CDM Amerikan Cerrahlar Koleji (AKS) Resident Araştırma Bursu ile desteklenmiştir. MSH California Rejeneratif Tıp Enstitüsü (CIRM) Klinik Fellow eğitim bursu TG2-01159 tarafından desteklenmiştir. MSH, HPL ve MTL Maksillofasiyal Cerrahi American Society (ASMS) / Maksillofasiyal Cerrahlar Vakfı (MSF) Araştırma Bursu Ödülü tarafından desteklendi. HPL NIH hibe R01 GM087609 ve Anthony Shu onuruna Ingrid Lai ve Bill Shu bir hediye ile desteklenmiştir. HPL ve MTL Pediatrik Rejeneratif Tıp Hagey Laboratuvarı ve Meşe Vakfı tarafından desteklenmiştir. MTL Gunn / Olivier Fonu tarafından desteklenmiştir.

Aşağıdaki protokol Stanford Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmış ve araştırma hayvanların kullanımı ile ilgili tüm kurumsal etik kurallara uygun olmuştur. Karın Adezyonların 1. Yaratılış <ol><li> bir hafta önce prosedüre antibiyotik chow diyet fare başlatın. </li><li> cerrahi aletler ve öncesi ılık tuzlu su sulama çözümü Otoklav. </li><li> % 2 solunan izofluran kullanarak fare anestezisi. </li><li> Hızlı bir uygulama tarafından izlenen bir saç kesme makinesi kullanılarak - tüy dökücü ajan (5 10 sn), karın yüzeyinin çoğunluğu saç kaldırmak. İyice yavaşça dikkatle ılık suya fare alt yarısını dunking, opsiyonel olarak ıslak gazlı bez ve silerek tüy dökücü ajan kaldırın. İyice hayvan kurulayın. </li><li> anestezik burun konisi içine hayvanın burun yerleştirin. Tüm Ameliyat sırasında dikkatlice r izlemekGerektiğinde hayvanın espiratory hızı ve anestezik akış hızı titre edilir. </li><li> hipotermiyi önlemek için, bu tür bir ısıtma yastığı veya ısıtıcı bir lamba gibi ısıtıcı bir cihazın kullanımı. </li><li> Önce karın prepping için, ameliyat sırasında kaymasını önlemek için fareyi karın üstünde ve altında yer bant şeritler ile fare sabitleyin. betadin ile karın dezenfekte edin, sonra% 70 etanol ile takip edin. traş edilmiş bölgeye kenarlarında saç dahil hazırlık mümkün olduğu kadar alanı içerir. fare üzerinde bir steril örtüyü yerleştirin. (Şekil 1) </li><li> Subkutan 0.1 mg / kg buprenorfin veya 30 g fare için 3 mikrogram enjekte. </li><li> cilt kesi olun. <ol><li> alt karın orta hatta başlayarak, forseps ile cilt kavramak ve keskin bir makas kullanarak deride sığ dikey kesim yapmak. </li><li> makasla xiphoid superiorda kesim taşıyın. sadece cildi girmek için özen gösterin. </li></ol></li><li> karın kaslarının n olarakiç organları kaplayan ow görünür, forseps ile kas orta hat kavramak ve çok dikkatli bir şekilde keskin bir makas kullanarak içine küçük bir kesim yapmak. yanlışlıkla bir abdominal organ içine kesmek için değil emin olun. </li><li> Küçük bir kesim ile periton alana giren ve kas tabakası abdominal organlar uzak çekin gördükten sonra ağzına makas ekleme ve dikkatle her iki yönde keserek superior ve altta kesim uzatmak. xiphoid gelen superior için inferiora mesane üzerinde kesi uzatın. (Şekil 2) </li><li> Şimdi bağırsak maruz kaldığı, çekum bulun ve hafifçe exteriorize. Dişli veya keskin forseps ile çekum tutmaktan kaçının. Bunun yerine, böyle bir Adson dişli forseps gibi atravmatik forseps kullanabilir. </li><li> zımpara