(; EJD EY022383 ve EY022683) ve Core hibe (P30EY001765), Görüntüleme ve Mikroskopi Çekirdek Modülü Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri araştırma hibeleri tarafından desteklenmiştir.

Etik Beyanı: Tüm işlemler Johns Hopkins Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından belirlenen kurallara uygun olarak yapıldı. Not: Diğer kemirgen suşları veya türleri de kullanılabilir, ancak çekim sırasında kullanılan fareler Jackson, C57BL / 6 fareleri. diğer suşları veya türler kullanırken, anestezi dozları ve yaralanma zaman çizelgesi değişebilir unutmayın. Soy, tür, ve deneysel farklılaşmalarına uydurmak için I / R koşullara uyum önemlidir. 1. Anestezi Kokteyl hazırlayın <ol><li> 50 ml&#39;lik bir santrifüj tüpü içinde 1.25 mi Ketamine, 0.625 mi iksilazin, 0.375 mi asepromazin ve 22.75 ml fosfat tamponlu tuzlu su birleştirin. NOT: Yazının geri kalanı için, bu çözüm kokteyl olarak anılacaktır. </li><li> 60 ml&#39;lik bir şırınga ve bir 0.20 um filtre kullanılarak yeni bir steril 50 ml santrifüj tüpüne kokteyl filtre. Etiket ve tarih bu yeni tuolacak. </li><li> Tamamen anestezik ışık kaynaklı bozulmasını önlemek için alüminyum folyo ile kokteyl tüp sarın. NOT: kokteyl oda sıcaklığında saklanabilen ve en erken-dolan madde son kullanma tarihine kadar tekrar kullanılabilir. </li></ol> 2. Anestezi Booster hazırlayın <ol><li> 50 ml&#39;lik bir santrifüj tüpü içinde, 4 mL Ketamin ve 16 ml fosfat tamponlu tuzlu su birleştirir. NOT: Bu çözüm bundan sonra güçlendirici olarak anılacaktır. </li><li> 60 ml&#39;lik bir şırınga ve bir 0.20 um filtre kullanılarak yeni bir steril 50 ml santrifüj borusu ile yükseltici filtre. Etiket ve tarih bu yeni tüp. NOT: güçlendirici oda sıcaklığında saklanabilen ve en erken-dolan madde son kullanma tarihine kadar tekrar kullanılabilir. </li></ol> 3. Cerrahi Suite hazırlayın <ol><li> 18 ° C ile 21 ° C arasındaki oda sıcaklığına ayarlayın. </li><li> Ameliyat masasında açın ve highe için yüzey ısısını ayarlamakSt sıcaklığı. </li><li> Cerrahi underpads ile tüm çalışma yüzeyleri örtün. </li><li> sıcak cerrahi masaya boş bir kafes ya da başka bir kap düzenleyin. </li><li> Bir ölçek ve tezgâh üzerinde bir kulak tagger düzenleyin. </li></ol> 4. Heparin Sodyum Dengeli Tuz Çözüm hazırlayın <ol><li> dengelenmiş tuz çözeltisi (HBSS) içindeki bir 500 mi IV şişeye heparin sodyum, 0.5 ml ilave edilir. </li><li> % 0.1 heparin sodyum şişeye Y-site boru prepierced birincil setinin keskin ucunu sokun. </li></ol> 5. IV Kutup kurma <ol><li> IV kutup uzantısından% 0.1 heparin sodyum şişe asın, ve Y-site boru prepierced birincil sette hava filtresi kapağını açın oturtun. </li><li> 163 cm (120 mm Hg)% 0.1 heparin sodyum şişe yükseltin. sodyum heparin damla zirvesine masa gelen yüksekliğini ölçün. </li><li> El Y-site boru prepierced birincil seti hafifçe vurarak IV tüp herhangi bir hava kabarcıklarını çıkarın. </li&gt; </ol> 6. Sodyum Heparin Damla kurma <ol><li> Beş valf manifolduna Y-site boru prepierced birincil seti bağlayın. </li><li> 30-ölçer bağlayın ½ erkek rakorlar luer için Luer erkek kullanarak beş kapılı manifolduna inç iğneler. </li><li> 30-gauge, borunun kendi 10 inç segmentine 30-gauge ½ inç iğne her sokun. </li><li> hemostat kullanarak, yeni 30-gauge ½ inç iğne iğne ipuçlarını kırmak ve 30-gauge tüp içine onların kör uçlar yerleştirin. İğne ipuçları sterilite veya dezenfeksiyon Adım 8.3 için gerekli olacaktır. </li><li> bant kullanarak, iç bağlantı noktalarına bağlı borular dış bağlantı noktalarına bağlı tüpler üzerine konumlandırılır, öyle ki iğne ile 30 gauge tüpleri sağlayabilir. Bu düzenleme ön kamara kanülasyon sırasında boru karışıklığı önleyecektir. </li><li> Beş valf manifolduna% 0.1 heparin sodyum akışı ve her bir port için çevirin. <ol><li> Emin olun% 0,1heparin sodyum her bir port için güçlü akıyor. bir liman zayıf akan ise, bağlantı noktasını değiştirmek ya da steril bir şırınga hava ile temizleyin. </li><li> 30-gauge tüpleri ve 5-valf manifoldundan hava kabarcıklarını çıkarmak için 3 dakika -% 0.1 heparin sodyum 2 akmasına izin verin. </li></ol></li><li> 5-valf manifoldu üzerindeki tüm portları kapatın. </li></ol> 7. Cerrahi Fare hazırlayın <ol><li> Cerrahi paketine fareler getirin. Ameliyat sırasında, hayvan kaybını önlemek için, her bir kafes için su şişeleri sağlayın. </li><li> Her bir farenin ağırlığı kaydedin. </li><li> intraperitoneal gram vücut ağırlığı başına 0.02 ml kokteyl ile her fare enjekte edilir. </li><li> Etiketi ve her bir fare sayısını kaydeder. </li><li> Ameliyat masasında boş kap içine tüm fareler yerleştirin. ayak tutam pedal çekilme yanıtı yokluğunda tarafından onaylandıktan derin anesthetization ulaşmak için tüm fareler için 5-10 dakika bekleyin. </li><li> Her bir fare için, bir damla uygulanmasıöğrenci dilatasyon