-beta as an important regulator of glioblastoma invasion: an inhibition of TGF-beta-dependent effects by shRNA against human TGF-beta type II receptor.</a> Oncogene. 27 (7), 918-930 (2008).</li><li>Coniglio, S. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglial+stimulation+of+glioblastoma+invasion+involves+epidermal+growth+factor+receptor+(EGFR)+and+colony+stimulating+factor+1+receptor+(CSF-1R)+signaling.">Microglial stimulation of glioblastoma invasion involves epidermal growth factor receptor (EGFR) and colony stimulating factor 1 receptor (CSF-1R) signaling.</a> Mol Med. 18, 519-527 (2012).</li><li>Miller, I. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Semapimod+sensitizes+glioblastoma+tumors+to+ionizing+radiation+by+targeting+microglia.">Semapimod sensitizes glioblastoma tumors to ionizing radiation by targeting microglia.</a> PLoS One. 9 (5), (2014).</li><li>Goswami, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Macrophages+promote+the+invasion+of+breast+carcinoma+cells+via+a+colony-stimulating+factor-1/epidermal+growth+factor+paracrine+loop.">Macrophages promote the invasion of breast carcinoma cells via a colony-stimulating factor-1/epidermal growth factor paracrine loop.</a> Cancer Res. 65 (12), 5278-5283 (2005).</li><li>House, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two+functional+S100A4+monomers+are+necessary+for+regulating+nonmuscle+myosin-IIA+and+HCT116+cell+invasion.">Two functional S100A4 monomers are necessary for regulating nonmuscle myosin-IIA and HCT116 cell invasion.</a> Biochemistry. 50 (32), 6920-6932 (2011).</li><li>Wang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+activity+status+of+cofilin+is+directly+related+to+invasion,+intravasation,+and+metastasis+of+mammary+tumors.">The activity status of cofilin is directly related to invasion, intravasation, and metastasis of mammary tumors.</a> J Cell Biol. 173 (3), 395-404 (2006).</li><li>Zagzag, D. 1., Miller, D. C., Chiriboga, L., Yee, H., Newcomb, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Green+fluorescent+protein+immunohistochemistry+as+a+novel+experimental+tool+for+the+detection+of+glioma+cell+invasion+in+vivo.">Green fluorescent protein immunohistochemistry as a novel experimental tool for the detection of glioma cell invasion in vivo.</a> Brain Pathol. 13 (1), 34-37 (2003).</li><li>Tsuchiya, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Establishment+and+characterization+of+a+human+acute+monocytic+leukemia+cell+line+(THP-1).">Establishment and characterization of a human acute monocytic leukemia cell line (THP-1).</a> Int. J. Cancer. 26 (2), 171-176 (1980).</li><li>Dobrenis, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Microglia+in+cell+culture+and+in+transplantation+therapy+for+central+nervous+system+disease.">Microglia in cell culture and in transplantation therapy for central nervous system disease.</a> Methods. 16 (3), 320-344 (1998).</li><li>Coniglio, S. J., Segall, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+mechanism+of+microglia+stimulated+glioblastoma+invasion.">Molecular mechanism of microglia stimulated glioblastoma invasion.</a> Matrix Biol. 32 (7-8), 372-380 (2013).</li><li>See, A. P., Parker, J. J., Waziri, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+regulatory+T+cells+and+microglia+in+glioblastoma-associated+immunosuppression.">The role of regulatory T cells and microglia in glioblastoma-associated immunosuppression.</a> J Neurooncol. 123 (3), 405-412 (2015).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

yüksek dereceli astrositomların ve glioblastoma son derece invaziv doğası bu beyin kanserleri çok ölümcül olun. Bu glioblastoma işgali moleküler ve hücresel mekanizmaları anlamak nedenle büyük önem taşımaktadır. Çok glioblastoma işgali zaten 17 süreci hakkında öğrenilmiştir. 10 kat - Bu yazıda ayrıntılı tahlil formatları kullanarak, bizim laboratuvar tümörle ilişkili makrofajlar 5 ile glioma hücre işgali uyarabilir, hem fare ve insan modellerinde gösterilmiştir. Bu Cocultu...