kağıdı ile çekum aşındırmak. <ol><li> yüzey daha az parlak ve peteşiler appea oluncaya kadar 60 saniye - Yavaşça 30 100 zımpara kağıdı ile çekum iki tarafın tüm yüzeyini aşındırmakyüzeyde r. Cerrah sağ elini ise, sağa dönük ucu ile çekum yönlendirmek ve cerrahın sol işaret parmağı üzerinde çekum asmak için yardımcı olur. (Şekil 3) </li><li> yanlışlıkla ince sekum duvarının bir perforasyona neden kolay olduğu gibi, yavaşça zımpara yapın. zımpara çekal yüzeyi boyunca hareket ettirildiğinde grittiness az miktarda hissedilebilir olmalıdır. zımpara çekum üzerinde alıcı art arda hissedilir, bu büyük olasılıkla çekal duvardaki bir gözyaşı neden olacaktır. zımpara tanecikleri çıkarmak ve bu aşırı yabancı cisim reaksiyonuna neden olabilir, karın kalmaz emin olmak için dikkatle izleyin. </li><li> çekal duvardaki bir gözyaşı oluşursa, işlemi sonlandırmak ve hayvan euthanize. </li><li> Bir çekal kan damarı zımpara tarafından kesilmesi ve kanama neden olur ise, gazlı bez ile en fazla iki dakika basıncı tutun. kanama, bu saatten sonra devam ederse Ancak, etrafında bir figür-of-sekiz 7-0 monofilament sütür koyunKanama nokta. Bu güvenilir hemen hemen her durumda kanamayı durduracak. Bu duvarın dahil kısmının nekroz sebep olma riski olarak, sütür içine çekal duvarın büyük miktarda dahil özen gösterin. </li></ol></li><li> sağ karın yan duvar zarar. <ol><li> sağ karın yan duvarın kas periton yüzeyine aşındırmak için zımpara şeridi kullanın. zımparalama ile burada daha çekum daha agresif olun ve sağ karın yan duvarın tüm yüzeyi tartakladığı görünene kadar devam eder. Cilt kas tabakasında deliklerden görünür şekilde sert zımpara kaçının. (Şekil 4) </li><li> Bir Castro-Viejo iğne sürücüsünü kullanma, sağ karın yan duvarın kas tabakası içine 4-0 figure-of-sekiz iki ila dört ipek dikiş yerleştirin. yaklaşık 5 mm uzunluğunda kuyrukları bırakın. yanlışlıkla sütür içine bağırsak duvarı yakalamak için özen gösterin. (Şekil 5) </li></ol></li><li> W doldurulmuş bir 10 ml şırınga kullanılaraki, tuz ısındı bağırsakları birkaç kez sulanması. yanı sıra içini sulamak için karın boşluğuna tuzlu akışı yönlendirin. Fare altında yüzey batırılmış hale gelirse, fareyi üzerinde taşımak veya hipotermi önlemek için, yüzey değiştirin. </li><li> Aşırı sulama emmek için kesi üzerine yerleştirilen bir steril gazlı bez kullanın. </li><li> nişasta bir tutam alın ve sağ karın yan duvarın yüzeyine ve çekum her iki tarafında üzerine serpin. (Şekil 6) </li><li> aktif kanama olmadığından emin olun. varsa, durana kadar kanama noktasına doğrudan baskı uygulamak için bir gazlı bez sünger kullanın. Kanama kolaylıkla durmaz, yukarıda tarif edildiği gibi bir hemostatik dikiş yerleştirin. </li><li> forseps ve parmak künt ucunu kullanarak, yavaşça karın boşluğuna geri bağırsak itin. adezyon oluşumunu maksimize etmek için hemen yanında karın yanağında dikişlerle için çekum yerleştirin. </li><li> CKarın kesi kaybedersiniz. <ol><li> 6-0 emilebilir örgülü sütür kullanılarak, kesi üstündeki kas tabakası içine çalışan bir dikiş yerleştirin. </li><li> kas tabakasını bir araya getirerek, aşağı insizyon altına doğru dikiş çalıştırın. yaklaşık 3 mm seyahat ve her yeni dikiş ile 3 mm sokması alır. sütürler yerleştirirken özen yanlışlıkla bağırsağın bir ısırık almak değil. </li><li> kesi alt kısmında, önceki ısırık sütür bir döngü bırakmak ve dikiş kravat enstrüman için bunu kullanabilirsiniz. 