Yazarlar deneysel cerrahi ve tıp Koleji, Kral Suud Üniversitesi, hayvan Laboratuvarı personeli onların işbirliği ve destek-hüseyin Almukhayzim ve özellikle Hisham Aloudah için teşekkür etmek istiyorum. Yazarlar ayrıca medya ekibinin King Saud bin Abdul-Aziz Üniversitesi'nde görsel hazırlanması için kabul etmek istiyorum malzeme özellikle Hüseyin bin Ghannam ve Abdulwahab Alsulami.

Protokol Kral Suud Üniversitesi'nin etik kurul hayvan bakımı kuralları izler. Cerrahi, anestezi ve hayvanlar üzerinde kullanılan diğer ilaçlar Kral Suud Üniversitesi'nin etik kurul tarafından onaylanır. Tüm deneysel çalışma uygun eğitimli personel tarafından gerçekleştirilir.
1. hücre sac İnşaat
<ol><li>Kültür yemekleri (3.5 cm sıcaklık duyarlı kültür yemekleri) su katılmamış fetal Sığır serum (FBS) ile ceket ve çanak tüm yüzeyi kapsayacak şekilde sağlamak. Not: Bu bir monolayer hücrelerinin büyümesini destekler ve hücre toplama engeller bu adımı hücre sayfası dekolmanı için önemlidir.</li>
	<li>Yemekleri için % 5 CO2 ve % 95 hava içeren bir oksijen atmosferde 37 ° C'de 24 saat kuluçkaya.</li>
	<li>Aşırı FBS kaplamalı yemeklerini kaldırın ve yemekleri için en az 1 h (RT) Oda sıcaklığında kurumasını sağlar.</li>
	<li>Üç hücre süspansiyonlar hazırlamak: 1 x 106 HepG2 hücreleri, 1 x 106 HepG2 hücreleri ile BMMSCs ve 1 x 106 HepG2 hücreleri ile UCMSCs (BMMSCs ve UCMSCs için 4:1 oranında).</li>
	<li>Tohum uygun hücre süspansiyon etiketli her yemeğin için.</li>
	<li>DMEM kültür % 10 FBS ve % 1 penisilin/streptomisin ile desteklenmiş orta bütün hücrelerdeki askıya alma.</li>
	<li>Hücreleri oksijen bir atmosferde % 5 CO2 ve % 95 hava içeren 37 ° C'de kuluçkaya.</li>
</ol>2. hücre sayfası dekolmanı
<ol><li>% 100 hücre izdiham bulaşıkları da 37 ° C kuluçka dışarı al.</li>
	<li>HepG2 hücre sayfası çanak RT, 1 h için HepG2/BMMSC ve HepG2/UCMSC hücre sayfası yemekler %5 CO2 ve % 95 hava içeren bir oksijen atmosferde 20 ° C'de 30-40 dk için kuluçka sırasında kuluçkaya. Not: sadece HepG2 yapılan hücre sayfası kırılgandır; sıcaklık 20 ° C-azaltarak sayfanın yapısına zarar neden.</li>
</ol>3. cerrahi işlem performansını
Not: hücre sayfası dekolmanı için kuluçka süre boyunca, hayvan yordam başlatın.
<ol><li>
Cerrahi alan hazırlanması için yönergeler
	<ol>
<li>Laboratuvar, bir başlık, laminar akış kabine veya aseptik cerrahi oda gibi bir steril ayrı alanındaki tüm cerrahi prosedürlerini yürütecektir. Cerrahi alan tüm yüzeyleri gözenekli olmayan, mühürlü, dayanıklı ve sanitizable olduğundan emin olun.</li>
		<li>Önlük, eldiven, facemasks ve baş ve ayakkabı kapakları da dahil olmak üzere uygun koruyucu giysiler giymek.</li>
		<li>Kullanım cerrahi alet are temiz ve steril (yolu ile ısıyla; yüksek basınç altında doymuş kök) başında cerrahinin.</li>
		<li>Eldiven fareler arasında değiştirin.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
Ameliyat için hayvan hazırlanması
	<ol>
<li>8 - için 12-hafta-yaşlı çıplak fareleri kullanın.</li>
		<li>Fareler için enjekte edilebilir anestezi oluşturun.<ol>
<li>Anestezi çözüm hazırlamak için ketamin-xylazine, ketamin 2 mL, xylazine (bir konsantrasyon 20 mg/mL), 1 mL ve 1 mL steril fizyolojik serum (Örneğin, % 0,9 sodyum klorür) steril 10 mL serum koleksiyonu şişe içinde karıştırın ve çok önce sallamak kullanın.</li>
			<li>Anestezi uygulamak için intraperitoneally 0.2 mL farenin vücut ağırlığının 100 gr başına ketamin-xylazine çözeltisi enjekte et. Not: Çözüm toplam doz 100 mg/kg ketamin bas ve 10 mg/kg xylazine değil.</li>
		</ol>
</li>
		<li>Görünür kir/enkaz cerrahi sitesinden kaldırın.</li>
		<li>Anestezi derinliği pedal çekilme refleks (ayak pedi tutam her iki arka ayakları üzerinde) test ederek kontrol edin. Not: Ayak pedi tutam bir yanıt neden oluyorsa, bir doz, 0.05 mL/100 g (yaklaşık her 30 dakika) yineleyin ve sonra anestezik derinlik yeniden denetleyin.</li>
		<li>Bir iki aşamalı bodur ile cerrahi alan povidone-iyot/isopropanol tarafından dezenfekte.</li>
		<li>Belgili tanımlık kesme kirlenmesini önlemek için steril bir örtüsü fareyle kapsar.</li>
		<li>Fareler subkutan buprenorfin (0.01 - 0.05 mg/kg) ile enjekte kesi yapmadan önce8 .</li>
		<li>Steril neşter kullanmadan, bir 7 - için 10-cm derileri ve karaciğer ortaya çıkarmak için temel kaslar arasında kesin olun.<ol>
<li>Karın kas deri neşteri düz arka kenarı ile ayırın.</li>
			<li>Dikkatli bir şekilde bıçakla linea alba neşter kullanarak ve keskin makas ile kesme genişletmek.</li>
		</ol>
</li>
	</ol>
</li>
</ol>4. hücre sac ekimi
Not: Üzerinde karaciğer hücre sac ekimi gerçekleştirilir.
<ol><li>Hücre sayfası kültür çanak toplamak.<ol>
<li>Yavaşça kültür çanak yüzeyi sacdan ayırmak için tezgah üzerine dokunun.</li>