Glioblastom tanı 1,2 andan itibaren yaklaşık 12 aylık medyan sağkalım agresif bir insan beyin kanseri olduğunu. Glioblastoma standart kemoterapi ve cerrahi rezeksiyon refrakter olarak en ölümcül ve klinik zorlu kanserlerden biridir. glioblastoma yaygın doğası cerrahi tamamen rezeke gelişmiş tümör neredeyse imkansız hale normal beyinden yayılan tümör hücrelerini tanır. Bu son derece invaziv yönü glioblastoma ve diğer gelişmiş astrositomaların damgasını özelliğidir. Bu nedenle, bir çok çalışmanın odağıdır glioblastoma hücre istilası moleküler mekanizması olmuştur. Glioblastoma tümör mikro malignite 3-6 kurulmasında hayati bir rol oynar. Tümör ilişkili makrofajlar / mikroglia glioblastoma işgali 7,8 teşvik sorumlu olduğu gösterilmiştir. Bu çalışmaların çoğu, ancak kullanarak makrofajlar / mikroglia etkisini ölçtükfiziksel glioblastoma hücreleri ayırmak tahlilleri. Laboratuvarımız bize glioblastoma işgali cocultures makrofajlar / mikroglia bağlıdır nasıl çalışması ve işgali sırasında görüntü aralarındaki fiziksel etkileşimi sağlayacak izin geliştirilmiş tahlilleri üretmek için yola çıkmıştır. Klasik deneyleri hücre işgali &quot;standart&quot; Boyden çemberinin kemotaksisini ve kemo-istila formatlarını içerir ölçmek için. çalışılacak Burada hücreler belirli bir boyutu (çapı genellikle arasında 0.4 ve 8 uM) gözeneklere sahip altında bir polikarbonat filtresi içeren plastik odasına yerleştirilir. hücrelerinin istilasını süreci genellikle hücre dışı matris proteini arasında oluşan fiziksel bir bariyer kapsar. kemo-istila deneyinde, kullanılan tercih edilen matris Matrigel (bundan böyle &quot;matris&quot; olarak anılacaktır), Engelbreth-Holm-Swarm (EHS) tarafından salgılanan bir hücre dışı matris proteini karışımı, fare sarkoma hücreleri ve büyük ölçüde col oluşmaktadırlagen tip IV ve laminin. Chambers, sonra ya da işgali uyarma şüphelenilen büyüme faktörleri olmaksızın hücre kültür ortamı ihtiva eden bir doku kültür çukuruna yerleştirilir. daha yüksek bir frekansta hücre dışı matris kaplı filtre ile istila ve filtrenin alt tarafına bağlı bir yüksek invaziv kapasitesine sahip hücreler. Biz glioblastoma hücre işgali üzerine mikroglia ve tümör ile ilişkili makrofajlar rolünü değerlendirmek için bu testte değiştirdiniz. 10 kat 9,10 - Biz mikroglia 5 iki glioblastoma hücre hatları işgali uyarabilir bu kağıt içinde açıklanan kokültürünün analizleri kullanılarak belirlemek mümkün olmuştur. Bu glioblastoma hayvan modellerinde gözlemlenmiştir yansıtan. Ayrıca, glioblastoma hücreleri ve makrofajlar arasındaki etkileşimler / mikroglia daha doğrudan incelenebilir üç boyutlu işgal tahlil geliştirildi. macropha ile uyarılan glioblastoma hücre invazyonu3D tahlilinde ges / mikroglia matrisi kaplı bölme yaklaşımı kullanılarak görülen şeyin karşılaştırılabilir. Benzer deneyler daha önce işgali 11-13 sırasında makrofajlar ile meme kanseri etkileşimleri incelemek için geliştirilmiştir. Bu yazıda anlatılan iki yöntem glioblastoma hücreleri makrofaj / mikroglia uyarılan işgali moleküler mekanizmasını (ler) incelemek yeteneği yardımcı olmalıdır.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Corning BioCoat Matrigel Invasion Chamber: With BD Matrigel Matrix</td>
			<td>Corning/Fisher Scientific</td>
			<td>Cat: 354481</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Macrophage Serum Free Media (MSFM) (500 ml)</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>12065-074</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CellTracker Red CMTPX Dye</td>
			<td>Life Technologies/Molecular Probes</td>
			<td>C34552</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>CellTracker Green CMFDA Dye</td>
			<td>Life Technologies/Molecular Probes</td>
			<td>C2925</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>GL261 cell line</td>
			<td>National Cancer Institute (NCI)</td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>U87 cell line</td>
			<td>American Tissue Type Culture Collection</td>
			<td>HTB-14</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>THP-1 cell line</td>
			<td>American Tissue Type Culture Collection</td>
			<td>ATCC TIB-202</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>RPMI 1640 Medium (500 ml)</td>
			<td>Life Technologies/Gibco</td>
			<td>11875-093</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formaldehyde solution</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>F1635</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Corning Transwell polycarbonate membrane cell culture inserts (8 &#181;M pore) 48 per pack.</td>
			<td>Corning</td>
			<td>CLS3422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cultrex 3-D Culture Matrix Reduced Growth Factor Basement Membrane Extract, PathClear</td>
			<td>Trevigen</td>
			<td>3445-005-01</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fetal Calf Serum (FBS)</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>Cat: 10500064</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bovine Serum Albumin, Fraction V, Heat Shock Treated</td>
			<td>Fisherscientific</td>
			<td>BP1600-100</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>0.5M EDTA</td>
			<td>ThermoFisher Scientific</td>
			<td>15575-020</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA)</td>
			<td>Sigma Aldrich</td>
			<td>P8139-1MG</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