ve kısa vadeli yağlanması için her gözün içine Tropicamide. </li><li> Her fare için, lokal anestezi ve kısa vadeli yağlanması için her gözün içine proparakain bir damla yönetmek. </li><li> İlk fare olacak anestezi ilk fare kanüle edilmesi ve böylece anesthetization sırasına fareler düzenleyin. </li><li> İzin yaklaşık göz için 2 dakika yürürlüğe girmesi düşer. </li><li> Kasette sıkıca çekerek bant düz 4-inç parçalarını hazırlayın. bir kenara, her fare için bant tek parça ayarlayın. NOT: Kasette sıkıca çekin yerine getirmemek bant kıvrılmasını neden olacaktır. </li></ol> 8. cannulate Ön Kamara <ol><li> Cerrahi mikroskop altında ilk fare düzenleyin ve tercih edilen kornea üzerinde mikroskop odaklanın. NOT: Her iki kanülasyonu göz gerçekleştirilebilir. Sağ hakim cerrahlar i bulabilirsinizSol dominant cerrahlar hakkını tercih edebilirsiniz süre t kolay, sol gözü cannulate. </li><li> Beş valf manifoldu ilk% 0.1 heparin sodyum port açın. </li><li> Cerrahi mikroskop altında, hafifçe göz proptose için forseps bir çift kullanın. zonule lifleri ve kornea apeks arasında yaklaşık yarım ön kamaraya 30-gauge kanül iğne takın. <ol><li> çizilmemesi veya iris, lens ya da iç kornea yüzeyinin delinmesiyle önlemek için özen gösterin. </li><li> korneaya ikinci kez nüfuz kaçının. </li><li> kanül ve kornea arasındaki sürtünmeyi aşmak için nazik bir kıvırma hareketi ile, ön kamarada derinden kanül yerleştirin. </li></ol></li><li> tablo 30-gauge boru sağlamak için bant şeridi kullanın. bant ulaşırken eklenen kanül hareketini en aza indirmek için, masa karşı 30-gauge boru basın. </li><li> cerrahi başlama süresi olarak kaydedilir. </li><li> verif, mikroskop kullanılarakkaçak ortaya y. Sızıntı varsa, sıvının hareketi göz yakınında görünür olacaktır. </li><li> Görme I / R göz kontralateral gözün daha büyük olduğunu gözlemleyerek göz distansiyon onaylayın. Birlikte, sızıntı olmaması ve oküler distansiyon varlığı göz içi basıncı başarılı bir yükselme göstermektedir. </li><li> her iki göze hipromelloz uygulayın. Hipromelloz kornea ve mühür microleaks yağlamak için hizmet vermektedir. sürekli yağlama için (yaklaşık olarak her 30 dakika) gerektiği gibi hipromelloz yeniden uygulayın. </li><li> tüm hayvanlar kanüle edilene kadar tekrarlayın Adım 8. </li></ol> 9. Monitör Anestezi <ol><li> ayak tutam kullanın, bıyıkları veya kuyruk görsel gözlem görsel gözlem her bir fare anestezi kalmasını doğrulamak için. Bir fare bir pedal geri çekme yanıtı, bıyık seğirmesi veya kuyruk hareketi göstermesi gerekmektedir, 9.2 Adım hemen geçin. </li><li> Bir fare cerrahi, kaldırma sırasında uyandırmak başlarsakuyruk fare arkasından alt karın içine intraperitoneal 0.05 ml güçlendirici enjekte etmek. yükseltici etkili olması için 2 dk - 1 izin verin. </li><li> Bir fare, ek sedasyon, gerektiğinde tekrar Adım 9 gerektirir. </li></ol> 10. Anterior Odası&#39;ndan Kanül kaldır <ol><li> Her bir hayvan için, 90 dakika geçtikten sonra, yavaşça antoryor odacıktan kanül çekin. </li><li> Bitişik hayvanların kanül tüp rahatsız etmemek için özen, cerrahi tablodan fareyi Untape. </li><li> jöle yağlama ile her iki gözü yağlayın. </li><li> sonraki kanüller kaldırılır gibi, ameliyatın cerrahi masada boş bir kap içinde fareler düzenlemek. Cerrahi tablonun ısı kapatmayın. </li><li> Isıtmalı cerrahi masaya kurtarma için 3 saat - 2, en azından, izin verin. tam anestezi kurtarıldı sık kadar fareler gözlemleyin. </li></ol> 11. Temiz Equipment <ol><li> alkol mendil kullanarak kanüller dezenfekte edin. NOT: otoklavlama olarak dezenfeksiyon veya sterilizasyon için kullanılan diğer yöntemler, sübstitüe edilmiş olabilir. </li><li> hava ile dolu bir 60 ml&#39;lik bir şırınga kullanılarak 5-valf manifoldunun% 0.1 heparin sodyum, 30-geyç &#39;lik iğneler, 30-gauge boru ve kanül boşaltınız. </li><li> damıtılmış su ile dolu bir 60 ml&#39;lik bir şırınga kullanılarak 5-valf manifoldu, 30-geyç &#39;lik iğneler, 30-gauge boru ve kanül yıkayın. </li><li> hava ile dolu bir 60 ml&#39;lik bir şırınga kullanılarak 5-bağlantı manifoldu, 30-gauge iğne, 30-gauge boru ve kanüller damıtılmıştır suyu atmak. </li><li> kanül dezenfeksiyon ve boru aparatı yıkandıktan sonra, yeniden kullanım için bu cihazı saklayın. </li><li> Mağaza, atmak, ya da tüm diğer donanımları kapatın. cerrahi tablonun ısı bırakın. </li></ol> 12. Dönüş Onların Ev Kafes tüm Fareler <ol><li> Fareler (2 sonra - 3 saat) cerrahi uyandırmak sonra evde kafes her hayvan dönmek. Her kafes için jel yiyecek sağlamak. kendi tayin odalarına tüm kafesleri dönün. </li><li> Cerrahi tablonun ısı kapatın. Tüm atık atmak ve cerrahi paketi silin. </li></ol> 13. Retina Değerlendirmesi gerçekleştirin <ol><li> Uygun olarak, Elektroretinogram kayıt için histolojik analiz ya da koyu adapte fareler için retina toplamak. </li></ol>