		<li>Hücre sayfası çanak'ın yüzeyinden bir yarım daire bir steril pipet ucu kullanarak sayfanın kenarına kazıma ayırın.</li>
		<li>Yavaşça tüm Orta kültür çanak çıkarın.</li>
		<li>Sayfanın herhangi bir zarar vermeden sağlam olduğundan emin olun; Aksi takdirde, olamaz (Şekil 1) kullanılır. Not: Elde edilen sayfaları doğrudan göz tarafından tespit edilebilir.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Yemeğin hücre sacdan hasat için steril bir membran (filtre kağıdı) hazırlayın.<ol>
<li>İlk olarak, membran normal salin ile ıslatın. Sonra aşırı tuz ile steril pamuk yastık kaldırın.</li>
		<li>Islak membran hücre sayfası, kırışıklıklar ve hava kabarcıkları membran ve hücre sayfası arasındaki kaçınırken yerleştirin.</li>
		<li>Membran ve onları daha kolay toplamak için hücre sayfası normal salin birkaç damla ekleyin. Not: hücre sayfası bozulmaması için değil soğuk serum kullanın ve membran ve hücre sayfasını forseps ile kaldırın.</li>
		<li>Membran hücre sayfası membran için düzgün takıldığından emin olmak birkaç saniye için bırakın ve sonra onu toplamak.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Karaciğer hücre sac ekimi için hazırlayın.<ol>
<li>Karaciğer yüzey hafifçe steril pamuk yastık ile dokunarak kuru olduğundan emin olun.</li>
		<li>Steril forseps kullanarak, membran hücre levha ile sıçan karaciğer tek bir lob yerleştirin.</li>
		<li>Steril serum fizyolojik birkaç damla ekleyin ve hücre sacdan ayırmak için membran için hafif bir basınç uygulayın.</li>
		<li>Dikkatle membran kaldırmadan önce 5 min için bekleyin. Not: Bu hücre sayfası karaciğere düzgün takıldığından emin olmak için yapılır.</li>
		<li>Son olarak, temel kasları kapatın ve insizyon ile 5-0 naylon dikiş cilt.</li>
		<li>Cerrahi alan povidone-iyot ile dezenfekte. Not: Resim 2 çıplak bir sıçan karaciğer üzerinde bir diyagram hücre sac ekimi yordam gösterir.</li>
	</ol>
</li>
</ol>5. ameliyat sonrası bakım
<ol><li>Ameliyattan hemen sonra tek tek yamyamlık veya boğulma önlemek için fareyi ev ve onu düzenli olarak (en azından her 15 dk) izlemek kadar bilinçli ve tam olarak ayakta.</li>
	<li>Sonra günlük 5-14 d, en az 5 d için fareler post-operatively, herhangi bir komplikasyon sağlamak için değerlendirmek. Günlük değerlendirme sırasında şunlardan emin olun.<ol>
<li>Yara kapalı ve bir dikiş aşırı sıkı olmadan arada.</li>
		<li>Aşırı ısı gibi kesi site enfeksiyon belirtisi yok şişme veya pürülan akıntı.</li>
		<li>Azalan yiyecek ve su tüketimi, kilo kaybı, dehidratasyon, cilt çadır veya hızlı ve açık ağız nefes gibi ağrı ile ilişkili belirti yok. Şiddetli ameliyat sonrası ağrı için ılımlı denetlemek için varsa, fareler subkutan buprenorfin (0.01 - 0.05 mg/kg) ile en az 48-72 saat için her 6-8 h9 postoperatively enjekte et.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. transplante çevrenin Analizi
<ol><li>Bir ay sonra nakli, scarifice fare ve transplante alan için toplamak histolojik ve immunohistokimyasal analizi.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Marra, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+targets+and+oxidative+stress+biomarkers+in+hepatocellular+carcinoma:+an+overview.">Molecular targets and oxidative stress biomarkers in hepatocellular carcinoma: an overview.</a> Journal of Translational Medicine. 9, 171 (2011).</li><li>Yamada, K. M., Cukierman, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+tissue+morphogenesis+and+cancer+in+3D.">Modeling tissue morphogenesis and cancer in 3D.</a> Cell. 130 (4), 601-610 (2007).</li><li>Kushida, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Decrease+in+culture+temperature+releases+monolayer+endothelial+cell+sheets+together+with+deposited+fibronectin+matrix+from+temperature-responsive+culture+surfaces.">Decrease in culture temperature releases monolayer endothelial cell sheets together with deposited fibronectin matrix from temperature-responsive culture surfaces.</a> Journal of Biomedical Materials Research. 45 (4), 355-362 (1999).</li><li>Okano, T., Yamada, N., Sakai, H., Sakurai, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+recovery+system+for+cultured+cells+using+plasma-treated+polystyrene+dishes+grafted+with+poly+(N-isopropylacrylamide).">A novel recovery system for cultured cells using plasma-treated polystyrene dishes grafted with poly (N-isopropylacrylamide).</a> Journal of Biomedical Materials Research Part A. 27 (10), 1243-1251 (1993).</li><li>Chamberlain, G., Fox, J., Ashton, B., Middleton, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Concise+review:+mesenchymal+stem+cells:+their+phenotype,+differentiation+capacity,+immunological+features,+and+potential+for+homing.">Concise review: mesenchymal stem cells: their phenotype, differentiation capacity, immunological features, and potential for homing.