5 mm kuyrukları bırakarak dikiş kesin. </li><li> Cildi kapatmak için 6-0 naylon monofilament sütür ile yukarıdaki üç adımları tekrarlayın. </li></ol></li><li> 20 ml / kg deri altı serum fizyolojik bolus (30 g fare için yaklaşık 0.5 ml) uygulayınız. </li><li> dorsal kürk sulama sırasında ıslak olsun eğilimi gibi kuru gazlı bez kullanarak, iyice tüm hayvan kurutun. </li><li> Gevşek kesi karşılamak için karın etrafında soyunma bir yapıştırıcı sarın. a sınırlamak vermemeye özenNimal bacakları ya da sargı ile nefes mekaniği. </li><li> anestezi kurtarır dikkatle hayvan izlemek. Ağrı kontrolü için işlem sonrası buprenorfin 2-3 gün boyunca her 12 saat uygulayın. </li></ol> 2. Hasat Yapışma Doku <ol><li> İlk ameliyattan sonra yedi gün en az bekleyin. Yine, cerrahi aletler otoklav ve izofluran ile fare uyutmak. </li><li> % 70 etanol, ardından betadin ile karın sterilize edin. Tıraş ve histoloji zorlaştıran cildi içeren yapışma örnek saç kaplı olmayacak şekilde karın, sağ tarafında başka saç atmaktadır. </li><li> bağırsak genellikle orijinal kesi yapışmış olduğundan, bir sol paramedian kesi kullanın. karın alt ucunda başlayarak, orijinal kesi alt solunda yaklaşık 5 mm, küçük dişli forseps ile cilt kavramak ve keskin bir makas ile deri içine kesti. Bu üstün kesim uzatıngöğüs kafesi için ly. (Şekil 7) </li><li> makas kullanarak, kas tabakası içine ve periton boşluğu girdikten sonra kesilmiş, kesi üst ve alt kesim uzatmak. Orijinal kesi muhtemelen de karnın sağ yan duvarına yapışır ve çekum ve ince bağırsak neden yapışkan doku olacaktır. (Şekil 8) </li><li> Çekum seviyesinden, makas kullanılarak ve insizyon kenarında başlayan, bağırsak yapışık olduğu alanın çevresinde bir daire karın duvarı içine kesme başlar. </li><li> Yukarıda Alternatif ve çekum seviyesinin altında, yavaş yavaş barsak deri ve karın duvarı yapışık bir &quot;ada&quot;, sonuçta tüm yol yapışma etrafını kesin ve daire tamamlayın. (Şekil 9) </li><li> Yine deri ve karın duvarı oluşan bir doku sandviç vererek, barsak oyulmuş ve barsak geri kalanından yapışık kısmını ayırmak, makas kullanarakbir tarafta, diğer tarafta bağırsak ve yapışkan dokuya arasındaki iki bağlantı. (Şekil 10) </li><li> İsteğe bağlı olarak, keskin karın duvarı kas cilt ayırmak için sivri makas kullanın. histoloji için ekli cildi düşünün, ama sindirim ve hücre izolasyonu için cilt kaldırılabilir. doku histolojisi için kullanılacaksa, aşırı yapışkan arayüzü bozmadan mümkün olduğunca sütür materyali kaldırmak için emin olun. sindirim ve hücre izolasyonu için o kadar uzun sindirmek süzülür doku olarak yerine sütür bırakmak kabul edilebilir. </li><li> yapışma dokusu eksize sonra, kurumsal hayvan kullanımı komitesi tarafından onaylanmış bir insani yöntemi kullanarak fare euthanize. </li></ol>