<ol>
	<li>Osborne, N. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+ischemia:+mechanisms+of+damage+and+potential+therapeutic+strategies.">Retinal ischemia: mechanisms of damage and potential therapeutic strategies.</a> Prog Retin Eye Res. 23 (1), 91-147 (2004).</li><li>Bonne, C., Muller, A., Villain, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Free+radicals+in+retinal+ischemia.">Free radicals in retinal ischemia.</a> Gen Pharmacol. 30 (3), 275-280 (1998).</li><li>Smith, G. G., Baird, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Survival+time+of+retinal+cells+when+deprived+of+their+blood+supply+by+increased+intraocular+pressure.">Survival time of retinal cells when deprived of their blood supply by increased intraocular pressure.</a> Am J Ophthalmol. 35 (5:2), 133-136 (1952).</li><li>Buchi, E. R., Suivaizdis, I., Fu, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pressure-induced+retinal+ischemia+in+rats:+an+experimental+model+for+quantitative+study.">Pressure-induced retinal ischemia in rats: an experimental model for quantitative study.</a> Ophthalmologica. 203 (3), 138-147 (1991).</li><li>Block, F., Schwarz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+b-wave+of+the+electroretinogram+as+an+index+of+retinal+ischemia.">The b-wave of the electroretinogram as an index of retinal ischemia.</a> Gen Pharmacol. 30 (3), 281-287 (1998).</li><li>Katai, N., Yoshimura, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Apoptotic+retinal+neuronal+death+by+ischemia-reperfusion+is+executed+by+two+distinct+caspase+family+proteases.">Apoptotic retinal neuronal death by ischemia-reperfusion is executed by two distinct caspase family proteases.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 40 (11), 2697-2705 (1999).</li><li>Toriu, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lomerizine,+a+Ca2++channel+blocker,+reduces+glutamate-induced+neurotoxicity+and+ischemia/reperfusion+damage+in+rat+retina.">Lomerizine, a Ca2+ channel blocker, reduces glutamate-induced neurotoxicity and ischemia/reperfusion damage in rat retina.</a> Exp Eye Res. 70 (4), 475-484 (2000).</li><li>Kawai, S. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+of+risk+factors+for+the+degeneration+of+retinal+ganglion+cells+after+ischemia/reperfusion+in+rats:+effects+of+age,+caloric+restriction,+diabetes,+pigmentation,+and+glaucoma.">Modeling of risk factors for the degeneration of retinal ganglion cells after ischemia/reperfusion in rats: effects of age, caloric restriction, diabetes, pigmentation, and glaucoma.</a> FASEB J. 15 (7), 1285-1287 (2001).</li><li>Chidlow, G., Schmidt, K. G., Wood, J. P., Melena, J., Osborne, N. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alpha-lipoic+acid+protects+the+retina+against+ischemia-reperfusion.">Alpha-lipoic acid protects the retina against ischemia-reperfusion.</a> Neuropharmacology. 43 (6), 1015-1025 (2002).</li><li>Fei, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Upregulation+of+Homer1a+Promoted+Retinal+Ganglion+Cell+Survival+After+Retinal+Ischemia+and+Reperfusion+via+Interacting+with+Erk+Pathway.">Upregulation of Homer1a Promoted Retinal Ganglion Cell Survival After Retinal Ischemia and Reperfusion via Interacting with Erk Pathway.</a> Cell Mol Neurobiol. , (2015).</li><li>Xu, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroprotective+role+of+Nrf2+for+retinal+ganglion+cells+in+ischemia-reperfusion.">Neuroprotective role of Nrf2 for retinal ganglion cells in ischemia-reperfusion.</a> J Neurochem. 133 (2), 233-241 (2015).</li><li>Kim, B. J., Braun, T. A., Wordinger, R. J., Clark, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Progressive+morphological+changes+and+impaired+retinal+function+associated+with+temporal+regulation+of+gene+expression+after+retinal+ischemia/reperfusion+injury+in+mice.">Progressive morphological changes and impaired retinal function associated with temporal regulation of gene expression after retinal ischemia/reperfusion injury in mice.</a> Mol Neurodegener. 8 (21), (2013).</li><li>Portillo, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CD40+mediates+retinal+inflammation+and+neurovascular+degeneration.">CD40 mediates retinal inflammation and neurovascular degeneration.</a> J Immunol. 181 (12), 8719-8726 (2008).</li><li>Wei, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nrf2+has+a+protective+role+against+neuronal+and+capillary+degeneration+in+retinal+ischemia-reperfusion+injury.">Nrf2 has a protective role against neuronal and capillary degeneration in retinal ischemia-reperfusion injury.</a> Free Radic Biol Med. 51 (1), 216-224 (2011).</li><li>Abcouwer, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+ischemic+preconditioning+and+bevacizumab+on+apoptosis+and+vascular+permeability+following+retinal+ischemia-reperfusion+injury.">Effects of ischemic preconditioning and bevacizumab on apoptosis and vascular permeability following retinal ischemia-reperfusion injury.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 51 (11), 5920-5933 (2010).