</a> Stem Cells. 25 (11), 2739-2749 (2007).</li><li>Waterman, R. S., Tomchuck, S. L., Henkle, S. L., Betancourt, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+mesenchymal+stem+cell+(MSC)+paradigm:+polarization+into+a+pro-inflammatory+MSC1+or+an+Immunosuppressive+MSC2+phenotype.">A new mesenchymal stem cell (MSC) paradigm: polarization into a pro-inflammatory MSC1 or an Immunosuppressive MSC2 phenotype.</a> PLoS One. 5 (4), e10088 (2010).</li><li>Waterman, R. S., Henkle, S. L., Betancourt, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mesenchymal+stem+cell+1+(MSC1)-based+therapy+attenuates+tumor+growth+whereas+MSC2-treatment+promotes+tumor+growth+and+metastasis.">Mesenchymal stem cell 1 (MSC1)-based therapy attenuates tumor growth whereas MSC2-treatment promotes tumor growth and metastasis.</a> PLoS One. 7 (9), e45590 (2012).</li><li>Curtin, L. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Evaluation+of+buprenorphine+in+a+postoperative+pain+model+in+rats.">Evaluation of buprenorphine in a postoperative pain model in rats.</a> Comparative Medicine. 59 (1), 60-71 (2009).</li><li>. Guidelines on Anesthesia and Analgesia in Rats - ULAM Guidelines and SOPs - Michigan Medicine Confluence Available from: <a target="_blank" href="https://wiki.med.umich.edu/display/ULAMGSOP/Guidelines+on+Anesthesia+and+Analgesia+in+Rats">https://wiki.med.umich.edu/display/ULAMGSOP/Guidelines+on+Anesthesia+and+Analgesia+in+Rats</a> (2017)</li><li>Alshareeda, A. T., Sakaguchi, K., Abumaree, M., Mohd Zin, N. K., Shimizu, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+potential+of+cell+sheet+technique+on+the+development+of+hepatocellular+carcinoma+in+rat+models.">The potential of cell sheet technique on the development of hepatocellular carcinoma in rat models.</a> PLoS One. 12 (8), e0184004 (2017).</li><li>Russo, J., Russo, I. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Atlas+and+histologic+classification+of+tumors+of+the+rat+mammary+gland.">Atlas and histologic classification of tumors of the rat mammary gland.</a> Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 5 (2), 187-200 (2000).</li><li>Lin, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Applications+and+limitations+of+genetically+modified+mouse+models+in+drug+discovery+and+development.">Applications and limitations of genetically modified mouse models in drug discovery and development.</a> Current Drug Metabolism. 9 (5), 419-438 (2008).</li><li>Driscoll, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+preclinical+new+drug+research+program+of+the+National+Cancer+Institute.">The preclinical new drug research program of the National Cancer Institute.</a> Cancer Treatment Reports. 68 (1), 63-76 (1984).</li><li>Suzuki, R., Aruga, A., Kobayashi, H., Yamato, M., Yamamoto, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+novel+in+vivo+cancer+model+using+cell+sheet+engineering.">Development of a novel in vivo cancer model using cell sheet engineering.</a> Anticancer Research. 34 (9), 4747-4754 (2014).</li><li>Chen, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Application+of+the+cell+sheet+technique+in+tissue+engineering.">Application of the cell sheet technique in tissue engineering.</a> Biomedical Reports. 3 (6), 749-757 (2015).</li><li>Matsuura, K., Haraguchi, Y., Shimizu, T., Okano, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cell+sheet+transplantation+for+heart+tissue+repair.">Cell sheet transplantation for heart tissue repair.</a> Journal of Controlled Release. 169 (3), 336-340 (2013).</li><li>Matsuura, K., Shimizu, T., Okano, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Toward+the+development+of+bioengineered+human+three-dimensional+vascularized+cardiac+tissue+using+cell+sheet+technology.">Toward the development of bioengineered human three-dimensional vascularized cardiac tissue using cell sheet technology.</a> International Heart Journal. 55 (1), 1-7 (2014).</li><li>Folkman, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=What+is+the+evidence+that+tumors+are+angiogenesis+dependent?.">What is the evidence that tumors are angiogenesis dependent?.</a> Journal of the National Cancer Institute. 82 (1), 4-6 (1990).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Araştırma geniş bir miktarda insan kanserlerin benzer bir yeterli in vivo preklinik hayvan modeli geliştirmek için adamıştır. Şu anda, genetik mühendisliği ve hücre nakli11kanser hayvan modelleri oluşturmak için kullanılan ana yaklaşımlar gerektirir. Genetiği değiştirilmiş hayvan modelleri tanıma ve onaylama hedef genlerin hem uyuşturucu kaynaklı toksisite temel moleküler mekanizmaları anlama iyi araçlardır. Ancak, bu model bazı sınırlamalar ile ilişkilidir...