<ol>
	<li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery:+a+retrospective+cohort+study.">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li><li>Brochhausen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+strategies+and+future+perspectives+for+intraperitoneal+adhesion+prevention.">Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention.</a> J Gastrointest Surg. 16 (6), 1256-1274 (2012).</li><li>diZerega, G. S., Campeau, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peritoneal+repair+and+post-surgical+adhesion+formation.">Peritoneal repair and post-surgical adhesion formation.</a> Hum Reprod Update. 7 (6), 547-555 (2001).</li><li>Hellebrekers, B. W., Kooistra, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+adhesion+formation.">Pathogenesis of postoperative adhesion formation.</a> Br J Surg. 98 (11), 1503-1516 (2011).</li><li>Herrick, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+peritoneal+adhesions+are+highly+cellular,+innervated,+and+vascularized.">Human peritoneal adhesions are highly cellular, innervated, and vascularized.</a> J Pathol. 192 (1), 67-72 (2000).</li><li>Beyene, R. T., Kavalukas, S. L., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-abdominal+adhesions:+Anatomy,+physiology,+pathophysiology,+and+treatment.">Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment.</a> Curr Probl Surg. 52 (7), 271-319 (2015).</li><li>ten Broek, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benefits+and+harms+of+adhesion+barriers+for+abdominal+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Benefits and harms of adhesion barriers for abdominal surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 383 (9911), 48-59 (2014).</li><li>Becker, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+postoperative+abdominal+adhesions+by+a+sodium+hyaluronate-based+bioresorbable+membrane:+a+prospective,+randomized,+double-blind+multicenter+study.">Prevention of postoperative abdominal adhesions by a sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane: a prospective, randomized, double-blind multicenter study.</a> J Am Coll Surg. 183 (4), 297-306 (1996).</li><li>Cassidy, M. R., Sherburne, A. C., Heydrick, S. J., Stucchi, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intraoperative+administration+of+a+histone+deacetylase+inhibitor+and+a+neurokinin-1+receptor+antagonist+synergistically+reduces+intra-abdominal+adhesion+formation+in+a+rat+model.">Combined intraoperative administration of a histone deacetylase inhibitor and a neurokinin-1 receptor antagonist synergistically reduces intra-abdominal adhesion formation in a rat model.</a> Surgery. 157 (3), 581-589 (2015).</li><li>Thaler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coincidence+of+connective+tissue+growth+factor+expression+with+fibrosis+and+angiogenesis+in+postoperative+peritoneal+adhesion+formation.">Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation.</a> Eur Surg Res. 37 (4), 235-241 (2005).</li><li>Hong, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+macrophage-dependent+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+signalling+on+adhesion+formation+after+abdominal+surgery+in+an+experimental+model.">Effects of macrophage-dependent peroxisome proliferator-activated receptor gamma signalling on adhesion formation after abdominal surgery in an experimental model.</a> Br J Surg. 102 (12), 1506-1516 (2015).</li><li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model:+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model.">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li><li>Buckenmaier, C. C., Pusateri, A. E., Harris, R. A., Hetz, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+antiadhesive+treatments+using+an+objective+rat+model.">Comparison of antiadhesive treatments using an objective rat model.</a> Am Surg. 65 (3), 274-282 (1999).</li><li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions.">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li></ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarları olduğunu beyan ederim.