</li><li>Abcouwer, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minocycline+prevents+retinal+inflammation+and+vascular+permeability+following+ischemia-reperfusion+injury.">Minocycline prevents retinal inflammation and vascular permeability following ischemia-reperfusion injury.</a> J Neuroinflammation. 10 (149), (2013).</li><li>Zheng, L., Gong, B., Hatala, D. A., Kern, T. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Retinal+ischemia+and+reperfusion+causes+capillary+degeneration:+similarities+to+diabetes.">Retinal ischemia and reperfusion causes capillary degeneration: similarities to diabetes.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 48 (1), 361-367 (2007).</li><li>Weyker, P. D., Webb, C. A., Kiamanesh, D., Flynn, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lung+ischemia+reperfusion+injury:+a+bench-to-bedside+review.">Lung ischemia reperfusion injury: a bench-to-bedside review.</a> Semin Cardiothorac Vasc Anesth. 17 (1), 28-43 (2013).</li><li>Raedschelders, K., Ansley, D. M., Chen, D. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cellular+and+molecular+origin+of+reactive+oxygen+species+generation+during+myocardial+ischemia+and+reperfusion.">The cellular and molecular origin of reactive oxygen species generation during myocardial ischemia and reperfusion.</a> Pharmacol Ther. 133 (2), 230-255 (2012).</li><li>Di, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MicroRNAs+expression+and+function+in+cerebral+ischemia+reperfusion+injury.">MicroRNAs expression and function in cerebral ischemia reperfusion injury.</a> J Mol Neurosci. 53 (2), 242-250 (2014).</li><li>Saidi, R. F., Kenari, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Liver+ischemia/reperfusion+injury:+an+overview.">Liver ischemia/reperfusion injury: an overview.</a> J Invest Surg. 27 (6), 366-379 (2014).</li><li>Malek, M., Nematbakhsh, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renal+ischemia/reperfusion+injury;+from+pathophysiology+to+treatment.">Renal ischemia/reperfusion injury; from pathophysiology to treatment.</a> J Renal Inj Prev. 4 (2), 20-27 (2015).</li><li>Mallick, I. H., Yang, W., Winslet, M. C., Seifalian, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ischemia-reperfusion+injury+of+the+intestine+and+protective+strategies+against+injury.">Ischemia-reperfusion injury of the intestine and protective strategies against injury.</a> Dig Dis Sci. 49 (9), 1359-1377 (2004).</li><li>Hesketh, E. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Renal+ischaemia+reperfusion+injury:+a+mouse+model+of+injury+and+regeneration.">Renal ischaemia reperfusion injury: a mouse model of injury and regeneration.</a> J Vis Exp. (88), (2014).</li><li>Stefansson, E., Wilson, C. A., Schoen, T., Kuwabara, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+ischemia+induces+cell+mitosis+in+the+adult+rat+retina.">Experimental ischemia induces cell mitosis in the adult rat retina.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 29 (7), 1050-1055 (1988).</li><li>Honjo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Statin+inhibits+leukocyte-endothelial+interaction+and+prevents+neuronal+death+induced+by+ischemia-reperfusion+injury+in+the+rat+retina.">Statin inhibits leukocyte-endothelial interaction and prevents neuronal death induced by ischemia-reperfusion injury in the rat retina.</a> Arch Ophthalmol. 120 (12), 1707-1713 (2002).</li><li>Otori, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expression+of+c-fos+and+c-jun+mRNA+following+transient+retinal+ischemia:+an+approach+using+ligation+of+the+retinal+central+artery+in+the+rat.">Expression of c-fos and c-jun mRNA following transient retinal ischemia: an approach using ligation of the retinal central artery in the rat.</a> Surv Ophthalmol. 42, 96-104 (1997).</li><li>Liu, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epac2-deficiency+leads+to+more+severe+retinal+swelling,+glial+reactivity+and+oxidative+stress+in+transient+middle+cerebral+artery+occlusion+induced+ischemic+retinopathy.">Epac2-deficiency leads to more severe retinal swelling, glial reactivity and oxidative stress in transient middle cerebral artery occlusion induced ischemic retinopathy.</a> Sci China Life Sci. 58 (6), 521-530 (2015).</li><li>Zhang, Y., Zhang, Z., Yan, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Simvastatin+inhibits+ischemia/reperfusion+injury-induced+apoptosis+of+retinal+cells+via+downregulation+of+the+tumor+necrosis+factor-alpha/nuclear+factor-kappaB+pathway.">Simvastatin inhibits ischemia/reperfusion injury-induced apoptosis of retinal cells via downregulation of the tumor necrosis factor-alpha/nuclear factor-kappaB pathway.</a> Int J Mol Med. , (2015).</li><li>Li, B., Pang, I. H., Barnes, G., McLaughlin, M., Holt, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+and+device+to+induce+transient+retinal+ischemia+in+the+rat.">A new method and device to induce transient retinal ischemia in the rat.</a> Curr Eye Res. 24 (6), 458-464 (2002).</li></ol>