HCC önemli ölçüde kötü prognoz ile ilişkili karaciğer birincil bir kanserdir. Her yıl, neredeyse yarım milyon yeni hastaların karaciğer kanseri hastaları dünya çapında%185'i temsil eden HCC ile tanısı. Hepatocarcinogenesis bir tek biçimli hastalık değildir; değil, ek olarak farklı histopatolojik özellikler ve genetik ve genomik çeşitliliğine sahip hastalıkları topluluğu prognostik sonuçlar1çeşitli olduğunu. Bu nedenle, ana zorluklar HCC için etkili bir tedavi stratejisi geliştirme HCC Biyoloji sınırlı bilgi ve karmaşık bu hastalığı anlamak yardımcı olabilir uygun bir deneysel hayvan modeli eksikliği vardır. İnsan kanseri taklit eden bir in vivo hayvan modeli aday genler seçmek ve prognostik/akıllı işaretler kanseri indüksiyon yanı sıra kanser yanıt etkileyebilecek faktörler farklı soruşturma için karıştığı belirlenmesi için gereklidir terapötik ajanlar için.
Vitro kanser çalışmaları hala büyük sınırlamalar ile ilişkilidir. Gerçeğini kanser hücrelerinin kültürü muhafaza ne zaman onların in vivo özelliklerinin çoğunu kaybetmek nedeni bu. Bütün doku Fizyoloji bir ex vivo ortamda olmamasından hücreleri vitro sonucu oluşan değişiklikleri. Kanser hücre hücre etkileşim (stromal, bağışıklık, damarlara, epitel, vb) tümör microenvironment içinde büyük ölçüde kanser hücre özellikleri2üzerinde yansıtır. Tümör microenvironment kanser hücre gen/protein ifade ve ek olarak angiogenetic ve metastatik potansiyeli fenotipik özellikleri değiştirmek. İki boyutlu (2B) vitro kültür sistemi de tümör ilerleme düzenlemek gerekli olan uygun doku matris yoksun. Böylece, bu sınırlamaları nedeniyle vivo içinde modelleri her zaman vitro modelleri ön bulguları desteklemek için kullanılması gereken. Bu çalışmada, HCC yatan tam biyolojik süreci elucidates in vivo hayvan modeli geliştirmek için hücre sayfası teknolojisini kullanır.
Daha--dan a on yıl önce Okano'nın laboratuvar doku mühendisliği hücre sayfa teknoloji3dayalı bir roman yöntemi kurdu. Bir termo-yanıt veren Kültür plastik geri dönüşümlü hücre adezyon/dekolmanı yüzey hydrophobicity kontrol ederek izin vermek için bu tekniği kullanır. Bu yöntem nazik bir biçimde olduğu gibi üç boyutlu (3-D) (i.e.,cell sayfa), kültürlü hücre hasat bakımlı hücre dışı matriks (ECM) ve hücre-hücre etkileşimleri ile sağlar. Hücre sayfası teknik ticari olarak kullanılabilir ve kullanıma hazır olan kültür yemekleri ile bir sıcaklık duyarlı polimer poly(N-isopropylacrylamide) (PIPA değilim), precoating gerektirir. Bir sıcaklık 20 ° C'den polimerler PIPA Am sulu olmak ve (37 ° C) daha yüksek bir sıcaklık, polimerler susuz haline ve bulanık bir çökelti dönüşümü ise sulu çözümler içinde çözülür. Polimer hidrofilik Amid zincirleri ve hidrofobik yan zincirleri (izopropil gruplar) içerir. Sulu yapısı dökümü izopropil grupları ve hidrofobik izopropil grupları çevreleyen su moleküllerinin düşük sıcaklıkta Toplam ise, yüksek sıcaklıklarda su molekülleri Albert hareketi, yoğun hidrofobik etkileşimler nedeniyle. Bu nedenle, tüm polimer zincirini toplar ve4precipitates.
Sunulan çalışmada, üç farklı hücre yaprak kullanarak bir HCC hayvan modeli geliştirmek için bu tekniği istihdam. Diğer iki yaprak HCC hücre satır hücreleri ve MSCs iki farklı kaynaklardan oluşur, ancak istihdam ilk sayfayı HCC hücre satır hücreleri yalnızca, oluşur: kemik iliği MSCs (BMMSCs) ve göbek kordonu MSCs (UCMSCs). MSCs intocell türevleri adipositler, osteocytes, kondrosit ve miyositler5gibi mezenkimal soyundan ayırt yeteneğine hematopoetik stromal hücreler vardır. Biz bu hücrelerin kanser hücre sayfası oluştururken istihdam MSCs etkisi kanser tutarsız raporlama nedenidir. MSCs iki ayrı fenotipleri olabilir sürülmüştür: "MSC1", proinflamatuar fenotip ve "MSC2", bir immünsüpresif fenotip6. MSCs toll benzeri reseptörler (TLR) hızlı. TLR3 astar immünsüpresif faktörler6onların salgılanmasını artırır, ancak TLR4 astar MSCs, proinflamatuar faktörler, onların salgılanmasını artırır. Bu iki fenotipleri vitro incelenmesi MSC2 ortak kültür ters etkisi7varken MSC1 ortak bir kültür kanser hücre hatları ile kanser hücre büyümesi, zayıflatılmış bildirdi. Bu MSCs yanlısı kanser veya bağlı olarak onların fenotip antikanser olabilir implicates. Böylece, hücre sayfası teknolojisi kullanarak HCC hayvan modeli geliştirmeye ek olarak, tümör gelişimi, MSC nakli etkisi keşfetmek istiyoruz ve bu hücreler kullanarak geliştirmek olup bu model geliştirilmesi azaltmak.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Reagents&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>FBS&amp;nbsp;</td><td>Gibco/Invitrogen</td><td>10270106</td><td></td></tr><tr><td>DMEM high glucose&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>D5671-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Penicillin/streptomycin&amp;nbsp;</td><td>Life Technology</td><td>15070063</td><td></td></tr><tr><td>Sterile physiologic saline</td><td>Sigma&amp;nbsp;</td><td>S0817-1GA</td><td></td></tr><tr><td>Human HepG2 cell line</td><td>ATCC, USA</td><td>HB-8065</td><td></td></tr><tr><td>Human bone marrow MSCs cell line</td><td>PromoCell, USA</td><td>C-12974</td><td></td></tr><tr><td>human umbilical cord tissue MSCs</td><td>PromoCell, USA&amp;nbsp;</td><td>C-12971</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine 50%</td><td>Rompun, Bayer</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Xylazine 2%</td><td>Rompun</td><td>23076-35-9</td><td></td></tr><tr><td>Alphadine&amp;reg;&amp;nbsp;solution.</td><td>Riyadh Pharma</td><td>LBL0816</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Disposables:&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>15mL Polypropylene High Clarity PP Centrifuge Tube</td><td>Falcon&amp;nbsp;</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>3.5 cm sterile UpCell culture dishes with the filter paper (membrane)</td><td>Sigma</td><td>174904-1CS</td><td></td></tr><tr><td>100-1000 &amp;micro;l &amp;nbsp;Pipette Tips&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>CLS4868-1000EA&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Basic Procedure Drape</td><td>Thermofisher</td><td>PMD5293.0</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Equipment&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plus pipette, variable volume</td><td>Eppendorf&amp;reg;&amp;nbsp;Research&amp;reg;</td><td>Z683779-1EA</td><td></td></tr><tr><td>Tissue culture incubator 37 &amp;deg;C, 5% CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Any brand</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biological safety cabinet</td><td>Any brand</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue culture incubator 20 &amp;deg;C, 5% CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Any brand</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sterile surgical tools and nude rats:&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>scalpel&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&amp;nbsp;Nylon Suture&amp;nbsp; 5-0</td><td>Accutome</td><td>AB-3854S</td><td>Monofilament, Lancet</td></tr><tr><td>1 ml Tuberculin Syringes</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-88</td><td></td></tr><tr><td>Nude rats&amp;nbsp;</td><td>Charles river</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