Bu prosedürde kritik adımlar şunlardır: iyice, perforasyon neden karın yanağında sütür yerleştirerek, ve nişasta doğru miktarda uygulamadan çekum aşındırma. Sadece çekum, ya da barsak küçük bir özel bölümüne zımpara kağıdı uygulayın. ince bağırsağın büyük miktarlarda zımpara yaygın kullanımı önemli ileus neden olmaktadır. yüzeyi pürüzlü hale yeterli kuvvetle çekum aşındırmak için özen, ancak duvar gözyaşları o kadar çok değil. Bu dengeyi bulmak biraz zaman alabilir...

Karın yapışıklıklar genellikle cerrahi veya karın içi enfeksiyonu takiben, inflamasyon yanıt olarak karın içinde formu skar dokusu bir form vardır. Yapışıklıklar kronik karın ağrısı ve kısırlık başlıca nedenidir ve ince bağırsak tıkanması 1 en sık nedenidir. Yapışıklıklar varlığı, ikinci bir karın operasyonu daha zor performans ve komplikasyonların 2 olasılığını artırır yapar. Yıllar süren araştırmalara rağmen, yapışıklık oluşumunu altında yatan mekanizmaları yeterince anlaşılamamıştır. Peritoneal bir başlangıç ​​yaralanma ardından barsak ve karın duvarı birlikte, 3 yüzeylerini bağlayan bir pıhtı oluşturan fibrin bakımından zengin sıvının, bir eksudasyon neden olduğu bilinmektedir. Daha sonra, fibroblastlar ve diğer hücreler yapışkan uzaya göç ve bağ dokusunu 4 salgılar. yıllara aylarda yapışma kan damarlarını ve sinirleri geliştirerek olgunlaşır <sup&gt; 5. Çeşitli ticari ürünler abdominal cerrahi (örneğin, Seprafilm) sonrasında doku kaynaşması oluşumunu azaltmak için tasarlanmış ürünler mevcuttur. Tüm bu ürünlerin mekanik bariyerler olarak hareket ve bağırsak döngüler ve karın duvarı 6,7 arasındaki fiziksel teması engelleyerek yapışma oluşumunu durdurmak. Cerrahi adhezyon bariyeri yapışıklık 8 oluşumunu azaltır kontrollü çalışmadan kanıtlara rağmen, pek çok cerrah anekdotal mekanik bariyer ürünlerin etkinliği ile hayal kırıklığı olmuştur. Şu anda yapışıklık oluşumunda rol kesin süreçler tam olarak anlaşılamamıştır olduğu gerçeğini yansıtır herhangi bir ilaç tabanlı anti-yapışma tedaviler vardır. Özellikle yapışma oluşumunda yer olayların gelişmiş bir anlayış gerektirir yapışıklıkların oluşumuna katılan hücresel veya moleküler ajanlar hedefleyen bir terapi geliştirilmesi. çeşitli grups yapışıklık oluşumu 9-11 için önemli olabilir moleküler yollar belirledik. Hayvan modelleri yapışıklıklar oluşumunu incelemek için mükemmel bir ortam sağlar. Birçok çalışma, çok sayıda hayvan, özellikle de sıçan ve fare 6,12-14 yapışkanlıktaki cerrahi oluşturulmasını tarif yayınlanmıştır. Fare ve transgenik fareler ve fare tabanlı antikorların geniş yer fibrozis okuyan bizim deneyim göz önüne alındığında, yapışıklıklar çalışma için model olarak fare seçti. Bu yazıda, biz tekrarlanabilir ve güvenilir fare karın yapışıklıklar oluşturmak için geliştirilen tekniği rapor.