The authors have no disclosures.

Retina I / GİB yükselmesi ile R yaralanması kemirgen retina nörovasküler ünitesinde hücresel hasarı ve disfonksiyonu, özellikle nörodejenerasyonu, modelleme kendi programını kanıtlamıştır. Bu prosedür sağlam bir kontrol doku sağlar ve teknik gelişmişliği açısından kolayca erişilebilir. Bu ve basınç ve iskemi süresini artırarak yaralanma şiddetini 24 artırabilir diğer I / R yaralanmasına modellerinde görülmüştür. Bu nedenle, bazı uygulayıcılar burada 4,6-10,12</su...

Retina İskemi-reperfüzyon (I / R), glokom, diyabetik retinopati ve retinal vasküler oklüzyonlar 1 de dahil olmak üzere pek çok insan retinal hastalıkları, karakterize etmektedir. Dolaşım sonradan iade edildiğinde retina I / R, retina damar sisteminde azalmış kan akımı (iskemi) retina oksijen ve diğer besin karşı aşırı duyarlılığı, şiddetli oksidatif tetikleyici ve inflamatuar hasar durumunu oluşturur (reperfüzyon) 2. nöral retina retina nörodejenerasyon belki / R&#39;a bağlı hasarın en belirgin özelliği olmak üzere, bu değişikliklere karşı özellikle savunmasız görünüyor. Fare retina İ / R hasarını modelleme için bir protokol burada sunulmuştur. Bu teknik retina nörovasküler birimin insan hastalıkları için potansiyel mekanizmaları ve tedavi stratejilerinin incelemek için araştırmacılar sağlar. Cerrahi anemi 3 nörodejeneratif sonuçlarını anlamak isteyen cerrahlar tarafından 1952 yılında öncülük rodent Retina I / yüksek göz içi basıncının (GİB) tarafından R iskemik hakaret 4 sonra nörodejeneratif uç noktaları standartlaştırılması amacıyla 1991 yılında yeniden kuruldu. sistolik kan basıncının üstünde göz içi basıncını yükseltmek için tuzlu rezervuar damla kullanarak, bu çalışmalar basınçlı göz kanülasyon retina dolaşımını durdurma ve böylece nöronal dejenerasyona başlatmak için yeterli olduğunu göstermiştir. GİB yükselmesi retina I / R kullanarak Daha yeni çalışmalar I / R-kaynaklı retina nörodejenerasyon 5-12 yatan mekanizmaları ayrıntılı başladı. Çoklu gruplar inflamasyon 13,14, damar geçirgenliği 15,16 ve kılcal dejenerasyonu 14,17 dahil olmak üzere ek patolojik değişiklikler bildirilmiştir. Birlikte ele alındığında, bu çalışmalar daha genel olarak retina nörovasküler hastalığı için bir model olarak, yüksek IOP retinal I / R hasarına kurduk. I / R yaralanma mekanizmasını karakterize va çalışma için gerekli olanscular hastalığı. Yükseltilmiş GİB&#39;ndan Retina I / R hasarına, I / R akciğer 18 yaralanma, kalp 19, beyin 20, karaciğer 21, böbrek 22 ve bağırsakta 23 de dahil olmak üzere pek çok hipoksi kaynaklı yaralanma modellerinde, biridir. Bu modeller vasküler hastalık anlayışımızı ve klinik çareler geliştirilmesinde olağanüstü olmuştur. oküler dokularda, retina I / GİB yükselmesi ile R sakatlığı I / R süreçlerinin soruşturma uzatarak bu ilgili koşulların daha kapsamlı bir resmini yardımcı olur. retinada klinik nörodejeneratif koşullar, retina I / GİB yükselmesi ile R yaralanması ile yakından gelen iskemik patogenezi keşfetmek ilgilenen araştırmacılar için değerli bir araç sunuyor. Burada tarif edilen protokol, uysal, ve erişilebilir hedeflenmektedir. Böyle retina nöronlarının ölçümü, retina kalınlığı ölçümü ve elektrofizyolojik r olarak nöronal dejenerasyonu uç noktalar ile de tamamlanmaktadırretinal sinir işlevinin ayıt. Bu model nörovasküler soruşturma ilerleyen yararını kanıtlamış ve görsel tıp araştırmalarında temel bir kuralı olarak statüsünü kazanma olacağını göstermektedir.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="544">
	<tbody>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">Heparin Sodium Injection, USP</td>
			<td style="width:136px;">Abraxis Pharmaceutical Products</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">1000 USP/mL</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">BSS Sterile Irrigating Solution</td>
			<td style="width:136px;">Alcon Laboratories, Inc.</td>
			<td style="width:136px;">9007754-0212</td>
			<td style="width:136px;">500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">SC-2kg Digital Pocket Scale</td>
			<td style="width:136px;">American Weigh Scales, Inc.</td>
			<td style="width:136px;">SC-2kg</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">Tropicamide Ophthalmic Solution USP 1%</td>
			<td style="width:136px;">Bausch + Lomb</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">1% (10 mg/mL)</td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:136px;">Proparacaine Hydrochloride Ophthalmic Solution USP, 0.5%</td>
			<td style="width:136px;">Bausch + Lomb</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">0.5% (5 mg/mL)</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">INTRAMEDIC Polyethylene Tubing</td>
			<td style="width:136px;">Becton Dickinson and Company</td>
			<td align="right" style="width:136px;">427400</td>
			<td style="width:136px;">Inner diameter: 427400</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">30G1/2 PrecisionGlide Needles</td>
			<td style="width:136px;">Benton Dickinson and Company</td>
			<td align="right" style="width:136px;">305106</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:136px;">BC 1mL TB Syringe, Slim Tip with Intradermal Bevel Needle, 26G x 3/8</td>
			<td style="width:136px;">Benton Dickinson and Company</td>
			<td align="right" style="width:136px;">309625</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">BD 60mL Syringe Luer-Lok Tip</td>
			<td style="width:136px;">Benton Dickinson and Company</td>
			<td align="right" style="width:136px;">309653</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Zeiss OPMI Visu 200/S8 Microscope</td>
			<td style="width:136px;">Carl Zeiss AG</td>
			<td style="width:136px;">000000-1179-101</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Sterile Syringe Filter</td>
			<td style="width:136px;">Corning Inc.</td>
			<td style="width:136px;">CLS431224</td>
			<td style="width:136px;">0.20 &#181;m</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Durasorb Underpads</td>
			<td style="width:136px;">Covidien</td>
			<td align="right" style="width:136px;">1038</td>
			<td style="width:136px;">23 x 24 inches</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:136px;">Alcohol Prep</td>
			<td style="width:136px;">Covidien</td>
			<td align="right" style="width:136px;">6818</td>
			<td style="width:136px;">2 Ply, Medium</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Student Dumont #5 Forceps</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:136px;">91150-20</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Hartman Hemostats</td>
			<td style="width:136px;">Fine Science Tools</td>
			<td style="width:136px;">13002-10</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:136px;">Primary Set, Macrobore, Prepierced Y-Site, 80 Inch</td>
			<td style="width:136px;">Hospira</td>
			<td style="width:136px;">12672-28</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Phosphate Buffered Saline pH 7.4 (1X)</td>
			<td style="width:136px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:136px;">10010-049</td>
			<td style="width:136px;">500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="22">
			<td height="22" style="height:22px;width:136px;">Distilled water</td>
			<td style="width:136px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:136px;">15230-204</td>
			<td style="width:136px;">500 mL</td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">C57BL/6J Mice</td>
			<td style="width:136px;">The Jackson Laboratory</td>
			<td align="right" style="width:136px;">664</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">AnaSed Injection: Xylazine Sterile Solution</td>
			<td style="width:136px;">LLOYD, Inc.</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">20 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">Lubricating Jelly, Water Soluble Bacteriostatic</td>
			<td style="width:136px;">MediChoice</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">3-Gram Packet</td>
		</tr>
		<tr height="106">
			<td height="106" style="height:106px;width:136px;">NAMIC Angiographic Pressure Monitoring Manifold</td>
			<td style="width:136px;">Navilyst Medical, Inc.</td>
			<td align="right" style="width:136px;">70039355</td>
			<td style="width:136px;">5-Valve Manifold with Seven Female Ports</td>
		</tr>
		<tr height="148">
			<td height="148" style="height:148px;width:136px;">Goniosoft, Hypromellose 2.5% Ophthalmic Demulcent Solution: Hydroxypropyl Methylcellulose</td>
			<td style="width:136px;">OCuSOFT, Inc.</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">2.5% (25 mg/mL)</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">Ketaset CIII: Ketamine Hydrochloride</td>
			<td style="width:136px;">Pfizer, Inc.</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">100 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:136px;">Trans-Pal I.V. Stand&#160;</td>
			<td style="width:136px;">Pryor Products</td>
			<td align="right" style="width:136px;">372</td>
			<td style="width:136px;">Furnished with a home-constructed 60-cm stainless steel extension</td>
		</tr>
		<tr height="85">
			<td height="85" style="height:85px;width:136px;">Acepromazine: Acepromazine Maleate Injection, USP</td>
			<td style="width:136px;">Vet One</td>
			<td style="width:136px;"></td>
			<td style="width:136px;">10 mg/mL</td>
		</tr>
		<tr height="64">
			<td height="64" style="height:64px;width:136px;">V-Top Surgery Table/Adjustable Hydraulic</td>
			<td style="width:136px;">VSSI</td>
			<td style="width:136px;">100-4041-21</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
		<tr height="43">
			<td height="43" style="height:43px;width:136px;">Tube Fitting Luer Male to Luer Male</td>
			<td style="width:136px;">Warner Instruments</td>
			<td style="width:136px;">64-1579</td>
			<td style="width:136px;"></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a mouse model of retinal ischemia-reperfusion injury through elevation of intraocular pressure