coculture assays to study macrophage and microglia stimulation of glioblastoma invasion

Glioblastom (Evre IV glioma) 1 yıl sonrası tanı medyan sağkalım çok agresif bir insan kanser türüdür. glioblastoma doğuran moleküler olayların daha iyi anlaşılmasına rağmen, bu kanser halen geleneksel tedaviye son derece dirençli olmaya devam etmektedir. yüksek dereceli beyin tümörlerinin cerrahi rezeksiyon nedeniyle glioblastoma hücreleri son derece infiltratif doğaya nadiren tamamlandı. glioblastoma hücre işgali hafifletir tedavi yaklaşımları dolayısıyla cazip bir seçenektir. Laboratuvarımız ve diğerleri bu tümör ilişkili makrofajlar ve mikroglia (ikamet beyin makrofajlar) kuvvetle glioblastoma işgali teşvik göstermiştir. Bu yazıda anlatılan protokol in vitro kültür analizleri kullanılarak glioblastoma-makrofaj / mikroglia etkileşimi modellemek için kullanılır. Bu yaklaşım büyük ölçüde bu habis Behav sağlayan makrofajlar ile iletişimi bozan ilaçların geliştirilmesi ve / veya keşif kolaylaştırabilirIOR. 10 kat - Biz mikroglia / makrofajlar 5 ile glioma hücre işgali teşvik iki güçlü kokültürünün işgali testleri kurduk. Bir flüoresan işaretleyici ya da yapısal olarak bir flüoresan proteini ifade ile etiketlenmiş glioblastoma hücrelerinin matris kaplı polikarbonat odası ekler üzerinde olmayan ve makrofajlar / mikroglia ile kaplama ya da üç boyutlu bir matris içinde yer almaktadır. Hücre işgali filtrenin alt sadece invaziv hücreler görüntü floresan mikroskopi kullanılarak ve saymak tarafından değerlendirilir. Bu tahliller kullanılarak, çeşitli farmakolojik inhibitörleri (JNJ-28.312.141, PLX3397, Gefitinib ve Semapimod) makrofaj blok tanımlanmıştır / mikroglia glioblastoma işgali uyarmıştır.

Burada açıklanan yöntemleri kullanarak, mikroglia ve makrofajlar esas glioblastoma hücre istilasını uyarabilir göstermiştir. İki farklı invazyon tahlilleri kullanılabilir ve Şekil 1 &#39;de tasvir edilmiştir. Şekil 2&#39;de, kurucu floresan proteini MCherry eksprese GL261 hücreler ve 48 saat mikroglia olmayan önceden kaplanmış odaları ekildi. mikroglia invaziv kapasitesi yaklaşık 10 kat artarak, ancak zaman kültür GL261 hücreleri ...