exploring the potential of mesenchymal stem cell sheet on the development of hepatocellular carcinoma in vivo

İnsan kanseri taklit eden bir in vivo hayvan modeli önemli klinik bilgi sunar çeşitli uygulamalar olabilir. Şu anda kullanılan teknikleri vivo içinde kanser modelleri geliştirilmesi için önemli kısıtlamalar bulunmaktadır. Bu nedenle, bu çalışmada, bir vivo içinde kanser modeli geliştirmek için hücre sayfası teknolojiyi uygulamak için amacımız. Hepatosellüler karsinom (HCC) başarıyla çıplak fareleri HCC hücre satırı hücrelerinden oluşturulan hücre sayfalarını kullanarak geliştirilmiştir. Kanser hücre yaprak hücre içi adezyon ve hücre dışı matriks tarafından kontrollü bir tabakalı yapısı oluşumu aracılığıyla oluşturulur. Bu HCC sac ekimi karaciğer ve bir ay içinde bir tümörü taşıyan hayvan modeli oluşturulması için izin verir. Buna ek olarak, mezenkimal kök hücre (MSC), bu kanser modeli geliştirilmesinde rol araştırıldı. HCC hücre satırı sayfa ek olarak başka bir iki hücre sayfaları oluşturulur: HCC hücreleri ve kemik iliği MSCs (BMMSCs) ve bir levha HCC hücrelerin ve göbek kordonu MSCs (UCMSCs) bir sayfası. HCC hücreleri ve MSCs kombinasyon var sayfaları da bir tümörü taşıyan hayvanı üretme yeteneğine sahiptirler. Ancak, MSCs eklenmesiyle oluşan tümör boyutunu küçültür ve bu tümör gelişimi üzerinde olumsuz etkisi kullanılan MSCs kaynağına bağlı olarak değişir. Bu hücre sabıkası belirli MSC alt türlerinden yapılan tümör yönetimi ve denetimi kullanıldığında olabilir gösterir.

Transplante hücre yaprak sıçanlarda tumorigenicity:
Bir ay sonra nakli, tüm transplante hücre çarşaflarda rats karaciğer tümörleri (Şekil 3) geliştirdik. Gelişmiş tümör HepG2, HepG2/BMMSC ve HepG2/UCMSC hücre sayfaları üzerinden ortalama büyüklüğü 4,5 cm, 4 cm ve 2,5 cm, sırasıyla10vardı.
<p class="jove_content" fo:keep-together...

Watch this Scientific Journal Video about Exploring the Potential of Mesenchymal Stem Cell Sheet on The Development of Hepatocellular Carcinoma In Vivo at JoVE.com

Exploring the Potential of Mesenchymal Stem Cell Sheet on The Development of Hepatocellular Carcinoma In Vivo

Burada, hücre sayfası teknolojisi kullanarak bir vivo içinde kanser modeli geliştirmek için bir protokol mevcut. Böyle bir model antikanser therapeutics değerlendirme için çok yararlı olabilir.

Hepatosellüler karsinom Vivo içinde geliştirilmesi üzerinde mezenkimal kök hücre sayfası potansiyelini keşfetmek

An in vivo animal model that mimics human cancer could have various applications that deliver significant clinical information. The currently used ...

exploring-potential-mesenchymal-stem-cell-sheet-on-development

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Exploring the Potential of Mesenchymal Stem Cell Sheet on The Development of Hepatocellular Carcinoma In Vivo

5.8K Görüntüleme.  Ministry of National Guard Health Affairs. Burada, hücre sayfası teknolojisi kullanarak bir vivo içinde kanser modeli geliştirmek için bir protokol mevcut. Böyle bir model antikanser therapeutics değerlendirme için çok yararlı olabilir.