<table><tbody><tr><td>Fisherbrand Absorbent Underpads, 20&quot; x 24&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-206-62</td><td></td></tr><tr><td>Polylined Sterile Field, 18&quot; x 24&quot;</td><td>Busse Hospital Disposables</td><td>696</td><td>Cut a rectangular hole of the appropriate size</td></tr><tr><td>Isothesia isoflurane</td><td>Henry Schein&amp;nbsp;</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4&quot; x 4&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-415-469</td><td></td></tr><tr><td>Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube</td><td>Dechra Veterinary Products</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>Nair depilatory cream</td><td>Church &amp;amp; Dwight Co.</td><td>22339-05</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex buprenorphine&amp;nbsp; 0.3 mg/ml</td><td>Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.</td><td>NDC 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>1 cc insulin syringe, 27&amp;nbsp;G</td><td>Becton Dickinson</td><td>329412</td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Prep Solution</td><td>Medline</td><td>MDS093944H</td><td></td></tr><tr><td>Webcol alcohol prep swabs</td><td>Covidien</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td>General-Purpose Labarotory Labeling tape</td><td>VWR</td><td>89097-912</td><td></td></tr><tr><td>BioGel PI surgical gloves</td><td>M&amp;ouml;lnlycke Health Care</td><td>ALA42675Z</td><td></td></tr><tr><td>Micro Forceps with teeth</td><td>Roboz</td><td>RS-5150</td><td></td></tr><tr><td>Fine scissors- sharp</td><td>Fine Science Tools</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>Straight serrated forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Castro-Viejo needle driver</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>100 grit 1/4 sheet sandpaper</td><td>ACE Hardware</td><td>1010446</td><td>Cut into strips</td></tr><tr><td>4-0 silk suture, 30&quot;, SH needle</td><td>Ethicon</td><td>K831</td><td></td></tr><tr><td>7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30&quot;, BV-1 needle</td><td>Ethicon</td><td>Z135</td><td>Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.</td></tr><tr><td>Rice starch</td><td>MP Biomedicals</td><td>102955</td><td></td></tr><tr><td>0.9% Sodium Chloride Irrigation</td><td>Baxter</td><td>BHL2F7121</td><td>Warm to 37 &amp;deg;C prior to use</td></tr><tr><td>10 ml syringe</td><td>Becton Dickinson</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18&quot;, RB-1 taper needle</td><td>Ethicon</td><td>J212H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Ethilon nylon monofilament&amp;nbsp; suture, 18&quot;, P-3 needle,&amp;nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>1698G</td><td></td></tr><tr><td>Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm</td><td>3M</td><td>1624W</td><td>Cut in half lengthwise</td></tr></tbody></table>

creation of abdominal adhesions in mice

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.

<html> cerrahi, çekum ve muhtemelen artan kolon, karaciğer ve ince bağırsağın döngüler sonra yedi gün sağ taraflı karın duvarına yapışık olmalıdır. (Şekil 8) Kesilen doku gömüldü, kesit ve mükemmel histolojik slaytlar verecektir edilebilir. (Şekil 11, 12) Prosedür doğru gerçekleştirildiğinde, farelerin% 100 yedi gün sonra dikkate değer adezyonlar olmalıdır. Öl?...

Watch this Scientific Journal Video about Creation of Abdominal Adhesions in Mice at JoVE.com

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Farelerde Karın Adezyonların Oluşturulması

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or ...

Research

JoVE Journal

Medicine

12.6K Görüntüleme.  Stanford University School of Medicine. Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Video: Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase 

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) ever since it was first described in rats by Anidjar and colleagues.1 The rationale for its development was based on the disrupted nature of elastin observed in AAAs. This rat model has been modified to produce AAAs in the infrarenal aortic region of mice.2 The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice. Moreover, it is a viable platform to test potential therapeutic agents for AAA. In this video, we demonstrate the elastase infusion AAA procedure used in our laboratory. 
Mice are anesthetized using 2.5% isoflurane, and a laparotomy is performed under sterile conditions. The abdominal aortais isolated with the assistance of an operating stereomicroscope (Leica). After placing temporary ligatures around the proximal and distal aorta, an aortotomy is created at the bifurcation with the tip of a 30-gauge needle. A heat-tapered segment of PE-10 polyethylene tubing is introduced through the aortotomy and secured. The aortic lumen is subsequently perfused for 5-15 minutes at 100 mm Hg with saline containing type I porcine pancreatic elastase (4.5 U/mL; Sigma Chemical Co.). After removing the perfusion catheter, the aortotomy is repaired without constriction of the lumen.

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase

This video shows how to induce abdominal aortic aneurysms (AAA) in mice via transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta. The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice.

Elastaz ile murin Deneysel Abdominal Aort Anevrizmalarının Yaratılış

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of ...