Watch this Scientific Journal Video about Coculture Assays to Study Macrophage and Microglia Stimulation of Glioblastoma Invasion at JoVE.com

Coculture Assays to Study Macrophage and Microglia Stimulation of Glioblastoma Invasion

Understanding the malignant behavior of cancer requires creating accurate models of how tumor cells interact with components of the tumor microenvironment, such as macrophages. Here we describe two methods to study glioblastoma cell interaction with tumor associated macrophages and microglia where the effect on glioblastoma invasion is assessed.

Coculture Tahliller Glioblastoma Invasion Makrofaj ve Mikroglia Stimülasyon Eğitim için

Glioblastoma multiforme (grade IV glioma) is a very aggressive human cancer with a median survival of 1 year post diagnosis. Despite the increased ...

coculture-assays-to-study-macrophage-microglia-stimulation

Research

JoVE Journal

Cancer Research

13.9K Görüntüleme.  Kean University. Understanding the malignant behavior of cancer requires creating accurate models of how tumor cells interact with components of the tumor microenvironment, such as macrophages. Here we describe two methods to study glioblastoma cell interaction with tumor associated macrophages and microglia where the effect on glioblastoma invasion is assessed.

Video: Coculture Assays to Study Macrophage and Microglia Stimulation of Glioblastoma Invasion

Acellular and Cellular Lung Model to Study Tumor Metastasis

It is difficult to isolate tumor cells at different points of tumor progression. We created an ex vivo lung model that can show the interaction of tumor cells with a natural matrix and continual flow of nutrients, as well as a model that shows the interaction of tumor cells with normal cellular components and a natural matrix. The acellular ex vivo lung model is created by isolating a rat heart-lung block and removing all the cells using the decellularization process. The right main bronchus is tied off and tumor cells are placed in the trachea by a syringe. The cells move and populate the left lung. The lung is then placed in a bioreactor where the pulmonary artery receives a continual flow of media in a closed circuit. The tumor grown on the left lung is the primary tumor. The tumor cells that are isolated in the circulating media are circulating tumor cells and the tumor cells in the right lung are metastatic lesions. The cellular ex vivo lung model is created by skipping the decellularization process. Each model can be used to answer different research questions.

Here, we present a protocol for an ex vivo lung cancer model that mimics the steps of tumor progression and helps to isolate a primary tumor, circulating tumor cells, and metastatic lesions.

Tümör metastazı çalışmaya acellular ve hücresel akciğer modeli

It is difficult to isolate tumor cells at different points of tumor progression. We created an ex vivo lung model that can show the interaction of tumor ...

Kanser Araştırmaları

Live-Cell Imaging Assays to Study Glioblastoma Brain Tumor Stem Cell Migration and Invasion

Glioblastoma (GBM) is an aggressive brain tumor that is poorly controlled with the currently available treatment options. Key features of GBMs include rapid proliferation and pervasive invasion into the normal brain. Recurrence is thought to result from the presence of radio- and chemo-resistant brain tumor stem cells (BTSCs) that invade away from the initial cancerous mass and, thus, evade surgical resection. Hence, therapies that target BTSCs and their invasive abilities may improve the otherwise poor prognosis of this disease. Our group and others have successfully established and characterized BTSC cultures from GBM patient samples. These BTSC cultures demonstrate fundamental cancer stem cell properties such as clonogenic self-renewal, multi-lineage differentiation, and tumor initiation in immune-deficient mice. In order to improve on the current therapeutic approaches for GBM, a better understanding of the mechanisms of BTSC migration and invasion is necessary. In GBM, the study of migration and invasion is restricted, in part, due to the limitations of existing techniques which do not fully account for the in vitro growth characteristics of BTSCs grown as neurospheres. Here, we describe rapid and quantitative live-cell imaging assays to study both the migration and invasion properties of BTSCs. The first method described is the BTSC migration assay which measures the migration toward a chemoattractant gradient. The second method described is the BTSC invasion assay which images and quantifies a cellular invasion from neurospheres into a matrix. The assays described here are used for the quantification of BTSC migration and invasion over time and under different treatment conditions.

Here, we describe live-cell imaging techniques to quantitatively measure the migration and invasion of glioblastoma brain tumor stem cells over time and under multiple treatment conditions.

Canlı hücre görüntüleme deneyleri için çalışma Glioblastoma Beyin tümör kök hücre göç ve işgali

Glioblastoma (GBM) is an aggressive brain tumor that is poorly controlled with the currently available treatment options. Key features of GBMs include ...