Retina İskemi-reperfüzyon (I / R), glokom, diyabetik retinopati ve retinal vasküler oklüzyon da dahil olmak üzere çok sayıda oküler hastalık, hücre hasarına katkıda bulunan patofizyolojik süreç. I / R hasarının kemirgen modelleri, özellikle retina nörovasküler ünitesinde nörodejeneratif hasar bakımından, insan İ / R hasarı için mekanizmalar ve tedavi stratejileri hakkında önemli bilgiler sağlıyor. göz içi basıncı (GİB) yüksekliği ile farelerde retina İ / R hasarını uyarılması için bir protokol burada sunulmuştur. Bu protokolde, oküler ön kamara yükseltilmiş bir tuzlu rezervuar damla aktığı bir iğne ile kanüle edilir. sistolik kan basıncının üzerinde GİB&#39;in yükseltmek için bu damla kullanarak, bir uygulayıcı geçici iç retina kan akımını (iskemi) durur. dolaşım kanül uzaklaştırılmasıyla (reperfüzyon) eski haline getirildiğinde, ağır hücresel hasar retina nörodejenerasyonunda sonuçta ortaya çıkan, ortaya çıkar. Son damızlıkler, bu modelin daha fazla unsurları olarak enflamasyon, vasküler geçirgenlik ve kapiler dejenerasyon göstermektedir. Böyle retinal arter ligasyonu, retina I / tarafından R yaralanması gibi alternatif retina İ / R metodolojileri ile karşılaştırıldığında GİB&#39;in nöronal patogenezi ve tedavisi incelemek için değerli bir araç olarak kendini sunan, anatomik özgüllük, deneysel tractability ve teknik erişilebilirlik avantajlar sunmaktadır yükselmiş retina nörovasküler birimi.

GİB yükselmesi retina I / R nörodejeneratif etkileri genellikle iki standart yaklaşımlar kullanılarak değerlendirilir. Nöronal çekirdeğin Neun immün I / R hakaret (Şekil 1) Aşağıdaki önemli nöronal hücre kaybı ortaya koymuştur. I / R, paraformaldehid sabit nöronal hücre işaretleyici Neun ile etiketlenmiş ve tüm monte edildikten sonra Kısaca, gözler 7 gün enükleasyon. Görüntüler konfokal mikroskopi kullanılarak çekilen ve neun ile etiketl...

Watch this Scientific Journal Video about A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure at JoVE.com

A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Bu makalede, farelerde yüksek göz tansiyonu retinal iskemi-reperfüzyon hasarı uyarılması için bir yöntem tarif eder. yüksek göz içi basıncı ile retinal iskemi-reperfüzyon hasarı, retina nörovasküler biriminin, insan hastalıkları için, potansiyel hücresel mekanizmaları ve tedavi incelemelerine sağlayan retinada tehlikeye oksijen ve besin teslimat karakterize olan insan patolojilerinin model vermektedir.

Göz İçi Basıncı Yükselmesi ile Retina İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Retinal ischemia-reperfusion (I/R) is a pathophysiological process contributing to cellular damage in multiple ocular conditions, including glaucoma, ...

a-mouse-model-retinal-ischemia-reperfusion-injury-through-elevation

Research

JoVE Journal

Medicine

14.8K Görüntüleme.  Johns Hopkins University.  Bu makalede, farelerde yüksek göz tansiyonu retinal iskemi-reperfüzyon hasarı uyarılması için bir yöntem tarif eder. yüksek göz içi basıncı ile retinal iskemi-reperfüzyon hasarı, retina nörovasküler biriminin, insan hastalıkları için, potansiyel hücresel mekanizmaları ve tedavi incelemelerine sağlayan retinada tehlikeye oksijen ve besin teslimat karakterize olan insan patolojilerinin model vermektedir. 

Video: A Mouse Model of Retinal Ischemia-Reperfusion Injury Through Elevation of Intraocular Pressure

Normothermic Cardiac Arrest and Cardiopulmonary Resuscitation: A Mouse Model of Ischemia-Reperfusion Injury

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused by whole-body hypoperfusion.5,6 Successful reproduction of whole-body hypoperfusion in rodent models has been fraught with 
difficulty.7-9,9,10 Models which employ focal ischemia have repeatedly demonstrated results which do not translate to the clinical setting, and larger 
animal models which allow for whole body hypoperfusion lack access to the full toolset of genetic manipulation possible in the mouse.11,12 However, in recent 
years a mouse model of cardiac arrest and cardiopulmonary resuscitation has emerged which can be adapted to model AKI.13 This model reliably reproduces 
physiologic, functional, anatomic, and histologic outcomes seen in clinical AKI, is rapidly repeatable, and offers all of the significant advantages of a murine surgical 
model, including access to genetic manipulative techniques, low cost relative to large animals, and ease of use. Our group has developed extensive experience 
with use of this model to assess a number of organ-specific outcomes in AKI.14,15

A powerful model for perioperative and critical care related acute kidney injury is presented. Using whole body hypoperfusion induced by cardiac arrest it is possible to nearly replicate the histologic and functional changes of clinical AKI.

Normotermik Kardiyak Arrest ve Kardiyopulmoner Resusitasyon: İskemi-Reperfüzyon Hasarı Fare Modeli

Acute Kidney Injury (AKI) is a common, highly lethal, complication of critical illness which has a high mortality1-4 and which is most 
frequently caused ...

Tıp

Ischemia-reperfusion Model of Acute Kidney Injury and Post Injury Fibrosis in Mice

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often unreported mortality rates that may confound analyses. Bilateral renal pedicle clamping is commonly used to induce IR-AKI, but differences between effective clamp pressures and/or renal responses to ischemia between kidneys often lead to more variable results. In addition, shorter clamp times are known to induce more variable tubular injury, and while mice undergoing bilateral injury with longer clamp times develop more consistent tubular injury, they often die within the first 3 days after injury due to severe renal insufficiency. To improve post-injury survival and obtain more consistent and predictable results, we have developed two models of unilateral ischemia-reperfusion injury followed by contralateral nephrectomy. Both surgeries are performed using a dorsal approach, reducing surgical stress resulting from ventral laparotomy, commonly used for mouse IR-AKI surgeries. For induction of moderate injury BALB/c mice undergo unilateral clamping of the renal pedicle for 26 min and also undergo simultaneous contralateral nephrectomy. Using this approach, 50-60% of mice develop moderate AKI 24 hr after injury but 90-100% of mice survive. To induce more severe AKI, BALB/c mice undergo renal pedicle clamping for 30 min followed by contralateral nephrectomy 8 days after injury. This allows functional assessment of renal recovery after injury with 90-100% survival. Early post-injury tubular damage as well as post injury fibrosis are highly consistent using this model.