Biyoloji

Bile Duct Ligation in Mice: Induction of Inflammatory Liver Injury and Fibrosis by Obstructive Cholestasis

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well as to excrete bilirubin and other metabolic products. In the liver, the experimental obstruction of the extrahepatic biliary system initiates a complex cascade of pathological events that leads to cholestasis and inflammation resulting in a strong fibrotic reaction originating from the periportal fields. Therefore, surgical ligation of the common bile duct has become the most commonly used model to induce obstructive cholestatic injury in rodents and to study the molecular and cellular events that underlie these pathophysiological mechanisms induced by inappropriate bile flow. In recent years, different surgical techniques have been described that either allow reconnection or reanastomosis after bile duct ligation (BDL), e.g., partial BDL, or other microsurgical methods for specific research questions. However, the most frequently used model is the complete obstruction of the common bile duct that induces a strong fibrotic response after 21 to 28 days. The mortality rate can be high due to infectious complications or technical inaccuracies. Here we provide a detailed surgical procedure for the BDL model in mice that induce a highly reproducible fibrotic response in accordance to the 3R rule for animal welfare postulated by Russel and Burch in 1959.

Disruption of bile flow results in severe inflammatory cholestatic liver injury with a characteristic time-dependent sequence of morphological alterations. Here we present a protocol for the surgical ligation of the common bile duct in mice that allows to induce a strong fibrotic response after 21 to 28 days.

Farelerde Safra Kanalı ligasyonu: Obstrüktif Kolestaz tarafından İnflamatuar Karaciğer Hasarı ve Fibrozis indüksiyonu

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well ...

Tıp

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

Fare Abdominal aort Myointimal Hiperplazi ikna etmek için balon tabanlı yaralanma

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

Farelerde kolon anastomoz oluşturulması

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...

Murine Appendectomy Model of Chronic Colitis Associated Colorectal Cancer by Precise Localization of Caecal Patch

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal cancer, inflammatory bowel disease, and Parkinson&#8217;s disease. To study the function of the appendix, a gut disease-associated murine appendectomy model has been established and its step-by-step protocol is described here. This report introduces a facile protocol for caecal patch removal in mice followed by the chemical induction of chronic colitis-associated colorectal cancer using a combination of dextran sulfate sodium (DSS) and azoxymethane (AOM). IgA specific cells and IgA concentration were significantly reduced upon removal of the caecal patch in male C57BL/6 mice&#160;compared to those in the sham group. Simultaneously administering 2% DSS and AOM resulted in nearly 80% mice survival in both sham and appendectomy groups without significant body weight loss. Histological results confirmed colonic inflammation and different degrees of adenocarcinoma. This model can be used for the study of the functional role of the appendix in maintaining gut microbiota homeostasis and pathogenesis of gut colitis and malignancies, as well as for the potential development of drug targeting therapies.

The presented protocol describes a facile surgical removal of the appendix (caecal patch) in a mouse followed by the induction of inflammatory bowel disease-associated colorectal cancer. This murine appendectomy model enables investigation of the biological role of the appendix in the pathogenesis of human gastrointestinal disease.

Kaekal Patch Kesin Lokalizasyonu ile Kronik Kolit İlişkili Kolorektal Kanser Murine Apendektomi Modeli

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal ...

Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small size of mouse organs, ex vivo perfusion of bone, bladder, skin, prostate, and reproductive organs is challenging or not feasible. Here, we report for the first time an in situ lower body perfusion circuit in mice that includes the above tissues, but bypasses the main clearance organs (kidney, liver, and spleen). The circuit is established by cannulating the abdominal aorta and inferior vena cava above the iliac artery and vein and cauterizing peripheral blood vessels. Perfusion is performed via a peristaltic pump with perfusate flow maintained for up to 2 h. In situ staining with fluorescent lectin and Hoechst solution confirmed that the microvasculature was successfully perfused. This mouse model can be a very useful tool for studying pathological processes as well as mechanisms of drug delivery, migration/metastasis of circulating tumor cells into/from the tumor, and interactions of immune system with perfused organs and tissues.

A protocol is described for in situ perfusion of the mouse lower body, including the bladder, the prostate, sex organs, bone, muscle and foot skin.

Farelerde Alt Karın Organları nın ve Arka Ekstremitelerin Situ Kapalı Devre Perfüzyonunun Oluşturulması

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small ...

<meta charset="utf8"></head><body>Bağırsak Manipülasyonu Yoluyla Postoperatif İleusun İncelenmesi için Murin Modeli

Postoperative Ileus Murine Model

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI is a consequence of mechanical damage during surgery, resulting in disruption of motility in the gastrointestinal tract. The mechanisms of POI are related to aberrant neuronal sensitivity, impaired epithelial barrier function, and increased local inflammation. However, the details remain enigmatic. Therefore, experimental murine models are crucial for elucidating the pathophysiology and mechanism of POI injury and for the development of novel therapies.
Here, we introduce a murine model of POI generated via intestinal manipulation (IM) that is similar to clinical surgery; this is achieved by mechanical damage to the small intestine by massaging the abdomen 1-3 times with a cotton swab. IM delayed gastrointestinal transit 24 h after surgery, as assessed by FITC-dextran gavage and fluorescence detection of the segmental digestive tract. Moreover, tissue swelling of the submucosa and immune cell infiltration were investigated by hematoxylin and eosin staining and flow cytometry. Proper pressure of the IM and a hyperemic effect on the intestine are critical for the procedure. This murine model of POI can be utilized to study the mechanisms of intestinal damage and recovery after abdominal surgery.

<meta charset="utf8"></head><body>Ameliyat Sonrası İleus Murin Modeli

We describe a murine model of postoperative ileus generated via intestinal manipulation. Gastrointestinal transit function, pathologic changes, and immune cell activation were assessed 24 h after surgery.

Ameliyat Sonrası İleus Murin Modeli

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Partial Bile Duct Ligation in the Mouse: A Controlled Model of Localized Obstructive Cholestasis

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile duct proliferation. However, long-term experiments can lead to increased morbidity and mortality. In select mouse strains with underlying liver disease, meaningful comparisons can be made even with ligation of a single lobe of the liver, which can reduce animal losses and expenses. Here, we describe partial bile duct ligation (pBDL) in the mouse, in which only the left hepatic bile duct is ligated, causing biliary obstruction in the left lobe but not the remaining lobes. With careful microsurgical technique, pBDL experiments can be cost-effective, since the unligated lobe serves as an internal control to the ligated lobes, when subjected to the same conditions in the same animal. Unlike cBDL, a separate sham-operated control group is not necessary. pBDL is highly useful to directly compare localized versus systemic effects of cholestasis and other retained bile components. pBDL can also be repurposed as a novel method to investigate mechanisms related to medications and cell migration.

Here, we present partial bile duct ligation as a surgical model of liver injury and regeneration in rodents.

Kısmi safra kanalı ligasyonu fare: kontrollü manken yerelleştirilmiş obstrüktif Histiositoz olgusu

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile ...

Farelerde Karın Adezyonların Oluşturulması

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Elastaz ile murin Deneysel Abdominal Aort Anevrizmalarının Yaratılış

Farelerde Safra Kanalı ligasyonu: Obstrüktif Kolestaz tarafından İnflamatuar Karaciğer Hasarı ve Fibrozis indüksiyonu

Fare Abdominal aort Myointimal Hiperplazi ikna etmek için balon tabanlı yaralanma

Farelerde kolon anastomoz oluşturulması

Kaekal Patch Kesin Lokalizasyonu ile Kronik Kolit İlişkili Kolorektal Kanser Murine Apendektomi Modeli

Farelerde Alt Karın Organları nın ve Arka Ekstremitelerin Situ Kapalı Devre Perfüzyonunun Oluşturulması

Ameliyat Sonrası İleus Murin Modeli

Ameliyat Sonrası İleus Murin Modeli

Ameliyat Sonrası İleus Murin Modeli

Kısmi safra kanalı ligasyonu fare: kontrollü manken yerelleştirilmiş obstrüktif Histiositoz olgusu