The Clinical Application of Tumor Treating Fields Therapy in Glioblastoma

Glioblastoma is the most common and lethal form of brain cancer, with a median survival of 15 months after diagnosis and a 5 year survival rate of only 5% with current standard of care. Tumors often recur within 9 months following initial surgery, radiation and chemotherapy, at which point treatment options become limited. This highlights the pressing need for the development of better therapeutics to prolong survival and increase the quality of life for these patients.
Tumor Treating Fields (TTFields) therapy was developed to take advantage of the effect of low frequency alternating electrical fields on cells for cancer therapy. TTFields have been demonstrated to disrupt cells during mitosis and slow tumor growth. There is also growing evidence that they act through stimulating immune responses within exposed tumors. The advantages of TTFields therapy include its noninvasive approach and increased quality of life compared to other treatment modalities such as cytotoxic chemotherapies. The Food and Drug Administration approved TTFields therapy for the treatment of recurrent glioblastoma in 2011 and for newly diagnosed glioblastoma in 2015. We report on the effects of TTFields during mitosis, the results of electric fields modeling, and proper transducer array placement. Our protocol outlines the clinical application of TTFields on a patient post-surgery, using the second-generation device.

Glioblastoma is the most common and aggressive primary brain malignancy in adults, with most tumors recurring after initial treatment. Tumor Treating Fields (TTFields) therapy is the newest treatment modality for glioblastoma. Here, we describe the proper application of TTFields-transducer arrays on patients and discuss theory and aspects of treatment.

Glioblastoma içinde alanları terapi tedavi tümör klinik uygulama

Glioblastoma is the most common and lethal form of brain cancer, with a median survival of 15 months after diagnosis and a 5 year survival rate of only 5% ...

Yeast As a Chassis for Developing Functional Assays to Study Human P53

The finding that the well-known mammalian P53 protein can act as a transcription factor (TF) in the yeast S. cerevisiae has allowed for the development of different functional assays to study the impacts of 1) binding site [i.e., response element (RE)] sequence variants on P53 transactivation specificity or 2) TP53 mutations, co-expressed cofactors, or small molecules on P53 transactivation activity. Different basic and translational research applications have been developed. Experimentally, these approaches exploit two major advantages of the yeast model. On one hand, the ease of genome editing enables quick construction of qualitative or quantitative reporter systems by exploiting isogenic strains that differ only at the level of a specific P53-RE to investigate sequence-specificity of P53-dependent transactivation. On the other hand, the availability of regulated systems for ectopic P53 expression allows the evaluation of transactivation in a wide range of protein expression. Reviewed in this report are extensively used systems that are based on color reporter genes, luciferase, and the growth of yeast to illustrate their main methodological steps and to critically assess their predictive power. Moreover, the extreme versatility of these approaches can be easily exploited to study different TFs including P63 and P73, which are other members of TP53 gene family.

Presented here are four protocols to construct and exploit yeast Saccharomyces cerevisiae reporter strains to study human P53 transactivation potential, impacts of its various cancer-associated mutations, co-expressed interacting proteins, and the effects of specific small molecules.

Insan p53 çalışma fonksiyonel Assays geliştirmek için bir şasi olarak Maya

The finding that the well-known mammalian P53 protein can act as a transcription factor (TF) in the yeast S. cerevisiae has allowed for the development of ...

In Vitro Assay to Study Tumor-macrophage Interaction

Tumor associated macrophages (TAMs) account for a large percentage of cells in the tumor mass for different types of cancers. Glioblastoma (GBM), a malignant brain tumor with no cure, has up to a half the tumor mass TAMs. TAMs can be pro-tumoral or anti-tumoral, depending on the activation of specific genes in the cells. Genetic mutations in the tumors, through regulating cytokine expression, can affect recruitment of TAMs to the tumor microenvironment. Here, we describe a quantitative cell-based assay to assess macrophage recruitment by the conditioned medium from the tumor cells. This assay uses the human macrophage cell line MV-4-11 to study macrophage attraction by the conditioned medium from glioblastoma, allowing for high reproducibility and low variability. Data generated with this assay can contribute to a better understanding of the interaction between the tumor and the tumor microenvironment. Similar assay can be used to assess interaction between the tumor cells and other immune cells, including T cells and natural killer (NK) cells.