We describe models of moderate and severe ischemia-reperfusion-induced kidney injury in which the mice undergo unilateral renal pedicle clamping followed by simultaneous or delayed contralateral nephrectomy, respectively. These models consistently give rise to renal dysfunction and post-injury fibrosis, but injury severity and survival are dependent on mouse background, age and surgical equipment.

Farelerde Akut Böbrek Hasarı ve Post Yaralanma Fibrozis iskemi-reperfüzyon Model

Ischemia-reperfusion induced acute kidney injury (IR-AKI) is widely used as a model of AKI in mice, but results are often quite variable with high, often ...

A Murine Model of Myocardial Ischemia-reperfusion Injury through Ligation of the Left Anterior Descending Artery

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms at work during MI and developing effective therapeutic approaches requires methodology to reproducibly simulate the clinical incidence and reflect the pathophysiological changes associated with MI. Here, we describe a surgical method to induce MI in mouse models that can be used for short-term ischemia-reperfusion (I/R) injury as well as permanent ligation. The major advantage of this method is to facilitate location of the left anterior descending artery (LAD) to allow for accurate ligation of this artery to induce ischemia in the left ventricle of the mouse heart. Accurate positioning of the ligature on the LAD increases reproducibility of infarct size and thus produces more reliable results. Greater precision in placement of the ligature will improve the standard surgical approaches to simulate MI in mice, thus reducing the number of experimental animals necessary for statistically relevant studies and improving our understanding of the mechanisms producing cardiac dysfunction following MI. This mouse model of MI is also useful for the preclinical testing of treatments targeting myocardial damage following MI.

We introduce a surgical method to induce experimental ischemia/reperfusion (I/R) injury to simulate myocardial infarction (MI) in mouse models that allows for more clarity in positioning of the ligation on the left anterior descending artery (LAD) to increase the reproducibility of MI experiments in mice.

Sol ön inen arter ligasyonu ile Miyokard İskemi-reperfüzyon Hasarı bir fare modeli

Acute or chronic myocardial infarction (MI) are cardiovascular events resulting in high morbidity and mortality. Establishing the pathological mechanisms ...

Murine Model of Intestinal Ischemia-reperfusion Injury

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, hypotension, necrotizing enterocolitis, bowel transplantation, trauma and chronic inflammation. Intestinal ischemia-reperfusion (IR) injury is a consequence of acute mesenteric ischemia, caused by inadequate blood flow through the mesenteric vessels, resulting in intestinal damage. Reperfusion following ischemia can further exacerbate damage of the intestine. The mechanisms of IR injury are complex and poorly understood. Therefore, experimental small animal models are critical for understanding the pathophysiology of IR injury and the development of novel therapies.
Here we describe a mouse model of acute intestinal IR injury that provides reproducible injury of the small intestine without mortality. This is achieved by inducing ischemia in the region of the distal ileum by temporally occluding the peripheral and terminal collateral branches of the superior mesenteric artery for 60 min using microvascular clips. Reperfusion for 1 hr, or 2 hr after injury results in reproducible injury of the intestine examined by histological analysis. Proper position of the microvascular clips is critical for the procedure. Therefore the video clip provides a detailed visual step-by-step description of this technique. This model of intestinal IR injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Here we describe the detailed procedure of intestinal ischemia-reperfusion in mice which results in reproducible injury without mortality to encourage the standardization of this technique across the field. This model of intestinal ischemia-reperfusion injury can be utilized to study the cellular and molecular mechanisms of injury and regeneration.

Bağırsak İskemi-reperfüzyon Hasarı Murin Modeli

Intestinal ischemia is a life-threatening condition associated with a broad range of clinical conditions including atherosclerosis, thrombosis, ...

Inducing Ischemia-reperfusion Injury in the Mouse Ear Skin for Intravital Multiphoton Imaging of Immune Responses

Ischemia-reperfusion injury (IRI) occurs when there is transient hypoxia due to the obstruction of blood flow (ischemia) followed by a subsequent re-oxygenation of the tissues (reperfusion). In the skin, ischemia-reperfusion (IR) is the main contributing factor to the pathophysiology of pressure ulcers. While the cascade of events leading up to the inflammatory response has been well studied, the spatial and temporal responses of the different subsets of immune cells to an IR injury are not well understood. Existing models of IR using the clamping technique on the skin flank are highly invasive and unsuitable for studying immune responses to injury, while similar non-invasive magnet clamping studies in the skin flank are less-than-ideal for intravital imaging studies. In this protocol, we describe a robust model of non-invasive IR developed on mouse ear skin, where we aim to visualize in real-time the cellular response of immune cells after reperfusion via multiphoton intravital imaging (MP-IVM).

This protocol describes the induction of an ischemia-reperfusion (IR) model on mouse ear skin using magnet clamping. Using a custom-built intravital imaging model, we study in vivo inflammatory responses post-reperfusion. The rationale behind the development of this technique is to extend the understanding of how leukocytes respond to skin IR injury.

Bağışıklık Yanıtları intravital multiphoton Görüntüleme Fare Kulak Skin uyaran İskemi-reperfüzyon yaralanması

Ischemia-reperfusion injury (IRI) occurs when there is transient hypoxia due to the obstruction of blood flow (ischemia) followed by a subsequent ...

Two-vessel Occlusion Mouse Model of Cerebral Ischemia-reperfusion

In this study, a middle cerebral artery (MCA) occlusion mouse model is employed to study cerebral ischemia-reperfusion. A reproducible and reliable mouse model is useful for investigating the pathophysiology of cerebral ischemia-reperfusion and determining potential therapeutic strategies for patients with stroke. Variations in the anatomy of the circle of Willis of C57BL/6 mice affects their infarct volume after cerebral-ischemia-induced injury. Studies have indicated that distal MCA occlusion (MCAO) can overcome this problem and result in a stable infarct size. In this study, we establish a two-vessel occlusion mouse model of cerebral ischemia-reperfusion through the interruption of the blood flow to the right MCA. We distally ligate the right MCA and right common carotid artery (CCA) and restore blood flow after a certain period of ischemia. This ischemia-reperfusion injury induces an infarct of stable size and a behavioral deficit. Peripheral immune cells infiltrate the ischemic brain within the 24 h infiltration period. Additionally, the neuronal loss in the cortical area is less for a longer reperfusion duration. Therefore, this two-vessel occlusion model is suitable for investigating the immune response and neuronal recovery during the reperfusion period after cerebral ischemia.