Video: Exploring the Potential of Mesenchymal Stem Cell Sheet on The Development of Hepatocellular Carcinoma In Vivo

An Oncogenic Hepatocyte-Induced Orthotopic Mouse Model of Hepatocellular Cancer Arising in the Setting of Hepatic Inflammation and Fibrosis

The absence of a clinically relevant animal model addressing the typical immune characteristics of hepatocellular cancer (HCC) has significantly impeded elucidation of the underlying mechanisms and development of innovative immunotherapeutic strategies. To develop an ideal animal model recapitulating human HCC, immunocompetent male C57BL/6J mice first receive a carbon tetrachloride (CCl4) injection to induce liver fibrosis, then receive histologically-normal oncogenic hepatocytes from young male SV40 T antigen (TAg)-transgenic mice (MTD2) by intra-splenic (ISPL) inoculation. Androgen generated in recipient male mice at puberty initiates TAg expression under control of a liver-specific promoter. As a result, the transferred hepatocytes become cancer cells and form tumor masses in the setting of liver fibrosis/cirrhosis. This novel model mimics human HCC initiation and progression in the context of liver fibrosis/cirrhosis and reflects the most typical features of human HCC including immune dysfunction.

Here, we describe the development of a clinically relevant murine model of liver cancer recapitulating the typical immune features of hepatocellular cancer (HCC).

Hepatik İnflamasyon ve Fibrozis Ortamında Ortaya Çıkan Hepatosellüler Kanserin Onkojenik Hepatositkaynaklı Ortotopik Fare Modeli

The absence of a clinically relevant animal model addressing the typical immune characteristics of hepatocellular cancer (HCC) has significantly impeded ...

Kanser Araştırmaları

A Biomimetic Model for Liver Cancer to Study Tumor-Stroma Interactions in a 3D Environment with Tunable Bio-Physical Properties

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a primary liver tumor developing in the wake of chronic liver disease. Chronic liver disease and inflammation leads to a fibrotic environment actively supporting and driving hepatocarcinogenesis. Insight into hepatocarcinogenesis in terms of the interplay between the tumor stroma micro-environment and tumor cells is thus of considerable importance. Three-dimensional (3D) cell culture models are proposed as the missing link between current in vitro 2D cell culture models and in vivo animal models. Our aim was to design a novel 3D biomimetic HCC model with accompanying fibrotic stromal compartment and vasculature. Physiologically relevant hydrogels such as collagen and fibrinogen were incorporated to mimic the bio-physical properties of the tumor ECM. In this model LX2 and HepG2 cells embedded in a hydrogel matrix were seeded onto the inverted transmembrane insert. HUVEC cells were then seeded onto the opposite side of the membrane. Three formulations consisting of ECM-hydrogels embedded with cells were prepared and the bio-physical properties were determined by rheology. Cell viability was determined by a cell viability assay over 21 days. The effect of the chemotherapeutic drug doxorubicin was evaluated in both 2D co-culture and our 3D model for a period of 72h. Rheology results show that bio-physical properties of a fibrotic, cirrhotic and HCC liver can be successfully mimicked. Overall, results indicate that this 3D model is more representative of the&#160;in vivo&#160;situation compared to traditional 2D cultures.&#160;Our 3D tumor model showed a decreased response to chemotherapeutics, mimicking drug resistance typically seen in HCC patients.&#160;

This protocol presents a 3D biomimetic model with accompanying fibrotic stromal compartment. Prepared with physiologically relevant hydrogels in ratios mimicking the bio-physical properties of the stromal extracellular matrix, an active mediator of cellular interactions, tumor growth and metastasis.

Ayarlanabilir Biyo-Fiziksel Özelliklere Sahip 3D Ortamda Tümör-Stroma Etkileşimlerini İncelemek İçin Karaciğer Kanseri için Biyomimetik Model

Hepatocellular carcinoma (HCC) is a primary liver tumor developing in the wake of chronic liver disease. Chronic liver disease and inflammation leads to a ...

Generation of Subcutaneous and Intrahepatic Human Hepatocellular Carcinoma Xenografts in Immunodeficient Mice

In vivo experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate the human disease provide a valuable platform for research into disease pathophysiology and for the preclinical evaluation of novel therapies. We present a variety of methods to generate subcutaneous or orthotopic human HCC xenografts in immunodeficient mice that could be utilized in a variety of research applications. With a focus on the use of primary tumor tissue from patients undergoing surgical resection as a starting point, we describe the preparation of cell suspensions or tumor fragments for xenografting. We describe specific techniques to xenograft these tissues i) subcutaneously; or ii) intrahepatically, either by direct implantation of tumor cells or fragments into the liver, or indirectly by injection of cells into the mouse spleen. We also describe the use of partial resection of the native mouse liver at the time of xenografting as a strategy to induce a state of active liver regeneration in the recipient mouse that may facilitate the intrahepatic engraftment of primary human tumor cells. The expected results of these techniques are illustrated. The protocols described have been validated using primary human HCC samples and xenografts, which typically perform less robustly than the well-established human HCC cell lines that are widely used and frequently cited in the literature. In comparison with cell lines, we discuss factors which may contribute to the relatively low chance of primary HCC engraftment in xenotransplantation models and comment on technical issues that may influence the kinetics of xenograft growth. We also suggest methods that should be applied to ensure that xenografts obtained accurately resemble parent HCC tissues.

Human tumor xenografts in immunodeficient mice are valuable tools to study cancer biology. Specific protocols to generate subcutaneous and intrahepatic xenografts from human hepatocellular carcinoma cells or tumor fragments are described. Liver regeneration induced by partial hepatectomy in recipient mice is presented as a strategy to facilitate intrahepatic engraftment.

Bağışıklık yetersizliği olan farelere subkutan olarak ve intrahepatik insan hepatoselüler karsinoma ksenograftlarının Üretimi

In  vivo experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate  the human disease provide a valuable platform for research into disease  ...