This article represents a useful in vitro assay to evaluate the capability of conditioned medium from tumor cells to attract macrophages.

In vitro assay tümör çalışma-macrophage etkileşim

Tumor associated macrophages (TAMs) account for a large percentage of cells in the tumor mass for different types of cancers. Glioblastoma (GBM), a ...

Multidimensional Coculture System to Model Lung Squamous Carcinoma Progression

Tumor-stroma interactions play a critical role in the development of lung squamous carcinoma (LUSC). However, understanding how these dynamic interactions contribute to tissue architectural changes observed during tumorigenesis remains challenging due to the lack of appropriate models. In this protocol, we describe the generation of a 3D coculture model using a LUSC primary cell culture known as TUM622. TUM622 cells were established from a LUSC patient-derived xenograft (PDX) and have the unique property to form acinar-like structures when seeded in a basement membrane matrix. We demonstrate that TUM622 acini in 3D coculture recapitulate key features of tissue architecture during LUSC progression as well as the dynamic interactions between LUSC cells and components of the tumor microenvironment (TME), including the extracellular matrix (ECM) and cancer-associated fibroblasts (CAFs). We further adapt our principal 3D culturing protocol to demonstrate how this system could be utilized for various downstream analyses. Overall, this organoid model creates a biologically rich and adaptable platform that enables one to gain insight into the cell-intrinsic and extrinsic mechanisms that promote the disruption of epithelial architectures during carcinoma progression and will aid the search for new therapeutic targets and diagnostic markers.

An in vitro model system was developed to capture tissue architectural changes during lung squamous carcinoma (LUSC) progression in a 3-dimensional (3D) co-culture with cancer-associated fibroblasts (CAFs). This organoid system provides a unique platform to investigate the roles of diverse tumor cell-intrinsic and extrinsic changes that modulate the tumor phenotype.

Akciğer Skuamöz Karsinom Progresyonunu Modellemek Için Çok Boyutlu Coculture Sistemi

Tumor-stroma interactions play a critical role in the development of lung squamous carcinoma (LUSC). However, understanding how these dynamic interactions ...

Impedance-based Real-time Measurement of Cancer Cell Migration and Invasion

Cancer arises due to uncontrolled proliferation of cells initiated by genetic instability, mutations, and environmental and other stress factors. These acquired abnormalities in complex, multilayered molecular signaling networks induce aberrant cell proliferation and survival, extracellular matrix degradation, and metastasis to distant organs. Approximately 90% of cancer-related deaths are estimated to be caused by the direct or indirect effects of metastatic dissemination. Therefore, it is important to establish a highly reliable, comprehensive system to characterize cancer cell behaviors upon genetic and environmental manipulations. Such a system can give a clear understanding of the molecular regulation of cancer metastasis and the opportunity for successful development of stratified, precise therapeutic strategies. Hence, accurate determination of cancer cell behaviors such as migration and invasion with gain or loss of function of gene(s) allows assessment of the aggressive nature of cancer cells. The real-time measurement system based on cell impedance enables researchers to continually acquire data during a whole experiment and instantly compare and quantify the results under various experimental conditions. Unlike conventional methods, this method does not require fixation, staining, and sample processing to analyze cells that migrate or invade. This method paper emphasizes detailed procedures for real-time determination of migration and invasion of glioblastoma cancer cells.

Cancer is a lethal disease due to its ability to metastasize to different organs. Determining the ability of cancer cells to migrate and invade under various treatment conditions is crucial to assessing therapeutic strategies. This protocol presents a method to assess the real-time metastatic abilities of a glioblastoma cancer cell line.&#160;

Empedans tabanlı Gerçek Zamanlı Kanser Hücre Göçü ve İstilası Ölçümü

Cancer arises due to uncontrolled proliferation of cells initiated by genetic instability, mutations, and environmental and other stress factors. These ...

A 3D Spheroid Model for Glioblastoma

Two-dimensional (2D) cell cultures do not mimic in vivo tumor growth satisfactorily. Therefore, three-dimensional (3D) culture spheroid models were developed. These models may be particularly important in the field of neuro-oncology. Indeed, brain tumors have the tendency to invade the healthy brain environment. We describe herein an ideal 3D glioblastoma spheroid-based assay that we developed to study tumor invasion. We provide all technical details and analytical tools to successfully perform this assay.

Here, we describe an easy-to-use invasion assay for glioblastoma. This assay is suitable for glioblastoma stem-like cells. A Fiji macro for easy quantification of invasion, migration, and proliferation is also described.

Glioblastoma için 3D Spheroid Model

Two-dimensional (2D) cell cultures do not mimic in vivo tumor growth satisfactorily. Therefore, three-dimensional (3D) culture spheroid models were ...

Co-culture of Glioblastoma Stem-like Cells on Patterned Neurons to Study Migration and Cellular Interactions

Glioblastomas (GBMs), grade IV malignant gliomas, are one of the deadliest types of human cancer because of their aggressive characteristics. Despite significant advances in the genetics of these tumors, how GBM cells invade the healthy brain parenchyma is not well understood. Notably, it has been shown that GBM cells invade the peritumoral space via different routes; the main interest of this paper is the route along white matter tracts (WMTs). The interactions of tumor cells with the peritumoral nervous cell components are not well characterized. Herein, a method has been described that evaluates the impact of neurons on GBM cell invasion. This paper presents an advanced co-culture in vitro assay that mimics WMT invasion by analyzing the migration of GBM stem-like cells on neurons. The behavior of GBM cells in the presence of neurons is monitored by using an automated tracking procedure with open-source and free-access software. This method is useful for many applications, in particular, for functional and mechanistic studies as well as for analyzing the effects of pharmacological agents that can block GBM cell migration on neurons.

Here, we present an easy-to-use co-culture assay to analyze glioblastoma (GBM) migration on patterned neurons. We developed a macro in FiJi software for easy quantification of GBM cell migration on neurons, and observed that neurons modify GBM cell invasive capacity.

Göç ve Hücresel Etkileşimleri İncelemek İçin Desenli Nöronlarda Glioblastoma Kök Benzeri Hücrelerin Ortak Kültürü

Glioblastomas (GBMs), grade IV malignant gliomas, are one of the deadliest types of human cancer because of their aggressive characteristics. Despite ...

CAM-Delam Assay to Score Metastatic Properties by Quantifying Delamination and Invasion Capacity of Cancer Cells

The major cause of cancer-related deaths is metastasis formation (i.e., when cancer cells spread from the primary tumor to distant organs and form secondary tumors). Delamination, defined as the degradation of the basal lamina and basement membrane, is the initial process that facilitates the transmigration and spread of cancer cells to other tissues and organs. Scoring the delamination capacity of cancer cells would indicate the metastatic potential of these cells.
We have developed a standardized method, the ex ovo CAM-Delam assay, to visualize and quantify the ability of cancer cells to delaminate and invade, thereby being able to assess metastatic aggressiveness. Briefly, the CAM-Delam method includes seeding cancer cells in silicone rings on the chick chorioallantoic membrane (CAM) at embryonic day 10, followed by incubation from hours to a few days. The CAM-Delam assay includes the use of an internal humidified chamber during chick embryo incubation. This novel approach increased embryo survival from 10%-50% to 80%-90%, which resolved previous technical problems with low embryo survival rates in different CAM assays.
Next, the CAM samples with associated cancer cell clusters were isolated, fixed, and frozen. Finally, cryostat-sectioned samples were visualized and analyzed for basement membrane damage and cancer cell invasion using immunohistochemistry. By evaluating various known metastatic and non-metastatic cancer cell lines designed to express green fluorescent protein (GFP), the CAM-Delam quantitative results showed that the delamination capacity patterns reflect metastatic aggressiveness and can be scored into four categories. Future use of this assay, apart from quantifying delamination capacity as an indication of metastatic aggressiveness, is to unravel the molecular mechanisms that control delamination, invasion, the formation of micrometastases, and changes in the tumor microenvironment.

The CAM-Delam assay to evaluate the metastatic capacity of cancer cells is relatively fast, easy, and cheap. The method can be used for unraveling the molecular mechanisms regulating metastasis formation and for drug screening. An optimized assay for analyzing human tumor samples could be a clinical method for personalized cancer treatment.