A mouse model of cerebral ischemia-reperfusion is established to investigate the pathophysiology of stroke. We distally ligate the right middle cerebral artery and right common carotid artery and restore blood flow after 10 or 40 min of ischemia.

Serebral iskemi-reperfüzyon iki damar tıkanıklığı fare modeli

In this study, a middle cerebral artery (MCA) occlusion mouse model is employed to study cerebral ischemia-reperfusion. A reproducible and reliable mouse ...

Evaluation of Coronary Flow Reserve After Myocardial Ischemia Reperfusion in Rats

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via recanalization of the coronary artery is the most effective strategy for reducing the size of ischemic myocardium. The coronary microvasculature cannot be visualized and imaged&#160;in vivo, but there are several invasive and noninvasive techniques that can be used to assess parameters which depend directly on coronary microvascular function. The endothelial function after ischemia reperfusion can be assessed also at the level of the coronary circulation via the coronary flow reserve (CFR).&#160;In this study, peak velocity of left anterior descending (LAD) coronary arteries was measured in rats in vivo via Transthoracic Doppler Echocardiography during resting and stress challenge (induced by Dobutamine). A normal heart can increase its coronary blood flow up to four times above the resting values during stress induction. Following ischemia reperfusion, we found a significantly diminished CFR, which can be used as a marker of coronary microvascular dysfunction. CFR has opened a window on the importance of microvascular dysfunction and has been shown to predict cardiovascular risk independent of whether the severe obstructive disease is present.

Coronary flow reserve (CFR), is defined as the ratio of maximal coronary blood flow to the resting coronary blood flow. We present a protocol for evaluating CFR in rats via ultrasound, which offers the opportunity to predict cardiovascular risk factors in the absence of obstructive coronary disease.

Farelerde miyokardiyal Iskemi reperfüzyon sonrası koroner akış rezervi değerlendirilmesi

Coronary artery disease is the leading cause of death worldwide. After an acute myocardial infarction, early and successful myocardial intervention via ...

A Pre-clinical Rat Model for the Study of Ischemia-reperfusion Injury in Reconstructive Microsurgery

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many areas of biomedical research due to its cost-effectiveness and its translation to humans. This protocol describes a method to create a preclinical free skin flap model in rats with ischemia-reperfusion injury. The described 3 cm x 6 cm rat free skin flap model is easily obtained after the placement of several vascular ligatures and the section of the vascular pedicle. Then, 8 h after the ischemic insult and completion of the microsurgical anastomosis, the free skin flap develops the tissue damage. These ischemia-reperfusion injury-related damages can be studied in this model, making it a suitable model for evaluating therapeutic agents to address this pathophysiological process. Furthermore, two main monitoring techniques are described in the protocol for the assessment of this animal model: transit-time ultrasound technology and laser speckle contrast analysis.

Here, we describe a pre-clinical animal model for studying the pathophysiology of ischemia-reperfusion injury in reconstructive microsurgery. This free skin flap model based on the superficial caudal epigastric vessels in the rat may also allow for the evaluation of different therapies and compounds to counteract ischemia-reperfusion injury-related damage.

Rekonstrüktif Mikrocerrahide İskemi-Reperfüzyon Hasarı Nın İnceleştirilmesinde Klinik Öncesi Sıçan Modeli

Ischemia-reperfusion injury is the main cause of flap failure in reconstructive microsurgery. The rat is the preferred preclinical animal model in many ...

Delayed Intramyocardial Delivery of Stem Cells after Ischemia Reperfusion Injury in a Murine Model

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, cardiac stem cell therapy is studied by delivering SCs concurrently with the induction of myocardial injury. However, this approach presents two significant limitations: the early hostile pro-inflammatory ischemic environment may affect the survival of transplanted SCs, and it does not represent the subacute infarction scenario where SCs will likely be used. Here we describe a two-part series of surgical procedures for the induction of ischemia-reperfusion injury and delivery of mesenchymal stem cells (MSCs). This method of stem cell administration may allow for the longer viability and retention around damaged tissue by circumventing the initial immune response. A model of ischemia reperfusion injury was induced in mice accompanied by the delivery of mesenchymal stem cells (3.0 x 105), stably expressing the reporter gene firefly luciferase under the constitutively expressed CMV promoter, intramyocardially 7 days later. The animals were imaged via ultrasound and bioluminescent imaging for confirmation of injury and injection of cells, respectively. Importantly, there was no added complication rate when performing this two-procedure approach for SC delivery. This method of stem cell administration, collectively with the utilization of state-of-the-art reporter genes, may allow for the in vivo study of viability and retention of transplanted SCs in a situation of chronic ischemia commonly seen clinically, while also circumventing the initial pro-inflammatory response. In summary, we established a protocol for the delayed delivery of stem cells into the myocardium, which can be used as a potential new approach in promoting regeneration of the damaged tissue.

Stems cells are continuously investigated as potential treatments for individuals with myocardial damage, however, their decreased viability and retention within injured tissue can impact their long-term efficacy. In this manuscript we describe an alternative method for stem cell delivery in a murine model of ischemia reperfusion injury.

Bir Murine Modelinde İskemi Reperfüzyon Yaralanması Sonrası Kök Hücrelerin Gecikmiş İntramiyokardiyal Teslimi

There is significant interest in the use of stem cells (SCs) for the recovery of cardiac function in individuals with myocardial injuries. Most commonly, ...

Organ Ischemia-Reperfusion Injury by Simulating Hemodynamic Changes in Rat Liver Transplant Model

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, including ischemia-reperfusion injury (IRI) of extrahepatic organs. This model requires numerous experiments and devices. The duration of anhepatic phase is closely related to the time to develop IRI after transplantation. In this experiment, we used hemodynamic changes to induce extrahepatic organ damage in rats and determined the maximum tolerance time. The time until the most severe organ injury varied for different organs. This method can easily be replicated and can also be used to study IRI of the extrahepatic organs after liver transplantation.

This paper provides a detailed description of how to build an animal model of the anhepatic phase (liver ischemia) in rats to facilitate basic research into ischemia-reperfusion injury after liver transplantation.

Sıçan Karaciğer Nakli Modelinde Hemodinamik Değişiklikleri Simüle Ederek Organ İskemi-Reperfüzyon Yaralanması

Orthotopic liver transplantation (OLT) in rats is a tried and proven animal model used for preoperative, intraoperative, and postoperative studies, ...