Tıp

The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane (CAM) Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

The chick chorioallantoic membrane (CAM) begins to develop by day 7 after fertilization and matures by day 12. The CAM is naturally immunodeficient and highly vascularized, making it an ideal system for tumor implantation. Furthermore, the CAM contains extracellular matrix proteins such as fibronectin, laminin, collagen, integrin alpha(v)beta3, and MMP-2, making it an attractive model to study tumor invasion and metastasis. Scientists have long taken advantage of the physiology of the CAM by using it as a model of angiogenesis. More recently, the CAM assay has been modified to work as an in vivo xenograft model system for various cancers that bridges the gap between basic in vitro work and more complex animal cancer models. The CAM assay allows for the study of tumor growth, anti-tumor therapies, and pro-tumor molecular pathways in a biologically relevant system that is both cost- and time-effective. Here, we describe the development of CAM xenograft model of hepatocellular carcinoma (HCC) with embryonic survival rates of up to 93% and reliable tumor take leading to growth of three-dimensional, vascularized tumors.

The In Ovo Chick Chorioallantoic Membrane CAM Assay as an Efficient Xenograft Model of Hepatocellular Carcinoma

The chick chorioallantoic membrane (CAM) is immunodeficient and highly vascularized, making it a natural in vivo model of tumor growth and angiogenesis. In this protocol, we describe a reliable method of growing three-dimensional, vascularized hepatocellular carcinoma (HCC) tumors using the CAM assay.

<em&gt; Ovo</emHepatosellüler karsinom Verimli Xenograftlarında Modeli olarak&gt; Piliç Chorioallantoic Membran (CAM) Deneyi

The chick chorioallantoic membrane (CAM) begins to develop by day 7 after fertilization and matures by day 12. The CAM is naturally immunodeficient and ...

A "Patient-Like" Orthotopic Syngeneic Mouse Model of Hepatocellular Carcinoma Metastasis

The majority of cancer-related deaths are caused by the metastasis of the cancer rather than the primary tumor itself. Yet, the underlying mechanisms of cancer metastasis are still unclear. Animal models are essential for elucidating the mechanisms and for evaluating novel strategies for the treatment of metastatic cancers. Here, an in-depth description of a &#8220;patient-like&#8221; orthotopic syngeneic mouse model for exploring the mechanisms of metastasis of solid organ tumors is provided. The survival surgical implantation of BNL 1ME A.7R.1 mouse hepatocellular carcinoma cells directly into the liver (the organ of origin) of the inbred wild-type immune competent laboratory mouse strain, BALB/c is described. The success and reproducibility of this methodology recommends it for widespread use in elucidating the biological mechanisms of solid organ cancer metastasis.

The metastatic spread of cancer is the major cause of cancer-related deaths. We provide an in-depth description of our survival surgery methodology for establishing a &#8220;patient-like&#8221; orthotopic syngeneic mouse model system for studying the mechanisms of metastasis in solid organ tumors.

Bir &quot;Hasta gibi&quot; Ortotopik singenik Fare Modeli Hepatoselüler karsinomu metastazı

The majority of cancer-related deaths are caused by the metastasis of the cancer rather than the primary tumor itself. Yet, the underlying mechanisms of ...

Construction of a Multilayered Mesenchymal Stem Cell Sheet with a 3D Dynamic Culture System

Stem cell therapy shows a promising future in regenerating injured organ and tissues, and the cell sheet technique has been developed to improve the low cell retention and poor survival within the target zone. However, during the in vitro construction process, a solution for maintaining stem cell bioactivity and increasing the cell amount within the cell sheet is urgently needed. Here, this protocol presents a method for constructing a multilayered cell sheet with favorable stem cell bioactivity and optimal operability. Decellularized porcine pericardium (DPP) is prepared by phospholipase A2 (PLA2) decellularization method as the cell sheet scaffold, and rat bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs) are isolated and expanded as the seeded cells. The temporary multilayered cell sheet structure is constructed by using RAD16-I peptide hydrogel. Finally, the cell sheet is cultured with a dynamic perfusion system to stabilize the three-dimensional (3D) structure, and the cell sheet could be obtained following a 48-hour culture in vitro. This protocol provides an efficient and feasible method for constructing a multilayered stem cell sheet, and the cell sheet could be developed as a favorable stem cell therapy product in the future.

This article provides an efficient and feasible method for constructing multilayered stem cell sheets with favorable stem cell property.

3D dinamik kültür sistemi ile bir çok katmanlı mezenkimal kök hücre levha inşaatı

Stem cell therapy shows a promising future in regenerating injured organ and tissues, and the cell sheet technique has been developed to improve the low ...

Biyomühendislik

Isolation of CD133+ Liver Stem Cells for Clonal Expansion

Liver stem cell, or oval cells, proliferate during chronic liver injury, and are proposed to differentiate into both hepatocytes and cholangiocytes. In addition, liver stem cells are hypothesized to be the precursors for a subset of liver cancer, Hepatocellular carcinoma. One of the primary challenges to stem cell work in any solid organ like the liver is the isolation of a rare population of cells for detailed analysis. For example, the vast majority of cells in the liver are hepatocytes (parenchymal fraction), which are significantly larger than non-parenchymal cells. By enriching the specific cellular compartments of the liver (i.e. parenchymal and non-parenchymal fractions), and selecting for CD45 negative cells, we are able to enrich the starting population of stem cells by over 600-fold.The proceduresdetailed in this report allow for a relatively rare population of cells from a solid organ to be sorted efficiently. This process can be utilized to isolateliver stem cells from normal murine liver as well as chronic liver injury models, which demonstrate increased liver stem cell proliferation. This method has clear advantages over standard immunohistochemistry of frozen or formalin fixed liver as functional studies using live cells can be performed after initial co-localization experiments. To accomplish the procedure outlined in this report, a working relationship with a research based flow-cytometry core is strongly encouraged as the details of FACS isolation are highly dependent on specialized instrumentation and a strong working knowledge of basic flow-cytometry procedures. The specific goal of this process is to isolate a population of liver stem cells that can be clonally expanded in vitro.

Here we describe the isolation of CD133 expressing liver stem cells and cancer stem cells from whole murine liver, a process that requires tissue digestion, cell enrichment, and flow cytometry isolation. We include methods for advanced single cell isolation and clonal expansion.

Klonal Genişleme CD133 + Karaciğer Kök Hücre İzolasyonu

Liver stem cell, or oval cells, proliferate during chronic liver injury, and are proposed to differentiate into both hepatocytes and cholangiocytes. In ...

Biyoloji

Transplantation of Adipose Tissue-Derived Stem Cell Sheet to Reduce Leakage After Partial Colectomy in A Rat Model

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of clinical efficacy, they are until now imperfect solutions. Stem cell therapy using ASC sheets could provide a solution to this problem. ASCs are considered as promising candidates for promoting tissue healing because of their trophic and immunomodulatory properties. Here, we provide methods to produce high-density ASC sheets, that are transplanted onto a colorectal anastomosis in a rat model to reduce the leakage. ASCs formed cell sheets in thermo-responsive culture dishes that could be easily detached. On the day of the transplantation, a partial colectomy with a 5-suture colorectal anastomosis was performed. Animals were immediately transplanted with 1 ASC sheet per rat. ASC sheets adhered spontaneously to the anastomosis without any glue, suture, or any biomaterial. Animal groups were sacrificed 3 and 7 days postoperatively. Compared to transplanted animals, the incidence of anastomotic abscesses and leakage was higher in control animals. In our model, the transplantation of ASC sheets after colorectal anastomosis was successful and associated with a lower leakage rate.

The preparation and transplantation of adipose tissue derived stem cell (ASC) sheets onto insufficiently sutured colorectal anastomoses in a rat model is presented. This novel application shows that ASC sheets can reduce colorectal anastomosis leakage.

Bir sıçan modelinde kısmi kolektomi sonra kaçağı azaltmak için Yağ dokusundan elde edilen kök hücre sayfasının nakli

Anastomotic leakage is a disastrous complication after colorectal surgery. Although current methods for leakage prevention have different levels of ...

An Efficient Method for Directed Hepatocyte-Like Cell Induction from Human Embryonic Stem Cells

The potential functions of hepatocyte-like cells (HLCs) derived from human embryonic stem cells (hESCs) hold great promise for disease modeling and drug screening applications. Provided here is an efficient and reproducible method for differentiation of hESCs into functional HLCs. The establishment of an endoderm lineage is a key step in the differentiation to HLCs. By our method, we regulate the key signaling pathways by continuously supplementing Activin A and CHIR99021 during hESC differentiation into definitive endoderm (DE), followed by generation of hepatic progenitor cells, and finally HLCs with typical hepatocyte morphology in a stagewise method with completely defined reagents. The hESC-derived HLCs produced by this method express stage-specific markers (including albumin, HNF4&#945; nuclear receptor, and sodium taurocholate cotransporting polypeptide (NTCP)), and show special characteristics related to mature and functional hepatocytes (including indocyanine green staining, glycogen storage, hematoxylin-eosin staining and CYP3 activity), and can provide a platform for the development of HLC-based applications in the study of liver diseases.

This manuscript describes a detailed protocol for differentiation of human embryonic stem cells (hESCs) into functional hepatocyte-like cells (HLCs) by continuously supplementing Activin A and CHIR99021 during hESC differentiation into definitive endoderm (DE).

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinden Yönlendirilmiş Hepatosit Benzeri Hücre İndüksiyonu İçin Etkili Bir Yöntem

The potential functions of hepatocyte-like cells (HLCs) derived from human embryonic stem cells (hESCs) hold great promise for disease modeling and drug ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Assembloid Technology: Pioneering Liver Development Research

In Vitro Cultivation Techniques for Modeling Liver Organogenesis, Building Assembloids, and Designing Synthetic Tissues using Human Cell Lines

Chronic liver disease has reached epidemic proportions, affecting over 800 million people globally. The current treatment, orthotopic liver transplantation, has several limitations. Promising solutions have emerged in the field of liver regenerative medicine, with liver organogenesis holding significant potential. Early liver organogenesis, occurring between E8.5 and 11.5, involves the formation of epithelial-mesenchymal interactions leading to morphogenesis, hepatic cord formation, and collective migration. However, there is a lack of methods for in vitro modeling of this process. In this study, a detailed series of methods is presented, enabling the modeling of various stages and aspects of liver organogenesis with human cell lines. In one method series, assembloid technology with hepatic (HEP) and mesenchymal (MES) spheroids are utilized, replicating early structures found in liver organogenesis, modeling early morphogenesis, and demonstrating interstitial cell migration as seen in vivo. These innovative assembloid systems help identify factors influencing assembloid formation and migration. HEP spheroid cultivation systems were also employed to model collective migration and branching morphogenesis. Mesenchymal-conditioned media (M-CM) plays a significant role in initiating dose-dependent branching migration. All presented methods were shown to be highly reproducible with a high success rate. By linking these events together, our work will enable recreating sequential, morphogenetic events to reverse engineer organogenesis in vitro and in vivo.

Organoids revolutionize personalized tissue modeling for organ development, drug discovery, and disease research. Organoid engineering advances into creating intricate synthetic tissues. The aim is to integrate morphogenesis, assembloid technology, and biomatrices to advance tissue engineering. This protocol aids in modeling liver organogenesis and establishing guidelines for synthetic tissue construction.

Hepatosellüler karsinom Vivo içinde geliştirilmesi üzerinde mezenkimal kök hücre sayfası potansiyelini keşfetmek

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler